微生物检验标本的正确采集及注意事项
微生物检验标本的正确采集及注意事项
正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。据相关统计：微生物标本的检测误差来源：80%来源于分析前20%来源于分析中和分析后其它检验样本的检测误差来源：45%分析前10%分析中（仪器））45%分析后.检验标本采集质量控制的重要性,分析前的误差来源所占比例的这个数据是惊人的，在我们的大型医院都存在这个问题，而在我们医院应该不会低于这个数据。
可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。为此应正确采集各种细菌学标本。
一、血液标本的采集
1、采集方法
（1）75%酒精清洁局部皮肤。
（2）待皮肤干后，再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm （直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。
（3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5-10ml，婴幼儿1-5ml。
（4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。
2、注意事项
（1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38.5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。
（2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，应在抗菌药物浓度最低时采集也即在下次用药前采血。切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。
（3）培养基与血液之比以10:1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质；有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。
（4）近年研究表明，将血液注入血培养基前，更换针头反而易导致污染。
（5）每例至少采血两次，间隔0.5-1h，以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。
（6）疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人，以肘动脉或股动脉采血为宜，除在发热期采血外，并要多次采血（24h 3-4次）和增加采血量（可增加10ml）。
（7）采血后立即送检，如不能立即送检可置室温，而不能放置冰箱。
（8）如临床表现很似败血症，而血培养多次阴性者，提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。
二、呼吸道
1、痰标本
（1）采集方法
①清晨起床后用凉开水漱口多次，以除去口腔内大量杂菌，用力咳出肺深部的脓痰，置于清洁干燥容器中或无菌管中送检。
②痰量极少者可用45℃ 3%-10%的氯化钠溶液约25ml雾化。对于咯痰量少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，当其咯痰后用无菌棉棒采集标本。
③咳嗽无力或昏迷病人，可用吸痰管经鼻腔或口腔经气管腔内吸引痰液送检。
④气管切开者可以深入透气孔中取痰。
⑤可用支气管镜直接在病灶部位采集高浓度的病原菌。
⑥用无菌导管经鼻腔插入气管镜内，缓慢注入无菌蒸馏水5ml，取出导管。留取患者在3h 内咳出的痰液，放入无菌容器中送检。
⑦胃内采痰法。无自觉症状的结核病人。有时可把痰误咽入胃内，因而可采用胃内溶物做结核菌培养，其阳性结果比咯痰高10%左右，该方法于晨起空腹时，把灭菌的胃管，从鼻腔送入胃内，用20ml注射器抽取胃液。
（2）注意事项
①痰标本的采集以晨痰为准，此时患者痰量较多且含菌量也多。
②标本采集后立即送检，若不能及时送检者，可暂存2-8℃冰箱。若晚1-2h接种，会失去苛氧菌，并使得革兰阴性菌过分生长。
③可接受的标本：痰；支气管灌洗液，支气管刷，支气管活检；肺吸出物和肺活检。不能接受的标本：唾液；24h留的痰（结核杆菌培养除外）；
④痰标本的质量评价：（用显微镜筛选）在低倍镜下，检查鳞状上皮细胞，至少10个视野，集中在有白细胞处，合格标本为白细胞与鳞状上皮细胞比例大于2:1。
2、鼻拭子
（1）用湿的拭子（生理盐水）；
（2）需插两个鼻孔；
（3）深入3.3cm左右，转动4-5次；
（4）以上用于诊断金黄色葡萄球菌暴发时的鼻带菌者。
3、咽拭子、口腔拭子
（1）采集方法（到细菌室取专用拭子）
①患者清水漱口后，由检查者将其舌外拉，用棉拭子将咽后壁或悬雍垂的后侧反复擦拭数次；
②化脓性扁桃体炎、口腔念珠菌病时，直接用棉拭子在病灶部位擦拭；
③采集完后立即送检，防止干燥。
(2)注意事项
①棉拭子应避免触及舌、口腔黏膜和唾液；
②采集标本前数小时不可用消毒药物漱口或接触病灶局部。
三、胃肠道
1、粪便
（1）采集方法
选取脓血、黏液粪便2-3g，液体粪便取絮状物1-2ml。盛于灭菌瓶中或蜡纸盒中及时送检。
（2）注意事项
①标本要采集新鲜的，陈旧标本影响阳性检出率；
②切忌粪尿混合；
③若要分离阿米巴，标本要立即送检并注意保温；
④运送培养基可提高阳性率；
⑤分离难辨梭菌时需选不成形或水样便；
⑥霍乱弧菌、大肠杆菌Ο157感染的腹泻便则为水样便或血性便；
⑦标本在病理早期或治疗前采集；
⑧一般认为用抗菌药三天后，标本培养病原菌阴性。
2、肛拭子
在无法获得粪便的情况下，可用经无菌甘油水或无菌生理盐水湿润的肛拭子插入肛门4-5cm（幼儿2-3cm）处，轻轻旋转擦取直肠表面黏液后取出，置运送培养基中送检。
六、泌尿道
根据卫生部《医学感染诊断标准》（试行）通知，泌尿系统临床诊断为：患者出现尿频、尿急、尿痛等尿路刺激症状，或有下腹触痛、肾区叩痛、伴或不伴发热，并具有下列情况之一：
（1）尿检白细胞男性≥5个/高倍视野，女性≥10个/高倍视野，插导尿管患者应结合尿培养；
（2）临床已诊断为泌尿道感染，或抗菌治疗有效而认定的泌尿道感染。
1、中段尿
（1）采集方法
①女性采样前用肥皂水或0.1%的高锰酸钾溶液冲洗外阴，用手指江阴唇分开排尿，弃其前段尿，不终止排尿，留取中段尿10ml于灭菌容器内。
②男性用肥皂水清洗尿道口，或0.1%的碘伏溶液消毒尿道口，灭菌纱布擦干，上翻包皮，弃其前段尿，不终止排尿，留取中段尿10ml于灭菌容器内。
（2）注意事项
①导尿虽然可以减少污染，但是多次重复导尿可以造成逆行性感染，因此近年来大多采用中段尿。
②女性病人最好采取膀胱截石位由护士采取标本，减少污染。
③采集标本以晨起第一次尿液为佳。
④采集标本后，若不能在1h内送检，暂放4℃冰箱，但不能超过8h。若尿液标本在室温下放置超过2h，即使接种培养结果细菌数≥104 cfu/ml获103cfu/ml,也不能作为诊断依据，应重新留取标本送检。
