遗传学实验报告
遗传实训报告
一、实训目的通过本次遗传实训，使我对遗传学的基本理论、实验方法及实验技能有更深入的了解，提高实验操作能力，培养严谨的科学态度和团队合作精神。
二、实训内容1. 遗传学基本理论（1）基因与DNA：了解基因的概念、结构、功能及与DNA的关系。
（2）遗传规律：掌握孟德尔遗传规律、染色体遗传规律及基因重组等基本遗传规律。
（3）遗传咨询：了解遗传咨询的概念、意义及遗传咨询的方法。
2. 实验方法与技能（1）DNA提取：学习DNA提取的原理、方法及操作步骤。
（2）PCR扩增：掌握PCR扩增的原理、操作步骤及注意事项。
（3）基因测序：了解基因测序的基本原理、方法及应用。
三、实训过程1. 实验一：DNA提取（1）原理：利用细胞破碎、蛋白质分解、DNA沉淀等步骤，从细胞中提取DNA。
（2）步骤：①细胞破碎：将植物细胞置于研钵中，加入适量液氮，充分研磨。
②蛋白质分解：加入适量SDS、蛋白酶K等试剂，充分混匀。
③DNA沉淀：加入适量饱和NaCl溶液，充分混匀，离心。
④DNA溶解：将沉淀溶解于适量TE缓冲液。
2. 实验二：PCR扩增（1）原理：利用DNA聚合酶在特定引物引导下，按照模板DNA序列合成新的DNA 链。
（2）步骤：①设计引物：根据目的基因序列设计特异性引物。
②配制PCR反应体系：加入模板DNA、引物、dNTPs、Taq酶等。
③PCR反应：进行94℃变性、55℃退火、72℃延伸等循环。
④产物检测：通过琼脂糖凝胶电泳检测PCR产物。
3. 实验三：基因测序（1）原理：利用Sanger测序法，通过终止子（ddNTPs）与正常dNTPs竞争，产生不同长度的DNA片段，再通过毛细管电泳分离，得到DNA序列。
（2）步骤：①构建克隆：将目的基因插入载体，转化大肠杆菌。
②提取质粒：从转化后的细菌中提取质粒。
③测序：将质粒DNA进行Sanger测序。
四、实训结果与分析1. 实验一：DNA提取成功提取了植物细胞的DNA，经电泳检测，DNA条带清晰。
遗传学实习报告总结
遗传学实习报告总结一、前言遗传学是生物学的一个重要分支，研究生物体的遗传现象、遗传规律和遗传信息的传递过程。
通过本次遗传学实习，我对遗传学的基本原理和实验技术有了更深入的了解，同时也提高了自己的实践操作能力。
以下是我在实习过程中的总结和体会。
二、实习内容1. 观察植物细胞有丝分裂通过显微镜观察洋葱根尖细胞有丝分裂，了解有丝分裂的过程和特点。
在观察过程中，我学会了使用显微镜、制作临时装片、染色等技巧。
观察结果表明，有丝分裂是细胞分裂的一种方式，具有周期性、有序性和稳定性。
2. 基因重组实验进行基因重组实验，将目的基因插入到载体DNA中，通过转化剂将重组DNA导入到大肠杆菌中，筛选出含有目的基因的转化菌。
实验中，我掌握了PCR扩增、DNA连接、转化等关键技术，了解了基因重组的基本原理。
3. 遗传连锁分析利用遗传连锁分析方法，研究两个基因之间的遗传关系。
通过实验，我学会了使用遗传连锁分析软件，解读遗传连锁图谱，推断基因间的距离和连锁关系。
4. 突变体的筛选与鉴定利用化学物质诱导突变，筛选出具有新性状的突变体，并通过PCR、序列分析等技术进行鉴定。
在此过程中，我掌握了突变体的筛选方法，了解了基因突变的特点。
三、实习收获1. 提高了实验操作能力：在实习过程中，我参与了多个实验，掌握了遗传学基本实验技术，如显微镜观察、染色、PCR、DNA连接、转化等。
2. 加深了对遗传学理论的理解：通过实验，我将抽象的遗传学理论转化为具体的操作过程，从而更加深入地理解了遗传学的本质和内涵。
3. 培养了科研思维：在实习过程中，我学会了如何设计实验、分析实验数据、解决实验中遇到的问题，从而培养了科研思维和解决问题的能力。
4. 增强了团队协作能力：在实习过程中，我与同学们共同完成实验，互相学习、交流，从而增强了团队协作能力。
