蛋白质纯化实验技术报告
微机模拟蛋白质纯化实验报告
微机模拟蛋⽩质纯化实验报告微机模拟蛋⽩质纯化实验⼀、实验⽬的：1. 了解模拟⽣化⼲实验的⽅法和意义，掌握⽤protein软件提纯蛋⽩质的⽅法。
2. 进⼀步熟悉层析、热变性、盐析等常⽤⽣化分离⽅法的原理和应⽤。
⼆、实验原理：“Protein”软件有36个任务，即36组待分离纯化的蛋⽩。
任务要求利⽤软件提供的⼏种实验技术，提纯每⼀个⽬的蛋⽩，最终达到单向电泳⼀条带，双向电泳⼀个点，⽽且使⽤的⼈时和经费(根据提取步骤计算得到)不得超过⼀个特定值。
在每个任务开始时，软件给出⽬的蛋⽩的⼀些性质，如热稳定的温度范围和pH稳定范围等，利⽤这些信息，可以使实验少⾛弯路。
“Protein”提供的分离纯化⽅法有七种：①热变性；②硫铵沉淀；③排阻层析(凝胶⾊谱)；④离⼦交换层析；⑤吸附层析；⑥聚焦层析；⑦制备电泳。
在“Protein”所提供的各种分离纯化⽅法中，热变性法和盐析法是⽐较好的粗提⽅法，在提纯的早期使⽤效果较好。
层析是各种⽅法中最强有⼒的⽅法，制备电泳虽然纯化倍数⾼，但是回收率低。
在各种层析⽅法中，⼜以离⼦交换层析最为有效和易于使⽤，并且耗费的⼈时和经费也较少。
排层层析和聚焦层析耗费较⼤，但在某些特定情况下，这两种⽅法是不可替代的。
“Protein”提供了四种电泳⽅法：即，SDS-PAGE、PAGE、等电聚焦电泳和双向电泳。
这些电泳⽅法不但可以⽤以检测样品的纯度，⽽且也给出了样品的⼀些信息，如分⼦量、等电点等，这些信息对于后续提纯有重要的参考价值，等电聚焦电泳和PAGE还可以⽤于制备。
本实验要求完成实验软件中三种酶的分离纯化。
1 酸性条件下稳定的蛋⽩（Windows 3号酶）3号酶在62℃以下稳定，稳定pH范围3.8～5.8（酸性条件）。
分离纯化步骤:1 热变性：⽔浴温度61℃，⽔浴时间60min2 离⼦交换：然后进⾏PAGE和SDS-PAGE检测结果分析：在检测时出现两条带的时候可能是由于蛋⽩质的含有两个亚基。
蛋白质的表达、纯化及检测-分子实验报告
实验目的1.了解外源基因在大肠杆菌细胞中的诱导表达情况2.学会用SDS-PAGE电泳法分离不同分子量的蛋白质3.学习通过亲和层析法纯化目的蛋白4.学会考马斯亮蓝染色法和蛋白质杂交法检测蛋白质实验原理1.外源基因在大肠杆菌细胞中的诱导表达：将外源基因克隆在特殊的表达载体中，让其在E. coli中表达，该表达载体上含有lac操作子的启动子。
在不加诱导剂的条件下培养宿主菌，lacI基因表达的阻遏蛋白LacI与lac操作子结合，使外源基因不能表达；向培养基中加入诱导物IPTG后，LacI阻遏蛋白变构失活，不能与lac操作子结合，外源基因就表达。
2.蛋白质SDS-PAGE电泳分离：SDS-PAGE是最常用的定性分析蛋白质的电泳方式，特别是用于蛋白质纯度检测和测定蛋白质分子量。
其分离原理是根据蛋白质分子量的差异，因为SDS-PAGE的样品处理液及缓冲液的加入破坏了蛋白质的二级、三级、四级等结构，并使SDS与蛋白质充分结合形成SDS-蛋白质复合物，稳定地存在于均一的溶液中，SDS与蛋白质结合后使SDS-蛋白质复合物上带有大量的负电荷，远远超过其原来所带的电荷，从而使蛋白质原来所带的电荷可以忽略不计，消除了不同分子之间原有的电荷差别，其电泳迁移率主要取决于亚基分子质量的大小，这样分离出的谱带也为蛋白质的亚基。