⑤疑为尿道炎时可将最初3-4ml尿液收集在灭菌容器内。该尿中即使有少数细菌，如反复检查为同一细菌，也应考虑为病原菌。
⑥儿童在多数情况下，仅冲洗外阴是不够的，故采集标本较为困难。如果尿内细菌明显增多，可以高度怀疑为尿路感染，无菌则可否定。
⑦若细菌培养结果为两种或两种以上细菌，需考虑污染可能，建议重新留取标本送检。
⑧尿液中不得加入防腐剂，消毒剂否则影响阳性检出率。
2、膀胱穿刺采集法
避免污染是很困难的，培养结果与病情不符时，或尿厌氧菌培养，或婴幼儿中段尿采集困难时，可以用耻骨上穿刺膀胱内采尿。
3、留置导尿者采集法
拔去闭式引流的集尿袋，弃去导尿管前段尿液，留无污染的膀胱内尿液10ml送检。不可从集尿袋下端留取标本。
七、脑脊液
1、采集方法
由临床医师以无菌方法收集脑脊液3-5ml（细菌1ml，真菌2ml抗酸杆菌2ml，病毒1ml）盛于无菌试管或小瓶中立即送检。
2、注意事项
（1）采集标本后立即送检，因脑膜炎奈瑟菌离体后迅速自溶，肺炎链球菌及流感嗜血杆菌也易死亡；
（2）疑为上述细菌感染时，应注意保温，不可置冰箱或低温保存。
八、胆汁
1、十二指肠引流法
在无菌操作下，将十二指肠导管吞咽至十二指肠乳头部（距齿65-70cm）时，收集A液（来自总胆管，为橙黄或金黄色），随之注入25%硫酸镁溶液40ml，经1-2min后再采取B液（来自胆囊，为棕黄绿色），随后收取C液（来自肝胆管，为柠檬色），一般认为B液做细菌培养意义较大。
2、胆囊穿刺法
胆囊造影术时，可同时采取胆汁。
3手术采取法
由总胆管、胆囊直接穿刺采取胆汁。
以上采集之标本应立即送检，否则置于4℃冰箱内，采集时需小心，避免被唾液、十二指肠液细菌污染。
九、穿刺液标本
穿刺液包括胸水、腹水、心包液、关节液、鞘膜液。
1、采集方法
由临床医师行穿刺术抽取。胸腹水可收集5-10ml,心包液、关节液收集2-5ml，置于无菌含抗凝剂的试管或小瓶中，充分混匀后，立即送检。抗凝剂10%EDTA二钠盐，标本与抗凝剂之比10:1。
2、注意事项
⑴标本采集应在患者用药之前或停止用药1-2天后进行；
⑵不能立即送检可置4℃冰箱保存；
⑶疑为淋病性关节炎患者的关节液，采集后立即送检，或床旁培养为佳；
⑷不能用棉拭子浸蘸标本送检。
十、脓汁及病灶分泌物
1、伤口
⑴表面伤口拭子采集方法及注意事项
①仅限于皮肤与皮下组织，包括手术切口、褥疮溃疡、新生儿脐炎、婴儿脓疮病。
②用无菌生理盐水或75%的酒精擦去病灶表面渗液；
③用无菌棉拭子抹去较深部的脓汁分泌物或组织送检；
④采集褥疮溃疡标本时应采集褥疮边缘的脓性分泌物，拭子放在运送培养基中立即送检，不要采集创口表面的渗液。
⑵伤口、脓肿、窦道、坏疽组织采集方法及注意事项
①闭锁性脓肿用碘酒和酒精消毒皮肤后，用灭菌注射器穿刺抽取全部脓液送检，疑为厌氧菌感染时，排去针管内空气将针头插入灭菌橡胶塞内送检；
②伤口处若有脓及渗出物要用无菌棉签深入各种窦道中擦拭，用小刀刮取，穿刺抽吸或手术切除获得深处伤口标本；
③当创伤出血时，敷有药物在2h以内及烧伤在12h内均不应采集标本，此时获得阳性结果机会甚少。
④采集标本注意观察脓汁及分泌物性状、色泽、气味等。可为培养鉴定提供依据。
⑶烧伤创面
①烧伤创面需要脓性分泌物，焦痂迅速分离变棕黑、黑或紫罗兰色，烧伤边缘水肿。患者发烧>38℃或低体温<36℃，合并低血压。
②用无菌生理盐水冲洗伤口创面。
③由于创面部位不同，细菌种类也不尽相同，要用灭菌棉拭子采集多个部位的炎症区送检。
④采集痂下变黑或变性的不健康区边缘或引流液等做定量培养及组织活检。
2、厌氧伤口拭子
⑴厌氧专用棉棒或玻璃棒触及深部脓汁；
⑵可用注射器抽吸，排去针管内空气将针头插入灭菌橡胶塞内送检；
⑶立即送检，送检过程中必须保持在无氧条件；
⑷不宜做厌氧菌培养的有痰、喉拭子、鼻咽拭子、齿龈拭子、直肠、阴道和宫颈拭子以及回肠、结肠造瘘术的流出物，胃、小肠及大肠内容物等。
3、尿道口分泌物拭子
⑴男性用无菌纱布擦拭和清洗尿道口，然后采取从尿道口溢出的脓性分泌物；
⑵采集前列腺液时，先将尿道、膀胱冲洗，然后从肛门用手指按摩前列腺，促使前列腺液溢出；
⑶女性病人先用灭菌纱布或棉拭子仔细擦拭或清洗尿道口，然后从阴道内诊压迫尿道，使分泌物溢出；
⑷取子宫颈分泌物，先用内窥镜扩张阴道，然后从宫颈口用灭菌棉拭子采取分泌物，尽量避免被阴道宫颈附近正常菌群的污染。
4、蜂窝织炎
⑴用无菌生理盐水或酒精消毒皮肤；
⑵用细针在炎症最显著处穿刺吸引；
⑶抽少量灭菌生理盐水在针管内；
⑷注入无菌试管内送检。
5、组织标本
⑴活体组织采取的微量标本，可直接接种在培养基内；
⑵表浅组织可直接用棉拭子擦拭、小刀刮去；
⑶较大组织块的表面可采用烧灼或浸入沸水中5-10s，然后用灭菌剪刀切开，取其中的脓汁；
⑷深部组织标本可经皮肤穿刺或手术切取送检；
⑸组织标本不可用福尔马林固定；
⑹有时也可将沾有脓汁的最内层敷料放入无菌平皿内送检。
十一、眼标本采集
⑴一般细菌，以无菌棉拭子采集眼分泌物，尤其脓性分泌物；
⑵沙眼衣原体，首先擦去眼结膜上面的分泌物，然后用无菌小刀刮取穹窿部及眼结膜上皮细胞，用链霉素处理后备用；
⑶对于刚治疗或药物冲洗过的患者最好12-24h后采集标本；
⑷对于泪囊炎患者可稍加挤压后以无菌棉拭子采集标本。
检验标本的采集转运守则
检验标本的采集转运守 则 集团公司文件内部编码：（TTT-UUTT-MMYB-URTTY-ITTLTY-
检验标本的采集、转运规范 检验标本的采集 一、血液标本的采集 血液标本可来自于静脉、动脉或毛细血管。静脉血是最常用的标本，静脉穿刺是最常用的采血方法。毛细血管采血主要用于儿童，血气分析多使用动脉血。 （一）静脉采血法 1．采血步骤 采血前核对病人姓名、性别、年龄、编号及检验项目等，按试验项目要求，准备好相应的容器，如空白试管、抗凝管或促凝管等。病人应取坐位或卧位，采血部位通常是前臂肘窝的正中静脉。若用普通采血法，采血后应取下针头，将血液沿管壁缓慢注入试管内。2．注意事项 （1）防止溶血：造成溶血的因素有注射器和容器不干燥、不清洁；淤血时间过长；穿刺不顺利，组织损伤过多；抽血速度太快；血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫；震荡过于剧烈等。若用普通注射器采血后，未取针头直接将血注入真空管内，也易造成溶血。体内溶血属合格标本，但应在报告单上注明。 （2）避免充血和血液浓缩：采血时应动作迅速，尽可能缩短止血带使用时间。用止血带压迫时间最好不超过半分钟，否则将使生化结果升高或下降。 （3）若病人正在进行静脉输液，不宜在输液同侧手臂采血；若女性病人做了乳腺切除术，应在手术对侧手臂采血。 （4）采血的体位：体位改变可引起一系列的生理变化，使血液中的许多指标发生改变。采血时要注意保持正确的体位（坐位或卧位），以及体位的一致性。 （5）采血时只能向外抽，决不能向静脉内推，以免注入空气，形成气栓而造成严重后果。 （6）很多生化成分受膳食影响，因此，采血前要确认病人是否空腹。 （二）动脉采血法 肱动脉、股动脉、桡动脉以及其它任何部位的动脉都可以作为采血点，但多选择肱动脉和桡动脉。在摸到明显搏动处，按常规消毒，左手固定搏动处，右手持注射器，针头成60°角刺入，血液将自动进入注射器内。采血注意事项见血气分析部分。 （三）真空采血法 双向针的一端在持针器的帮助下刺入静脉，另一端插入真空试管内，血液在负压作用下自动流入试管内。由于在完全封闭状态下采血，避免了血液外溢引起的污染，并有利于