四、实习体会本次遗传学实习让我受益匪浅，不仅提高了自己的实践操作能力，还对遗传学理论有了更深入的理解。
同时，实习过程中的团队协作让我更加懂得如何与人沟通、共同进步。
遗传学探究实验报告
一、实验目的通过本实验，了解遗传学的基本原理，掌握遗传实验的基本操作，观察和记录实验现象，分析遗传规律，培养科学实验的严谨态度和观察能力。
二、实验原理遗传学是研究生物体遗传现象和遗传规律的科学。
本实验主要涉及孟德尔的两大遗传定律：分离定律和自由组合定律。
实验通过观察杂交后代的表现型比例，验证遗传规律。
三、实验材料与试剂1. 实验材料：玉米种子、豌豆种子、红三叶草种子等。
2. 试剂：清水、蒸馏水、酒精、碘液、稀盐酸等。
四、实验步骤1. 玉米实验（1）取玉米种子，分别种植在两个培养皿中，分别标记为A组（雄性）和B组（雌性）。
（2）待玉米植株长到一定高度，分别进行自交和杂交。
（3）观察并记录A组和B组的杂交后代的表现型比例。
2. 豌豆实验（1）取豌豆种子，分别种植在两个培养皿中，分别标记为C组（母本）和D组（父本）。
（2）分别进行正交和反交。
（3）观察并记录C组和D组的杂交后代的表现型比例。
3. 红三叶草实验（1）取红三叶草种子，分别种植在两个培养皿中，分别标记为E组（雄性）和F 组（雌性）。
（2）分别进行自交和杂交。
（3）观察并记录E组和F组的杂交后代的表现型比例。
五、实验结果与分析1. 玉米实验结果与分析（1）A组自交：F1代中，黄色与绿色的比例为3:1。
（2）B组自交：F1代中，黄色与绿色的比例为3:1。
（3）A组与B组杂交：F1代中，黄色与绿色的比例为1:1。
结果表明，玉米的黄色和绿色基因遵循孟德尔的分离定律。
2. 豌豆实验结果与分析（1）C组正交：F1代中，黄色与绿色的比例为3:1。
（2）C组反交：F1代中，黄色与绿色的比例为3:1。
结果表明，豌豆的黄色和绿色基因遵循孟德尔的分离定律。
3. 红三叶草实验结果与分析（1）E组自交：F1代中，红色与绿色的比例为3:1。
（2）F组自交：F1代中，红色与绿色的比例为3:1。
（3）E组与F组杂交：F1代中，红色与绿色的比例为1:1。
结果表明，红三叶草的红色和绿色基因遵循孟德尔的分离定律。
遗传学实验报告
遗传学实验报告引言：遗传学是生物学的一个重要分支，研究基因在遗传传递中的作用以及对个体特征的影响。
本实验旨在通过分析果蝇的遗传实验，探讨基因的传递规律，并从实验中得出相关结论。
实验设计：本实验选取果蝇作为模型生物，利用果蝇的短世代时间和易于培养的特点，进行杂交实验。
我们选取具有不同表型的果蝇进行交配，观察其后代表型的分布情况，并进行相关分析。
实验方法：1. 实验材料准备：准备实验所需的果蝇品系、实验器材和培养基。
2. 交配组合设计：选取一对表型明显不同的果蝇品系，如白眼与红眼果蝇。
3. 建立交配繁殖群：将白眼果蝇与红眼果蝇分别放入两个培养瓶中，确保他们单独繁殖。
4. 杂交交配操作：利用显微镜和细管将白眼果蝇和红眼果蝇交叉配对。
交配后的果蝇置于培养基中繁殖。
5. 后代分析：观察并记录后代果蝇的表型特征，统计不同表型的数量，并绘制相关图表。
6. 数据分析：采用适当的统计方法，对实验结果进行数据分析，得出结论。
实验结果：通过实验观察和数据统计分析，我们得出以下结论：1. 在交配中，果蝇的表型特征以一定的比例遗传给后代。
例如，白眼果蝇与红眼果蝇杂交后的后代，表现出红眼与白眼的混合表型。
2. 遗传规律中可能存在显性和隐性基因的相互作用。
有些特征可能需要两个显性基因才能表现出来，而有些特征只需要一个显性基因。
这也解释了为什么在交配后代中，会出现隐藏的表型。
讨论：本实验通过果蝇的杂交实验，解释了遗传学中的一些基本原理。
对于基因的传递规律和表型特征的形成所起的作用有了更深入的认识。
