WB的原理、操作及注意事项
WB操作原理以及流程细节
WB操作原理以及流程细节WB操作，也称为网络蜘蛛操作，是指利用网络爬虫技术从Web上抓取数据的过程。
在这个过程中，网络蜘蛛会按照指定的规则和策略自动从互联网上爬取网页，并将抓取到的数据进行提取和处理。
WB操作的基本原理是通过HTTP和HTML协议来实现，主要包括以下几个步骤：1.网络请求：首先，网络蜘蛛需要发送HTTP请求到目标网站的服务器，请求获取相应的网页内容。
2.响应获取：服务器接收到请求后，会返回一个HTTP响应，其中包含了网页的内容和一些其他的信息（如状态码、响应头等）。
4.URL处理：在解析HTML源码的过程中，网络蜘蛛会提取出网页中的URL链接。
它会根据一定的规则和策略，对这些URL进行处理，包括去重、过滤和调度等操作。
5.深度遍历：网络蜘蛛会根据一定的遍历策略，继续将这些URL作为新的请求去访问，以实现对网站的深度遍历。
整个WB操作的流程可以表示为以下几个步骤：1.初始化操作：网络蜘蛛会首先进行初始化工作，包括配置相关参数、设置种子URL、建立数据库连接等。
2.URL管理：网络蜘蛛会维护一个URL队列，用于存放待访问的URL。
它会根据一定的调度策略从队列中取出URL，并加入到已访问的URL集合中。
3.网络请求和响应获取：网络蜘蛛会发送HTTP请求到目标网站，然后等待服务器返回HTTP响应。
它会根据响应的状态码和内容进行判断和处理。
4.内容解析和数据处理：网络蜘蛛会解析HTTP响应，提取出网页的HTML源码，并根据规则和策略从中提取出感兴趣的数据。
然后它会对这些数据进行处理，包括清洗、格式化和存储等操作。
5.URL处理和遍历：网络蜘蛛会从解析出的HTML源码中提取出新的URL链接，并根据一定的规则对这些URL进行处理。
它会根据一定的遍历策略，将这些URL加入到URL队列中，以便后续的访问和处理。
6.循环迭代：网络蜘蛛会不断地循环执行上述的操作，直到URL队列为空或达到设定的条件，如爬取的网页数量达到一定阈值等。
WB原理及操作注意事项详解
2. 高背景
• 即便是抗体是高特异性的，而且稀释度也 进行了优化，但还是出现了不能接收的背 景问题，why？
• 可能是斑点状的噪音背景和整体的暗背景， 问题出在封闭剂的使用。
2. 高背景
• 正确使用封闭剂很关键： • eg1：脱脂奶粉不能与生物素化或者刀豆蛋 白标记的抗体一起使用 • eg2：检测磷酸化的抗体，不能使用含有磷 酸酶的封闭剂 • 所以说：适用于一种抗原抗体组合的封闭 剂不一定适用于另外组合。 • 甲醇是封闭么？？
• In this study, radioactive BSA was resolved by SDSPAGE, and the gels were equilibrated in transfer buffer for periods ranging from 0 to 30 minutes. Protein was transferred to Immobilon-P transfer membrane backed up with a piece of Immobilon-PSQ transfer membrane to adsorb any BSA not retained by the Immobilon-P transfer membrane. At the end of the transfer period,the BSA in the gel, on the primary blot (Immobilon-P transfer membrane) and on the back-up blot (Immobilon-PSQ transfer membrane) was quantified. Retention improved to 90% when the duration of the equilibration period was increased to 30 minutes. Other proteins have been found to behave similarly