临床检验标本采集手册精编WORD版
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临床检验标本采集手册 芜湖县中医院检验科 临床检验标本采集指南及注意事项 临床检验标本采集和处理问题已普遍引起了人们的重视。芜湖县中医院检验科每年参加省临床检验中心的室间质评活动，并取得较好成绩。为做到临床检验质量保证，必须做到对实验检查的全过程进行全面的质量控制和质量管理。这里包括：实验前（分析前）、实验中（分析中）和实验后（分析后）三个阶段的质量控制，其中实验前质量控制尤其重要。分析前质量管理是一个最薄弱的环节，试验误差中60～70%来自实验前，而且实验前误差是仪器、试剂、质控品和标准品等再好也无法解决的。实验前质量控制主要包括：⑴病人准备⑵标本采集⑶标本保存和运送⑷标本处理等。 一、病人准备 1．患者的状态： 一般需在安静状态下采集标本，如患者处于激动、兴奋、恐惧状态时，可使血红蛋白、白细胞增高。运动后，由于能量消耗、体液丢失、剧烈呼吸，可造成许多检验结果的变化，如谷丙转氨酶、谷草转氨酶、乳酸脱氢酶、肌酸激酶等一时升高，还可引起血中钾、钠、钙、白蛋白、血糖等成分的变化。 2. 患者的饮食： 2.1 多数试验要求空腹采血(空腹12小时左右)，最好是早晨空腹采血。研究表明，餐后血液中GLU、TG、ALT、ALP、BUN、Na等均可升高。进食高蛋白或高核酸食物，可引起血中尿素(Urea)及尿酸(UA)的增高；进食高脂肪食物，可引起TG的大幅度增高。餐后
采集的血液样本，其血清常出现乳糜状，影响到许多检验测定的正确性。一些饮料如咖啡，也可使淀粉酶(AMY)、促甲状腺素(TSH)等升高。 2.2 禁食过久也会影响检测结果。通常血糖浓度呈下降趋势；胆红素清除速率降低，引起血清胆红素浓度上升。绝食状态下脂肪酸和酮酸成为肌肉能量来源，因此血清中酮体、脂肪酸和甘油的浓度会显着增加。禁食48小时后，血清甘油三酯增加20％，此后又会下降。绝食使血清尿酸盐浓度显着上升。身体饥饿时醛固酮分泌增加，尿排钾增加引起血清钾降低。 2.3 素食者：长期素食者低密度脂蛋白(LDL)和极低密度脂蛋白(VLDL)浓度都会偏低，总脂质和磷脂浓度也会减少，胆固醇和三酸甘油脂浓度可能只有杂食个体的三分之二。 2.4 咖啡因：咖啡、可乐、茶、以及多种药物都含有咖啡因，它是一种温和的刺激物和微弱的利尿剂。能刺激肾上腺髓质，促使儿茶酚胺分泌增加，使血糖浓度轻微上升、甘油三脂上升；但是血清胆固醇浓度会下降。 2.5 乙醇：长期饮酒者高密度脂蛋白胆固醇偏高、平均血细胞体积增加、谷氨酰转肽酶（GGT）活性会上升，甚至可以将这三项作为嗜酒者的筛选检查。中度酒精量会伤害骨骼肌细微结构，因此会使血清肌酸激酶(CK)活性上升。有报道喝酒会使ALT和AST测定值上升，不过少量饮酒的影响效应很低。 2.6 吸烟：吸烟者会引起白细胞数增加、嗜酸粒细胞减少、中性粒细胞及单核细胞增多、红细胞数和血红蛋白增加、平均红细胞体积偏高。抽烟者血浆β脂蛋白、胆固醇、甘油三脂等浓度高于未抽烟者，而高密度脂蛋白胆固醇低于未抽烟者。 3．药物的影响：
检验标本采集核对 制度
检验标本采集核对、运送、交接制度 临床检验的任务就是对临床标本进行检测分析，为临床疾病诊断、治疗及疗效观察提供实验室结果，并为临床提供咨询服务。因此，检验标本的正确采集、运输、交接处理是确保临床检验顺利进行的重要条件。为此，制订检验标本采集核对、运送和签收制度。 标本采集核对制度 1、护士应掌握各种标本的正确留取方法。 2、护士为患者采集标本时要实施正确的双人核对。双人核对医嘱、标本容器及标识、患者身份等，必要时病人参与确认。 3、正确选择标本采集时机。晨起患者处于安静状态，为大部分标本采集的最佳时间。静脉采血前至少要禁食8h；血脂测定需禁食12-14h；做微生物培养检查，最好在使用抗生素之前采集标本；大便隐血检查前要素食3天；尿液检查应按不同项目分别留置取晨尿、随机尿、计时尿等。 4、正确选择标本采集体位。如住院患者建议采用卧位采血，非住院患者可采用坐位；醛固酮检测要在起床前卧位取血，起床后活动4h 立位取血。 5、正确选择标本容器。护士根据采集血液、尿液及粪便等不同标本种类及容量，准备合适的采集容器。在容器外整齐规范地贴上条形码。 6、正确使用止血带。采集血液标本时应尽量缩短使用止血带的压迫时间，一般不超过1min。见到血液进入采血容器后立即松开止血带。当需要重新采集标本时，应换另一手臂。
7、尽可能避免在输液过程中采集血液标本。因为血液被稀释、输入药物可能干扰检验结果。静脉输入葡萄糖、氨基酸、蛋白质或电解质的患者，应在输液结束1h后采集标本；输入脂肪乳剂的患者，应在输液8h后采集标本。如必须在输液时采集标本，要避免在输液同侧的静脉采集标本。 8、采集血液标本时，要避免导致标本溶血的因素。包括：标本管壁粗糙、容器不干燥和不清洁、穿刺处消毒液未干即开始采血、从血肿处采血、抽血速度过快、血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫、震荡过于激烈、止血带捆扎时间过长或让患者反复拽拳、运送标本震荡及放置时间过长等因素。 9、对于有特殊要求的如：患者体位、采集时间、患者体温等需要特别说明的标本，请在条形码空白处用文字备注，字迹清晰。 10、不得随意涂改标本条码上的信息，包括：患者信息、检验项目等。 标本运送和签收制度 1、各病区、科室标本采集后，由责任护士与运送工人双方做好交接清点、并做好交接记录（项目、数目、时间、签名），再由运送工人送检验科。 2、安全、及时地运送标本。标本应统一安排后勤服务公司专职人员送检。标本运送应遵循唯一标识、生物安全和及时运送三大原则：（1）唯一标识原则：应用可扫描自动识别的条形码是解决唯一标识最好的方式。 （2）生物安全原则：要求使用可以反复消毒的专用容器运送标本。
临床微生物检验标本的采集
临床微生物检验标本的采集及微生物检验报告的解读 一临床微生物检验标本的采集 1.临床微生物检验的思路和原则 确保标本可靠（（分析前质量） 保证检验质量 全面了解机体的正常菌群 快速准确提供信息 微生物学的定性、定量和定位分析 结合病情，与临床联系 2.微生物结果的影响因素 2.1针对性的检验申请、病人准备、标本的采集、标本的运输标本的保存和处理（46~68.2%）；标本检验（ 4-15% ）；结果审核和批准、危急值报告（18.5-47%） 2.2正确采集、转运与保存微生物标本直接关系到致病微生物培养的正确性与阳性率，是从临床微生物检验获得正确结果的最关键一步。 2.3Garbage-In- Garbage-Out 不合格的标本-不正确的检验结果-错误的诊断-错误的治疗-卫生资源的浪费、病人费用增加、耐药菌株增加 2.4成功治疗感染症的重要前提:正确的微生物学检验始自标本采取。否则工作人员水平再高也不可能得到正确的结果，临床医师、护士及检验人员都必须通晓其要领 3.标本采集前临床医师及护士要考虑的问题 3.1是否感染？细菌感染？真菌感染还是病毒、寄生虫感染？ 3.2何时采集样本？ 3.3采集什么样的标本？怎样采集？样本是否足量？ 3.4采用哪种无菌容器或运送培养基采集标本？ 3.5如何完善的填写标本申请单？针对某些特殊致病菌的排查要求应怎样写？（申请单信息越详尽，越有助于实验室出具符合临床情况的结果报告，如疑似诊断、准确的取材部位、甚至取样时用抗菌药物。） 3.6关键需要特别重视的问题：标本采集是否规范；标本保存、运送是否规范？；无菌体液培养重视与否？ 4.微生物检查的样本收集原则： 4.1收集样本时应使用严格的无菌技术，将污染情形降至最低。
