几种常用生物活性测试方法简介[优质ppt]

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生物活性测定法的原理

生物活性测定法的原理

生物活性测定法的原理
生物活性测定法是一种通过观察或测量生物体对化学物质或其他环境因素的反应来评估其活性的方法。

常用的生物活性测定法包括细胞增殖或生长抑制实验、细胞毒性实验、酶活性实验、抗菌活性实验等。

生物活性测定法的原理主要基于以下几个方面:
1. 细胞反应原理:生物活性测定法常通过观察或测量细胞对化学物质的反应来评估其活性。

例如,通过在培养基中加入待测物质,观察细胞的增殖情况或生物学特征的改变,从而评估其对细胞的生长抑制或促进作用。

2. 酶反应原理:酶在生物体内发挥着极为重要的生物催化作用。

生物活性测定法中常通过测量酶的活性来评估待测物质的生物活性。

例如,通过添加待测物质到含有酶底物的体系中,观察酶反应的速率或生成产物的量来评估待测物质对酶的影响。

3. 细菌抗菌原理:生物活性测定法中常通过测量待测物质对细菌的抑制作用来评估其抗菌活性。

例如,利用平板扩散法或微量稀释法,将待测物质与细菌共同培养,观察细菌的生长情况或测量细菌的最小抑菌浓度,从而评估其抗菌活性。

4. 动物体内反应原理:一些药物或化学物质的生物活性往往需要通过动物体内实验来评估。

常见的方法包括动物行为观察、组织活检、毒性评估等。

通过观察
动物对待测物质的生理、行为或组织结构的变化,来评估其生物活性。

综上所述,生物活性测定法的原理主要是通过观察或测量生物体对待测物质的反应来评估其活性。

具体的原理可以根据不同实验方法和待测物质的性质来确定。

具有细胞伤害性的生物活性测定法

具有细胞伤害性的生物活性测定法

具有细胞伤害性的生物活性测定法一、生物学检测法生物学检测又称生物活性检测,是根据细胞因子特定的生物活性而设计的检测法。

由于各种细胞因子具有不同的活性,例如IL-2促进淋巴细胞增殖,TNF杀伤肿瘤细胞,CSFci激造血细胞集落形成,IFN保护细胞免受病毒攻击,因此选择某一细胞因子独特的生物活性,即可对其进行检测。

生物活性检测法又可分为以下几类:1、细胞增殖法许多细胞因子具有细胞生zhang因子活性,特别是白细胞介素,如IL-2 ci激t细胞生zhang、IL-3 ci激肥大细胞生zhang、IL-6 ci 激浆细胞生zhang等。

