支气管肺泡灌洗液相关实验室操作
支气管-肺泡灌洗检查技术操作规范
支气管-肺泡灌洗检查技术【概述】60年代后期随着可曲性纤维支气管镜（简称纤支镜）的开发与应用，逐渐兴起支气管-肺泡灌洗（Bronchoalvoelar lavage）技术。
1974年由Reynolds和Newball首次发表了有关BAL的文章，1989年欧洲肺病学会建立了BAL协作组并报导了正常人和各种肺疾病患者支气管-肺泡灌洗液（BALF）多中心检查结果。
中华医学会呼吸分会根据我国具体情况分别于1993年和2002年也制定出有关BALF细胞学检查技术规范（草案），使此项检查技术在国内得到推广应用。
由于BAL能直接获取肺内炎症免疫效应细胞，是探讨肺局部免疫病理过程的一种相对比较安全有用的检查方法。
因此，BAL已成为某些肺疾病，特别是弥漫性间质性肺疾病以及免疫受损患者肺部感染等疾病的辅助临床诊断、病变活动性和预后判定的重要检测手段。
【适应症】1.凡能接受纤支镜检查患者均能承受支气管肺泡灌洗的检查。
2.弥漫性间质性肺疾病诊断：特发性肺纤维化、结节病、外源性过敏性肺泡炎、结缔组织病伴肺纤维化、组织细胞增生症X以及嗜酸细胞肺浸润等。
3.弥漫性肺部肿瘤和免疫受损患者肺部感染诊断，如卡氏肺孢子虫肺炎、细支气管肺泡癌。
4.用于肺泡蛋白沉积症的诊断与治疗，行局部和全肺灌洗。
5.用于肺部感染细菌学检测及肺化脓症冲冼引流治疗。
【禁忌证】1．凡纤支镜的禁忌证均为支气管肺泡灌洗的禁忌证。
2．精神高度紧张不能配合完成纤支镜检查患者。
3．严重通气和换气功能患者，PaO2小于50mmHg或吸氧状态下PaO2小于70mmHg。
4．冠心病、高血压病、心律失常、频发心绞痛患者。
5．主动脉瘤和食道静脉曲张有破裂危险的患者。
6．近期发热、咯血和哮喘发作患者。
【术前准备】同纤维支气管镜（纤支镜）术前准备，常规在纤支镜于活检刷检前做BAL。
局部麻醉剂为2%利多卡因。
【操作程序】1.灌洗部位选择：对弥漫性间质性肺疾病选择右肺中（B4或B5）或左肺舌叶，局限性肺病变则在相应支气管肺段进行BAL。
支气管肺泡灌洗、操作技术及评分标准
支气管肺泡灌洗支气管肺泡灌洗（BAL）是以纤支镜嵌入到肺段或亚段支气管水平，反复以无菌生理盐水灌洗、回收的一项技术，对其回收液（BALF）进行细胞学、生化学、酶学和免疫学等一系列检测和分析，是作为研究肺部疾病的病因、发病机制、诊断、评价疗效和判断预后的一项手段，是纤支镜应用的重要发展。
依灌洗围和应用的不同，将BAL方法分为两种：全肺灌洗和肺段或亚段灌洗。
（一）全肺灌洗用于肺泡蛋白沉着症、严重哮喘发作、肺尘埃沉着症、肺泡微石症的治疗。
以肺泡蛋白沉着症为例简要说明其操作过程。
在手术室全麻下进行为宜，先经纤支镜引导下Carlen双腔管，吸纯氧10~15min 后，以150cm H2O压力，滴入37 ℃灭菌生理盐水500~1000ml，然后吸出或任其自行流出或虹吸回收，回收的流失量不超过200ml .灌洗应反复进行，直至洗出液完全清亮，总量一般在3~10L ，个别可高达18L .先灌洗一侧，隔2~3 天再灌另一侧。
全肺灌洗技术操作较复杂，有一定风险，为此，根据病人具体情况，可选择小液量选择性肺叶灌洗，每次50~100ml ，反复灌洗和吸出，一侧肺灌洗总量200 ~ 2000ml，隔3~7 天一次，两肺交替进行。
肺泡蛋白沉着症在采用BAL 治疗前，仅有1 / 4 病例病变可安然无恙全消退，死亡率高达32 .4 % ；采用灌洗治疗，约3 / 4 患者症状可获缓解，有效者于灌洗后1~2 天，症状即见改善，胸部X 线表现的改善则较慢，一般需数日~数周。