常见微生物标本的采集
常见微生物标本的采集、处理与检测 标本采集的基本原则：尽早采集、根据可疑的病原体，选择不同采集时机和标本种类、在抗生素应用前采集、遵守无菌操作、正确保存和运送。容器应密封不易碎，标本不得污染容器的口和外壁。 1.血液标本正常人的血液是无菌的。当细菌侵入时可引起严重的菌血症或败血症。 一般情况下在患者发热初期或发热高峰时采集；持续性菌血症可随时采集；间歇性菌血症，应预测其体温上升期进行采血。一般在使用抗生素前采集2~3次；多部位采集，如两侧肘静脉或动、静脉同时采取；对于已使用抗生素而无法停止的患者，也应在下次用药前采取。在感染局部的附近血管中采血，可提高阳性率。采血量成人一般5~10ml，婴幼儿1~2ml。 采集的血液标本注入培养瓶中先进行增菌培养，培养基和血液标本量的比例应>10：1，将血液中的各类杀（抑）菌物质充分稀释。需氧菌常用培养基有胰酪蛋白大豆胨肉汤和葡萄糖酚红肉汤等，常加入对氨基苯甲酸（PABA）50μg/ml中和磺胺类，青霉素酶2单位/ml破坏青霉素类，硫酸镁中和链霉素、四环素、土霉素、金霉素、新霉素及多粘菌素等抗生素。加入0.03~0.05%的聚茴香磺酸钠（sodium polyanethol sulfonate, SPS）可抑制血清中的抗菌物质，并对氨基糖苷类和多肽类抗生素有灭活效果。并加入Ⅹ、Ⅴ因子等生长因子。 培养瓶每天观察一次。如发现①培养瓶内液体浑浊；②血球层上面出现颗粒状的生长物，并且有自下而上的溶血；③有明显的凝块；④液体表面有菌膜，培养液清晰或浑浊等，表明有细菌生长。直接进行涂片染色初步报告。同时分别接种血平板、巧克力（色）平板，普通培养和5%CO2 35℃培养。也可直接进行体外药敏试验。无细菌生长迹象的培养瓶孵育至第7d，接种血平板、巧克力（色）平板，分别进行普通培养和5%CO2环境35℃孵育24h。为了提高检出的速度，在培养的第2~3d时应移种一次。 有厌氧菌感染时，同时注入需氧瓶和厌氧瓶，厌氧培养基通常用硫乙醇酸盐培养基、牛心脑浸液肉汤等；培养液中有刃天青，无氧时无色，有氧时呈红色。需氧瓶和厌氧瓶同时浑浊，或需氧瓶无生长而厌氧瓶液体浑浊，提示厌氧菌生长。分别接种血平板和厌氧血平板，置需氧和厌氧环境中，如果都只生长1种细菌，则为兼性厌氧菌；如果仅在厌氧环境中生长，可以直接报告“有厌氧菌检出”。 若长期应用抗细胞壁类抗生素，应考虑细菌L型存在，将血液接种高渗培养基中，分别进行需氧、厌氧和5%CO2环境培养。每周移种2~3次于高渗固体培养基上，观察有无细菌L型菌落生长。 2.呼吸道标本 正常上呼吸道有正常菌群。下呼吸道正常情况下无细菌或仅有少量细菌侵入
生化检验 化学检验血液标本采集和处理
生化检验化学检验血液标本采集和处理 临床检验的目的是为临床提供准确可靠的实验诊断依据。为了保证实验数据的可靠性，在检验医学中必须坚持全面质量控制（total quality control，TQC.即指对影响临床检验结果可靠性的各方面因素及各个环节进行质量控制）和全过程质量控制（即指对实验工作的全过程进行质量控制和质量管理）。全过程质量控制包括实验前（分析前）、实验中（分析中）和实验后（分析后）三个阶段的质量控制。在实验误差中实验前误差占70%，因而实验前质量保证对减少实验误差显得尤其重要。 实验前质量保证包括病人准备、标本收集、处理、贮存和运输等，因而能否正确地、规范化地采集和处理标本，是能否做到实验前质量保证的重要内容。在临床化学检验中，血液标本是最多应用的生物体液，血液标本因素是影响临床化学分析准确性和可靠性的最重要、最直接的因素。我国从我们的国情出发，参考了美国临床实验室标准化委员会（NCCLS）的有关规定，对临床化学检验血液标本的有关问题也提出了相应的要求。我国卫生标准技术委员会临床检验标准专业委员会（CCCLS）已对“临床化学检验血液标本的收集与处理”提出了“中华人民共和国卫生行业标准”，旨在通过标本方面的质量控制达到临床化学分析的质量保证。目前该“标准”文件正在待批中。 一、临床化学检验血液标本的定义 临床化学检验血液标本是指为完成某项或多项临床化学检验项目而采集的一定量的血液，包括抗凝及非抗凝血。 二、血液标本的采取 （一）采取部位 1.静脉采血：应用最多的采血方式。常用的静脉为肘前静脉、腕背静脉，小儿和新生儿有时用颈静脉和前囟静脉。 2.动脉采血：主要用于血气分析时。常用的动脉为股动脉、肱动脉、桡动脉和脐动脉。 3.毛细血管采血：适用于仅需微量血液的试验或婴幼儿。常用部位为耳垂、指端，小儿有时为大趾和足跟。采血针刺入皮肤深度应为2mm 医学教.育网搜集（＜2.5mm），采血局部应无炎症、水肿等。 （二）标本类型 临床化学检验血液标本分为血清、血浆和全血3种。血清和血浆为临床常用，除前者不含纤维蛋白原外，其余多数化学成分无差异；全血只有在红细胞内成分与血浆成分相似时才用；血气分析、血红蛋白电泳等时用全血，一般临床化学分析多不用全血。 三、全血处理为血清或血浆 血液标本采取后应尽可能早地自然地使血清（浆）从与血细胞接触的全血中分离出来。一般应于采血后2h内分离出血清或血浆。全血处理为血清或血浆分为离心前、离心中和离心后三个阶段，对各不同阶段均有具体要求。 （一）离心前阶段
临床检验标本采集、运输、保存操作规程
临床检验标本采集、运输、保存操作规程 目录 第一章、体液标本的采集、运输、保存操作规程 一、尿液标本采集、运输、保存 二、阴道分泌物标本采集、运输 三、精液标本采集、运输、保存 四、粪便采集、运输、保存 第二章、血液一般检验的标本采集、运输、保存操作规程 一、未梢血标本采集 二、静脉血采集、运输、保存 第三章、生化检验标本采集、运输、保存操作规程 前言 在临床工作中，检验标本的分析结果是临床医生诊断疾病、制订治疗方案的重要依据，而标本采集及送检工作的合格与否直接影响检验结果的真实性，进而影响疾病的诊治工作。为了进一步提高检验结果的准确性和可靠性，除了要求检验科提高检验质量水平外，还要求临床医护人员正确采集标本。为确保标本的正确采集、运输和保存，检验科特编写了临床检验标本采集、运输、保存操作规程，要求医护人员严格按操作规程采集、运输和保存标本。 第一章体液标本的采集、运输、保存操作规程 一、尿液标本采集、运输、保存 （一）检查项目 1．尿液干化学测定：尿液比重、pH 值、尿胆原、胆红素、潜血、酮体、蛋白质、白细胞、亚硝酸盐、葡萄糖、抗坏血酸。 2．尿液有形成份检测：包括红细胞及白细胞形态等。