利用这一特性,现已筛选出一些对特定细胞因子起反应的细胞,并建立了只依赖于某种因子的细胞系,即依赖细胞株(简称依赖株)。

这些依赖株在通常情况下不能存活,只有在加入特定因子后才能增殖。

例如IL-2依赖株ctll-2在不含IL-2的培养基中很快死亡,而加入IL-2后则可右体外zhang期培养。

在一定浓度范围内,细胞增殖与IL-2量呈正比,因此通过测定细胞增殖情况(如使用3h-tdr掺入法、MTT法等)鉴定IL-2的含量。

除依赖株外,还有一些短期培养的细胞,如胸腺细胞、骨髓细胞、促有丝分裂原ci 激后的淋巴母细胞等,均可作为靶细胞来测定某种细胞因子活性。

2、靶细胞杀伤法是根据某些细胞因子(如TNF)能在体外杀伤靶细胞而设计的检测方法。

通常靶细胞多选择体外zhang期传代的肿瘤细胞株,利用同位素释放法或染料染色等方法判定细胞的杀伤率。

3、细胞因子诱导的产物分析法某些细胞因子可ci激特定细胞产生生物活性物质,如IL-2、IL-3诱导骨髓细胞合成胺、IL-6诱导肝细胞合成α1-抗糜蛋白酶等。

通过测定所诱生的相应产物,可反映细胞因子的活性。

4、细胞病变抑制法病毒可造成靶细胞的损伤,干扰素等则可抑制病毒所导致的细胞病变,因此可利用细胞病变抑制法检测这类因子。

二、免疫学检测法细胞因子均为蛋白或多肽,具有较强的抗原性。

细胞活力检测方法

细胞活力检测方法

细胞活力检测方法细胞活力是指细胞内外环境稳定,细胞结构完整,代谢活跃,功能正常的状态。

细胞活力的高低直接影响着生物体的生长、发育、免疫功能等多个方面。

因此,准确、快速地检测细胞活力对于生物学研究和临床诊断具有重要意义。

下面将介绍几种常见的细胞活力检测方法。

一、MTT法。

MTT法是一种常用的细胞活力检测方法。

其原理是将MTT(3-(4,5-二甲基噻唑-2-基)-2,5-二苯基-2H-四唑溴化物)加入培养基中,MTT会被细胞内的还原酶还原为可溶性的紫色产物,然后用溶剂将产物溶解,最后用酶标仪测定其吸光值。

吸光值越高,代表细胞内还原酶活性越高,细胞活力越强。

二、CCK-8法。

CCK-8法是一种新型的细胞活力检测方法,其原理是将CCK-8(Cell Counting Kit-8)溶液加入培养基中,CCK-8会被细胞内的还原酶还原为橙黄色的产物。

然后用酶标仪测定其吸光值,吸光值越高,代表细胞内还原酶活性越高,细胞活力越强。

相比MTT法,CCK-8法更为灵敏和稳定。

三、荧光染料法。

荧光染料法是一种常用的细胞活力检测方法,其原理是利用荧光染料(如FDA、PI等)染色活细胞和死细胞,然后观察染色情况来判断细胞的活力。

活细胞呈绿色荧光,而死细胞呈红色荧光。

通过计数活细胞和死细胞的比例,可以间接反映细胞的活力情况。

四、细胞代谢物测定法。

细胞代谢物测定法是一种直接反映细胞活力的方法。

通过测定细胞产生的代谢产物(如乳酸、ATP等)的含量,可以客观地评价细胞的活力情况。

这种方法不仅可以用于细胞培养液的检测,也可以用于组织样本的检测。

综上所述,细胞活力的检测方法有多种多样,每种方法都有其独特的优势和适用范围。

在实际应用中,我们可以根据具体情况选择合适的方法来检测细胞活力,以便更好地开展生物学研究和临床诊断工作。

希望本文介绍的内容对您有所帮助。

几种常用生物活性测试方法简介

几种常用生物活性测试方法简介
射次数、注射量等,计算机就可以完成整个实验,再由软件分析ITC得到的数据。 ➢ 量热实验完毕的样品未遭破坏,还可以进行后续生化分析。
ITC的用途: 获得生物分子相互作用的完整热力学参数,包括结合常数(Ka)、结合位点数(n)、摩 尔结合焓(△H)、摩尔结合熵( △S)、摩尔恒压热容( △ Cp),和动力学参数
Eu永久性嵌合穴状口袋(非螯合作用) 耐受性好,对温度,光强,PH,离子 强度变化影响较小。不易受化学物质 干扰,如EDTA,二价离子(Mg2+, Mn2+)等。
Stokes shift >300nm
持续激活后没有光漂白现象,可以多次 读数,从而进行动力学实验。
镧系元素的半衰期大于1毫秒,与普 通荧光纳秒级的半衰期相差6个数量 级。当延迟50微秒读数时,普通荧光 的信号近似于零。检测的发射光中没 有来自于激发波长的干扰。
Journal of Molecular Recognition.2008, 21, 289.
Isothermal Titration Calorimetry (ITC)
ITC独特之处: ➢ 样品用量小,方法灵敏度和精确度高。最小可检测热效应0.125uJ,生物样品最
小用量0.4ug,滴定池体积1.43 ml ➢ 实验时间较短。典型的ITC实验只需30-60分钟,并加上几分钟的响应时间。 ➢ 操作简单。整个实验由计算机控制,使用者只需输入实验的参数,如温度、注
7 .室温静置反应1h后,测值340/665nm。[(620/670nmCayman]
[BRD4(BD1)TR-FRET Assay Kit 购买自 BPS Bioscience 公司]
enzyme-linked immunosorbent assay(ELISA)