严重哮喘发作进行灌洗时，可于灌洗液中加溶痰剂，如乙酰半胱氨酸以增加粘液廓清作用；根据病情，可在局麻下进行小容量（250ml）灌洗，效果良好，操作并发症和死亡率很低，据24521 例的统计，分别为0 .08 ％和0 .01 ％。
全肺灌洗治疗肺尘埃沉着症的操作方法，与肺泡蛋白沉着症基本相同，某组治疗之I~III期硅沉粉病70 余例次，灌洗后症状普遍好转，通过灌洗清除SiO2，典型病例肺通气功能、P（A-a）O2均有明显好转，虽然对已经发生的纤维化改变不能逆转，但对阻止病变继续进展，改善患者长期顶后，肯定会有好处。
简述支气管肺泡的灌洗操作方法
简述支气管肺泡的灌洗操作方法支气管肺泡灌洗是一种通过灌注洗涤液来清洁和脱除支气管和肺泡内分泌物、痰液等物质的操作方法。
它是一种重要的呼吸道护理方法，可以帮助患者清除呼吸道内的痰液、分泌物等，维持呼吸道通畅，预防呼吸道感染和其他呼吸系统疾病的发生。
支气管肺泡灌洗操作方法相对简单，但需要医护人员严格按照操作规范进行，以确保患者的安全和操作的有效性。
下面将对支气管肺泡灌洗的操作方法进行详细介绍。
第一步：准备工作在进行支气管肺泡灌洗之前，需要进行充分的准备工作。
首先需要准备好洗涤液，通常可以选择理想的液体来进行灌洗。
同时，还需要准备好灌洗器具、吸引器、吸痰器、护士椅等操作所需的设备和器材。
在准备工作之后，要对设备进行清洁消毒，并确认患者的个人信息，了解其相关病史及禁忌症，并与患者进行沟通，告知支气管肺泡灌洗的相关操作流程和风险，并取得患者的同意。
第二步：检查患者在开始灌洗之前，要对患者进行仔细的检查。
主要包括患者的一般情况、呼吸状况、心血管状况等方面的检查。
特别要注意的是患者是否存在支气管痉挛、肺大泡或粘连肺组织等情况，这些都是进行支气管肺泡灌洗时的禁忌症。
如果出现这些情况，应当考虑是否需要暂时中止灌洗操作，或是采用其他的操作方法。
第三步：操作准备操作准备是支气管肺泡灌洗的第一步，包括患者的体位、呼吸道的清洁等。
首先需要找到合适的操作位置，让患者身体舒适并且便于操作。
然后要将呼吸道清洁干净，以减少灌洗时的细菌感染和其他并发症的发生。
第四步：操作方法1.吸痰、抗痰：在进行灌洗之前，首先需要用吸痰器或吸痰管帮助患者吸出口腔、咽喉和气管内的痰液，使呼吸道畅通。
2.灌洗操作：将洗涤液（如理想洗液）装入洗涤器，并通过合适的途径（如口腔、鼻腔）将洗涤液导入患者的呼吸道中。
在导入的过程中要控制好液体的流量和流速，避免刺激患者的呼吸道。
3.洗涤：在洗涤液导入后，洗涤过程会持续一定时间，以便液体与呼吸道内的分泌物充分接触和混合。
2020ICU患者支气管肺泡灌洗液采集、送检、检测及结果解读规范
2020ICU患者支气管肺泡灌洗液采集、送检、检测及结果解读规范与普通病房及病情相对稳定的患者相比。
ICU环境微生态更为复杂，标本采集和送检污染机会多，危重症患者接受气管镜检查和支气管肺泡灌洗要求也更为苛刻，标本检测程序和结果解读需要精细准确。
因此，ICU 危重症患者合格的BALF获取、及时送检、规范检测和结果的正确判读直接影响到患者的诊治，直接决定患者预后。
因而有必要制定针对ICU危重症患者的BALF标本留取、送检、检测及结果解读规范。
由中华医学会呼吸病学分会呼吸危重症医学学组和中国医师协会呼吸医师分会危重症医学工作委员会牵头撰写ICU中BALF的操作规范，对提高BALF的诊断价值有积极意义。
支气管肺泡灌洗液（b ro n ch o al ve o l ar l a v age f l u i d，B AL F）的规范化采集和送检流程，是获得正确B A L F微生物学和细胞学结果的前提，而通过不恰当的操作方式获得的结果易误导临床诊疗。
