Efficient Transfection of 293T Cell Line with Lentiviral
慢病毒的简介

慢病毒载体系统的另一个特征是携带病毒微粒 的表面蛋白,包含HIV受体和共受体,从而改变或 扩大的细胞类型的范围,使得该载体可以结合并 且进入。这个模型涉及取代的HIV-1包膜糖蛋白与 另一种病毒的包膜糖蛋白,如疱疹性口腔炎病毒 糖蛋白(VSV-G)。
14
1.3. Lentiviral Vector Production
质粒一携带了gag/ pol编码序列及RRE ; 质粒二包含了编码rev的序列; 质粒三是载体质粒; 质粒四表达env。
6
3.4自身失活型(SIN)慢病毒载体 SIN载体的构建是在原病毒载体基础上删 除了病毒3’端LTR的U3区增强子和启动子序 列的片段。该区域出现突变则在HIV-1载体 转录后,其5’LTR会因为缺失HIV-1所需要 的启动子和增强子序列而无法复制出完整 长度的病毒基因组。
In SIN vectors, viral promoter activity is deleted
from the inte-grated provirus by deletions in the
U3 region of the 3’ long terminal repeat (LTR)
最全HEK293细胞系汇总

众所周知,哺乳动物细胞作为蛋白的表达系统具有糖基化、乙酰化、硫酸化、硫酸化等翻译后修饰。
而蛋白翻译后修饰,如糖基化修饰,会直接影响蛋白在体内的半衰期及稳定性和生物学活性、影响配体识别及结合,影响其免疫原性,影响胞间作用等等功能。
目前,哺乳动物细胞已被广泛用于重组蛋白、疫苗、抗癌试剂及其他临床相关的药物的生产中。
CHO细胞、BHK细胞、Sp2/0等细胞常被用于制备生物制药。
然而这些小鼠来源的细胞与HEK293细胞相比,缺乏人的细胞翻译后修饰系统,因此与人源系统表达的蛋白有差异。
目前,HEK293细胞被广泛用于生产蛋白、疫苗、抗癌试剂及重组腺病毒包被等。
HEK293细胞1) 转染效率高;2) 可悬浮培养用于大规模表达;3) 表达蛋白结构最接近其在人体内构象;4) HEK293细胞在培养体系中能够快速增长,高密度培养。
5) HEK293细胞与神经元细胞一样,对外界微环境较为敏感,利用这一特点,可用于药物发现及细胞毒性测试。
HEK293细胞系概览1973年,最原始的HEK293细胞来源于一个夭折的人类胚胎肾细胞中。
将人的胚胎肾细胞中转化入人5型腺病毒DNA片段,得到的细胞即为HEK293细胞。
HEK293细胞,何许人也?注:以下细胞系介绍中,HEK293细胞简称为293细胞。
293T细胞293细胞中转入SV40T-antigen基因形成的高转衍生株,即为293T细胞系。
这使得包含SV40ori的质粒能够在该细胞系中显著扩增,从而促进表达载体的扩增,促进蛋白的表达。
293T细胞除了可用于各类基因表达及蛋白生产,还可用于高滴度逆转录病毒及其他病毒生产,如腺病毒及其他哺乳动物病毒。
293T/17细胞293T细胞中共转染入pBND 和pZAP 质粒,获得的具有G418耐受的细胞系即为293T/17细胞系。
该细胞系在保有293T细胞的优良性能之外,还具有高转染性的特点。
293T/17 SF细胞293T/17 SF细胞系指的是在293T细胞中转入EBV基因形成的转化细胞系,该细胞系主要用于细胞的瞬时转染及蛋白表达。
慢病毒包装教程(LentivirusPackagingandProduction)

Lentivirus Packaging and ProductionThe laboratories of Didier Trono (EPFL) and Robert Weinberg (Whitehead Institute)have deposited plasmids for the production of lentiviral particles. These plasmids canbe used with many lentiviral vectors, including The RNAi Consortium shRNA vectorsbeing distributed by Sigma (i.e. MISSION shRNAs) and Open Biosystems (i.e. TRC shRNAs).OverviewFor producing lentiviral particles, you typically need three components: 1) a lentiviralvector, such as pLKO.1 or pLVTHM, containing the shRNA or transgene, 2) apackaging vector, such as psPAX2 or pCMV-dR8.2 dvpr, and 3) an envelope vector, such as pMD2.G or pCMV-VSVG.For most applications, you can produce viral particles by transient transfection of293T cells with a 2nd generation packaging system (e.g. packaging plasmid psPAX2and envelope plasmid pMD2.G).2nd Generation Packaging SystemIn general, lentiviral vectors with a wildtype 5' LTR need the 2nd generation packaging system because these vectors require TAT for