生物活性材料PPT课件

生物活性材料PPT课件
在生物活性材料迅猛发展的同时,生物惰性材料也得到 了广泛的应用。生物惰性材料主要是指能在生物体内长期 稳定存在,且不与生物组织发生物化反应的一类材料,如 医用金属、烧结氧化铝、氧化锆等生物材料被埋入骨缺损 部位后,就被纤维性膜所包围,而与周围的骨组织隔离。
缺点
在于惰性材料仅仅是以机械锁合的方式进行骨 的替换与修复,而不能与活体组织有效键合。
Ancleregg 等 对15 例中度或重度牙周炎患者的30 处下磨牙根分 叉病变进行治疗, 随机分为实验组、对照组。实验组行根向复位瓣术加 生物玻璃(45S5 倍骼生)植入, 对照组仅用根向复位瓣术, 并以探诊出血 情况及探诊牙周袋深度作为评价标准。结果显示实验组效果明显优于 对照组。故认为生物玻璃是治疗I I 型根分叉病变的有效材料。
熔融法 制备钙磷微晶玻璃的试验方法
溶胶-凝胶法
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多孔微晶玻璃的制备方法
一是利用玻璃分相原理,经热处理在玻璃中获得可溶晶相, 再用酸侵蚀掉可溶相,形成多孔材料。 二是先合成玻璃粉末然后加入诸如CaCO3 、PMMA、淀粉 等作发泡剂,烧结发泡成为多孔材料。
(2)钙磷微晶玻璃的组成 目前生物玻璃主要被用作骨的替代材料,根据天然骨的成分
19
D. Arcos, R. P.del Real, M. Vallet-Reg ì. A novel bioactive and magnetic biphasic material[J]. Biomaterials, 2002(23): 21512158.
20
3
生物活性陶瓷
生物活性陶瓷包括表面生物活性陶瓷和生物降解陶瓷。这 类材料的组成中含有能够通过人体正常的新陈代谢进行转换 的钙(Ca)、磷(P)等元素,或含有能与人体组织发生键 合的羟基(-OH)等基团。

生物活性测定法

生物活性测定法
生药物分析测定方法
生物活性测定法
重组人促红素体内生物学活性测定法 网织红细胞法) (网织红细胞法)
本法系依据人促红素(EPO)可刺激网织红 可刺激网织红 本法系依据人促红素 细胞生成的作用,给小鼠皮下注射EPO后, 细胞生成的作用,给小鼠皮下注射 后 其网织红细胞数量随 EPO注射剂量的增加 注射剂量的增加 而升高. 而升高.利用网织红细胞数对红细胞数的 比值变化,通过剂量-反应平行线法检测 比值变化,通过剂量 反应平行线法检测 EPO体内生物学活性. 体内生物学活性. 体内生物学活性
按标准品说明书, 标准品溶液的制备 按标准品说明书, 标准品复溶, 将EPO标准品复溶,用稀释液将 标准品复溶 用稀释液将EPO标准 标准 品稀释成高, 个剂量EPO标准溶 品稀释成高,中,低3个剂量 个剂量 标准溶 液. 供试品溶液的制备 用稀释液将供试 品稀释成高, 个剂量与EPO标准 品稀释成高,中,低3个剂量与 个剂量与 标准 溶液单位相近的供试品溶液. 溶液单位相近的供试品溶液.
然后弃去细胞培养板中的上清液, 然后弃去细胞培养板中的上清液,每孔 加染色液50ul 室温放置30分钟后, 50ul, 30分钟后 加染色液50ul,室温放置30分钟后,用 流水小心冲去染色液,并吸干残留水分, 流水小心冲去染色液,并吸干残留水分, 每孔加入脱色液100ul 室温放置3 100ul, 每孔加入脱色液100ul,室温放置3~5分 混匀后,用酶标仪以630nm 630nm为参比波 钟.混匀后,用酶标仪以630nm为参比波 在波长570nm处测定吸光度, 570nm处测定吸光度 长,在波长570nm处测定吸光度,记录测 定结果. 定结果. 试验数据采用计算机程序或四参数回归 计算法进行处理. 计算法进行处理.并按下式计算试验结 果:

生物活性测定法

生物活性测定法

按标准品说明书, 标准品溶液的制备 按标准品说明书, 标准品复溶, 将EPO标准品复溶,用稀释液将 标准品复溶 用稀释液将EPO标准 标准 品稀释成高, 个剂量EPO标准溶 品稀释成高,中,低3个剂量 个剂量 标准溶 液. 供试品溶液的制备 用稀释液将供试 品稀释成高, 个剂量与EPO标准 品稀释成高,中,低3个剂量与 个剂量与 标准 溶液单位相近的供试品溶液. 溶液单位相近的供试品溶液.
将配制完成的标准品溶液和供试品溶液 移入接种WISH细胞的培养板中,每孔加 移入接种WISH细胞的培养板中, WISH细胞的培养板中 100ul. 37℃, 入100ul.于37℃,5%二氧化碳条件下 培养18 24小时 18~ 小时. 培养18~24小时.弃去细胞培养板中的 上清液.将保存的水泡性口炎病毒(VSV (VSV, 上清液.将保存的水泡性口炎病毒(VSV, 70℃保存 用攻毒培养液稀释至100 保存) -70℃保存)用攻毒培养液稀释至100 每孔100ul 100ul. 37℃, CCID50,每孔100ul.于37℃,5%二氧 化碳培养24小时(镜检标准品溶液的50 24小时 化碳培养24小时(镜检标准品溶液的50 病变点在lIU/m1) lIU/m1). %病变点在lIU/m1).
重组人白介素重组人白介素-2生物学活性测定法 (CTLL- 细胞/MTT比色法) /MTT比色法 (CTLL-2细胞/MTT比色法)
本法系根据在不同白介素-2 (IL-2)的 本法系根据在不同白介素- (IL-2)的 浓度下,其细胞依赖株CTLL CTLL浓度下,其细胞依赖株CTLL-2细胞存活 率不同,以此检测IL 的生物学活性. IL率不同,以此检测IL-2的生物学活性.
试剂 RPMI1640培养液 1640培养 (1) RPMI1640培养液 取RPMI 1640培养 基粉末1 规格为1L) 1L), 基粉末1袋(规格为1L),加水溶解并稀释至 1000ml,加青霉素10 IU和链霉素 和链霉素10 IU, 1000ml,加青霉素105IU和链霉素105 IU, 再加碳酸氢钠2.1g,溶解后,混匀,除菌 再加碳酸氢钠2.1g,溶解后,混匀, 2.1g 过滤,4℃保存 保存. 过滤,4℃保存. 取新生牛血清(FBS) (2) 基础培养液 取新生牛血清(FBS) 10ml, 1640培养液90ml.4℃保存 培养液90ml 保存. 10ml,加 RPMl 1640培养液90ml.4℃保存. (3)完全培养液 取基础培养液100ml 100ml, (3)完全培养液 取基础培养液100ml, 加重组人自介素- 至终浓度400 800IU. 400~ 加重组人自介素-2至终浓度400~800IU. 4℃保存 保存. 4℃保存.