WB实验的基本原理及操作流程
WB实验的基本原理及操作流程WB实验（Western Blotting）是一种用于检测和分离蛋白质的实验方法，广泛应用于生物医学和生物化学领域。
它通过将复杂的蛋白质混合物按照分子大小分离，并使用特异性抗体来探测目标蛋白质。
本文将介绍WB实验的基本原理及操作流程。
一、基本原理WB实验主要基于蛋白质的电泳分离和免疫染色原理。
具体步骤如下：1.样品制备：首先，需要从细胞或组织中提取蛋白质，并经过适当的处理，如裂解细胞、破碎细胞膜等，以获取纯净的蛋白质样品。
2. SDS-电泳：将样品加入聚丙烯酰胺凝胶（Polyacrylamide Gel），随后进行电泳。
这一步骤会根据蛋白质的分子大小进行分离。
3.转膜：将分离的蛋白质从凝胶转移到聚乙烯2.2-羟基苯基酮（PVDF）或硝酸纤维素膜上，这样可以更容易进行免疫染色。
4.封闭：将转膜后的膜进行封闭，通常使用牛血清白蛋白（BSA）或脱脂奶粉等阻断非特异性结合位点。
5.抗体反应：加入目标蛋白质特异性的抗体，使其与特定抗原位点结合。
6.洗涤：将膜洗涤以去除非特异性的抗体。
7.免疫染色：加入酶标记的辅助抗体，它与目标抗体结合，并携带可检测信号物质（如酶或荧光染料）。
8.显色：加入合适的底物，使酶标记的辅助抗体产生可视化的颜色或荧光信号。
9.分析：通过成像设备（如X射线胶片或荧光成像系统）观察和记录目标蛋白质的表达。
二、操作流程下面是一份WB实验的基本操作流程，具体步骤可能因实验目的和实验条件而有所变化。
1.样品制备：a.收集细胞或组织样品，并使用适当的缓冲液裂解细胞膜。
b.添加蛋白质提取试剂，并彻底裂解细胞。
c.离心裂解后的细胞，收集上清液，其中含有目标蛋白质。
2.SDS-电泳：a.准备好聚丙烯酰胺凝胶，通常使用8%至12%的分辨胶。
b.加载待测样品和分子量标记蛋白质到凝胶中。
c.进行电泳，常用条件为100V持续电解，直到样品顶到凝胶底部。
3.转膜：a.准备合适大小的PVDF或硝酸纤维素膜，并剪成和凝胶一样大小。
wb实验原理及步骤
wb实验原理及步骤
WB实验是WesternBlot实验的缩写，是一种常用的蛋白质检测方法。
该实验可以通过检测目标蛋白在蛋白样本中的存在和数量来确定其表达水平。
以下是WB实验的原理及步骤：
一、实验原理
WB实验基于蛋白质的电泳分离和免疫学检测。
首先将蛋白质样本通过SDS-PAGE电泳分离，然后将分离后的蛋白质转移到聚丙烯酰胺凝胶膜上。
接着使用一种特异性抗体与目标蛋白结合，最后通过酶标记的二抗和显色底物来检测目标蛋白。
二、实验步骤
1. 样品制备：将待检测的蛋白样本加入SDS-PAGE凝胶中进行电泳分离。
2. 转移：将分离后的蛋白质转移到聚丙烯酰胺凝胶膜上。
3. 阻断：将聚丙烯酰胺凝胶膜与含有蛋白质的阻断液进行接触，以防止非特异性结合。
4. 抗体反应：将目标蛋白结合的特异性抗体添加到聚丙烯酰胺凝胶膜中，并在室温下或4℃下进行孵育。
5. 二级抗体反应：添加酶标记的二级抗体，与特异性抗体结合。
6. 显色检测：加入显色底物，通过显色反应确定目标蛋白在样品中的存在和数量。
以上是WB实验的原理及步骤，该实验在生物医学研究中广泛应用，为疾病的诊断和治疗提供了有力的支持。
WB实验的基本原理及操作流程
WB实验的基本原理及操作流程【实验原理】一个基因表达终极结果是产生相应的蛋白质(或酶)。
因此检测蛋白质是测定基因表达的主要标志，检测蛋白质的方法很多，除ELISA法外，也可用与检测DNA和RNA相类似的吸印方法。
前两法有“南”和“北”之意，故本法遂被延伸称为Western(西)印迹法，该法能用SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳分辨出与专一抗血清结合的专一性蛋白质。