activation. All lentiviral vectors from theTrono or Aebischer lab require packaging with a 2nd generation system.Below are two 2nd generation systems. Lentiviral plasmids based on pLKO.1 can be packaged with either system, although the first system has been reported to producehigher titer. See Addgene's pLKO.1 Protocol for producing lentiviral particles.2nd generation system deposited by the Trono lab:ID</FONT<Plasmid Descriptiontd>12260psPAX2 2nd generation packaging plasmid for producing viralparticles. psPAX2 contains a robust CAG promoter forefficient expression of packaging proteins. Trono lab andAebischer lab lentiviral vectors require psPAX2. Produceshigher titer than pCMV-dR8.2 dvpr.12259pMD2.G Envelope plasmid for producing viral particles2nd generation system deposited by the Weinberg lab:。
NK4基因重组慢病毒载体的构建及在肝癌细胞中的表达_李霏

NK4基因重组慢病毒载体的构建及在肝癌细胞中的表达李霏,李松林,尹元琴(中国医科大学附属第一医院肿瘤研究所,沈阳110001)摘要目的构建共表达人NK4基因和增强型绿色荧光蛋白(EGFP )基因的重组慢病毒载体,转染人高侵袭转移肝癌细胞LM3(HCCLM3),观察其转染效率及表达情况。
方法采用DNA 重组技术,将NK4基因克隆至带EGFP 的慢病毒表达载体pLenti6.3-内部核糖体进入位点序列(IRES )-EGFP 中,并用脂质体介导法将慢病毒包装系统和带NK4基因的质粒pLenti6.3-NK4-IRES -EGFP 共转染293T 细胞,包装慢病毒并测定滴度。
以不同感染复数(MOI )的重组慢病毒感染293T 细胞,筛选最适MOI ,以最适MOI 重组慢病毒感染HCCLM3细胞,观察转染效率。
Western blot 法测定细胞中NK4蛋白表达水平。
结果成功构建共表达NK4基因和EGFP 基因的慢病毒载体pLenti6.3-NK4-IRES -EGFP ,并对其包装、纯化及浓缩后测定病毒滴度为1.08×108TU/mL 。
重组慢病毒感染HCCLM3细胞筛选其最适MOI 为7。
转染后HCCLM3细胞中可见明显的NK4蛋白表达,而未转染细胞中无NK4蛋白的表达。
结论成功构建了NK4基因的重组慢病毒载体,有效地转染HCCLM3细胞后可高表达NK4蛋白。
关键词NK4;慢病毒载体;人高侵袭转移肝癌细胞LM3;基因转染中图分类号R73文献标志码A文章编号0258-4646(2011)12-1081-04doiCNKI:21-1227/R.20111226.1615.028网络出版地址/kcms/detail/21.1227.R.20111226.1615.028.htmlConstruction of NK4Recombinant Lentiviral Vector and Its Expression in HCCLM3Cells 肝细胞肝癌(hepatocellular carcinoma ,HCC )是世界上常见的恶性肿瘤之一,位居全球恶性肿瘤发病率的第5位[1]。
LC3真核表达载体构建及其在293T细胞中自噬诱导研究

LC3真核表达载体构建及其在293T细胞中自噬诱导研究游金;李游;施洁;卢洁;卢春花【摘要】[Objective]The pEGFP-N1-LC3 eukaryotic expression vector was constructed and transfected into human embryonic kidney 293T cells and the expression of the fusion protein in the state of autophagy was observed by Earle's Balanced salt solution(EBSS)starvation induc-tion.[Methods]The LC3 gene was amplified by RT-PCR and inserted into pEGFP-N1 eukary-otic expression vector to construct a recombinant plasmid.The recombinant plasmids were transfected into 293T cells and the expression of the GFP-LC3 fusion protein was observed un-der fluorescent microscope and detected by Western blot.The transfected cells were subjected to starvation with Earle's Balanced salt solution,then the autophagic development was confirmed by Western blot and the formation of autophagic vacuoles was observed by confocal laser scanning microscope.