生物学活性检测ppt课件

生物学活性检测ppt课件

2018/11/17
例:抗肿瘤药物细胞学活性检测
• 肿瘤细胞(对数期) 胰蛋白酶处理 细胞悬液 稀释 96孔板培养24h 实验组、对照组设置 培养4~5d 弃去上清液 加MTT, 37℃继续培养4 h 小心弃上清,加 DMSO 37℃继续培养4 h 测定光密度值
肿瘤细胞生长抑制率%=(1- OD实验/OD对照) ×100%
生物学活性检测
2018/11/17
2018/11/17
2018/11/17

1.生物学活性检测必要性
• 药品有效性必须是疗效确切,且含有特定 的有效活性成分和一定浓度含量 • 凡是不能用理化方法测定其含量或有效成 分或虽有理化方法测定但不能真实反映临 床实际应用价值的药物效价测定,可用生 物测定法进行测定 • 生物学活性测定是生物测定的重要内容
2018/11/17
2.生物技术药物的生物学活性检测方法
• 体内:动物模型分析 • 体外:细胞(组织、器官)培养分析 • 酶促反应法、免疫学法(体外)
2018/11/17
• 蛋白药物的细胞学活性检测原理:相同条 件下通过实验组与对照组对特定细胞生理 或生存状况的影响程度来判断药物的活性 • 例:抗肿瘤药物活性检测
3.药物生物学活性检测的意义