1999年欧洲呼吸学会颁布了"支气管肺泡灌洗技术规范化操作和非细胞成分检测指南"[1]，2012年美国胸科医师协会颁布了"B A L F的细胞学分析在肺间质性疾病中的临床应用"[2]，2017年中华医学会呼吸病学分会颁布了"肺部感染性疾病支气管肺泡灌洗病原体检测中国专家共识"[3]，均对支气管肺泡灌洗规范化操作流程提出具体指导意见，但上述指南或共识并不适用于重症监护病房（i n te n si ve c ar e u n i t，ICU）这一特殊医疗单元，亟需制定针对I CU危重症患者的B A L F标本留取、送检及临床应用的操作规范。
为此，中华医学会呼吸病学分会呼吸危重症医学学组及中国医师协会呼吸医师分会危重症医学工作委员会联合制定了本规范，以期为I C U患者的B A L F采集、送检及临床应用提供标准化流程。
中国儿童支气管肺泡灌洗术临床实践指南 (2024)
对于特殊人群 （咯血、哮喘及先天性心脏病），建议在喉罩通气全麻下行儿童BAL（GPS）。
麻醉（特殊人群的麻醉，如咯血、哮喘、先天性心脏病）
推荐说明：
目前暂无关于BAL 中咯血、哮喘及先天性心脏病患儿的麻醉方式相关研究。 研究显示，高达 10% 的哮喘患儿在接受支气管镜检查后会出现呼吸道相关并发症，且与单纯支气 管镜检查相比，BAL 相关的症状更多，同时支气管镜检查可增加心肌缺血、血流动力学异常、心律 失常及心肌损伤的风险；咯血患者在 BAL 过程中出血风险大，出血量大可迅速造成患者气道阻塞， 引发 SpO2迅速下降，严重者可导致窒息、休克甚至死亡。 鉴于喉罩通气全麻下进行 BAL 的优越性，优先建议喉罩通气全麻作为特殊人群行BAL的麻醉方式。
对于人工气道的患儿，如通过面罩进镜，可完整展示整个气道，且可直接评估气道动力学改变和气 道软化情况，同时型号的选择不受限制，但面罩通气全麻相比于喉罩通气全麻、气管插管全麻更具 有挑战性，同时会限制内镜的移动范围。 喉罩放置简单，不需要喉镜暴露声门，对会厌刺激小，不 刺激气管黏膜，浅麻醉下即可放置和维持，可辅助进行正压通气，但无法评估上气道，型号的选择 受限制，需要比自然气道或面罩更深 的麻醉。气管内导管或气管切开套管，可快速稳定地进入下气 道，避免上气道分泌物污染下气道， 适用于机械通气的患儿，但无法评估上气道结构和动力学改变， 需要更深层次的麻醉，且型号的选择受限制。
手术步骤（进镜方式）
推荐意见：
儿童 BAL 中，对于自然气道通气的患儿，需要评估上气道的解剖结构和气道动力学时，首选经鼻 进镜（GPS）。 儿童 BAL 中，对于人工气道通气的患儿，优先推荐经喉罩进镜，同时需结合麻醉方式、临床情况 综合选择（GPS）。
手术步骤（进镜方式）
支气管肺泡灌洗（BAL）操作方法
支气管肺泡灌洗(BAL) 操作方法：一、术前准备同纤维支气管镜(纤支镜) 术前准备,常规在纤支镜气道检查后于活检刷检前做BAL。
局部麻醉剂为2 %利多卡因。
二、BAL 操作技术1.灌洗部位选择:对弥漫性间质性肺疾病选择右肺中叶(B1或B5 ) 或左肺舌段，局限性肺病变则在相应支气管肺段进行BAL2. BAL 操作步骤◎首先在要灌洗的肺段经活检孔通过一细硅管注入2 %利多卡因1～2ml ,做灌洗肺段局部麻醉◎然后将纤支镜顶端紧密楔入段或亚段支气管开口处,再经活检孔通过硅胶管快速注入37 ℃灭菌生理盐水,每次25～50ml ,总量100～250ml ,一般不超过300ml◎立即用50 ～100mmHg(1mmHg = 0. 133kPa) 负压吸引回收灌洗液, 通常回收率为40 %～60 %◎将回收液体立即用双层无菌纱布过滤除去粘液,并记录总量◎装入硅塑瓶或涂硅灭菌玻璃容器中(减少细胞粘附) ,置于含有冰块的保温瓶中,立即送往实验室检查支气管肺泡灌洗液(BALF) 实验室检查一、BALF 细胞总数和分类计数检测1.将上述回收灌洗液装入塑料离心管内, 在4 ℃下以1 200r/ min 离心10min ,上清(原液或10 倍浓缩) - 70 ℃储存,用做可溶性成分的检测。