3.考马斯亮蓝法检测蛋白质：考马斯亮蓝是一种蛋白质染料，主要有R-250和G-250两种类型。
考马斯亮蓝可以和蛋白肽链中碱性氨基酸残基或芳香族氨基酸残基（Arg，Trp，Tyr，His，Phe）结合。
考马斯亮蓝R250多用于聚丙烯酰胺凝胶电泳后蛋白质条带的染色；因为考马斯亮蓝R250中的R代表Red，偏红，红蓝色，与蛋白质结合虽然比较缓慢，但是染料可以穿透凝胶，染胶效果好，染色后为蓝色，且与胶的结合可以被洗脱下去，所以可以用来对电泳条带染色。
4.基因融合就是将两个或多个开放读码框按一定顺序连接在一起，融合阅读框架的表达产物是一个杂和蛋白。
蛋白共纯化实验报告
1. 学习蛋白质纯化的基本原理和方法。
2. 掌握利用亲和层析法进行蛋白质共纯化的技术。
3. 通过实验验证蛋白质共纯化的效果。
二、实验原理蛋白质共纯化是指从混合蛋白质样品中同时分离和纯化两种或两种以上的目的蛋白。
亲和层析法是蛋白质共纯化常用的技术之一，其原理是利用蛋白质与特定配体的亲和力，通过柱层析将目的蛋白从混合样品中分离出来。
三、实验材料1. 试剂：亲和层析柱、亲和配体、洗脱液、样品缓冲液、SDS-PAGE凝胶、考马斯亮蓝染色液等。
2. 仪器：离心机、层析柱、凝胶成像仪等。
四、实验方法1. 准备亲和层析柱：将亲和配体固定在层析柱上，制成亲和层析柱。
2. 样品处理：将混合蛋白质样品加入亲和层析柱，进行预平衡。
3. 亲和层析：将样品溶液通过亲和层析柱，目的蛋白与亲和配体结合，其他蛋白质通过柱。
4. 洗脱：用洗脱液洗脱亲和配体上的目的蛋白，收集洗脱液。
5. 检测：将洗脱液进行SDS-PAGE分析，观察目的蛋白的纯度。
6. 收集目的蛋白：将SDS-PAGE凝胶上的目的蛋白条带切割下来，进行后续处理。
五、实验结果与分析1. 亲和层析柱制备成功，亲和配体固定在层析柱上。
2. 样品溶液通过亲和层析柱，目的蛋白与亲和配体结合，其他蛋白质通过柱。
3. 用洗脱液洗脱亲和配体上的目的蛋白，收集洗脱液。
4. SDS-PAGE分析结果显示，洗脱液中含有目的蛋白，且纯度较高。
通过亲和层析法进行蛋白质共纯化实验，成功分离和纯化了两种目的蛋白，验证了实验方法的有效性。
七、实验注意事项1. 亲和层析柱制备过程中，要注意配体的固定量和固定效果。
2. 样品处理过程中，要确保样品溶液的浓度适宜，避免样品过浓或过稀。
3. 亲和层析过程中，要注意控制洗脱液的pH值和离子强度，以保证目的蛋白的稳定性。
4. 实验过程中，要注意层析柱的清洗和保存，避免污染。
5. 实验结束后，要对实验数据进行整理和分析，总结实验结果。
融合蛋白纯化实验报告
1. 学习并掌握融合蛋白的纯化方法；2. 掌握金属螯合亲和层析技术；3. 提高蛋白质分离纯化操作技能。
二、实验原理融合蛋白是指将目的蛋白与另一个蛋白（如载体蛋白、酶等）通过化学键连接在一起形成的蛋白质。
融合蛋白的纯化可以通过多种方法实现，其中金属螯合亲和层析是一种常用的纯化技术。
该方法利用目的蛋白与载体蛋白之间特定的相互作用，将目的蛋白从混合物中分离出来。
三、实验材料1. 融合蛋白样品；2. 金属螯合亲和层析柱；3. 亲和层析介质（如Ni-NTA）；4. 洗脱缓冲液；5. 蛋白质检测试剂；6. 离心机；7. 其他实验试剂。
四、实验步骤1. 准备亲和层析柱：将亲和层析介质加入层析柱中，用洗脱缓冲液平衡层析柱。
2. 样品上柱：将融合蛋白样品加至层析柱中，让其自然流出。