2018/11/17
• 思考题:
1.重组蛋白药物的生物学活性检测方法主要有哪些? 2.抗肿瘤药物细胞学活性检测一般步骤?
thank you!
2018/11/17
在酶标仪上以实验波长为570 nm,参比波长为450 nm
2018/11/17
细胞培养分析
• 优点:时间较短(1~3d)成本低、重复性好 • 缺点:不精确
• 如:MTT显色反应
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J.Pharmaceut.Biomedical.2008,11,28.
surface plasmon resonance , SPR
SPR的优点:
可以实时、连续监测反应的动态过程, 灵敏度较高 。
可实时记录反应的结合与解离过程。 每次检测结束后,结合在金属膜芯片
上的反应物可以用洗脱液洗脱使芯片 再生,可重复使用,节约耗材。 可以得到高通量数据。
(如酶以应用于蛋白质-蛋白质相互作用、蛋白质折叠/去折叠、蛋白质-小分子相互作用、 酶-抑制剂相互作用、酶促反应动力学、药物-DNA/RNA相互作用、RNA折叠、蛋 白质-核酸相互作用、核酸-小分子相互作用、核酸-核酸相互作用、生物分子-细胞 相互作用等方面。
Journal of Molecular Recognition.2008, 21, 289.
Isothermal Titration Calorimetry (ITC)
ITC独特之处: 样品用量小,方法灵敏度和精确度高。最小可检测热效应0.125uJ,生物样品最
小用量0.4ug,滴定池体积1.43 ml 实验时间较短。典型的ITC实验只需30-60分钟,并加上几分钟的响应时间。 操作简单。整个实验由计算机控制,使用者只需输入实验的参数,如温度、注
SPR的缺点:
待测物在金属薄膜表面的固定:由于生物大分子本身理化性质的复杂性,空间 结构的特殊性,偶联结果可能导致偶联物特异作用位点的失活。
分析物在金属薄膜表面的结合:难以区分非特异性结合,若分析物在芯片表面 是非特异性结合, 会给整个实验带来干扰,造成错误的结论。
待测物的分子大小:适用于生物大分子,小分子的质量变化对折射率变化不明 显, 因此会给小分子待测物的检测造成困难。
ITC是一种热量连续变化的量热器。主 要由隔热夹套包裹着的样品池(反应池) 和参比池、注射器和一台计算机组成, 注射器同时具有搅拌作用,计算机控 制温度控制装置和信息反馈系统。
受体-配体复合物的形成伴随着能量的释放或吸收,导致样品池温度的变化,参比池 始终保持在实验温度,反馈系统提供热或降低热量来补偿样品池的温度变化,每注 射一次后系统恢复至平衡状态再进行下一滴滴定。结果以峰的形式表示平衡温度偏 移所需要的能量,峰的面积相当于反应释放或吸收的热量。
而折射率的变化又与金属表面结合的 分子质量成正比。 可通过 SPR 角的变化捕获生物反应过 程中生物分子之间相互作用的特异信 号,对待测物质进行测定直接测量反 应平衡常数 Ka,解离平衡常数 Kd 等。
surface plasmon resonance , SPR
将待测分子键合在生物传感芯片表面,使其形成分子敏感膜, 再将分析物分子溶液 注入,使其以恒定流速流过芯片表面,如果两者通过相互作用而结合,则将引起生 物传感器表面质量的增加, 导致传感器表面折射率的变化,从而引起SPR角的改变。 SPR被广泛应用于分析生物分子如蛋白质-蛋白质、药物-蛋白质、蛋白质-核酸、核 酸-核酸之间的相互作用,所涉及的研究领域包括免疫学、蛋白质组学及药物筛选等。
射次数、注射量等,计算机就可以完成整个实验,再由软件分析ITC得到的数据。 量热实验完毕的样品未遭破坏,还可以进行后续生化分析。
ITC的用途: 获得生物分子相互作用的完整热力学参数,包括结合常数(Ka)、结合位点数(n)、摩 尔结合焓(△H)、摩尔结合熵( △S)、摩尔恒压热容( △ Cp),和动力学参数
Methods In Cell Biology, 2008, 84,79.
Isothermal Titration Calorimetry (ITC) ITC数据图
左图: 横坐标:时间 纵坐标:热功率 峰底与峰尖之间的峰面积为每次注射时释放或吸收的总热量。 右图: 横坐标:滴定物与样品溶液的摩尔比 纵坐标:滴定产生的总热量 反应过程的结合等温曲线
surface plasmon resonance , SPR 表面等离子共振(SPR)原理
消逝波:当入射光到达界面时并不是直 接产生反射光,而是先透过光疏介质约 一个波长的深度,再沿界面流动约半个 波长再返回光密介质,透过光疏介质的 波被称为消逝波。
等离子波:当金属受电磁干扰时,金属内部 的电子密度分布会变得不均匀。因为库仑力 的存在,电子不会在引力与斥力的平衡位置 停下而向前运动一段距离,之后电子间存在 的斥力会迫使已经聚集起来的电子再次离开 该区域。由此会形成一种整个电子系统的集 体震荡,而库仑力的存在使得这种集体震荡 反复进行震荡,并以波的形式表现。
surface plasmon resonance , SPR
表面等离子共振原理
光在棱镜与金属膜表面上发生全反射 现象时,会形成消逝波进入到光疏介 质中与介质中存在一定的等离子波相 遇时可能会发生共振。当消逝波与表 面等离子波发生共振时,检测到的反 射光强会大幅度地减弱。
SPR角:反射光完全消失的角。 SPR角随金属表面折射率变化而变化,
几种常用生物活性 测试方法简介
CONTENTS
1
分子水平活性测试方法
2
细胞水平活性测试方法
3
总结
Isothermal Titration Calorimetry (ITC)
等温滴定量热法(Isothermal Titration Calorimetry, ITC)是近年来发展起来的一种 研究生物热力学与生物动力学的重要方法,它通过高灵敏度、高自动化的微量 量热仪连续、准确地监测和记录一个变化过程的量热曲线,原位、在线和无损 伤地同时提供热力学和动力学信息。
基本原理:
Q = △Ho x V x [H.G]
= △Ho x V x
Ka [G] 1+Ka [G]
x [H]o
△Go = -RT ln K a
△Go = △Ho - T△So
注:H 为受体(主体),G为配体(客体),Ka为结合常数 △Go为Gibbs自由能变化,△Ho 为焓变,△So 为熵变
Isothermal Titration Calorimetry (ITC) ITC仪结构示意图
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