2. 经离心沉淀的细胞成分用Hank’s液(不含Ca2+、Mg2+ ) 在同样条件离心冲洗2 次, 每次5min。
弃去上清后Hank’s 液3～5 ml 制成细胞悬液。
也可以应用灌洗原液以减少细胞丢失3. 在改良的Neubauer 计数台上计数BALF 中细胞总数,一般以1 ×109/ L表示。
如果细胞数过高时,再用Hank’s液稀释,调整细胞数为5 ×109/ L ,并同时将试管浸入碎冰块中备用4. 细胞分类计数:采用细胞离心涂片装置,加入备用细胞悬液(细胞浓度为5 ×109/ L) 100μl ,在4 ℃下以1 200 r/min 离心10 min通过离心作用将一定数量的BALF 细胞直接平于载玻片上。
支气管肺泡灌洗、操作技术及评分标准
支气管肺泡灌洗支气管肺泡灌洗（BAL）是以纤支镜嵌入到肺段或亚段支气管水平，反复以无菌生理盐水灌洗、回收的一项技术，对其回收液（BALF）进行细胞学、生化学、酶学和免疫学等一系列检测和分析，是作为研究肺部疾病的病因、发病机制、诊断、评价疗效和判断预后的一项手段，是纤支镜应用的重要发展。
依灌洗范围和应用的不同，将BAL方法分为两种：全肺灌洗和肺段或亚段灌洗。
（一）全肺灌洗用于肺泡蛋白沉着症、严重哮喘发作、肺尘埃沉着症、肺泡微石症的治疗。
以肺泡蛋白沉着症为例简要说明其操作过程。
在手术室全麻下进行为宜，先经纤支镜引导下Carlen双腔管，吸纯氧10~15min 后，以150cm H2O压力，滴入37 ℃灭菌生理盐水500~1000ml，然后吸出或任其自行流出或虹吸回收，回收的流失量不超过200ml .灌洗应反复进行，直至洗出液完全清亮，总量一般在3~10L ，个别可高达18L .先灌洗一侧，隔2~3 天再灌另一侧。
全肺灌洗技术操作较复杂，有一定风险，为此，根据病人具体情况，可选择小液量选择性肺叶灌洗，每次50~100ml ，反复灌洗和吸出，一侧肺灌洗总量200 ~ 2000ml，隔3~7 天一次，两肺交替进行。
肺泡蛋白沉着症在采用BAL 治疗前，仅有1 / 4 病例病变可安然无恙全消退，死亡率高达32 .4 % ；采用灌洗治疗，约3 / 4 患者症状可获缓解，有效者于灌洗后1~2 天，症状即见改善，胸部X 线表现的改善则较慢，一般需数日~数周。
严重哮喘发作进行灌洗时，可于灌洗液中加溶痰剂，如乙酰半胱氨酸以增加粘液廓清作用；根据病情，可在局麻下进行小容量（250ml）灌洗，效果良好，操作并发症和死亡率很低，据24521 例的统计，分别为0 .08 ％和0 .01 ％。
全肺灌洗治疗肺尘埃沉着症的操作方法，与肺泡蛋白沉着症基本相同，某组治疗之I~III期硅沉粉病70 余例次，灌洗后症状普遍好转，通过灌洗清除SiO2，典型病例肺通气功能、P（A-a）O2均有明显好转，虽然对已经发生的纤维化改变不能逆转，但对阻止病变继续进展，改善患者长期顶后，肯定会有好处。
支气管肺泡灌洗液检查
第二节支气管肺泡灌洗液检查痰液检查虽可对呼吸道疾病的诊断提供帮助，但不够灵敏与特异且对疾病定位帮助不大。
支气管肺泡灌洗术（bronchoalceolar lavage,BAL）中在纤维支气管镜基础上发展起来的一项新技术。
BAL是应用纤维支气管镜进行支气管肺泡灌洗，采取肺泡表面衬液进行炎症与免疫细胞及可溶性物质检查的方法。
与支气管冲洗少量液体注入支气管信灌注大量的液体进行支气管肺泡灌洗不同，利用支气管肺泡灌洗液进行细胞学、微生物学、寄生虫学和免疫学等方面的各项检验，对一些下呼吸道疾病和诊断、病情观察和预后判断开辟了一条新途径。
支气管肺泡灌洗术分全肺灌洗和肺段亚肺段灌洗。
前者多用于治疗，后者多用于采集检验标本。