3．其它：尿HCG、尿液红细胞显微镜形态分析。 （二）标本采集 【容器及采样量】 门诊病人由检验科提供专用塑料尿杯，采样量20-30ml。住院病人使用清洁容器取尿，再将尿液倒入专用的试管内，量约5-10ml。24小时尿液收集于清洁容器中，如小的带盖的塑料桶。 【标本种类及适用人群或项目】 （1）晨尿 即清晨起床后的第一次尿标本，为较浓缩和酸化的标本，血细胞、上皮细胞及管型等有形成分相对集中且保存得较好。门诊患者可采集清晨第二次尿标本。适用：住院病人、可疑或已知泌尿系统疾病的动态观察及早期妊娠试验等。 （2）随机尿（随意一次尿） 即留取任何时间的尿液。本法留取方便，但易受饮食、运动、用药等影响，可使低浓度或病理临界浓度的物质和有形成分漏检，也可能出现饮食性糖尿或药物如维生素C等的干扰。适用：门诊和急诊病人。 （3）其他 包括留取中段尿（女病人易受阴道分泌物污染，应采集中段尿）、导尿、耻骨上膀胱穿刺尿等。 【注意事项】 （1）避免阴道分泌物、月经血、粪便等污染，女性病人应采集中段尿，尽量避免经期做尿常规检查； （2）避免干扰化学物质（如表面活性剂、消毒剂）混入； （3）住院病人送检的标本要标上病人姓名，门诊病人的标本和检验申请单放在指定的标本收集盘上。
微生物检验标本的正确采集及注意事项
微生物检验标本的正确采集及注意事项 正确采集临床微生物标本，直接影响到微生物培养鉴定结果。据相关统计：微生物标本的检测误差来源：80%来源于分析前20%来源于分析中和分析后其它检验样本的检测误差来源：45%分析前10%分析中（仪器））45%分析后.检验标本采集质量控制的重要性,分析前的误差来源所占比例的这个数据是惊人的，在我们的大型医院都存在这个问题，而在我们医院应该不会低于这个数据。 可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗，为临床科学用药和成功的感染控制提供依据，是正确、合理使用抗菌药物，延缓细菌耐药，减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步，也是最重要的一步。为此应正确采集各种细菌学标本。 一、血液标本的采集 1、采集方法 （1）75%酒精清洁局部皮肤。 （2）待皮肤干后，再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒，范围不应小于5cm （直径），且不能用手指触摸消毒后的皮肤。 （3）皮肤碘酒干后（约1min），穿刺采集血液，采血量成人5-10ml，婴幼儿1-5ml。 （4）采血后立即在床旁接种培养瓶，并迅速轻摇，充分混匀防止凝固，但又不可剧震以防溶血。 2、注意事项 （1）怀疑菌血症应尽早采血，体温上升（38.5℃）采血可提高阳性率，但也要防止因等待而延误时机。 （2）对已经使用抗菌药物，而又不能停药者，应在抗菌药物浓度最低时采集也即在下次用药前采血。切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本，也不能从静脉导管及动脉插管中取血。 （3）培养基与血液之比以10:1为宜，以稀释血液中的抗生素，抗体等杀菌物质；有人主张对接受抗菌药物治疗的病人，培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。 （4）近年研究表明，将血液注入血培养基前，更换针头反而易导致污染。 （5）每例至少采血两次，间隔0.5-1h，以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。 （6）疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人，以肘动脉或股动脉采血为宜，除在发热期采血外，并要多次采血（24h 3-4次）和增加采血量（可增加10ml）。 （7）采血后立即送检，如不能立即送检可置室温，而不能放置冰箱。 （8）如临床表现很似败血症，而血培养多次阴性者，提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。 二、呼吸道 1、痰标本 （1）采集方法 ①清晨起床后用凉开水漱口多次，以除去口腔内大量杂菌，用力咳出肺深部的脓痰，置于清洁干燥容器中或无菌管中送检。 ②痰量极少者可用45℃ 3%-10%的氯化钠溶液约25ml雾化。对于咯痰量少的幼儿，可轻轻压迫胸骨上部的气管，当其咯痰后用无菌棉棒采集标本。
检验标本的正确采集及注意事项
检验标本的正确采集及注意事项 血液标本采集的注意事项 注意要将患者姓名、床号、住院号标记清楚 实行一人、一针、一管、一带、一垫，防止交叉感染。 压脉带捆扎时间不能过长、不能超过2分钟、见到回血应立即松开止血带。 需要重新采血时，在止血带束缚时间太长的情况下，应当在对侧手臂重新采血。 抽完后，应将真空管轻轻颠倒混匀。 临床化学检查为什么需要早晨采空腹血？ 正常人血液中的部分生物化学成分的含量，除因年龄、性别等的影响外，还可受饮食、运动、精神、用药等因素的影响而使血液成分发生变化。而晚饭后，进餐的食物经十几个小时消化，基础状态平稳，所以测**果较为真实可靠如果在进食后采血，因受所进食物成分的影响，血液中会出现血糖、钾、钠、氯、钙磷等浓度升高，对各种酶类、脂类的实验结果均有影响，所以，有些临床化验检查常常需要早晨采取空腹血为宜。 怎样才算空腹 具体要求是：抽血的前一天晚上，病人保持平时的生活习惯，正常饮食；饭菜宜清淡，不要喝酒；饭后不喝咖啡、浓茶；休息好。第二天早晨起来后，不吃早餐，少喝或不喝水，不做早锻炼运动，平静地到医院等候采血，这样的血标本才是反映真实情况的好标本。 有些病人的甘油三酯特别高，以至于血清像牛奶一样，影响了其他血酯项目化验结果的准确性。这时，医生会要求他们吃几天素食，不吃肥肉，让血清清一点，再做空腹抽血化验。 输液病人应怎样采血？ 这是临床常见的采血问题。输液病人在不能停输的情况下静脉采血一定要注意远端原则。也就是说要在对侧手静脉采血。如果两只手都在输液，可以采脚端。实在不行也可以在滴注上流采血。由于指尖血是末梢血，没什么影响。由于临床常用手部输液，而静脉是从远端向心脏回流，所以同侧的肘静脉总是滴注的下流，因此同侧采血都有问题。至于影响的大小与输注液体输注方式以及待测项目有关。 尿液标本的采集 尿液标本的种类
各种临床检验标本的正确采集方法
各种临床检验标本的正确采集方法 发布日期：2007-09-10 发布人:alexendran 最后更新时间:2009-05-15 浏览次数:2711 各种临床检验标本的正确采集方法 标本送检须知 检验标本包括血液标本和其他各种体液标本。检验标本的采集是保证检验结果准确的前堤。因此，要求各临床科室医护人员、 送检单位及相关人员认真阅读本文件并严格按以下方法操作。 1 尿液标本的留取 尿常规检查标本 1.1使用清洁干燥容器，住院病人以清晨第一次尿为主，门、急诊患者可随时留取新鲜尿液 约20ml送检。 1.2尿标本应避免经血、白带、精液、粪便等混入。 1.3标本留取后及时送检，不得超过1小时，以免细菌在尿中生长繁殖，菌体蛋白与病理性 蛋白尿相互干扰；以免尿素酵解、葡萄糖降解、尿pH升高；以免有形成份破坏(细胞管型 分解、红细胞溶解)，化学成分变性、分解，尿中盐类析出结晶）。 尿培养标本 1.4需留取清洁中断尿，注意无菌操作，避免污染。 1.5病人先清洗外阴部，自行排尿，排尿过程中尿液不要中断，前段尿不要，用无菌管接中断尿，塞好瓶塞后立即送检。 1.6患者应停用抗生素三天后作尿培养检查。 1.7尿中应加防腐剂。 24小时尿标本 1.8准备清洁干燥带盖的广口容器，容量为3000—5000mL。 1.9病人于晨7时将尿全部排尽弃去，然后开始留尿，将24小时内历次所排尿液均留于容器中，包括次日晨7时所排最后一次 尿。 2.0测量尿液总量(ml数)并记录在化验单上，将全部尿液充分混均后，取出20—50m1，置于清洁干燥有盖容器总立即总检。