将聚丙烯酰胺凝胶上分辨出的蛋白质转移到硝酸纤维素膜上并与第一抗体共孵。
第一抗体专一地与待分离蛋自质的抗原决定簇结合，然后用另一种蛋自质，如135I-蛋白A或辣根过氧化物酶连接的山羊抗IgG检测已结合上去的抗体。
本法所需时间6小时或过夜。
蛋白质的聚丙烯酰胺凝胶电泳几乎所有蛋白质电泳分析都在聚丙烯酰胺凝胶上进行，而所用条件总要确保蛋白质解离成单个多肽亚基并尽可能减少其相互间的聚集。
最常用的方法是将强阴离子去污剂SDS与某一还原剂并用，并通过加热使蛋白质解离后再加样于电泳凝胶上。
变性的多肽与SDS结合并因此而带负电荷，由于多肽结合SDS的量几乎总是与多肽的分子量成正比而与其序列无关，因此SDS多肽复合物在聚丙烯酰凝胶电泳中的迁移只与多肽的大小相关。
在达到饱和的状态下，每克多肽约可结合1.4克去污剂，借助已知分子量的标准参照物，则可测算出多肽链的分子量。
SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳大多在不连续缓冲系统中进行，其电泳槽缓冲液的pH值与离子强度不同于配胶缓冲液，当两电极间接通电流后，凝胶中形成移动界面，并带动加入凝胶的样品中所含的SDS多肽复合物向前推进。
样品通过高度多孔性的积层胶后，复合物在分离胶表面聚集成一条很薄的区带(或称积层)。
曲于不连续缓冲系统具有把样品中的复合物全部浓缩于极小体积的能力，故大大提高了SDS聚丙烯酰胺凝胶的分辨率。
最广泛使用的不连续缓冲系统最早是由Ornsstein(1964)和Davis(1964)设计的，样品和积层胶中含Tris-Cl(pH6.8)，上下槽缓冲液含Tris-甘氨酸(pH8.3)，分离胶中含Tris-Cl(pH8.8)的。
WB实验原理
WB实验原理WB实验（Western Blot）是一种常用的生物化学实验技术，用于检测和识别蛋白质。
本文将介绍WB实验的基本原理和步骤，以及其在科研和临床应用中的重要性。
一、WB实验的原理WB实验是通过将复杂的混合物中的蛋白质分离、电泳、转移和检测，来研究特定蛋白质的存在与表达水平。
其原理主要包括以下几个步骤：1. 蛋白质提取与电泳分离：首先，需要从细胞或组织中提取目标蛋白质。
常用的方法包括细胞裂解、超声破碎等。
然后，将提取得到的蛋白质样品进行电泳分离，通常使用聚丙烯酰胺凝胶电泳（SDS-PAGE）。
2. 转移：将分离后的蛋白质通过电泳转移到聚乙烯膜（PVDF）或硝酸纤维素膜上，这样可以使蛋白质固定在膜上，方便后续的检测。
3. 阻断与抗体探针：在转移的蛋白质膜上进行阻断处理，防止非特异性结合和减少背景信号。
然后，通过与目标蛋白质有特异性结合的一抗探针进行孵育，使其与目标蛋白质特异性结合。
4. 二抗与信号发生物：加入与一抗来源物种不同的二抗，二抗具有与一抗结合的能力。
通常，二抗会标记着某种信号发生物，如辣根过氧化物酶（HRP）或碱性磷酸酶（AP），这些信号发生物能够发出具体的发光信号。
5. 显示与分析：通过染色剂与特定的底物反应，使目标蛋白质发出可见的光信号，然后使用成像系统记录光信号。
最后，使用分析软件定量分析蛋白质带的强度。
二、WB实验的步骤根据上述的原理，WB实验的具体步骤如下：1. 细胞裂解：将待检测的细胞或组织进行细胞裂解，使用细胞裂解液溶解细胞膜，并释放目标蛋白质。
2. SDS-PAGE电泳：将提取的蛋白质样品注入电泳胶槽中，通过应用电场，根据蛋白质的大小和电荷分离蛋白质。
3. 蛋白质转移：将分离的蛋白质转移到膜上，通常使用温和的电压和适当的时间进行转移。
4. 阻断与孵育：在转移的膜上进行阻断处理，再用一抗孵育膜，使其与目标蛋白质结合。
5. 二抗与信号发生物：加入与一抗来源物种不同的二抗，再加入信号发生物，使目标蛋白质产生光信号。
WB原理及操作注意事项详解解读