[Results]The eukaryotic expression vector pEGFP-N1-LC3 was constructed and the recombinant protein was efficiently expressed in 293T cells.Autophagic vacuoles were observed after starvation induced by Earle's Balanced salt solution,and then the conversion of LC3-Ⅰ to LC3-Ⅱ was detected by Western blot.[Conclu-sion]This experiment provided an experimental material for the later study on the mechanisms of autophagy in tumorigenesis.%[目的]构建 pEGFP-N1-LC3 真核表达载体,并将其转染进人胚肾细胞 293T,通过 Earle's 盐平衡液(Bal-anced salt solution,EBSS)饥饿诱导观察细胞自噬现象.[方法]RT-PCR扩增 LC3 基因,并将其插入 pEGFP-N1真核表达载体构建重组质粒.将重组质粒转染至人胚肾细胞 293T,显微镜观察、Western blot检测 GFP-LC3 融合蛋白表达情况.对转染细胞进行 Earle's 盐平衡液饥饿诱导,通过Western blot验证自噬指标,激光共聚焦显微镜观察自噬泡形成.[结果]成功构建pEGFP-N1-LC3 真核表达载体,并在 293T 细胞中成功表达目的蛋白,在进行Earle's 盐平衡液饥饿诱导后观察到自噬泡的形成,Western blot 检测到 LC3-Ⅰ向LC3-Ⅱ的转化.[结论]本实验为研究自噬在癌细胞病理进程中的机制提供了实验素材.【期刊名称】《广西科学》【年(卷),期】2018(025)003【总页数】6页(P313-317,324)【关键词】LC3;细胞自噬;绿色荧光蛋白;人胚肾293T细胞【作者】游金;李游;施洁;卢洁;卢春花【作者单位】广西大学生命科学与技术学院,广西南宁 530005;广西大学生命科学与技术学院,广西南宁 530005;广西大学生命科学与技术学院,广西南宁 530005;广西大学生命科学与技术学院,广西南宁 530005;广西大学生命科学与技术学院,广西南宁 530005【正文语种】中文【中图分类】Q2910 引言【研究意义】自噬是一种蛋白质大量降解过程,该过程中待降解的蛋白质包裹于自噬体中,传递至溶酶体或者液泡中进行降解[1]。
一种高效稳定的磷酸钙转染293T细胞方法的建立及评价

一种高效稳定的磷酸钙转染293T细胞方法的建立及评价华进;程志彬;林春霖;戴起宝;朱广伟【摘要】目的:探讨2种磷酸钙转染法转染293 T细胞的效果,建立一种实现高效稳定磷酸钙转染293 T细胞的方法.方法:荧光显微镜观察采用2种磷酸钙转染方法(传统磷酸钙转染法和改良磷酸钙转染法)转染pCDH-GFP-3xflag-TRAF6质粒进入293T细胞的转染效率.采用Real-time PCR法和Western blotting法分别检测2种磷酸钙转染方法转染pCDH-GFP-3xflag-TRAF6质粒进入293T细胞后,肿瘤坏死因子受体相关因子6(TRAF6)mRNA和flag蛋白表达水平.结果:荧光显微镜下观察,与传统磷酸钙转染法比较,改良磷酸钙转染法转染pCDH-GFP-3xflag-TRAF6质粒进入293T细胞24和48 h后的转染效率明显升高(P<0.01);Real-time PCR法和Western blotting法检测,与传统转染方法比较,磷酸钙转染改良法转染pCDH-GFP-3xflag-TRAF6质粒进入293T细胞24和48 h后,TRAF6 mRNA和flag蛋白表达水平均明显升高(P<0.01).结论:本研究建立的改良磷酸钙转染方法是一种高效、稳定的DNA转染方法.【期刊名称】《吉林大学学报(医学版)》【年(卷),期】2019(045)005【总页数】6页(P1177-1181,前插5)【关键词】磷酸钙转染;293T细胞;肿瘤坏死因子受体相关因子6;flag蛋白【作者】华进;程志彬;林春霖;戴起宝;朱广伟【作者单位】福建医科大学附属第一医院胃肠外科二区,福建福州 350005;福建医科大学附属第一医院胃肠外科二区,福建福州 350005;福建医科大学消化道恶性肿瘤教育部重点实验室,福建福州350005;福建医科大学附属第一医院胃肠外科二区,福建福州 350005;福建医科大学附属第一医院胃肠外科二区,福建福州 350005;福建医科大学附属第一医院胃肠外科二区,福建福州 350005;福建医科大学消化道恶性肿瘤教育部重点实验室,福建福州350005【正文语种】中文【中图分类】Q819目前,将质粒DNA导入动物细胞的方法有很多,最常用的方法包括脂质体转染、电转法、显微注射法和磷酸钙共沉淀法等[1]。
贴壁和悬浮状态293T细胞慢病毒包装效果的比较研究