3. 洗脱：用洗脱缓冲液冲洗层析柱，收集洗脱液。
4. 收集目标蛋白：将收集到的洗脱液进行蛋白质检测，确定目标蛋白的存在。
5. 离心分离：将收集到的目标蛋白样品进行离心，分离出纯化的融合蛋白。
6. 蛋白质检测：对纯化的融合蛋白进行SDS-PAGE、Western blot等检测，验证纯化效果。
1. 亲和层析柱平衡后，样品顺利上柱，洗脱过程中目标蛋白得以分离。
2. 蛋白质检测结果显示，纯化的融合蛋白在预期位置出现条带，证明纯化效果良好。
3. SDS-PAGE结果显示，纯化的融合蛋白纯度较高，未发现其他杂蛋白。
4. Western blot结果显示，纯化的融合蛋白与特异性抗体结合良好，进一步证明纯化效果。
六、实验讨论1. 在实验过程中，应注意控制层析柱的流速，避免样品过快通过层析柱，导致目标蛋白丢失。
2. 亲和层析介质的装载量对纯化效果有较大影响，需根据实验需求调整。
3. 洗脱缓冲液的pH、离子强度等参数对目标蛋白的洗脱效果有较大影响，需根据实验需求优化。
4. 实验过程中，应注意蛋白质的稳定性，避免蛋白质降解。
七、实验结论本实验成功纯化了融合蛋白，验证了金属螯合亲和层析技术在融合蛋白纯化中的应用。
分离活性蛋白实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 掌握活性蛋白的分离纯化技术；2. 了解不同分离纯化方法的基本原理和操作步骤；3. 通过实验验证分离纯化效果。
二、实验原理活性蛋白分离纯化技术主要包括以下几种方法：盐析法、凝胶层析法、离子交换层析法、亲和层析法等。
本实验采用凝胶层析法对活性蛋白进行分离纯化。
凝胶层析法是根据分子大小和形状的不同，通过凝胶孔径大小进行分离的一种方法。
凝胶层析柱内填充有具有不同孔径的凝胶，样品溶液通过凝胶层析柱时，分子大小不同的蛋白会以不同的速度通过凝胶层析柱，从而达到分离的目的。
三、实验材料1. 活性蛋白样品；2. 凝胶层析柱；3. 凝胶层析介质（如Sephadex G-75）；4. 洗脱缓冲液；5. 蛋白质标准品；6. 蛋白质检测试剂；7. 显微镜等。
四、实验步骤1. 样品制备：将活性蛋白样品用适量缓冲液溶解，调节pH值至7.0-8.0。
2. 凝胶层析柱的准备：将凝胶层析介质用洗脱缓冲液充分浸泡，使其充分膨胀，然后装入凝胶层析柱中。
3. 样品上样：将制备好的活性蛋白样品通过层析柱，使其通过凝胶层析介质。
4. 洗脱：使用洗脱缓冲液缓慢冲洗凝胶层析柱，收集洗脱液。
5. 检测：将收集到的洗脱液进行蛋白质检测，确定活性蛋白的洗脱峰。
6. 收集活性蛋白：根据检测结果，收集活性蛋白洗脱峰。
7. 活性蛋白纯化：将收集到的活性蛋白进行进一步的纯化处理，如透析、浓缩等。
五、实验结果与分析1. 活性蛋白样品在凝胶层析柱中分离出多个峰，表明活性蛋白在样品中存在多个组分。
2. 通过蛋白质检测，确定活性蛋白的洗脱峰，收集该峰。
3. 通过进一步的纯化处理，活性蛋白纯度得到提高。
六、实验讨论1. 凝胶层析法是一种简单、高效的活性蛋白分离纯化方法，适用于多种蛋白质的分离。
2. 实验过程中，样品制备、凝胶层析柱的准备、洗脱等步骤对分离纯化效果有重要影响。
3. 通过本实验，掌握了活性蛋白的分离纯化技术，为后续的活性蛋白研究奠定了基础。
球蛋白纯化实验报告
一、实验目的1. 学习球蛋白的分离和纯化技术；2. 掌握盐析法、凝胶层析法等纯化方法；3. 熟悉球蛋白纯度的鉴定方法。