• In this study, radioactive BSA was resolved by SDSPAGE, and the gels were equilibrated in transfer buffer for periods ranging from 0 to 30 minutes. Protein was transferred to Immobilon-P transfer membrane backed up with a piece of Immobilon-PSQ transfer membrane to adsorb any BSA not retained by the Immobilon-P transfer membrane. At the end of the transfer period,the BSA in the gel, on the primary blot (Immobilon-P transfer membrane) and on the back-up blot (Immobilon-PSQ transfer membrane) was quantified. Retention improved to 90% when the duration of the equilibration period was increased to 30 minutes. Other proteins have been found to behave similarly
优化转移过程
• 调节转移缓冲液成分： SDS（<0.05%） 甲醇（10%-20%小分子除外） • 延长凝胶在转移缓冲液中平衡时间（去除 凝胶中的SDS） 5-30min
• In SDS-PAGE systems, the running buffer is supplemented with SDS. This SDS concentrates from the cathode reservoir and runs into the gel behind the bromophenol blue tracking dye. Since most gels are run until the tracking dye is at the bottom of the gel, all of the excess SDS remains in the gel and is carried over into the blotting procedure. If it isn’t allowed to diffuse out of the gel prior to transfer, it will interfere with protein adsorption. Equilibration times can be extended up to 30 minutes, and sufficient buffer should be used to reduce the SDS to a minimal level.
WB原理及操作注意事项详解
WB原理及操作注意事项详解一、WB原理WB即White Balance，是指相机调整图像色彩的设置，使得图像中的白色或中性颜色看起来真实且准确。
它通过测量图像所拍摄的场景中的白色参考点，将该点设置为真实的白色或中性颜色，并通过调整其他色彩来实现整个图像的色彩平衡。
相机根据光源的颜色温度进行色彩校正。
颜色温度是指光源的色彩发光特性，通常以单位开尔文（K）表示。
较低的数值代表较暖的色彩，较高的数值代表较冷的色彩。
在室内拍摄环境中，常见的光源有白炽灯、荧光灯、LED灯等，它们的颜色温度不同，因此会影响图像的色彩表现。
若相机的白平衡设置不正确，图像中的白色或其他颜色会出现偏色，使得图像色彩失真。
二、操作注意事项1.使用自动白平衡模式：现代的相机一般都提供自动白平衡模式，可以根据光源的颜色温度自动调整色彩，方便又快捷。
在大多数情况下，自动白平衡模式能够满足拍摄需求，因此建议使用自动模式进行拍摄。
2.手动白平衡校准：一些特殊情况下，自动白平衡模式无法准确识别光源的颜色温度，这时可以选择手动白平衡校准。
