关于人-鼠嵌合抗体制备的可行性

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人-鼠嵌合单链抗体的构建及其在大肠杆菌中的高效可溶性表达和发

人-鼠嵌合单链抗体的构建及其在大肠杆菌中的高效可溶性表达和发

关键词 人 源化嵌合抗体 ; s c F v ; 可溶性表达 ; 酶联 免疫吸附 ; 发酵条件优化
中 图分 类号 Q 7 8 文献标识码 A 文章编号 2 0 9 5—1 7 3 6 ( 2 0 1 6 ) 0 6— 0 0 0 1 — 0 6
Co n s t r u c t i o n o f c h i me r i c s i n g l e — c h a i n a n t i b o d y e ic f i e n t s o l u b l e e x p r e s s i o n
第3 3卷 第 6期 2 0 1 6年 1 2月
生 物 学 杂 志
J OUR NAL OF B I OL O GY
Vo l _ 3o i : 1 0 . 3 9 6 9 / j . i s s n . 2 0 9 5—1 7 3 6 . 2 0 1 6 . 0 6 . 0 0 1
i n c h e r i c hi a c o l i a n d o p t i mi z a t i o n o f f e r me n t a t i o n c o n d i t i O i l S
L I U Me n g , , 一 ,S UN Ya n g , ,YANG Ya n — k u n , , 一 ,BAI Zh o n g . h u , ,
( 1 .Na t i o n a l E n g i n e e r i n g L a b o r a t o r y f o r C e r e a l F e r me n t a t i o n T e c h n o l o g y ; 2 .T h e K e y L a b o r a t o y r o f I n d u s t r i a l

关于人鼠嵌合抗体制备的可行性

关于人鼠嵌合抗体制备的可行性

关于人鼠嵌合抗体制备的可行性摘要:人鼠嵌合抗体是一种通过结合人源变异框架区与小鼠源亲和力区域的嵌合蛋白,能够在很大程度上减少人体免疫系统对小鼠源抗体的免疫原性反应。

本文对人鼠嵌合抗体制备的可行性进行了全面的探讨,包括制备方法、应用前景以及与传统抗体制备相比的优势。

1. 简介人鼠嵌合抗体是通过将鼠源亲和力区域融合到人源变异框架区域的蛋白质,可以结合小鼠源抗体与人源抗体的优点。

这些抗体既可以保持小鼠源抗体的高亲和力和特异性,又减少了人体免疫系统对其的反应,具有较好的生物相容性和低免疫原性。

2. 制备方法人鼠嵌合抗体的制备方法主要有三种:合成法、骨髓细胞法和转基因技术。

合成法通过基因合成和连接技术,将人源变异框架区与小鼠源亲和力区域进行连接。

骨髓细胞法则是通过提取小鼠骨髓细胞,并进行融合和筛选,获得具有人鼠嵌合结构的抗体。

转基因技术通过将人鼠嵌合基因导入小鼠的胚胎细胞中,使小鼠能够产生人鼠嵌合抗体。

3. 可行性探讨人鼠嵌合抗体制备的可行性主要从以下几个方面进行探讨:3.1 抗原特异性人鼠嵌合抗体能够继承小鼠源抗体的高亲和力和特异性,对于特定抗原的识别能力与小鼠源抗体相当,能够满足特定抗原检测的需求。