贴壁和悬浮状态293T细胞慢病毒包装效果的比较研究孙克宁;林峰;朱化彬;郝海生;杜卫华;赵学明;刘岩;秦彤;王栋【摘要】To improve the efficiency of lentivirus packaging, the influences of state of cell growth and existence on virus packaging were studied; the effects of adherent and suspended 293T cells on packa-ging lentivirus were compared using calcium phosphate method. The results show that the titer of lenti-virus packaged with suspension cells was nearly 3. 5 folds higher than that packaged with adherent cells. Moreover, two advantages, higher repeatability and less cell culture time which was at least 24 h shorter, of lentivirus packaging using suspension cells directly were also showed in this study.%为提高慢病毒包装效率,比较了贴壁和悬浮293T细胞的磷酸钙法慢病毒的包装效果.结果表明,利用悬浮细胞获得的病毒滴度较贴壁细胞高近3.5倍,同时这种方法具有很好的重复性,且悬浮细胞可直接用于病毒包装,节省了24 h的细胞培养时间.【期刊名称】《河南农业大学学报》【年(卷),期】2011(045)006【总页数】5页(P668-671,687)【关键词】慢病毒;包装;转染【作者】孙克宁;林峰;朱化彬;郝海生;杜卫华;赵学明;刘岩;秦彤;王栋【作者单位】河南农业大学牧医工程学院,河南郑州 450002;河南农业大学牧医工程学院,河南郑州 450002;中国农业科学院北京畜牧兽医研究所,北京 100193;中国农业科学院北京畜牧兽医研究所,北京 100193;中国农业科学院北京畜牧兽医研究所,北京 100193;中国农业科学院北京畜牧兽医研究所,北京 100193;中国农业科学院北京畜牧兽医研究所,北京 100193;中国农业科学院北京畜牧兽医研究所,北京100193;中国农业科学院北京畜牧兽医研究所,北京 100193【正文语种】中文【中图分类】Q813源于HIV-1前病毒(HIV-1 provirus)基因组的慢病毒载体,可以高效整合到宿主细胞基因组中,是一种高效转基因载体,可以感染干细胞、神经细胞等多种细胞类型[1,2],已成功应用于小鼠、牛、猪等动物研究中[3,4].经过研究,已经产生了三质粒和四质粒慢病毒转基因载体[5,6].然而关于慢病毒的高效包装还仍然是慢病毒转基因技术研究的一个关键技术环节.慢病毒的包装一般采用脂质体法和磷酸钙法.虽然脂质体转染法具有较好的包装效果,但脂质体法转染试剂昂贵,而磷酸钙法则价格低廉,所以应用较为普遍[7].然而,磷酸钙转染法受到很多因素影响,试验结果不稳定,又成为该法的一大缺点[8].关于质粒用量及各质粒比例的研究结果表明,在最佳用量基础上质粒比例的优化结果收效甚微,包装效果并没有因此而得到明显改善[9].病毒包装是一个病毒载体与包装细胞间的相互作用过程,作为相互作用的2个重要方面,细胞的不同生长和存在状态会实时地、渐进性地影响到两者间的相互关系.因此,转染细胞的存在状态是影响病毒包装效果的最主要因素,而这种关系有可能会对转染效果产生较大影响.本试验比较了转染贴壁和悬浮状态的293T细胞包装慢病毒的效率,以期为相关研究提供参考依据.1 材料与方法1.1 材料包装质粒psPAX2(Addgene plasmid 12260)、包膜质粒 pMD2.G(Addgene plasmid 12259)、载体质粒 pWPXL(Addgene plasmid 12257)购自 Addgene公司;磷酸钙法转染试剂:CaCl2·2H2O,NaCl,Na2HPO4等均购自Sigma公司;293T细胞系于液氮中冷冻保存;细胞培养液:DMEM,FBS,双抗等均购自GIBCO公司;质粒提取试剂盒购自OMEGA公司;DNA marker购自天根生物技术公司.1.2 方法1.2.1 质粒的制备按照OMEGA公司提供的Endo-free Plasmid Mini Kit使用说明书进行质粒提取操作.提取后质粒采用质量分数为1%琼脂糖凝胶电泳进行质量检测.3个质粒上样量均为1 μL,天根的1 kb DNA Ladder上样量为6 μL.用FluorChem软件分析电泳结果,并计算质粒DNA的浓度.1.2.2 细胞培养293T细胞培养液以DMEM为基本培养液,再添加10%FBS和1%双抗.在37℃,体积分数为5%CO2及饱和湿度的培养箱中培养.1.2.3 转染试剂的配置在1个2 mL离心管中混合如下已经配置好的试剂(50 μL2.5 mol·L-1的CaCl2·2H2O,10 μg psPAX2,3 μg pMD2.G,12 μg pWPXL,加无菌水补充体积至500 μL)用移液枪吸打混匀.在另1个2 mL离心管中加入500 μL 2×HEPES,将上述质粒与CaCl2·2H2O混合液用移液枪逐滴滴加到2×HEPES 溶液中,边滴加边使用另一把移液枪吸打混匀,之后室温下静置10 min,准备进行后续的细胞转染.1.2.4 转染贴壁状态的293T细胞 293T细胞消化后,用细胞计数板测定其密度.分别取0.5×106,1×106个细胞移植到6孔板中,再补加完全培养基到2 mL,培养23 h后更换培养液,继续培养1 h,然后进行转染.转染时取1.2.3配置的转染试剂200 μL分别滴加到6孔板的贴壁培养细胞中,并晃动6孔板使之混匀,然后将6孔板放到培养箱中培养,12 h后换液并继续培养.1.2.5 转染悬浮状态的293T细胞 293T细胞消化后,分别取1×106,2×106,3×106个细胞移植到6孔板中,再补加完全培养基到2 mL,立刻进行转染.转染时取上述转染试剂200 μL分别滴加到6孔板的悬浮细胞中,用1 mL移液枪轻轻吸打细胞培养基使之混匀.