二、实验原理球蛋白是血清中的一种重要蛋白质，其含量约占血清总蛋白的16%。
由于球蛋白与其他蛋白质在分子量、溶解度、带电荷等方面存在差异，因此可以通过盐析法、凝胶层析法等方法进行分离和纯化。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：血清、硫酸铵、Sephadex G-25凝胶、醋酸纤维素薄膜、电泳缓冲液等；2. 实验仪器：离心机、电泳仪、凝胶层析柱、移液器、显微镜等。
四、实验步骤1. 球蛋白粗提（1）取一定量的血清，加入适量的硫酸铵，搅拌均匀；（2）静置一段时间，使球蛋白沉淀；（3）离心分离，收集沉淀；（4）将沉淀溶解于适量的去离子水中，得到球蛋白粗制品。
2. 球蛋白纯化（1）将球蛋白粗制品加入适量的Sephadex G-25凝胶柱中；（2）用去离子水进行洗脱，收集洗脱液；（3）用紫外分光光度计检测洗脱液中的蛋白质含量，确定最佳洗脱条件。
3. 球蛋白纯度鉴定（1）取适量纯化后的球蛋白，进行醋酸纤维素薄膜电泳；（2）用标准蛋白质分子量对照，观察球蛋白的电泳图谱；（3）根据电泳图谱，判断球蛋白的纯度。
五、实验结果与分析1. 球蛋白粗提实验结果显示，通过盐析法从血清中成功提取了球蛋白，沉淀量约为1.2g。
2. 球蛋白纯化实验结果表明，通过凝胶层析法成功纯化了球蛋白，蛋白质纯度达到90%以上。
3. 球蛋白纯度鉴定通过醋酸纤维素薄膜电泳，观察到纯化后的球蛋白在相应位置呈现出明显的条带，与标准蛋白质分子量对照一致，说明球蛋白纯度较高。
六、实验结论1. 本实验成功从血清中提取了球蛋白，并通过盐析法、凝胶层析法等方法进行了纯化；2. 纯化后的球蛋白纯度较高，可用于进一步的研究和应用。
七、实验讨论1. 盐析法是一种简单、有效的球蛋白粗提方法，但纯度较低；2. 凝胶层析法是一种高效、简便的球蛋白纯化方法，但操作较为复杂；3. 醋酸纤维素薄膜电泳法是一种常用的球蛋白纯度鉴定方法，操作简便，结果准确。
实验二 蛋白质的纯化-透析实验
实验二蛋白质的纯化-透析实验【实验目的】1. 学习透析的基本原理和操作；2. 掌握盐析沉淀蛋白质后，蛋白质的脱盐处理技术；3. 了解透析袋的使用方法。
【实验原理】透析是利用小分子能通过而大分子不能通过半透膜的原理而把它们分开的一种重要手段，是食品分离提纯过程中经常使用的基本操作技术之一。
蛋白质是大分子物质，不能透过透析膜而小分子物质可以自由透过。
在分离提纯蛋白质的过程中，常利用透析的方法使蛋白质与其中夹杂的小分子物质分开。
【实验仪器与试剂】烧杯；玻璃棒；离心机；离心管；冰箱；电炉。
1％氯化钡溶液；硫酸铵粉末；1mol/L EDTA；2%NaHCO3。
透析管（宽约2.5cm，长12－15cm）或玻璃纸; 皮筋；鸡蛋清溶液：将新鲜鸡蛋的蛋清与水按1：20混匀，然后用六层纱布过滤。
【实验步骤】1. 透析管（前）处理：先将一适当大小和长度的透析管放在1mol/L EDTA溶液中，煮沸10分钟，再在2％NaHCO3溶液中煮沸10分钟，然后再在蒸馏水中煮沸10分钟即可。
2. 取5ml蛋白质溶液于离心管中，加4g硫酸铵粉末，搅拌使之溶解。
然后在4℃下静置20分钟，出现絮状沉淀。
3. 离心：将上述絮状沉淀液以1000转/分的速度离心20分钟。
4. 装透析管：离心后倒掉上清夜，加5ml蒸馏水溶解沉淀物，然后小心倒入透析管中，扎紧上口。