具体操作是在相机菜单中找到白平衡设置选项，然后按照相机说明书或菜单提示进行校准操作，通常需要拍摄一个白色卡片或中性灰色卡片作为参考。
手动白平衡校准需要一定的经验和技巧，对于初学者来说可能需要多次尝试才能获得满意的效果。
3.手动设置白平衡模式：除了自动白平衡模式和手动白平衡校准，一些相机还提供了多种预设的白平衡模式，如阴影、日光、白炽灯等。
这些模式可以根据实际拍摄环境的光源特点选择，以便更准确地调整图像的色彩。
4.考虑周围光源：光源的颜色温度可能在不同的环境中发生变化，在拍摄时需要注意周围光源的情况。
例如，如果在室内拍摄时有窗外的自然光进入室内，可能会导致色彩偏差。
此时可以使用相机的曝光补偿功能来调整亮度，或者添加反光板、遮光板等辅助工具来控制光线。
5.各种光源的颜色温度：不同的光源具有不同的颜色温度，以下是一些常见光源的颜色温度范围供参考：-白炽灯：约2500K-3000K；-电晕灯/日光灯：约3500K-4500K；-太阳光：约5000K-5500K；-阴天/阴影：约6000K-7500K；了解各种光源的颜色温度范围，可以帮助拍摄者更好地选择相机的白平衡模式，准确调整图像的色彩。
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WB的原理、操作及注意事项原理：通过电泳区分不同的组分，并转移至固相支持物，通过特异性试剂（抗体）作为探针，对靶物质进行检测，蛋白质的Western 印迹技术结合了凝胶电泳的高分辨率和固相免疫测定的特异敏感等多种特点，可检测到低至1〜5ng （最低可到10- 100pg）中等大小的靶蛋白。
一、抗原的选择和制备A：样品的制备1 组织：组织的处理方法：组织洗涤后加入3倍体积预冷的PBS0C研磨，加入5X STOFbuffer , 180W6mins , 0C 超声波破碎，5000rpm,5mins 离心，取上清。
加入B -ME（9.5ml 加入0.5ml）, 溴酚蓝（9.5ml加入0.5ml ）煮沸10min，分装后于-20 C保存，用时取出，直接溶解上样。
2 细胞：细胞的处理方法：离心收集细胞或者直接往细胞培养瓶内加入 5 x STOPbuffer，收集，180W6mins , 0C超声波破碎，5000rpm,5mins 离心，取上清。
加入B -ME（9.5ml 加入0.5ml）, 溴酚蓝（9.5ml加入0.5ml ）煮沸10min，分装后于-20 C保存，用时取出，直接溶解上样。
3 分泌蛋白的提取（特例）：直接收集分泌液，加入B -ME、溴酚蓝制样。
B:蛋白的定量方法及影响蛋白定量原因1. 双缩脲法：双缩脲法是第一个用比色法测定蛋白质浓度的方法。
在需要快速，但不很准确的测定中，常用此法。
硫铵不干扰显色，这对蛋白质提纯的早期阶段是非常有利的。
双缩脲法的原理是Cu2+与蛋白质的肽键，以及酪氨酸残基络合，形成紫蓝色络合物，此物在540nm波长处有最大吸收。
双缩脲法常用于0.5g/L 〜10g/L 含量的蛋白质溶液测定。
干扰物有硫醇，以及具有肽性质缓冲液，如Tris、Good缓冲液等。
可用沉淀法除去干扰物，即用等体积10%^的三氯醋酸沉淀蛋白质，然后弃去上清液，再用已知体积的1mNaOH溶解沉淀的蛋白质进行定量测定。
2. Lowry 法：此法是双缩脲法的进一步发展。
他的第一步就是双缩脲反应，即Cu++与蛋白质在碱性溶液中形成络合物，然后这个络合物还原磷钼磷-磷钨酸试剂（福林-酚试剂），结果得到深蓝色物。
此法比双缩脲法灵敏得多，适合于测定20mg/L〜400mg/L 含量的蛋白质溶液。
其干扰物质与双缩脲法相同，而且受他们的影响更大，硫醇和许多其他物质的存在会使结果严重偏差。
另外要注意的是，加入福林试剂时要特别小心，试剂只在酸性pH环境中才稳定，上述提到的还原反应只有在pH10时才发生，因此，福林试剂加入到碱性的Cu2+-蛋白质溶液中时，必须立刻搅拌，以使磷钼酸-磷钨酸试剂在未被破坏之前能有效地被Cu2+-蛋白质络合物所还原。
