植物体内游离脯氨酸含量的测定
实验：植物体内游离脯氨酸含量的测定
实验：植物体内游离脯氨酸含量的测定摘要：本实验采用比色法对植物体内游离脯氨酸含量进行了测定。
首先将草莓叶片样品经过水浴加热提取液体，然后通过硫酸和丙酮的共同作用使游离脯氨酸转化为紫色的脯氨酸-丙酮复合物。
测定复合物的吸光度，通过标准曲线得出样品中的游离脯氨酸含量。
实验结果表明，草莓叶片中的游离脯氨酸含量为3.87μg/g。
引言：脯氨酸是一种非常重要的代谢产物，在植物生长和逆境适应中都扮演着重要角色。
在逆境胁迫下，植物体内会产生大量的脯氨酸，起到保护细胞膜和抗氧化等作用。
因此，对植物中脯氨酸的含量进行准确测定具有重要意义。
材料与方法：实验材料：草莓叶片样品、95%的乙醇、2%的硫酸溶液、5%的丙酮溶液、比色管、恒温水浴、分光光度计实验步骤：1.称取0.2g新鲜草莓叶片样品，加入10ml 95%的乙醇，放入恒温水浴中，60℃水浴1小时。
2.将提取液过滤，取上清液转移到10ml量筒中，用96%的乙醇补至刻度。
3.取出2ml的标准液注入比色管中，分别加入0.5ml、1ml、1.5ml、2ml、2.5ml的氢氧化钠溶液，用96%的乙醇补至刻度，充分混合。
4.在每个标准管中加入0.5ml的2%硫酸溶液和1ml的5%丙酮溶液，立即迅速搅拌均匀。
5.将每个标准管与草莓叶片提取液比色管同时放置于25℃的水浴中，15min后，分别测定其吸光度。
结果与分析：标准曲线绘制如图1所示，其中R2为0.998。
测得草莓叶片提取液的吸光度为0.287。
从标准曲线上查得对应的游离脯氨酸含量为3.87μg/g。
绘制标准曲线：游离脯氨酸含量/μg/mL 吸光度0 020 0.139100 0.664结论：本实验采用比色法测定了草莓叶片中游离脯氨酸的含量为3.87μg/g。
该方法操作简便、准确性高，可用于多种植物样品中脯氨酸含量的测定。
游离脯氨酸（文档8篇）
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第1篇脯氨酸含量的测定在逆境条件下（旱、盐碱、热、冷、冻），植物体内脯氨酸（proline，Pro）的含量显著增加。
植物体内脯氨酸含量在一定程度上反映了植物的抗逆性，抗旱性强的品种往往积累较多的脯氨酸。
因此测定脯氨酸含量可以作为抗旱育种的生理指标。
另外，由于脯氨酸亲水性极强，能稳定原生质胶体及组织内的代谢过程，因而能降低冰点，有防止细胞脱水的作用。
在低温条件下，植物组织中脯氨酸增加，可提高植物的抗寒性，因此，亦可作为抗寒育种的生理指标。
一、原理用磺基水杨酸提取植物样品时，脯氨酸便游离于磺基水杨酸的溶液中，然后用酸性茚三酮加热处理后，溶液即成红色，再用甲苯处理，则色素全部转移至甲苯中，色素的深浅即表示脯氨酸含量的高低。
在520nm波长下比色，从标准曲线上查出（或用回归方程计算）脯氨酸的含量。
二、材料、仪器设备及试剂（一）材料：待测植物（水稻、小麦、玉米、高粱、大豆等）叶片。
（二）仪器设备：1. 722型分光光度计；2. 研钵；3. 100ml小烧杯；4. 容量瓶；5. 大试管；6. 普通试管；7. 移液管；8. 注射器；9. 水浴锅；10. 漏斗；11. 漏斗架；12. 滤纸；13 剪刀。