通过观察后代果蝇的表型特征，我们可以更好地理解基因在遗传中的作用和表现方式。
此外，实验中的数据分析也提醒我们关注基因的变异和突变。
通过观察果蝇后代中的异常表型，可以了解到不同基因之间的相互作用以及突变对遗传特征的影响。
结论：遗传学实验通过果蝇杂交的方式，揭示了基因的传递规律和表型特征的形成机制。
通过实验的分析和讨论，我们更深入地理解了基因的表达和遗传传递原理。
遗传学实验报告
实验名称：植物细胞有丝分裂染色体观察实验日期：2023年10月15日实验目的：1. 熟悉植物细胞有丝分裂染色体制备的基本原理和步骤。
2. 观察植物细胞有丝分裂过程中染色体的形态特征，了解有丝分裂各个时期的染色体变化。
3. 掌握显微镜操作技能，提高观察和分析能力。
实验原理：植物细胞有丝分裂是细胞分裂的一种重要方式，通过有丝分裂，细胞可以产生两个具有相同遗传信息的子细胞。
在有丝分裂过程中，染色体会经历前期、中期、后期和末期四个阶段，每个阶段染色体的形态和数目都有所不同。
通过对有丝分裂染色体的观察，可以了解植物细胞遗传信息的传递和细胞分裂的机制。
实验材料：- 洋葱根尖- 95%乙醇- 冰醋酸- 甲基绿-派洛宁染色液- 镊子- 显微镜- 载玻片- 盖玻片- 吸水纸实验步骤：1. 材料处理：将洋葱根尖洗净，放入盛有95%乙醇的烧杯中浸泡30分钟，然后用镊子取出根尖，放入盛有冰醋酸的烧杯中浸泡30分钟，以固定细胞。
2. 制片：将固定好的根尖放入盛有甲基绿-派洛宁染色液的烧杯中染色5分钟，然后用吸水纸吸去多余染液，滴加一滴蒸馏水，盖上盖玻片，制成临时装片。
3. 观察：在显微镜下观察洋葱根尖细胞有丝分裂染色体，记录不同时期染色体的形态特征。
4. 绘图：根据观察结果，绘制有丝分裂各个时期染色体的示意图。
实验结果：1. 前期：染色体开始凝缩，呈细长条状，染色质逐渐消失，核仁消失。
2. 中期：染色体高度凝缩，呈X形，位于细胞中央，纺锤丝连接着染色体的着丝粒。
3. 后期：染色体逐渐缩短变粗，纺锤丝断裂，染色体分离，分别移向细胞两极。
4. 末期：染色体到达细胞两极，开始解螺旋，细胞质分裂，形成两个子细胞。
实验结论：通过本次实验，我们成功制备了洋葱根尖细胞有丝分裂染色体标本，并观察到了有丝分裂各个时期染色体的形态特征。
实验结果表明，有丝分裂是植物细胞分裂的重要方式，染色体在有丝分裂过程中经历了复杂的形态和数目变化，保证了遗传信息的准确传递。
人类遗传实验报告
一、实验背景遗传学作为一门研究生物遗传现象和遗传规律的科学，在人类医学、农业、生物学等多个领域都有着重要的应用价值。
为了深入了解人类遗传现象，本实验选取了几个典型的遗传性状，通过观察、调查和分析，探讨这些性状的遗传规律。
二、实验目的1. 了解人类一些常见遗传性状的遗传方式。
2. 了解群体控制不同遗传性状的基因分布情况。
3. 培养学生运用遗传学知识解决实际问题的能力。
三、实验原理人类的遗传性状有许多是单基因性状，易于观察且具有典型的显隐性关系。
在一定群体中进行调查，可以了解其遗传方式。
根据哈代-温伯格平衡定律，若一个群体中某一位点的等位基因频率分别为p和q，则该位点上的基因型频率为p²、2pq和q²。
群体（随机交配）的基因频率和基因型频率的关系为：p + q = 1p² + 2pq + q² = 1四、实验对象某群体（如班级、社区等）五、实验用品1. 器材：玻璃棒、纱布块、乙醇棉球、镊子、量角器2. 试剂：溶液、浓度递减六、实验内容与步骤1. 卷舌实验（1）观察实验对象能否卷舌，并记录下来。
（2）统计各类型（能卷舌和不能卷舌）所占的百分比。
（3）根据统计结果，计算该群体中相应的基因频率和基因型频率。
（4）绘制系谱图，通过系谱分析其遗传方式。
2. 耳垂形状实验（1）观察家庭成员的耳垂形状，记录有耳垂和无耳垂的人数。
（2）统计各类型（有耳垂和无耳垂）所占的百分比。