然后将6孔板放到培养箱中培养,12 h后换液并继续培养.1.2.6 Lasrt法测定病毒滴度上述2种转染方法,均于转染后48 h在倒置荧光显微镜下观察细胞转染效果.取转染效果较好的3组,A组:移植数量为0.5×106个贴壁细胞组;B组:1×106个悬浮细胞组;C组:2×106个悬浮细胞组.每组设3个重复,分别于转染48 h后收集病毒上清液.每个重复取病毒液10 μL检测病毒滴度,其余包装好的病毒液全部冻存于-80℃.293T细胞于消化后以2×104个每孔接种到96孔板,每孔补加完全培养基至100 μL,每8个孔为1个组,共9组.培养24 h后用移液枪吸弃旧的培养基,每孔加90 μL新的培养基.第1个孔加10 μL病毒液,用移液枪轻轻吸打8~10次混匀.从第1个孔取10 μL混合液加到第2个孔,混匀.这样以后每孔依次稀释10倍.最后放到培养箱中继续培养,24 h后换液,之后每隔24 h换液1次.感染后72 h在荧光显微镜下观察转染细胞荧光表达情况.按照江千里等[10]的方法确定计量孔(设为第n个孔),并数出计量孔中阳性细胞的数量(设为m个,),如果有2个以上的阳性细胞紧挨着,算作1个细胞.则病毒滴度为m×10n+1TU·mL-1.1.2.7 转染结果的观测由于载体质粒pWPXL中带有绿色荧光蛋白基因,所以使用荧光倒置显微镜,在蓝光的激发下可以使表达绿色荧光的细胞发出绿色荧光,便于观察转染效果.1.2.8 数据处理采用SPSS软件进行统计分析,对数据进行了方差分析和多重比较.2 结果与分析2.1 慢病毒质粒的制备提取3个质粒后电泳(图1),泳道1为质粒pWPXL(10.5 kb),质量浓度为 1.32 g·L-1.泳道2 为质粒 psPAX2(10.7 kb),质量浓度为1.13 g·L-1.泳道3 为质粒pMD2.G(5.8 kb),质量浓度为0.49 g·L-1.质粒的质量浓度都大于0.025 g·L-1[11],介于前人同类研究结果之间[7],符合慢病毒包装的要求.图1 3个质粒的电泳结果Fig.1 The electrophoresis result of three plasmids 2.2 293T细胞的转染效果转染48 h后,倒置荧光显微镜下观察293T细胞的转染结果(图2).转染结果表明,贴壁状态下细胞密度对转染效果影响很大.细胞数量为1×106组,转染时贴壁细胞已经快长满,转染效果很差.细胞数量为0.5×106组,转染时贴壁细胞生长至50% ~70%,转染后荧光强度强于前者,阳性细胞数量也明显多于前者.悬浮状态293T细胞的转染结果见图3.移植细胞数量为1×106,2×106组,转染效果都比较好.当细胞数量增加到3×106时,转染效果明显变差.推测,当移植细胞数量增加到3×106时,由于细胞数量过多,细胞的代谢废物短时间内迅速积累,使培养液颜色迅速变黄,培养液pH值迅速减小.换液时pH值已经减小到6.28,而细胞数目为1 ×106和2 ×106组的 pH 值分别为7.41,7.01.研究表明,磷酸钙转染的最适 pH值在 6.96~7.60[8],3 ×106组培养基的 pH 值远超过了最适的转染范围.从图3-B和图2-D可以看出,2种状态下的转染对细胞造成了不同影响.图2-D中转染48 h后的细胞贴壁比较牢,细胞紧密地连接成片贴在培养皿底面.而图3-B中转染48 h后的细胞聚集成堆,轻轻地贴在培养皿底面.这可能是在细胞转染时,由于悬浮细胞大量吞入磷酸钙沉淀,使得细胞膜损伤严重,使细胞聚集成团、贴壁性变差.图2 贴壁状态下293T细胞转染48 h的慢病毒包装效果Fig.2 Typical results of lentivirus packaging using adherent 293T cells at 48 h after transfection2.3 慢病毒滴度检测采用Lasrt法的病毒滴度测定结果如表1.对3组数据的方差分析结果表明,3个转染组病毒滴度差异极显著(P<0.01).多重比较分析结果,C组病毒包转效果极显著(P<0.01)高于A组和B组,而A组和B组间差异不显著(P>0.05).表1 慢病毒滴度的测定结果Table 1 Determinated results of lentivirus titration注:同一列内相同字母表示差异不显著(P>0.05);同一列内不同大写字母表示差异极显著(P<0.01);同一列内不同小写字母表示差异显著(P<0.05).Note:Same letters in the same column indicate no significant difference(P >0.05);Different capital letters in the same column indicate extremely significant differences(P <0.01);DifferentLowercase letters in the same column indicate significant differences(P <0.05).A 1.27 ±0.91 aA B 1.63 ±1.73 aA C 5.67 ±1.63 bB图3 悬浮状态下293T细胞转染48 h的慢病毒包装效果Fig.3 Typical results of lentivirus packaging using suspended 293T cells at 48 h after transfection3 结论与讨论1)以往应用磷酸钙法包装慢病毒时,都是将一定数量的293T细胞移植到培养皿中,培养到细胞完全贴壁并且生长汇合至50%~70%后再进行转染(约24 h)[12].这时的细胞处在旺盛的贴壁生长状态,其活力要好于刚消化传代的悬浮细胞,此时进行转染,能取得较好的转染效率[2,13].过了这一时机,虽然能得到更多的待转染细胞,但293T细胞将会受到接触抑制,生长速度逐渐降低,却影响到了转染效率.