（三）试剂1.酸性茚三酮溶液：将 1.25g茚三酮溶于30ml冰醋酸和20ml6mol/L磷酸中，搅拌加热（70℃）溶解，贮于冰箱中；2.3％磺基水杨酸：3g磺基水杨酸加蒸馏水溶解后定容至100ml；3. 冰醋酸；4. 甲苯。
三、实验步骤1. 标准曲线的绘制（1）在分析天平上精确称取25mg脯氨酸，倒入小烧杯内，用少量蒸馏水溶解，然后倒入250ml容量瓶中，加蒸馏水定容至刻度，此标准液中每ml含脯氨酸100μg。
（2）系列脯氨酸浓度的配制取6个50ml容量瓶，分别盛入脯氨酸原液0.5，1.0，1.5，2.0，2.5及3.0ml，用蒸馏水定容至刻度，摇匀，各瓶的脯氨酸浓度分别为1，2，3，4，5及6μg/ml。
实验三十六 植物体内游离脯氨酸的测定,更改
实验三十六植物体内游离脯氨酸的测定,更改本实验旨在测定植物体内游离脯氨酸的含量。
脯氨酸是一种常见的非蛋白氨基酸，在植物中广泛存在，具有调节植物生长和逆境适应等重要生理作用。
因此，了解植物体内的脯氨酸含量对于研究植物生长发育和逆境耐受机制具有很重要的意义。
实验所需材料：1. 植物样品（例如油菜籽、小麦、水稻等）2. 冰乙酸3. 丙酮5. 次氯酸钠6. 清水7. 去离子水8. 绝对乙醇9. 氯仿10. 水杨酸11. 毛细玻璃管12. 离心管13. 取样管14. 毒理性废物桶操作步骤：1. 取适当的植物材料，如茎或叶片，用清水洗净并晾干。
2. 将清洁的植物样品切成小片，并置于离心管中。
称取一定重量的样品，通常为0.5g。
3. 在样品中加入丙酮，使样品完全浸泡在溶液中。
放置室温下浸泡12小时，以提取植物中的游离脯氨酸。
4. 将提取的液体离心10分钟，将上清液取出并过滤，以去除残渣。
5. 将上清液分别转移入不同的试管中，备用。
6. 为了去除植物中的蛋白质、多酚和色素等干扰物，需要加入一定量的三氯乙酸。
加入三氯乙酸后，样品变成了米黄色混浊液。
7. 将加入三氯乙酸后的样品冷藏4℃下静置60分钟，使游离脯氨酸沉淀。
离心5分钟，将上清液放出并倒掉。
8. 向沉淀中加入10ml冰乙酸，使其彻底溶解。
在加入冰乙酸时需小心，避免冲击。
然后离心5分钟，取上清液进行后续检测。
9. 取出一定量的上清液，加入等量的氯仿。
深橙色的游离脯氨酸会迅速转移到氯仿层，并形成清晰的分界线。
10. 将氯仿层转移入干燥的试管中，加入少量水杨酸溶液，并充分振荡。
待其完全混合后，待其沉淀，即可进行下一步检测。
11. 将上述样品溶液分别取出20μl，分别加入已经标定好的质谱仪或高效液相色谱仪中。
12. 高效液相色谱仪以270nm来检测并分析样品中的脯氨酸含量。
质谱仪则将游离脯氨酸质谱信号转换成游离脯氨酸含量。
实验注意事项：1. 在实验过程中，所有的器具和溶液需严格按照实验要求进行洗涤和消毒。
植物体内游离脯氨酸含量的测定(精)
实验20 植物体内游离脯氨酸含量的测定一、原理当植物缺水时体内的脯氨酸含量增加。
植株体内脯氨酸含量在—定程度上反映了植株体内的水分情况，因而可以作为植物缺水情况的参考性生理指标。
用人造沸石在 pH 1~7 范围内振荡溶液，可除去干扰的氨基酸或使不与茚三酮反应（如甘氨酸、谷氨酸、天冬氨酸、丙氨酸、缬氨酸、胱氨酸、苯丙氨酸、精氨酸等），脯氨酸与茚三酮试剂呈显色反应，其含量与颜色深浅成正相关，可用分光光度计测定。
此法有专一性。
二、实验材料、试剂与仪器设备（一）实验材料植物叶片。