2.1若天气炎热，可根据检验要求放入适量的防腐剂。 甲苯：适用量20ml／1000ml尿，用于尿液生化检验(G、Pr、Ca、P、Cr等) 40％甲醛：适用量1～2ml／24h尿，用于细胞、管型等有形成分检查。 应在第一次尿液倒入后再加防腐剂。 2.2 24h尿中不能混入异物。 12h尿标本 留取12h尿标本，可以从晚上7时开始至次晨7时止(具体方法同24h尿标本采集)。 2 粪便标本的留取 粪便常规检查标本 2.1粪便检验应取新鲜标本，容器要清洁，及时送检，于1h内检查完毕。 2.2采集标本时应用干净竹签选取含有粘液、脓血等病变成分的粪便，外观无异常的粪便须 从表面、深处及粪端多处取材，其量至少为指头大小。 2.3粪便标本中不可混有尿液、消毒剂、污水、植物、泥土等。 2.4无粪便而又必须检查时可经肛门指诊获取粪便，灌肠后的粪便常因过稀及混有油滴等而 不适于作检查标本。 2.5应根据检查项目的要求进行准备和留取标本。 粪便寄生虫检查标本 2.6查痢疾阿米巴滋养体时应于排便后立即检查。寒冷季节标本传送及检查时均需保温，从脓血和稀软部分取材。 2.7检查日本血吸虫卵时应取粘液、脓血部分，孵化毛蚴时应至少留取30g粪便，且需较快处理。 2.8检查蛲虫卵须用透明薄膜拭子于晚12时或清晨排便前自肛门周围皱裂处拭取并立即镜检。 粪便培养标本 2.9粪便培养标本应无菌操作收集。 2.10患者在清洁便盆内排便，用无菌棉签取大便的脓血或粘液部分少许，或在肛门插入约6-7cm，轻轻旋动取出大便少许，放
检验标本的采集储存转运和处理制度
检验标本的采集、储存、转运和处理制度 检验标本的采集 一、血液标本的采集 血液标本可来自于静脉、动脉或毛细血管。静脉血是最常用的标本，静脉穿刺是最常用的采血方法。毛细血管采血主要用于儿童，血气分析多使用动脉血。 （一）静脉采血法 1?．采血步骤 采血前核对病人姓名、性别、年龄、编号及检验项目等，按试验项目要求，准备好相应的容器，如空白试管、抗凝管或促凝管等。病人应取坐位或卧位，采血部位通常是前臂肘窝的正中静脉。若用普通采血法，采血后应取下针头，将血液沿管壁缓慢注入试管内。 2?．注意事项 （ 1 ）防止溶血：造成溶血的因素有注射器和容器不干燥、不清洁；淤血时间过长；穿刺不顺利，组织损伤过多；抽血速度太快；血液注入容器时未取下针头或注入速度过快产生大量泡沫；震荡过于剧烈等。若用普通注射器采血后，未取针头直接将血注入真空管内，也易造成溶血。体内溶血属合格标本，但应在报告单上注明。 （ 2 ）避免充血和血液浓缩：采血时应动作迅速，尽可能缩短止血带使用时间。用止血带压迫时间最好不超过半分钟，否则将使生化结果升高或下降。 （ 3 ）若病人正在进行静脉输液，不宜在输液同侧手臂采血；若女性病人做了乳腺切除术，应在手术对侧手臂采血。 （ 4 ）采血的体位：体位改变可引起一系列的生理变化，使血液中的许多指标发生改变。一般采取直立位采血，其二标本的测定值比卧位高 5 ％～ 15 ％。因此，采血时要注意保持正确的体位（坐位或卧位），以及体位的一致性。 （ 5 ）采血时只能向外抽，决不能向静脉内推，以免注入空气，形成气栓而造成严重后果。 （ 6 ）很多生化成分受膳食影响，因此，采血前要确认病人是否空腹。 （二）动脉采血法 肱动脉、股动脉、桡动脉以及其它任何部位的动脉都可以作为采血点，但多选择肱动脉和桡动脉。在摸到明显搏动处，按常规消毒，左手固定搏动处，右手持注射器，针头成 60 °角刺入，血液将自动进入注射器内。采血注意事项见血气分析部分。 （三）真空采血法 双向针的一端在持针器的帮助下刺入静脉，另一端插入真空试管内，血液在负压作用下自动流入试管内。由于在完全封闭状态下采血，避免了血液外溢引起的污染，并有利于标本
临床微生物标本和医院环境卫生学监测标本采集培训试题
临床微生物标本和医院环境卫生学监测标本采集培训试题一填空（15分，每空格1分） 1、采集血培养要从不同的部位获得＿＿套血培养，一套血培养包括一个＿＿＿＿ ＿和＿＿＿＿＿，“双侧双套”是指＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿＿。 2、从静脉取血不宜从静脉导管或静脉留置口取血，除非怀疑＿＿＿＿＿；若从导 管取血，必需同时从＿＿取血。 3、尿液标本尽量采集晨起第一次尿，且应在膀胱内停留＿＿小时以上，所以夜间 最好＿饮水。尿液培养标本宜立即送检，＿小时内接种。 4、抽血培养时的皮肤消毒程序：首先＿＿＿＿擦拭静脉穿刺部位30秒，再用＿＿ 30秒或＿＿60秒；最后用＿＿脱碘并待干。 5、婴幼儿采血量不能超过全血量的（）不能少于（）ML. 6、空气细菌培养（自然沉降法） （1）、采样时间:选择后与进行之前采样。 (2)、采样高度:与地面垂直高度米（洁净手术室等除外）。 (3)、布点方法（洁净手术室除外） （3、1）、室内面积，设一条对角线取三点，即中间一点，两端各距墙1米处各取一点。 （3、2）、室内面积，设两条对角线，于东、西、南、北、中取五点，其中东、西、南、北距墙均1米。 （4）、采样方法及培养时间:用直径普通琼脂平皿放置各采样点，打开后盖面朝＿＿斜扣到底盘，在采样点准确暴露规定时间后盖上平皿盖，及时送检。 （5）、要求标准: （5、1）门诊手术室、美容科手术室、宫腔镜室、介入科、新生儿室、烧伤病房、重症监护病房、血液病病区空气中的细菌菌落总数。 （5、2）儿科病房、母婴同室、妇产科检查室、人流室、注射室、治疗室、换药室、输血科、消毒供应中心、血液透析室、急诊室、化验室、各类普通病室、感染疾病科门诊及其病房等，空气中的细菌菌落总数。 7、物体表面细菌培养 （7、1）、采样时间：在后或有关时进行采样。
临床细菌检验标本的采集、运送、保存和处理