本研究中图2-C和图2-A的比较结果也表明,生长旺盛时期会有较好的转染效果.这表明采用贴壁状态的293T细胞进行病毒包装时,细胞密度是一个重要的限制因素.这样就不能充分利用培养基所构成的立体空间,无法通过提高细胞数量提高病毒滴度.2)本研究采用悬浮状态的293T细胞进行病毒包装,取得了很好的转染效果.悬浮状态下,细胞密度可以通过细胞计数板得到相对精确的测定,使得转染的重复性变得很好.并且,可充分利用培养基所构成的立体空间,在一定范围内可以大量地增加细胞数量而不会影响转染效果.本研究在1×106~2×106的范围内都得到了较为理想的稳定的转染效果,最高将6孔板中每孔细胞的数量增加到2×106个而不影响转染效率.从质粒与靶细胞相互作用的空间来考虑,贴壁的细胞只有上表面与磷酸钙沉淀接触,而悬浮状态的293T细胞整个细胞膜表面都有可能与磷酸钙沉淀有接触,这样就提高了与外源DNA结合的机会,增加了转染成功的概率以及进入细胞的质粒数量.另外,在悬浮细胞逐渐贴壁过程中,相邻细胞将围绕周围的磷酸钙沉淀挤压在细胞与培养皿底面、细胞与细胞中间,使外源DNA与细胞的接触更紧密.细胞与磷酸钙沉淀的这种近距离甚至是零距离的接触对外源DNA进入细胞可能也有一定的推动作用.最终,通过转染悬浮状态的293T细胞,病毒滴度比贴壁状态转染时约提高 3.5 倍[1,7].本方法可以在细胞消化后立即进行转染,有效地克服了包装效果的不稳定性,并通过提高细胞数量获得了更高的病毒滴度,加快了研究进程,提高了研究效率.参考文献:[1]NALDINI L,BLOMER U,GAGE F H,et al.Efficient transfer,integration,and sustained long-term expression of the transgene in adult rat brains injected with a lentiviral vector[J].Proc Natl Acad Sci USA,1996,93(21):11382-11388.[2]KHARE P D,LOEWEN N,TEO W,et al.Durable,safe,multi-gene lentiviral vector expression in feline trabecular meshwork[J].Mol Ther,2008,16(1):97 -106.[3]HOFMANN A,KESSLER B,EWERLING S,et al.Efficienttransgenesisin farm animals by lentiviral vectors[J].EMBO Rep,2003,4(11):1054-1060.[4]KANATSU-SHINOHARA M,KATO M,TAKEHASHI M,etal.Production of transgenic rats via lentiviral transduction and xenogeneic transplantation of spermatogonial stem cells[J].Biol Reprod,2008,79(6):1121 -1128.[5]ZUFFEREY R,DULL T,MANDEL R J,et al.Self-inactivating lentivirus vector for safe and efficient in vivo gene delivery[J].J Virol,1998,72(12):9873 -9880.[6]孙克宁,朱化彬,林峰,等.慢病毒载体的构建及其应用于转基因动物的研究进展[J].中国畜牧兽医,2010,37(8):116-120.[7]杨智,骆菁菁,钱程,等.磷酸钙转染法用于第三代自身失活型慢病毒包装的探讨[J].浙江理工大学学报,2010,27(2):303-307.[8]陈晓,蒋捍东,路新枝,等.一种用磷酸钙法高效转染HEK 293T细胞方法的建立[J].中国海洋大学学报:自然科学版,2005,35(5):807-810,814. [9]张磊,刘庆友,胡天,等.第三代慢病毒高效率包装系统的建立[J].基因组学与应用生物学,2009,28(2):326-330.[10]江千里,王健民,温丽敏,等.批量快速测定法测定标志基因为GFP的重组病毒滴度[J].第二军医大学学报,2002,23(9):1034-1035.[11]SAMBROOK J,RUSSELL D W.Molecular cloning:a laboratry manual [M].New York:Cold Spring Harbor Lab(CSHL)Press,2001:1284[12]DULL T,ZUFFEREY R,KELLY M,et al.A thirdgeneration lentivirus vector with a conditional packaging system[J].J Virol,1998,72(11):8463 -8471.[13]PARIENTE N,MAO S H,MORIZONO K,et al.Efficient targeted transduction of primary human endothelial cells with dual-targeted lentiviral vectors[J].J Gene Med,2008,10(3):242-248.。
过表达TrxR1重组HEK293细胞株的构建和鉴定

硫氧还蛋白还原酶1(TrxR1)属于吡啶核苷酸二硫化物氧化还原酶家族,作为目前已知的唯一能够还原硫氧还蛋白(Trx )的酶,TrxR1可以将氧化型的Trx 还原成还原型Trx [1]。
还原型的Trx 能够还原多种蛋白的二硫键,进而调控细胞的多种生物进程,如细胞增殖、分化以及凋亡等等[2]。
肿瘤细胞的代谢水平远高于正常细胞,因而在细胞内会产生大量活性氧[3]。