（二）试剂• 80%乙醇。
• 人造沸石。
• 活性炭。
4 ．茚三酮试剂：将 2.50 g 茚三酮于 60 mL 冰醋酸和 40 mL 6 mol/L 磷酸中，加热（ 70 ℃）溶解。
试剂至少在 24 小时内稳定。
5 ．脯氨酸标准液：准确称取 25 mg 脯氨酸溶于少量 80 % 乙醇中，再用蒸馏水定容至 250 mL ，其浓度为100 μg/mL 。
再取此液 10 mL ，用蒸馏水稀释至 100 mL ，即成10 μg/mL 的脯氨酸标准液。
（三）仪器设备分光光度计，水浴锅，移液管，容量瓶，冰醋酸，仪器药品，离心机，烧杯，研钵，试管，恒温水浴三、实验步骤1 ．绘制标准曲线吸取脯氨酸标准母液 0 、 0.2 、 0.4 、 0.8 、 1.2 、 1.6 、 2.0 mL 分别放入 7 支具塞刻度试管，分别加入蒸馏水至 2.0 mL, 其脯氨酸含量分别为0 、 2.0 、 4.0 、 8.0 、 12.0 、 16.0 、20.0 μg 。
分别吸取上述标准溶液 2 mL ，加冰醋酸 2 mL, 茚三酮试剂 2 mL 加入试管中，混匀后加玻璃球塞，在沸水浴中加热 15 min 。
用分光光度计于波长 515 nm 下进行比色测定，以零浓度为空白对照。
将测定结果以脯氨酸浓度为横坐标，以吸光度为纵坐标作标准曲线。
2. 植株样品液的提取选取植株功能叶片 2 g ，用 3 mL 80 % 乙醇研磨（放少许石英砂）成浆状。
植物中脯氨酸含量的测定
植物中脯氨酸含量的测定实验目的：测定不同植物中脯氨酸的含量，并比较它们之间的差异。
实验原理：脯氨酸是一种非必需氨基酸，广泛存在于植物中，具有多种生物学功能。
在光合作用过程中，植物体内光合色素的降解产物中可以生成脯氨酸。
本实验使用比色法对不同植物中脯氨酸的含量进行测定。
实验步骤：1.收集不同植物的叶片样品，如红细胞苔藓、菠菜和小麦。
2.将收集到的样品冷冻在液氮中。
3.将样品取出，立即用离心机将其制成细胞匀浆。
4.在一个试管中加入适量的离心细胞匀浆，再加入几滴三氯乙酸，充分混合。
5.离心测得脯氨酸在样品提取液中的浓度。
6.制备标准曲线，将一系列不同浓度的脯氨酸溶液与苏丹黑R混合，测量吸光度。
7.根据标准曲线计算出各样品提取液中脯氨酸的浓度。
实验结果：以菠菜、小麦和红细胞苔藓为样品进行测定得到如下结果：菠菜中的脯氨酸含量为0.27 mg/g。
小麦中的脯氨酸含量为0.15 mg/g。
红细胞苔藓中的脯氨酸含量为0.08 mg/g。
讨论与结论：根据实验结果，可以看出不同植物中的脯氨酸含量存在差异。
菠菜中的脯氨酸含量最高，小麦次之，红细胞苔藓最低。
这可能是由于植物的基因差异、生长环境、生长阶段等因素导致的。
脯氨酸作为一种抗氧化物质和氮源，对植物的生长发育、抗逆性等都有重要影响。
因此，研究不同植物中脯氨酸含量的差异，对于了解植物的生理功能及其适应策略具有一定意义。
实验中使用的比色法测定脯氨酸含量的方法简便、快速，并且可以同时测定多个样品。
然而，该方法在样品预处理过程中会导致一定的失真，且对其他物质的干扰较大。
因此，在进行进一步的研究时，需结合其他方法进行验证。
注：以上为生成的实验报告假象，并非真实数据。
植物体内游离脯氨酸含量的测定
目的意义植物在正常条件下游离脯氨酸（proline，Pro）含量很低，但在干旱、高温、低温、盐碱、水涝等逆境条件下便会大量积累，并且积累指数与植物的抗逆性呈正相关关系。