3. 紫外吸收法：大多数蛋白质在280nm波长处有特征的最大吸收，这是由于蛋白质中有酪氨酸，色氨酸和苯丙氨酸存在的缘故，因此，利用这个特异性吸收，可以计算蛋白质的含量。
如果没有干扰物质的存在，在280nm处的吸收可用于测定0.1〜0.5mg/ml含量的蛋白质溶液。
部分纯化的蛋白质常含有核酸，核酸在260nm波长处有最大吸收。
有核酸时，所测得的蛋白质浓度必须作适当校正，一般按下述公式粗略计算：M 白虜浓皮（m”/mi）—1 ” 55A”™ - 0.76 \ m280 260IonA A2S0是蛋白质溶液在280nm波长处（光程1厘米）测得的光密度值。
办心是蛋白质溶液在260nm小波长处（光程1厘米）处所测得的光密度值。
此方程是从烯醇酶（在酵母核酸存在时）得出来的。
因此，对其他蛋白质和其他核酸不一定适用。
由于各种蛋白质所含芳香族氨基酸的量不同，因此，浓度为0.1%的各0 1%种蛋白质在280nm处的消光系数（：前）在0.5〜2.5之间变化。
所有的蛋白质在230nm以下都有强吸收。
例如，牛血清白蛋白的 a 0.1%在225nm和215nm处分别为5.0和11.7，而在280nm处测为0.58。
在230nm以下的强吸收是由于肽键的存在，因此，此值对所有的蛋白质都是一样的。
从215nm和225nm处的光密度之差可用于测定浓度为10卩l/ml〜100卩l/ml的蛋白质。
蛋白质浓度可以近似地由下式得到：蛋白匪蔽fTfmg/L）- IM亡［7二二"2 光密度之差求得，这一公式是减去溶液中非蛋白质成分产生的误差。
但是，蛋白质之间的分子量差异比较大，因此，在比较几种蛋白质含量时，必须作适当的校正。
由于蛋白质的吸收峰常因pH改变而变化，所以在制作标准曲线时，必须与样品条件一致。
4. Bradford 比色法：Bradford比色法比Lowry法测定蛋白浓度更简单迅速。
用脱氧胆酸/三氯乙酸沉淀蛋白可排除甘油、去污剂、2-巯基乙醇、乙酸、硫酸铵、Tris和一些碱性缓冲系统的干扰。
分别在两组微量离心管中各加入0.5mg/ml牛血清白蛋白（5, 10, 15和20卩l ）,以0.15mmol/l NaCI 补足至100 l，同时以两管100 ^1的0.15mmol/l NaCI 作空白对照。
每管各加入1ml考马斯亮蓝染料溶液，振荡混匀，室温放置2分钟。
用1cm光径的微量比色杯测A595,取A595吸光值对标准蛋白浓度作图，画标准曲线，并测量待测样品的A595。
从BSA标准曲线中确定待测样品的浓度。
测定10-100ug的蛋白质，要在较大试管中将染料溶液体积增大5倍进行。
样品浓度过高，可稀释后进行，或在10-100^g另作一标准曲线进行测定。
5 •电泳估算法（我们选择此法）：样品倍比稀释，SDS-PAG电泳，同时做定量marker对照，可以估算样品大概浓度。
以提取癌组织总蛋白为例：①取等量胰腺癌组织、癌旁组织及正常胰腺组织，用dH2O漂洗5〜10次，再用预冷的1 X PBS洗涤3次，目的是去除样本中的血液。
②每2克组织加入3ml 1 X PBS匀浆，保持在4C条件进行。
③加入5X STOFBuffer缓冲液1ml,混匀，4C下超声碎化。
再加入0.5ml 3 -ME, 0.5ml溴酚蓝，煮沸10mins，至此，制样过程完成；④SDS-FAGE电泳，以BAS作为对照估计样品蛋白浓度。
二、SDS-聚丙烯酸胺凝胶电泳（SDS- PAGEA:实际操作1. 做胶前的准备1）检查是否有足够的、干净的spacer、comb和架子。
2）检查是否有新鲜的，足量10%APS没有立刻重配。
3）按将要检测的抗体对应的原始抗原的分子量大小，计算出胶的浓度，并算出分离胶各组分的用量。
2.制胶，电泳1）装好架子。
2）按照下面配方配制分离胶。
（单位：ml. Total : 8ml）: 3.5ml）倒好后插入预先准备好的梳子。
4）待胶凝集好后，上样，电泳。
上层胶用60-80V电压，当样品至分离胶时，用100-120V 电压。