因此,肿瘤细胞往往会通过诱导抗氧化酶的表达来维持自身的氧化还原稳态,而TrxR1是其中一种被诱导的抗氧化酶。
近年来研究发现,TrxR1在多种肿瘤组织和细胞中高表达,如乳腺癌[4]、胃癌[5]、肺癌[6]和肠癌[7]等,并通过蛋白激酶B (PKB,又名AKT )、丝裂原活化蛋白激酶(MAPK )及信号传导及转录激活蛋白3(Stat3)等信号通路促进肿瘤细胞增殖、抑制凋亡及诱导耐药,是一个理想的抗肿瘤药物开发靶点[3,8]。
目前靶向TrxR1的药物具有丰富的骨架结构,但尚无进入临床使用的TrxR1靶向药物,其中一大制约因素就是Construction and identification of a HEK293cell line with stable TrxR1overexpressionLÜXiaomei 1,ZHOU Zhiyin 1,ZHU Li 1,ZHOU Ji 2,HUANG Huidan 1,ZHANG Chao 1,LIU Xiaoping 11Center of Drug Screening and Evaluation,Wannan Medical College,Wuhu 241000,China;2Center for Reproductive Medicine,First Affiliated Hospital of Wannan Medical College,Wuhu 241000,China摘要:目的构建稳定过表达硫氧还蛋白还原酶1(TrxR1)的HEK293细胞株,为TrxR1的功能研究以及靶向TrxR1药物筛选提供细胞模型。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
Protein expression28Efficient Transfection of 293T Cell Line with LentiviralVectors Using FuGENE® HD Transfection ReagentDuran Ustek*, Deniz Durali, and Esin AktasThe Institute for Experimental Medical Research, Istanbul University, Istanbul, Turkey*Corresponding author: dustek@.trLentiviral vectors have become a powerful tool for gene transfer and genetic manipulation in research. Efficiency of the transfection reagent is most criti-cal to getting a high-titer lentiviral recombinant virus. Here, we show that FuGENE® HD Transfection Reagent can be used to transfect 293T cells with lentiviral vectors with high efficiency. IntroductionLentiviral vectors have become attractive vehicles for gene transfer and expression. The ability of lentiviral vectors to integrate into non-dividing cells and to pro-vide stable and long-term gene expression in vivo is a desirable attribute of many scientific approaches. New-generation lentiviral vector systems diminish the risk of productive recombination with the vector genome. Lentiviral constructs can be pseudotyped with a het-erologous envelope glycoprotein, such as the vesicular stomatitis virus (VSV-G) or Ross River virus glycoprotein (RRV). The VSV-G envelope has a wide host range tro-pism, but the toxic effect of VSV-G kills 293T cells after transfection. The efficiency of the transfection reagent is most critical to getting a high-titer recombinant virus in a 293T cell-based system. In this work, HIV-1-derived lentiviral vector, pseudotyped with the VSV-G envelope, was used for transfecting 293T cells with a second-gen-eration packaging plasmid lacking vif, vpr, vpu, and nef genes (pPAX2), a plasmid encoding the envelope of VSV (pMDG), and a PLVTHM transfer plasmid coding for eGFP as a reporter gene (a very generous gift of Dr. Trono, University of Geneva, Switzerland), and anti p210 bcr/abl shRNA. We evaluated the transfection efficiency of FuGENE® HD Transfection Reagent to transfect 293T cells with a lentiviral vector system.Materials and Methods293T cell cultureThe 293T human renal epithelial cell line is a convenient source of recombinant virus. 