因此，脯氨酸可作为植物抗逆性的一项生化指标，测定其含量也成为抗性生理研究的重要内容之一。
本实验的目的是掌握游离脯氨酸含量的测定方法、原理及操作技术。
一、酸性茚三酮法（一）原理植物体内的氨基酸只有脯氨酸能与酸性茚三酮发生反应，生成稳定的红色产物。
该产物在515nm有一最大吸收高峰，其吸收值与脯氨酸的含量呈直线关系。
因此，样品中的脯氨酸含量可用酸性茚三酮法测定。
除脯氨酸外，酸性和中性氨基酸不能与酸性茚三酮形成红色产物，碱性氨基酸对这一反应只有轻度干扰，在同类样品的测定中可忽略不计，在不同样品的测定中可加入人造沸石排除这种干扰。
（二）实验材料、仪器与试剂1. 实验材料：正常生长与经逆境处理的植物茎、叶、穗等器官或组织。
2. 仪器：分光光度计、分析天平、离心机、温箱、冰箱、移液管、容量瓶、剪刀、镊子、纱布、研钵、漏斗、滤纸、具塞刻度试管、量筒、培养皿等。
3. 试剂：（1）酸性茚三酮试剂：称取重结晶茚三酮放入烧杯，加冰醋酸60mL、6mol·L-1磷酸40mL 于70℃下溶解，冷却后装入棕色瓶内贮于4℃冰箱中，24h内稳定。
现用现配。
（2）100μg·mL-1脯氨酸母液：精确称取脯氨酸溶于少量80％乙醇中，用蒸馏水定容至100mL。
（3）其他试剂：人造沸石、活性炭粉、冰醋酸、80％乙醇。
（三）操作步骤1. 标准曲线制作：（1）取7个50mL容量瓶，分别放入脯氨酸母液、、、、、、，用蒸馏水定容至刻度，摇匀，各瓶的脯氨酸浓度分别为、、、、、、μg·mL-1。
（2）另取具塞刻度试管8只（0～7号），0号加入2mL蒸馏水，1～7号分别加入不同浓度的标准系列各2mL，再分别加入冰醋酸2mL和茚三酮试剂2mL，充分摇匀，加盖，沸水浴10～15min。
植物的抗性(低温、高温)评价测定实验方法
植物的抗性（低温、高温）评价测定实验方法（张平贤收集）实验一植物体内游离脯氨酸含量的测定一、目的在逆境条件下（旱、热、冷、冻），植物体内脯氨酸的含量显著增加，植物体内脯氨酸含量在一定程度上反映了植物的抗逆性，抗旱性强的品种积累的脯氨酸多。
因此测定脯氨酸含量可以作为抗旱育种的生理指标。
另外，由于脯氨酸亲水性极强，能稳定原生质胶体及组织内的代谢过程，因而能降低冰点，有防止细胞脱水的作用。
在低温条件下，植物组织中脯氨酸增加，可提高植物的抗寒性，因此，亦可作为抗寒育种的生理指标。
二、原理磺基水杨酸对脯氨酸有特定反应，当用磺基水杨酸提取植物样品时，脯氨酸便游离于磺基水杨酸溶液中。
然后用酸性茚三酮加热处理后，茚三酮与脯氨酸反应，生成稳定的红色化合物，再用甲苯处理，则色素全部转移至甲苯中，色素的深浅即表示脯氨酸含量的高低。
在520nm波长下测定吸光度，即可从标准曲线上查出脯氨酸的含量。
三、材料、仪器及试剂1. 材料：植物叶片。
2. 仪器：分光光度计；电子分析天平；离心机；小烧杯；普通试管；移液管；注射器；恒温水浴锅；漏斗；漏斗架；滤纸；剪刀；洗耳球。
3 .试剂及配制：2.5﹪酸性茚三酮溶液配制：将1.25g茚三酮溶于30ml冰醋酸和20ml 6mol·L －1磷酸中，搅拌加热（70℃）溶解，贮于4℃冰箱中,2-3日有效。
3％磺基水杨酸配配制：3g磺基水杨酸加蒸馏水溶解后定容至100ml。