一、标本采集和处理通常于局部麻醉后将纤维支气管镜插入右肺中叶或左肺舌段的支气管，将其项端契入支气管分支开口，经气管活检孔缓缓少入37摄氏度灭菌生理盐水，每次30-50毫升，总量100-250毫升，不应超过300毫升。
每次注液后以-13.3~-19.95kpa负压吸出，要防止负压过大，过猛。
分别收集于用硅油处理进的容器中，容器周围宜用冰块包围，并及时送检。
记录回收液量，至少应回收30-40%以上，BALF方能进行分析。
分别注入的液体每次回收后混合一起进行试验。
第一份回收的标本往往混支气管内成分，为防止其干扰，也可将第一份标本与其它标本分开检查。
首先用单层纱布过滤以除去粘液，将滤液离心后分离上清液供生化检查和免疫学测定，沉淀物供细胞检查。
微生物学检查的标本须严格遵守无菌操作；合适的BALF应要求：①达到规定的回收比例；②不混有血液，红细胞数小于10%；③不应混有多量的上皮细胞（一般小于3%）。
二、细胞学检查1．有核细胞计数和分类计数：计数除上皮细胞及红细胞以外的所有细胞，经每毫升回收液的细胞总数表示。
细胞分类可用沉淀物制定涂片或用细胞离心器进行，正常非吸烟者BALF细胞数见表13-1，正常人的BALF含有核细胞为（5-10）×106/L。
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真菌抗原： 半乳甘露聚糖 隐球菌荚膜多糖抗原
临床意义
➢ 微生物学涂片检查：BALF中的沉淀物进行革兰染色、抗酸染 色及真菌的特殊染色，对细菌、分枝杆菌、真菌及寄生虫的 检出有较大意义。
➢ 微生物学培养：在严格无菌操作下采集的BALF进行直接接种 培养或取其沉淀物进行培养，对检测细菌及真菌具有较大的 临床意义，BALF细菌培养计数≥104CFU/ml或无菌防污染 BALF≥103CFU/ml时具有临床诊断意义。
➢ 灌洗液中GM测定：取5~10ml灌洗液置于无菌容器中，4 h内 送检；对于早期快速诊断侵袭性肺曲霉病，特别是气道曲霉 感染的患者具有重要的临床价值。
BALF标本病原体实 验一室般细检菌测培养（定量培养）：
（4）结果判定：分别对不同形态的菌落进行计数，乘 上稀释倍数即为此细菌的菌落数。菌落计数BALF≥104 CFU/ml或无菌防污染BALF≥103CFU/ml时认为是可能的 病原菌，但不能机械使用该阈值，还要结合患者的实 际情况及有无使用抗菌药物等因素综合判断。
（1）涡旋震荡BALF标本30～60s。 （2）定量接种：用经校准的加样器（或定量接种环） 取10μl 的BALF标本，分别点种于血平板和巧克力平 板上且密集划线，有条件时最好采用灭菌L型玻棒涂布 平板。还可取100μlBALF接种于麦康凯或中国蓝培养 基。 （3）孵育：将接种的平板放在二氧化碳培养箱（5%～ 10%CO2）中，35℃培养48 h。
➢送检量至少5毫升（10-20毫升最佳）。
检测目的 细菌 奴卡菌
转运条件 无菌容器，室温，≤2h
军团菌 真菌 曲霉 肺孢子菌
无菌容器，室温，≤2 h
隐球菌
分枝杆菌
无菌容器，室温，≤2 h
保存条件 4℃，≤24h
4℃，≤24 h 4℃，≤24 h
病毒
病毒转运培养基，室温，≤2 h
4℃，≤5 d；-70℃，˃5 d
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支气管肺泡灌洗液相关实验室操作
目录
CONTENTS
1 BALF标本保存运送 2 形态学检查 3 病原学检查
BALF是通过支气管镜向支气管肺泡 内注入生理盐水并进行抽吸，收集肺泡 表面液体，通过检查细胞成分、可溶性 物质和感染性病原体，诊断肺部相关疾 病、评价疗效和预后。
寄生虫
无菌容器，室温，≤2 h
4℃，≤24 h