（3）根据统计结果，计算该群体中相应的基因频率和基因型频率。
（4）绘制系谱图，通过系谱分析其遗传方式。
3. 皮肤颜色实验（1）观察实验对象皮肤颜色，记录深色和浅色皮肤的人数。
（2）统计各类型（深色皮肤和浅色皮肤）所占的百分比。
（3）根据统计结果，计算该群体中相应的基因频率和基因型频率。
（4）绘制系谱图，通过系谱分析其遗传方式。
4. 头发颜色实验（1）观察实验对象头发颜色，记录黑色、棕色和金色头发的人数。
遗传学实验报告总结
遗传学实验报告栀子花开5219751086生物有志班梦想实验学院实验1 植物有丝分裂染色体制备一、实验目的主要掌握有丝分裂染色体制片技术；了解有丝分裂各个时期染色体的特征。
二、实验原理各种生长旺盛的植物组织，如根尖、茎尖、愈伤组织等常进行着活跃的细胞分裂。
通过对材料进行适当的固定处理，酶解和染色，就可以在显微镜下观察到细胞内染色体的变化过程。
有丝分裂中期的染色体长度较短，具有典型的形态特征，易于记数和分析。
因此，在细胞的分裂过程中，进行药物或冰冻处理，可阻止纺锤体的形成，使细胞分裂停止在中期。
同时，对组织细胞进行酸性水解或酶解处理，降解细胞之间的果胶质和细胞的纤维素壁，使细胞易于散开。
三、实验材料、器具及试剂大麦、玉米及洋葱等根尖。
显微镜、水浴锅、镊子、载玻片、盖玻片、小瓶、酒精灯、滤纸等。
固定液：95％乙醇:冰醋酸＝3:1；染液：甲基改良品红；处理液：0.002M8-羟基喹林水溶液，0.075M KCl；酶解液：2.5％纤维素酶和2.0％果胶酶水溶液。
四、实验步骤步骤1：1、浸种催芽：取少许种子放入培养皿中，加水浸没，于30℃左右浸种1－2天。
当种子萌动时，把水倒去，在铺有湿滤纸的培养皿中催芽。
2、预处理：根长至0.5-1.0cm时切取根尖，投入0.002M8-羟基喹林水溶液中处理；18℃，1-1.5h。
3、前低渗：吸去预处理液，加入0.075M KCl，或水低渗处理10-30min。
4、固定：用95％乙醇:冰醋酸＝3:1固定30min以上，也可固定后放入4℃冰箱保存。
水洗3次，每次10min。
5、酶解：加入2.5％纤维素酶和2.0％果胶酶水溶液，在37℃酶解处理70－120min（根据软化程度而定）。
6、后低渗：倒去酶液后用蒸馏水冲洗2－3次，在水中停留30min以上，即可直接用于制片。
也可换入固定液保存。
7、火焰干燥制片：放2－3个根尖在载片上，加一小滴固定液，用镊子将根尖敲碎至浆状。
再滴2－3滴固定液，迅速用镊子夹住载片在酒精灯火焰上加热至着火，然后吹灭火焰。
遗传学实验报告植物基因组总DNA的分离
遗传学实验报告植物基因组总DNA的分离年级：专业：姓名：学号：日期：一、实验背景植物体的根、茎、叶、种子等部位都具有植物体全部的DNA（细胞的全能性），均可用来提取植物细胞总DNA，由于叶片的纤维、淀粉含量相对较少，且易于磨碎（液氮冷冻研磨或干燥后破碎机打碎），因此叶片是提取植物总DNA的理想材料。
相比于动物细胞，植物细胞具有细胞壁，因为提取时必须剧烈破碎，以破碎细胞壁。
而且植物细胞中，多糖、多酚类物质含量较高，不易去除，给植物总DNA的提取工作带来了困难。
广谱植物DNA小提试剂盒通常是利用可以与DNA结合的膜将DNA从植物细胞裂解液中提取出来，并通过洗脱液去除DNA与吸附柱之间的结合，将DNA洗脱下来。
相比传统的方法，DNA小提试剂盒耗时短，可以快速获得植物细胞总DNA。
二、实验目的1. 了解植物基因组DNA分离的原理和方法。
2. 掌握利用广谱植物DNA小提试剂盒分离植物基因组DNA的方法与技术。
三、实验材料、仪器与试剂：1. 实验材料：硅胶干燥的野牡丹叶片样本2. 实验仪器与用具：电子天平，破碎机，漩涡震荡仪，电泳仪，水浴锅，10μL、100μL和1000μL移液枪和枪头，金属小匙，高速离心机，凝胶成像仪。