10μg·ml-1脯氨酸标准母液配制：精确称取20mg脯氨酸，倒入小烧杯内，用少量蒸馏水溶解，再倒入200ml容量瓶中，加蒸馏水定容至刻度（为100μg·ml －1脯氨酸母液），再吸取该溶液10ml, 加蒸馏水稀释定容至100ml, 即为10μg·ml-1脯氨酸标准液。
100μg·ml－1脯氨酸母液:称10mg脯氨酸溶于少量的乙醇中，用蒸馏水定容至100ml冰醋酸；甲苯。
四、实验步骤1、脯氨酸标准曲线的制作1.1取6支试管，编号，按下表配制每管含量为0～12μg的脯氨酸标准液。
植物生理学实验七
四 实验步骤
1．脯氨酸标准曲线制作：按下表操作
管号 标准脯氨酸/ml
0
1
2
3
4
5
6
0
0.2 0.4 0.8 1.2 1.6 2.0
H2O/ml
2.0 1.8 1.6 1.2 0.8 0.4 0
冷却，向各仪管器加入设4m备l甲苯：，分充分光震荡光，度以萃计取红，色水物质浴，静锅止，待分试层后管吸，收甲苯层以0号管为对照在520nm下比色，得吸光度值。
冷却，向各管加入4ml甲苯，充分震荡，以萃取红色物质，静止待分层后吸收甲苯层以0号管为对照在520nm下比色，得吸光度值。
学实习验测 七定植脯试物氨体剂酸内含游:1量离的脯基2氨本.酸5原含%理量和的酸方测法性定。茚三酮显色液：冰乙酸和 6M磷酸以3:2混合，
在酸性条件下，脯氨酸与茚三酮反应生成稳定的红 色缩合物，此缩合物在520nm处有最大吸收峰，可以用 分光光度法测定。
三 主要仪器、试剂、实验材料 学习测定脯氨酸含量的基本原理和方法。
茚三酮的用量与脯氨酸的含量相关. 2 甲苯，3%磺基水杨酸溶液。 5g，加5ml3%磺基水杨酸研磨，匀浆移至离心管中，在沸水浴中提取10min，（提取过程中要经常摇动），冷却后3000r/min离心 10min。 三 主要仪器、试剂、实验材料
式中：C ：由标准曲线上查得的脯氨酸的质量，μg
采W 用：磺样基品水质杨量酸，提g取植作物体为内溶的游剂离脯进氨行酸，配不仅置大，大减搅小了拌其他加氨热基酸（的干低扰于，快7速0简℃便，）而溶且不解受样，品状冷态却（干后或鲜置样）限制。
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实验步骤： 实验步骤：
1、准备实验材料
提前7-10天培养小麦材料并根据实验目的对其分组处理， 以备后用。 小麦种子黑暗中25℃下用蒸馏水浸泡24h,使其充分吸涨， 然后将吸涨的种子置于培养皿中黑暗25℃下萌发48h。将萌发 一致的种子播种于培养皿中,用1/2的Hoagland营养液培养. 材料在第一片新叶完全展开后分为两组，第一组作为对 材料在第一片新叶完全展开后分为两组，第一组作为对 处理组， 继续浇灌1/2Hoagland溶液；第二组为 溶液； 照,继续浇灌 继续浇灌 溶液 第二组为NaCl处理组，浇灌 处理组 溶液;继续培养三天后 含0.8%NaCl的1/2Hoagland溶液 继续培养三天后，取地上部 的 溶液 继续培养三天后， 分以备实验用。 分以备实验用。
3、NaCl胁迫对小麦脯氨酸含量的影响 、 胁迫对小麦脯氨酸含量的影响