临床细菌检验标本的采集、运送、保存和处理 正确的标本采集、运送、保存和处理对于保证临床细菌室的工作质量非常重要，应予高度重视。实验室有责任将标本选择（包括时间和解剖部位）、收集、保管、运送、接受和安全等 关键性信息，用户里手册的形式提供给各临床部门参考。 一、标本管理的安全警示 1．所有标本的采集、运送和处理应在无菌操作，防止污染的原则下认真进行。 2．已采集原始标本都应置于防漏、密封的无菌容器中运送。 3．带针头的注射器运送标本时用无菌试管或防护装置套住注射针，再置于防漏塑料袋中运送至检验科。 4．采集足够量标本，材料不足可能导致假阴性。 5．每份标本都应标记患者姓名、送检号码、标本来源、具体部位、日期、时间及相关临床信息。 6．常规性细菌学检验的标本，采集后不能超过１小时送至检验科，4℃保存也不能超过24小时，怀疑厌氧菌感染的标本应在半小时内送至检验科（不能及时运送组织标本必须在 厌氧环境中25℃不超过24小时）。 7．脑脊髓液、生殖道、眼睛、内耳标本应立即送检，绝不可冷藏。 二、标本的处理和要求 1．血液和骨髓： 1）急性脑膜炎、骨髓炎、关节炎、细菌性肺炎、肾盂肾炎发热患者，应在抗生素治疗或更换前，从不同部位采集血液标本，做2次血液培养，分别接种于各种培养瓶中 立即送检置于孵箱内培养 2）疑似心内膜炎患者：急性病例在抗生素治疗或更换前1—2小时，从不同部位采集血液标本，做3次血液培养 3）亚急性病例：第一天24小时内，相隔1小时连续采集3次血液做培养，若24—48小时全部阴性，再采集2—3次血液做培养 4）若已经抗生素治疗患者，连续3天，每天取2次血液做培养 5）严格无菌技术采集血液血培养瓶后立即送检，切不可放冰箱暂存。 2．脑脊液： 脑脊液采集后，置于无菌试管中，15分钟内送检，绝不可冷藏。每种检验最小需 要量：细菌培养≥1ml,真菌≥2ml,抗酸杆菌≥2ml. 3．尿液： 1）中段尿采集：清洁外阴及尿道口周围，自然排尿，让尿流不间断，截留中段尿，，置于无菌尿杯中立即送检。尿量不少于1ml. 2）直接插导管采尿：一般插入导管后先让尿流弃15ml再留取培养标本。尽量不采用此法，极易将尿道细菌丛进入膀胱增加医源性感染危险。 3）滞留导管采集尿：用75%酒精消毒导管口，用针筒抽取5—10ml尿置于无菌容器中立即送检，滞留导管会使膀胱带有细菌，尽可能不采用。 4）尿液采集后2小时内必须送检，立即处理。规定每日一次。 5）若同一份标本检到3种以上不同细菌则认为标本污染。一般认为革兰氏阴性杆菌菌落计数大于105cfu/ml,革兰氏阳性球菌菌落计数大于104cfu/ml,方有诊断意义。 4．痰液： 1）先用冷开水漱口清洗咽喉，用力咳出痰液置于无菌容器中立即送检，2小时内接种。 2）符合要求的痰液应在低倍镜视野中鳞状上皮≤10个，白细胞≥25个。
临床检验标本采集指南
临床检验标本采集指南 工人医院（中德西南人民医院） 检验科 质量方针 准确及时，方便快捷； 科学管理，优质服务； 满足临床，持续改进。
质量目标 1、服务围：本科向服务对象提供临床基础检验，临床生化检验，临床免疫检验，临床血液学检验等本专业相关的检验报告，并提供相应的咨询服务，最大程度地满足病人和临床需求。 2、服务标准：本科严格按照医疗机构《临床实验室管理办法》，《ISO 15189》标准，为服务对象提供高效、优质的服务，追求服务对象尽量满意。 3、质量要求：以ISO 15189标准为准则，不断完善质量体系，确保检测结果的公正性、科学性和权威性，及时准确地为病人和服务对象提供可靠的检验报告，确保室间质评和室质控VIS值成绩优秀。 4、服务相关承诺：本科严格按照ISO 15189标准建立质量控制体系，并保证持续有效运行，并严格按照质量体系文件从事各项质量活动和技术活动，按期实现质量目标。 科室主任寄语： 此质量方针和质量目标是检验科服务、质量和技术管理的宗旨，其特点可操作性、可评价性和可控制性。 1、准确及时：就是质量第一，精益求精。检验科将通过建立和实施质量管理体系和持续改进体系，准确及时地发出检验报告。 2、方便快捷：就是以病人为中心，关爱生命。每一位病人和诊治病人的临床医生都希望开出检验申请单后能立即得到检测结果。在保证检验质量的前提下，尽可能缩短报告周期。特别是急诊检验和危急值报告。我们必须实现检验科是为临床服务的，而方便就是服务之涵。 检验科服务咨询： 检验科： 0
血液检验标本采集指南 检验项目标本要求采血管类别颜色采血 量 混匀放置送检要求 全血细胞分析+五分类静脉随机全血紫色管（EDTA-K2抗 凝管 2ml 采血要快，见血立即混匀 5-8次，竖放，2小时送检 ABO、RH血型、交叉合血静脉随机全血紫色管（EDTA-K2抗 凝管 2ml 立即混匀5-8次，竖放，2 小时送检 糖化血红蛋白静脉随机全血紫色管（EDTA-K2抗 凝管2ml 立即混匀5-8次，竖放，2 小时送检 血凝检验静脉无脂血全 血兰色管（枸橼酸钠 1:9抗凝） 2ml 立即混匀5-8次，竖放，2 小时送检 血沉检验静脉随机全血黑色管（枸橼酸钠 1:4抗凝）2ml 立即混匀5-8次，竖放，2 小时送检 血流变学检验空腹静脉全血绿色管（肝素钠抗凝）3-5ml 立即混匀5-8次，竖放，2 小时送检 急诊生化如电解质、肾功淀粉酶、心梗三项定量等静脉随机全血绿色管（肝素钠抗凝）3-5ml 立即混匀5-8次，竖放， 及时送检 肝肾功、血脂、电解质、心肌酶谱、风湿三项等生化类项目空腹静脉全血 （最好上午） 红头生化类普通管， 无抗凝剂 3-5ml 竖直放入试管架，2小时送 检 免疫类项目空腹静脉全血红头生化类普通管， 无抗凝剂3-5ml 竖直放入试管架，2小时送 检 输血前检查空腹静脉全血红头生化类普通管， 无抗凝剂3-5ml 竖直放入试管架，2小时送 检 下图为美国临床及实验室标准研究院(CLSI)[原美国临床实验室标准化委员会（NCCLS）]推荐采血顺序，在实际工作中，如患者静脉条件较差，有可能采血不足，则应首先考虑凝血1（蓝帽）和血沉（黑帽）检测管，因 为这两管要求严格。
检验标本采集方法
检验标本手册 一．标本采集注意事项 1．所有标本均须标有标本和化验单识别标志，可以用笔标记或者贴上条码标签。 2．危、急、重要化验须标明“急诊”字样。 3．贴标签时用适量糨糊或胶水，以防标签脱落或糨糊太多粘粘。 4．标签最好不要遮挡住血液水平面，便于检验人员操作。5．真空采血管均有编号，小编号标签贴在化验单上，空白标签直接写上患者姓名、科室即可。 1
6．明确急诊检验范围：K+、Na+、Cl-、Ca++、CO CP、血糖、 2 尿素氮、肌肝、心肌酶谱、血气分析、胆碱酯酶、血、尿淀粉酶、血凝四项、血常规、血型、大便常规及潜血、尿常规、脑脊液（胸腹水）常规和生化、D-二聚体和术前传染病。７. 任何标本都应避免剧烈振荡，以免造成溶血，影响检验结果。 ８. 输入脂肪乳或高营养液体的病人，应在输完液体4小时后采集血液，以免造成脂血影响检验结果。 ９. 严禁在输液同侧或者是输液部位采集血液，否则会影响检验结果。 2
10. 需要做电解质的标本严禁抽在含有EDTA-K 、枸橼酸钠、 2 肝素钠抗凝剂的试管中，否则会造成K+、Na+升高，严重影响检验结果。 11. 任何需要抗凝的血标本，绝对不能有凝集现象，否则将严重影响结果和损害检验仪器。 12. 生化项目：肝功、血脂、血糖、肾功、心肌酶谱、微量元素、急性心肌梗死全定量检测、钠尿肽、C-反应蛋白、电解质、二氧化碳、胆碱脂酶、血淀粉酶、血凝四项、D-二聚体、尿β-2微球蛋白、尿微量白蛋白、糖化血红蛋白、血气分析。 3
13. 免疫项目：乙肝六项、术前三项（HBsAg、抗-HCV、抗-HIV）、甲肝抗体、梅毒抗体、优生八项、ENA谱、抗双链DNA抗体（抗ds-DNA）、ANA、抗心磷脂抗体、麻疹抗体、抗精子抗体、抗子宫内膜抗体ASO、RF和肥达氏反应。 14．发光免疫项目：甲状腺功能、内分泌六项、人绒毛膜促性腺激素测定（β-HCG）、胰岛素测定、C-肽测定、胰岛素抗体测定、甲胎蛋白、癌胚抗原、铁蛋白、糖类抗原 (CA-125、CA-153、CA-199、CA-724、CY-211)、前列腺特异性抗原（PSA）、乙肝DNA、丙肝RNA、皮质醇测定、醛固酮测定、心钠素测定。 4