293T cells were maintained in Dulbecco’s modified Eagle’s medium, supplemented with 10% fetal calf serum, 200 mM L-glutamine, 10 mM MEM non-essential amino acids, 100 mM sodium pyru-vate, 100 U/ml penicillin, 100 μg/ml streptomycin, 500 μg/ ml geneticin and 5% CO2. Twenty-four hours prior to transfection, 2,5 x 106 cells were seeded in 4 ml of growth medium in a 60-mm tissue culture dish.TransfectionThe pLVTHM anti-bcr/abl p210 shRNA plasmids pPAX2 and pMDG2 were used for transfection experiments. Transfection was done as follows: PLVTHM, pMDG, and pPAX2 were diluted in 150 μl medium. MEM medium without additives and 6 μl FuGENE® HD Transfection Reagent were added to the DNA mix drop by drop for the DNA-Transfection Reagent complex. The mix was incu-bated for 15 minutes at room temperature. During the complex formation, 293T cells were fed with pre-warmed fresh medium. DNA-FuGENE® HD Transfection Reagent complex was diluted in 700 μl pre-warmed medium and added to cell culture drop by drop. The 293T cells were incubated for 24 hours prior to microscopy and FACS analysis.Results and Discussion293T cells were transiently transfected with second-gen-eration GFP(+) HIV-1 derived lentiviral construct withDuran UstekBiochemica · No. 3 · 2007phase contrast fluorescence inverted microscope evalu-ation showed more than 90% transfected cells (Figure 1). Forty-eight hours after transfection, FACS analysis showed 86.46% eGFP-positive cells (Figure 2a). We also analyzed cell viability using propidium iodide staining (Figure 2b). ConclusionsWe obtained notably improved transfection efficiency from FuGENE®HD Transfection Reagent after trans-fection of 293T cells with pLVTHM anti bcr/abl p210 shRNA plasmid and packaging plasmids. In conclusion, transfected cells expressed eGFP to 86.41%, after trans-fection of 293T cells with three lentiviral vector plas-mids using FuGENE®HD Transfection Reagent. FACSProtein expression293T cells transfected with lentiviral plasmids. n References1. Felgner PL, Ringold Gm (1989) Nature 337:387–3882. Dull T et al. (1998) J Virol 72:8463–84673. Wiznerowicz m et al. (2006) Nat methods 3:682–688Biochemica · No. 3 · 2007。