分别取对照和Ｎ 处理的小麦幼苗的地上部分 处理的小麦幼苗的地上部分（ 分别取对照和ＮaCl处理的小麦幼苗的地上部分（芽鞘 和叶子） 磺基水杨酸５ 研磨提取 研磨提取， 和叶子）0.3g，用３%磺基水杨酸５ml研磨提取，匀浆移 ， 磺基水杨酸 分钟， 人造沸石充 至试管中， 沸水浴中提取10分钟 加入0.5g人造沸石充 人造沸石 至试管中，在沸水浴中提取 分钟，加入 分震荡，冷却后转移至离心管中， 离心10min， 分震荡，冷却后转移至离心管中，3000r/min离心 离心 ， 取上清液待测。 取上清液待测。 各取对照和Ｎ 处理的提取上清液２ ， 处理的提取上清液 各取对照和ＮaCl处理的提取上清液２ml，分别加入 蒸馏水， 冰醋酸和 酸性茚三酮试剂， ２ml蒸馏水， １ml冰醋酸和３ml２.５ %酸性茚三酮试剂， 蒸馏水 冰醋酸 ２ ５ 酸性茚三酮试剂 与上述制作标准曲线一样进行显色，萃取和比色， 与上述制作标准曲线一样进行显色，萃取和比色，最后从 标准曲线中查得脯氨酸含量。按照公式计算,植物体内 植物体内脯氨 标准曲线中查得脯氨酸含量。按照公式计算 植物体内脯氨 酸含量（ 其中Ａ 酸含量（ug/g）=４A×２.５/0.3,其中Ａ为查表所得的脯氨 ） ４ × ５ 其中 酸。
植物体内游离脯氨酸含 量的测定
实验目的： 实验目的：
1、学习脯氨酸含量测定方法； 2、研究盐胁迫等逆境对植物体内脯 氨酸含量的影响。
实验原理： 实验原理
胁迫条件下植物体内脯氨酸大量积累，而且胁 迫时间越长,积累的脯氨酸越多；因此植物体内的脯 氨酸含量在一定程度上反映了植物受胁迫影响的程 度，可作为植物对逆境响应的一个参考指标。 在酸性条件下，茚三酮和脯氨酸反应，生成红 色化合物，此产物在520nm波长下具有最大吸收峰， 可用分光光度计测定，此法具有专一性。在pH1-7时 用人造沸石可以除去一些干扰的氨基酸。
注意事项：
•配置的酸性茚三酮溶液仅在24h内稳定，因此最好 现用现配； •提取、反应要充分； •离心前必须平衡； •甲苯有毒，需格外小心。
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仪器与试剂：
1、实验试剂：
３%磺基水杨酸，甲苯，冰醋酸，人造沸石， 酸性茚三酮试剂（25g茚三酮溶于60ml冰醋酸和40ml 6mol/L磷酸中,加热（70℃）溶解。常温保存期24h，冰箱中保存 48h）， 标准脯氨酸溶液（10mg脯氨酸溶于100ml80％乙醇中，浓度 为100ug/ug/ml脯氨酸配置成 、0.5、1.0、5、10、20µg/ml 脯氨酸配置成0、0.5、1.0、 10、20µ 脯氨酸配置成 一系列浓度的标准溶液。取标准溶液各2ml，加入2ml３ 一系列浓度的标准溶液。取标准溶液各2ml，加入2ml３%磺 2ml 2ml 基水杨酸、 ml冰醋酸和 ml茚三酮试剂于加塞试管中， 冰醋酸和３ 茚三酮试剂于加塞试管中 基水杨酸、１ml冰醋酸和３ml茚三酮试剂于加塞试管中，充 分混匀后在沸水浴中加热显色40min，冷却后加入４ml甲苯 沸水浴中加热显色40min 分混匀后在沸水浴中加热显色40min，冷却后加入４ml甲苯 盖好盖子充分震荡，待其静置分层 静置分层后 吸取红色甲苯相， 盖好盖子充分震荡，待其静置分层后，吸取红色甲苯相，于 520nm测定OD值 值为纵坐标， 波长520nm测定OD 值为纵坐标 波长520nm测定OD值，以OD值为纵坐标，脯氨酸浓度 为横坐标绘制标准曲线。 （ µg/ml ）为横坐标绘制标准曲线。