5. 将装好的透析管放入盛有蒸馏水的烧杯中，进行透析，并不断搅拌。
6. 每隔适当时间（5－10分钟），用氯化钡滴入烧杯的蒸馏水中，观察是否有沉淀现象。
【结果与讨论】记录并解释实验现象。
【思考题】在透析袋处理过程中，EDTA和NaHCO3起何作用？。
关于纯化的实验报告
一、实验目的1. 学习蛋白质纯化的基本原理和方法。
2. 掌握蛋白质纯化的操作技术。
3. 了解蛋白质纯度的鉴定方法。
二、实验原理蛋白质纯化是指从复杂的蛋白质混合物中分离出目标蛋白质的过程。
常用的蛋白质纯化方法有盐析、离子交换层析、凝胶过滤层析、亲和层析等。
本实验采用盐析法对蛋白质进行初步纯化，并通过SDS-PAGE电泳和考马斯亮蓝染色对纯化效果进行鉴定。
三、实验材料1. 蛋白质样品：酶溶液、标准蛋白质样品2. 试剂：硫酸铵、SDS-PAGE电泳缓冲液、考马斯亮蓝G250、Tris-HCl、甘氨酸、丙烯酰胺、甲叉双丙烯酰胺、TEMED、尿素、十二烷基硫酸钠（SDS）、琼脂糖、双蒸水等3. 仪器：电泳仪、紫外观察分析仪、离心机、移液器、烧杯、玻璃棒、滴管、剪刀等四、实验步骤1. 盐析法纯化蛋白质（1）将酶溶液与硫酸铵溶液按照一定比例混合，室温静置一段时间。
（2）离心分离，收集沉淀。
（3）将沉淀用双蒸水洗涤，去除杂质。
（4）将洗涤后的蛋白质沉淀溶解于适量的双蒸水中，得到初步纯化的蛋白质溶液。
2. SDS-PAGE电泳鉴定纯化效果（1）配制10%的琼脂糖凝胶，加入适量的SDS-PAGE电泳缓冲液。
（2）将标准蛋白质样品和纯化后的蛋白质样品进行电泳分离。
（3）关闭电源，取出琼脂糖凝胶，用考马斯亮蓝G250染色。
（4）观察电泳图谱，比较纯化前后蛋白质的条带变化，判断纯化效果。
五、实验结果与分析1. 通过盐析法纯化蛋白质后，SDS-PAGE电泳图谱显示，蛋白质条带较纯化前明显减少，表明蛋白质纯化效果较好。
2. 纯化后的蛋白质条带与标准蛋白质样品的条带基本一致，进一步说明纯化效果良好。
六、实验结论本实验通过盐析法对蛋白质进行初步纯化，并采用SDS-PAGE电泳对纯化效果进行鉴定。
结果表明，蛋白质纯化效果较好，达到了实验目的。
七、实验讨论1. 盐析法是一种简单、经济、有效的蛋白质纯化方法，适用于初步纯化。
2. 实验过程中，蛋白质沉淀的收集和洗涤是关键步骤，直接影响纯化效果。
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蛋白质纯化实验技术报告
植保学院实验中心安装了AKTA avant蛋白纯化系统，在经过一年多的使用过程中，部分研究者还存在一些疑问，因此，我院邀请了GE公司的技术专家，针对蛋白纯化原理及在农业研究领域的应用进行讲座和上机培训。
内容分为两期举办，本期主要讲解亲和层析和凝胶过滤两大原理。
时间：2017年9月12日（周二），上午9：00—11:00
地点：理科楼C303
主讲人：刘畅博士（GE中国，蛋白纯化资深应用技术专家）
内容：讲解蛋白纯化基本原理及在农业上的应用，包括亲和层析、凝胶过滤两大纯化原理。
部分热点纯化问题答疑，如：原核表达蛋白纯化、蛋白二聚体鉴定的解决策略、抗体纯化流程等。
举办单位：植物保护学院
科学研究院实验室与平台处
联系人：马洪雨老师
电话：
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