病原微生物标本采集、运送
病原微生物检验标本采集、运送操作规程正确的标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择，采集，运送，保存及处理的一般原则。 一、标本采集的一般原则 1.早期采集 采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物之前采集，确保病原菌的检出。 2.无菌操作 采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群的污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊。采集的标本应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防腐剂，以免降低病原菌的检出。3.适量的标本 标本量过少可能导致假阴性结果。 4.适当的采集方法 对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不同的，用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存，不能冷藏和冷冻。 5.盛放标本的容器 采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖的容器内。 二、标本的运送 1.标本采集后立即送检，若有延迟也应在2小时内送到实验室，否则会影响病原菌的检出，一般性的细菌培养标本若需延迟送检时，应置于4度冰箱保存，且不能超过24小时。 2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量，少量液体（小于1ml）或组织（小于1cm3）应在15~30分钟内送到实验室，较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过24小时。 三、不同标本的采集，运送 （一）血液标本采集，运送
1.血培养指针征 当患者出现：发热（大于38度）或低温（小于36度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，c反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养。 2.对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在考虑使用抗菌药物之前，应立即采集血培养标本。必须同时或间隔短时间内采集２套以上血培养标本。成年患者：推荐同时采集２－３套（不同部位）血培养标本（即双瓶双臂同时采集血培养标本），采血量每瓶不少于5ml;婴幼儿患者：推荐同时采集２次（不同部位）血培养标本,采血量每瓶不少于2ml。（少于病人总血容量的1%）.在采取血培养后的2—5天内，无需重复采取血培养。两个例外：细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症。 3.血标本采集的量是影响检出率的最重要的因素。 检出率与采血量成比例增长，每增加1ml的血液，病原菌的检出率就会相应增加。儿童患者血液中病原菌浓度较高，血培养量无需等同于成人。采用一对（需氧瓶+厌氧瓶）组合，比采用二个需氧瓶的组合可检出更多的葡萄球菌、肠杆菌科细菌和厌氧菌。采血量不能满足推荐的量时，应首先满足需氧瓶的需要。 推荐从外周静脉采集血液标本,不推荐静脉留置导管，因其常伴有高污染率。如果必须从留置导管内采血，也应同时从外周静脉采集另外一个血培养标本以帮助阳性结果的判读。 4.血标本采集的注意事项 在采血之前，血培养瓶的橡皮塞需使用75%酒精消毒并干燥。然后再进行穿刺部位的皮肤消毒。严格按照“酒精、含碘消毒剂、酒精”的消毒步骤操作，并等待足够的消毒时间。严格无菌操作，不允许在皮肤消毒后用手接触静脉，除非带有无菌手套.不推荐采血和接种血培养瓶更换注射器针头;采集后的血培养瓶应在1小时之内送往实验室,血培养瓶在接种前和接种后均不得冷藏或冷冻。 (二)痰培养标本采集，运送 1.痰培养指征 上呼吸道感染包括咽炎，喉炎，会咽炎等都可采集鼻，鼻咽，口咽拭子标本
(推荐)标本采集应急预案及处理程序
标本采集应急管理制度和应急预案 1、正确标本的采集 1）、血液标本的采集：静脉采血时，除卧床病人，采血时一般取坐位，成人多用肘前静脉，婴幼儿常用颈静脉。使用止血带的时间不应超过一分钟，穿刺成功后应立即松开止血带。禁止在静脉输液管道内采血，从未输液的另一侧或输液部位以下的部位采血。血清(浆)标本的收集各室应根据所检验项目的要求采用相应的标本收集管，并确定采血量。 2）、尿液标本的采集 一般由患者或护理人员按医嘱留取。取样时应注意明确标记，避免污染，使用合格的一次性洁净专用尿杯收集尿样。中段尿、导管尿等特殊尿样的采集由医护人员行相关操作留取标本。 3）、粪便标本的采集 留取后收集于合格的一次性洁净专用粪杯送检。应取新鲜标本，选取异常成分的粪便，如含有黏液、脓、血等病变成分的标本，外观无异的从表面、深处及粪端多处取材，取3～5 g及时送检。 4）、阴道分泌物标本的采集 一般由妇科医师采集。采集阴道分泌物标本前24小时应避免性生活、盆浴。应于各种治疗、检查前采集标本，避免阴道冲洗或上药，被检者在采样前2小时不能排尿。 患者取膀胱截石位。用阴道扩张器暴露宫颈，采样前，用棉拭子将宫颈口过多的分泌物轻轻搽拭干净。更换棉拭子，用生理盐水浸润的棉拭子伸到宫颈管内0．5-2cm，稍用力转动两周，以取得分泌物及脱落细胞。 5）、痰标本的采集 嘱病人先行清水反复漱口，并指导或辅助病人深咳嗽，从呼吸道深部咳出新鲜痰液于无菌容器送检。一般应采集清晨第一次咳出的痰液，采样时应收集带血丝部分或有干酪样颗粒的部分。痰液极少者可用溶液雾化吸入导痰。痰液收集于一次性洁净专用痰杯内及时送检。 6）、其他标本的采集 脑脊液、胸腹水及支气管灌洗液等其他标本由临床医师按相应操作采集。 2、临床不合格标本常见的原因 1）标本溶血主要是因为标本采集量不足，管内剩余真空的存在造成血球破裂；用注射器采血转装于采血管时，未卸下注射器针头(血样在一定压力下，通过狭小的通道受到挤压，血细胞变形或破裂)；在摇匀抗凝剂，抗凝管摇匀方式错误或幅度太大(血样冲击力过大，破坏血球)；使用干粉剂采血管时，不及时摇匀(其溶解接触面不均衡，介面温度过高，出现溶解热和反应热)。 2）标本凝血使用注射器采血时，分装量超过采血管额定量；抗凝管没有摇匀或未及时摇匀、摇匀方式错误；血液粘度高的病人，选择采血针型号过小，采血速度过慢；异常的开塞操作(即水剂的抗凝剂常吸附在丁基胶塞上)，异常开塞后胶塞会带走部分预加的抗凝剂，导致抗凝剂剂量不足；由于患者疾病或自身因素造成血管条件不理想,致使抽血时间过长而导致血液凝固；多项采血时将血常规标本放在最后,导致拔针后针管内的血液返入试管,造成血量过多而凝固；止血带使用时间过长。 3）采血容器不当、采血量过少护士对检验相关业务和一些新开展业务不熟，造成对