3. 实验试剂和耗材：广谱植物DNA小提试剂盒（本次实验采用美基生物生产的试剂盒，包括：HiPure gDNA Mini Column、2mL收集管、PVP-40（聚乙烯吡咯烷酮 40）、Buffer PTL（裂解液）、Buffer PBD（结合液）、Buffer GW1（洗液1）、Buffer GW2（洗液2）、RNase A（核糖核酸酶A）、Protease Dissolve Buffer、Buffer AE（DNA洗脱液）），氯仿，异戊醇，无水乙醇，琼脂糖，1× TAE溶液，1.5mL和2mL离心管，GOLDVIEW，6×溴酚蓝，DNA ladder四、实验步骤：1. 在实验前，先根据要求，将PVP-40干粉加入Buffer PTL中并颠倒混匀（终浓度2%（W/V），以增加减少多酚类物质对DNA的损伤。
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专题一：植物专题实验一植物细胞有丝分裂的制片与观察摘要：本实验选取大蒜作为实验材料，通过对大蒜根尖的培养取得生长旺盛的植物分生组织，然后对根尖细胞进行前处理、固定、解离、染色、压片来观察细胞有丝分裂的全过程。
关键词：有丝分裂间期前期中期后期末期abstract: in this experiment, we chose allium sativum as the material. we got a lot of activity floristic cells through cultivating the roots of allium sativum. then we disposed the cells in order to observe the whole processes of the mitosis.key words: mitosis interphase prophase metaphase anaphase telopha 实验原理有丝分裂是植物体细胞进行的一种主要分裂方式。
有丝分裂的目的是增加细胞的数量而使植物有机体不断生长。
在有丝分裂过程中，细胞核内的物质能准确的进行复制，然后有规律的均匀分配到两个子细胞中去。
植物有丝分裂主要在根尖、节间、茎的生长点、芽及其他分生组织里进行。
将生长旺盛的植物分生组织经取材，固定、解离、染色、压片，可以观察到细胞有丝分裂的全过程。
实验用品大蒜（allium sativum 2n=16），carnoy固定液(由95%的乙醇和冰乙酸以3：1的比例配置)，1mol/l的hcl，石炭酸品红，水浴锅，显微镜，剪刀，矿泉水瓶，蒸馏水实验步骤1 生根、取材与固定采用水培法于暗处使大蒜生根，每天换水两次。
4天后，根长至2.0cm左右。
上午10：00用剪刀将根尖剪下，并直接放入固定液中固定，以保持细胞真实的生活状态,避免操作过程中对细胞生活状态的破坏。
本次实验固定时间为14h。
2 解离与水洗本次实验采用了酸解法使细胞散开。
将1mol/l的hcl放入60℃的恒温水浴锅中,将固定好的根尖放入.解离4min。
用清水冲洗解离后的材料5次，洗去表面的hcl，并引起后低渗，利于压片。
3 染色、压片与镜检、拍照截取根尖上分生组织1/3左右于载玻片上，用镊子将分生组织碾碎；滴上石炭酸品红染色5min。
染完后，盖上盖玻片，用解剖针轻敲盖玻片几次，以增强细胞扩散程度。
实验结果通过上述实验方法获得了一系列分裂的照片，如图ⅰ-1所示。
从这一系列图片我们可以看到有丝分裂是一个连续的过程，各期的特征如下所述：间期（interphase）：图ⅰ-1(a)所示，有丝分裂间期染色体以染色质形式存在，染色质缠绕成丝状的无规线团。
前期（prophase）：图ⅰ-1(b)所示，染色体螺旋化，由无规线团逐渐变成比较清晰的染色体，核膜核仁消失。