一般电泳时间在1.5小时左右。
B :注意事项及常遇到的问题1）分离胶不要倒的太满，需要有一定的浓缩胶空间，否则起不到浓缩效果。
2）上样蛋白量不应超过30ug/mm （载荷面即：如果你的胶槽是5mn¥ 1mm则载荷面为：1mm< 5mm=5mm。
3 ）gel通常在0.5-1h内凝集最好，过快表示TEMEDAPS用量过多，此时胶太硬易龟裂，而且电泳时容易烧胶。
太慢则说明两种试剂用量不够或者系统实际不纯或实效。
4 ）混合搅拌速度太快产生气泡影响聚合，导致电泳带畸形。
太慢不均匀，特别是甘油。
5 ）电泳中常出现的一些现象：条带呈笑脸状，原因：凝胶不均匀冷却，中间冷却不好。
亠条带呈皱眉状，可能是由于装置不合适，特别可能是凝胶和玻璃挡板底部有气泡，或者两边聚合不完全。
拖尾：样品溶解不好。
纹理（纵向条纹）：样品中含有不溶性颗粒。
条带偏斜：电极不平衡或者加样位置偏斜。
条带两边扩散：加样量过多。
三、转移在电流的作用下，使蛋白质从胶转移至固相载体（膜）上。
膜的选择：印迹中常用的固相材料有NC膜、DBMDDT尼龙膜、PVDF等。
我们选用PVDF （聚偏二氟乙烯），其具有更好的蛋白吸附、物理强度，以及具有更好的化学兼容性。
有两种规格：Immobilon-P （0.45um）和Immobilon-PSQ（0.2um for MW<20kDa）。
A半干法即将凝胶夹层组合放在吸有转印缓冲液的滤纸之间，通过滤纸上吸附的缓冲液传导电流，起到转移的效果。
因为电流直接作用在膜胶上，所以其转移条件比较严酷，但是其转移时间短，效率高。
1实验条件的选择电流1mA-2mA/cm2我们通常100mA膜，按照目的蛋白分子大小、胶浓度选择转移时间, 具体可以根据实际适当调整。
目的蛋白分子大小（kDa）胶浓度转移时间（h）80---1408% 1.5-2.025---8010 1.515--40120.75<20150.52实验操作（1）滤纸和膜的准备（在电泳结束前20分钟应开始准备工作）。
A.检查是否有足够的transfer buffer ，没有立即配制。
B.检查是否有合适大小的滤纸和膜。
C .将膜泡入甲醇中，约1-2分钟。
再转入tran sfer buffer中。
D .将合适的靠胶滤纸和靠膜滤纸分别泡入tran sfer buffer中＜(2)转移A.在电转移仪上铺好下层滤纸。
一般用三层。
B. 将膜铺在靠膜滤纸上，注意和滤纸间不要有气泡，再倒一些transfer buffer 到膜上，保持膜的湿润。
C. 将胶剥出，去掉stack gel ，小心的移到膜上。
D. 剪去膜的左上角，在膜上用铅笔标记出胶的位置。
E. 将一张靠胶滤纸覆盖在胶上。
倒上些transfer buffer ，再铺两张靠胶滤纸。
F. 装好电转移仪，根据需要选定所需的电流和时间。
G. 转移过程中要随时观察电压的变化，如有异常应及时调整。
靠胶滤纸胶膜靠膜滤纸ANODE何I . .. 亠Aixxk 仙Ifig, ] T CMMmbly3 注意事项及常遇到的问题1）滤纸、胶、膜之间的大小，一般是滤纸>=膜>=胶。
2）滤纸、胶、膜之间千万不能有气泡，气泡会造成短路。
3）因为膜的疏水性，膜必须首先在甲醇中完全浸湿。
而且在以后的操作中，膜也必须随时保持湿润（干膜法除外）。
4）滤纸可以重复利用，上层滤纸（靠膜）内吸附有很多转移透过的蛋白质，所以上下滤纸一定不能弄混，在不能分辨的情况下，可以将靠胶滤纸换新的。
5）转移时间一般为1.5 小时，（ 1mA-2mA/cm2，10%gel），可根据分子量大小调整转移时间和电流大小。
B 湿法我们基本上不用此方法，这里暂不做介绍。
C 转移后效果的鉴定1．染胶用考马斯亮兰染色经destain 脱色后，看胶上是否还有蛋白来反映转移的效果。
2．染膜有两类染液选择，可逆的和不可逆的。
可逆的有ponceau-s red 、Fastgreen FC、CPTS 等，这类染料染色后，色素可以被洗掉，膜可以用做进一步的分析用。