检测方法
革兰染色 定量培养
革兰染色 弱抗酸染色 培养
培养（BCYE营养培养基、GVPC及MWY筛选培养基） 核酸检测 抗原检测（DFA）
KOH压片、荧光白染色 真菌培养
KOH压片或荧光白染色 真菌培养 半乳甘露聚糖抗原试验（GM）
六胺银染色 核酸检测 抗原检测
定量培养
革兰染色 标本质量评估
剩余的BALF标本1 500～1 800×g 离心15～20 min
沉淀物混匀后
上清液
显微镜检查： 不染色镜检 革兰染色 抗酸染色 弱抗酸染色 六胺银染色 墨汁染色 KOH压片 免疫荧光染色
特殊病原菌培养： 分枝杆菌 真菌 军团菌 病毒等
核酸检测： 病毒 军团菌 肺孢子菌 分枝杆菌等
墨汁染色 真菌培养 隐球菌荚膜多糖抗原
涂片抗酸染色(萋-尼染色、荧光染色) 分枝杆菌培养 核酸检测（Xpert MTB/RIF）
核酸检测 病毒抗原检测（DFA、胶体金法） 分离培养
直接镜检 核酸检测 抗原检测（ELISA、ICT）
BALF标本运送与保存
➢ 室温条件下2h内送至实验室。 ➢ 若延迟送检，可将标本放置于2～8℃保存，但不可
BALF标本病原体实 验室检测
真菌培养：
BALF标本1500～1800×g，离心15～20min，沉淀
物混匀后接种于沙保平板上，30℃和35℃孵育7d，怀 疑双相真菌时应使用带螺帽的培养基，孵育6周。 特殊病原菌培养：
BALF离心后的沉淀物还可用于分枝杆菌、军团菌 及病毒等的培养。
BALF标本病原体实 验室检测
超过24h。
BALF临床应用
BALF诊断的疾病
1
肺部感染 弥漫性间质性肺病 职业性肺部疾病 肺部肿瘤 儿科肺部疾病
形态学检查（细胞分类）
淋巴、中性粒细胞 高倍
纤毛上皮细胞 油镜
细胞学分类的临床 意义
➢ 中性粒细胞比例增高为主时，见于各种细菌或真菌 等感染；
➢ 淋巴细胞比例增高为主时，见于病毒性肺炎、结节 病或过敏性肺炎。
标本包括：BALF和保护性毛刷（PSB）
适应症
➢肺部感染，特别是免疫受损患者肺部机会性感染的 病原体诊断。
➢肺部不明原因阴影、疑似肺部感染或需与其他疾病 鉴别。
BALF采集
➢BALF收集：由专科医生采集。用于病原学分析的标 本需用无菌容器收集；细胞学分析需选择塑料容器 或硅化的玻璃容器以减少细胞的黏附。
BALF标本病原体实 验室检测
抗酸染色： 用于检测分枝杆菌，弱抗酸染色可用于检测奴卡菌。
氢氧化钾(KOH)压片： 用于真菌，特别是丝状真菌的形态学观察。
墨汁染色： 用于隐球菌的检测。
六胺银染色： 常用于肺孢子菌的检测。
免疫荧光显微镜： 可用于军团菌、肺孢子菌及病毒的检测。
BALF标本病原体实 验一室般细检菌测培养（定量培养）：
核酸检测： 用于病毒、军团菌、肺孢子菌或分枝杆菌等的检
测。 真菌抗原：
半乳甘露聚糖试验（GM试验）主要用于曲霉的检 测；目前有关BALF检测隐球菌荚膜抗原的研究证据较 少，可考虑作为诊断的补充手段。
BALF标本病原体实 验室检测
BALF
涡旋震荡30～60 s
接种10μl BALF
适量BALF标本600~1 000r/min离 心10~20 min
➢ 嗜酸粒细胞比例增高为主时，见于嗜酸粒细胞浸润 症、支气管哮喘等。
病原学检查
BALF标本病原体实 验室检测
显微镜检查
革兰染色及BALF质量评价：建议使用细胞离心机 制片，取适量BALF标本600～1 000 r/min离心10～20 min,进行革兰染色。低倍镜下若鳞状上皮细胞占全部 细胞比例>1%，提示标本被上呼吸道分泌物污染；柱状 上皮细胞>5%时,提示BALF并非来自于远端气腔。观察 革兰染色结果及白细胞情况，如果见到噬菌现象，须 报告吞噬细菌的中性粒细胞占或全部中性粒细胞的比 例，通常数值为5%时可作为肺炎诊断的阈值。