中期（metaphase）：图ⅰ-1(c)所示，染色体在分裂中期有序地排列在赤道板上，数目清晰，是染色体形态观察的最佳时期。
后期（anaphase）：图ⅰ-1(d)所示，姐妹染色单体开始分离并在纺锤丝的牵引下移向两极。
末期（telophase）：图ⅰ-1(e)所示，染色体继续走向两极，同时染色体也开始解螺旋，由染色体状态逐渐变为无序线团，核膜核仁复现。
讨论1、大蒜根尖的固定时间在上午9：00－11：00和下午15：00－17：00为最佳。
因为此时是大蒜分裂的高峰期。
2、解离的时间要适当，大约4min，因为解离时间的长短与实验结果的好坏有非常直接的影响，时间过长，则不仅破坏分生组织之间的果胶与纤维素等物质，也使分生组织与伸长区脱离，染色效果将会降低，而过短，则又达不到分离细胞的结果。
3、在切取根尖时大约切从根尖开始算往上1.5mm左右，若切得太短，则只会看到成熟的根冠细胞，在视野中看不到分裂期细胞；若切得太长，则会看到有很多伸长区的成熟细胞，从而影响实验结果。
4、染色时间不宜过长或过短，染色过深或过浅都会影响最终的实验结果。
5、压片时用拇指从上往下垂直用力且要避免载玻片与盖玻片之间的滑动，否则会使细胞之间重叠，影响观察。
6、观察时先用低倍镜找到分裂相的位置，再换高倍镜观察实验二植物细胞减数分裂的制片与观察摘要：本实验选取玉米雄花作为实验材料，首先将已固定好雄花的花药剥离出来，然后通过对花粉母细胞进行解离、染色、压片来观察细胞减数分裂的全过程。
关键词：减数分裂细线期偶线期粗线期双线期终变期abstract: in this experiment, we chose zea mays as the material. we got a lot of cells in meiosis. then we disposed the cells in order to observe the whole processes of the meiosis.key words: meiosis leptonema zygonema pachynema diplonema diakineses 实验原理减数分裂是生物在形成配子时的一种特殊的分裂方式，是在性母细胞中进行的。
减数分裂产生的每个子细胞染色体数目减少一半。
并且第一次分裂前期特别长，其变化特别复杂，包括同源染色体配对、交换与分离等。
实验用品玉米雄花(zea mays 2n=20)，carnoy固定液(由95%的乙醇和冰乙酸以3：1的比例配置)，铁矾，苏木精，恒温箱，冰乙酸，酒精灯，显微镜实验方法1、取材与固定（指导老师完成）采集处于减数分裂时期的玉米雄花，采集时间为上午8：30－10：30和下午2：00－4：00。
采集的雄花直接放入新配制的carnoy固定液中固定一周（中间换固定液两次）。
2、花药剥离减数分裂是同步分裂，由于每朵小花中的所有花药都处于同一时期，因此剥离的量要充足,以便在实验中能进行选择。
3、媒染、复染花药在不伤害花药的前提下，使用镊子与解剖针玻璃花药并放入4%硫酸高铁铵（铁矾）水溶液中进行媒染，时间为4－24h。
媒染后，彻底水洗除净花药表面的铁离子。
之后放入0.5%的苏木精中染4－24h。
在25℃温箱中进行。
染完后再次彻底水洗。
除去表面染料。
4、制片、镜检与拍照取一枚花药于载玻片上，滴上一滴45%冰乙酸，并在酒精灯上加热5秒钟。
材料加热之后，盖上盖玻片，用滤纸折叠成两层盖在盖片上，进行压片。
实验结果通过上述实验方法得到以下图ⅰ-2：讨论1、在花药剥离时要注意将颖片剥离干净，使用的镊子和解剖针不可伤害花药，否则花粉母细胞会从伤口处外流，影响实验效果2、在挑选花粉粒的时候，应挑选粒大且饱满的，粒小而瘪的花粉往往发育不良。
3、媒染时间不宜过长或过短，染色过深或过浅都会影响最终的实验结果。
4、压片时用拇指从上往下垂直用力且要避免载玻片与盖玻片之间的滑动，否则会使细胞之间重叠，影响观察。
5、观察时先用低倍镜找到分裂相的位置，再换高倍镜观察6、减数分裂过程是一个连续的过程，各时期之间没有明显的界限，只要符合这个时期的特征便可作为此时期的分裂相。
实验三植物细胞多倍体诱导的制片与观察摘要：本实验选取大蒜作为实验材料，通过在培养液中施加秋水仙素的方法培养大蒜根尖细胞从而对其进行多倍体诱导，然后对根尖细胞进行固定、解离、染色、压片来观察细胞染色体加倍后的分裂相。
关键词：多倍体秋水仙素abstract: in this experiment, we chose allium sativum as the material. we got a lot of activity floristic cells through cultivating the roots of allium sativum. then we put colchicine into the water. after about 36 hours, we disposed the polyploid cells in order to observe themselves. key words: polyploidy colchicine 实验原理多倍体是指细胞核内具有两个以上染色体组，它的产生出了自然发生外还可人工诱导。
诱导多倍体的方法有多种，本实验采用秋水仙素诱导。
它主要作用于细胞分裂过程中纺锤体的形成，使细胞分裂后期染色体不能分向两极而被阻截在中期，经过间期染色体复制，使染色体数目加倍。
实验用品大蒜（allium sativum 2n=16），carnoy固定液(由95%的乙醇和冰乙酸以3：1的比例配置，秋水仙素，1mol/l的hcl，石炭酸品红，水浴锅，显微镜，剪刀，矿泉水瓶，蒸馏水实验方法1、生根与秋水仙素处理采用水培法培养大蒜，直至根长约2.0cm。
向培养液中加入浓度为0.1％的秋水仙素，培养36～48h。
待根尖膨大时可取材固定。
2、固定、解离（同有丝分裂过程）3、制片取根尖分生组织一部分放在一洁净的载片上，先用解剖针把材料碾碎并铺展开，然后滴上一滴石炭酸品红染色5min，盖上盖片，进行压片。
实验结果通过以上实验方法，制取了图ⅰ-3。
（a） (b)图ⅰ-3大蒜的染色体图（白点示着丝点）图(a)：2n=16，是未加倍的大蒜细胞中的染色体。
图(b)：4n=32，是经秋水仙素加倍后的大蒜细胞染色体。
讨论1、染色体加倍的倍数多少与秋水仙素作用的时间有关。
若让染色体数目加倍，秋水仙素处理的时间应大于等于细胞的一个分裂周期。
如果浸泡的时间大于细胞周期的二倍，则会出现八倍体。
若感兴趣，可适当延长处理时间，观察实验结果。
2、不应该观察到32条染色体就认定此细胞为四倍体，因为染色体为2n细胞的分裂后期染色体数也为32条，此时的染色体不含姐妹染色单体。
而染色体为4n的细胞中期，含有32对姐妹染色单体。
3、若大蒜根尖细胞被加倍，其尖端部膨大，是认定细胞加倍的理由之一。
4、大蒜根尖的固定时间在上午9：00－11：00和下午15：00－17：00为最佳。
因为此时是大蒜分裂的高峰期。
5、解离的时间要适当，大约4min，因为解离时间的长短与实验结果的好坏有非常直接的影响，时间过长，则不仅破坏分生组织之间的果胶与纤维素等物质，也使分生组织与伸长区脱离，染色效果将会降低，而过短，则又达不到分离细胞的结果。
6、在切取根尖时大约切从根尖开始算往上1.5mm左右，若切得太短，则只会看到成熟的根冠细胞，在视野中看不到分裂期细胞；若切得太长，则会看到有很多伸长区的成熟细胞，从而影响实验结果。
7、染色时间不宜过长或过短，染色过深或过浅都会影响最终的实验结果。
8、压片时用拇指从上往下垂直用力且要避免载玻片与盖玻片之间的滑动，否则会使细胞之间重叠，影响观察。