3.2 免疫原性小鼠源抗体在人体中容易引发免疫原性反应,而人鼠嵌合抗体在此方面较小鼠除免疫相应,降低了免疫相关的副作用,减少了药物治疗过程中的不良反应。

3.3 生物相容性人鼠嵌合抗体的人工鼠标非常接近人类自身免疫系统,因此与人体的生物相容性更好,并且有助于延长抗体的半衰期。

3.4 制备成本相比较完全人源抗体的制备,人鼠嵌合抗体的制备成本相对较低。

此外,嵌合抗体的制备过程相对稳定,易于工业化生产。

4. 应用前景人鼠嵌合抗体在治疗领域具有广阔的应用前景。

由于其结构的独特性和免疫原性的降低,使其能够更好地用于药物开发、疫苗研究和肿瘤治疗等领域。

5. 与传统抗体制备的优势人鼠嵌合抗体制备相比传统的小鼠源抗体,具有以下优势:免疫原性低、生物相容性高、制备成本低、抗原特异性高、应用前景广泛。

人鼠嵌合抗体的名词解释是什么

人鼠嵌合抗体的名词解释是什么

人鼠嵌合抗体的名词解释是什么人鼠嵌合抗体是一种生物医学领域中常用的重要工具,用于治疗和预防多种疾病。

人鼠嵌合抗体具有人类的Fc部分和鼠源的可变区域,结合了两者的优势,可以更好地发挥治疗作用。

本文将对人鼠嵌合抗体进行名词解释,介绍它的定义、构成、优势和应用领域。

首先,人鼠嵌合抗体(humanized monoclonal antibody)是一种由鼠源抗体改造而成的生物药物。

它的构成包括人类的抗体常规结构,即由两条轻链和两条重链组成的Y形分子,其中轻链和重链通过二硫键连接。

在抗体结构的变量区域,人鼠嵌合抗体将鼠源的变量区域替换为人源的变量区域,以使抗体更好地适应人体。

人鼠嵌合抗体的制备过程一般包括确定需要治疗的靶标抗原,克隆抗体基因,通过基因重组技术将人源的可变区域连接到鼠骨架结构上,并经过转染、培养和纯化等步骤得到最终的抗体药物。

与传统的鼠源抗体相比,人鼠嵌合抗体具有以下的优势。

首先,人鼠嵌合抗体由人源的可变区域构成,因此在人体内会更好地识别和结合目标抗原,减少免疫反应和副作用的风险。

其次,人鼠嵌合抗体的抗体结构更为接近人体本身的抗体,因此具有更好的体内稳定性和长时间的循环寿命。

此外,基于人源的可变区域构建的人鼠嵌合抗体还可以通过体外的体系来对其对靶标抗原的亲和性和特异性进行筛选,进一步提高抗体的治疗效果。

人鼠嵌合抗体在临床医学中的应用广泛,包括治疗恶性肿瘤、自身免疫性疾病、感染性疾病和神经系统疾病等。

其中最著名的应用之一是使用人鼠嵌合抗体进行抗癌治疗。

这些抗体可以选择性地结合肿瘤细胞表面的特定抗原,通过免疫机制来杀死癌细胞。

同时,人鼠嵌合抗体还可以与化疗药物、放射治疗等联合应用,提高治疗效果,并减轻患者的副作用。

除了治疗作用,人鼠嵌合抗体在生命科学研究中也起到了重要的作用。

科学家们可以利用人鼠嵌合抗体来研究疾病的发生机制,筛选新的靶标分子,并利用其在体内和体外环境中对细胞和分子进行定位、追踪和检测。

抗乳腺癌人鼠嵌合抗体的构建

抗乳腺癌人鼠嵌合抗体的构建

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人鼠嵌合抗体的实验方案

人鼠嵌合抗体的实验方案

人鼠嵌合抗体的实验方案概述人鼠嵌合抗体是一种由人类和小鼠的基因序列构建而成的抗体,具有更好的兼容性和更强的亲和力。

本文将介绍人鼠嵌合抗体的实验方案,帮助研究人员了解如何制备和应用这种抗体。

实验材料和设备1.鼠源性抗体:可以根据实验需要选择目标抗原的鼠源性抗体。

2.人源性抗体:选择与鼠抗体相应的人源性抗体。

3.PC R引物:用于扩增鼠和人源性抗体的基因序列。

4.载体:提供基因组合和表达的载体。

5.细菌:用于负责抗体基因的表达和生产。

实验步骤步骤一:基因扩增1.从鼠源性抗体和人源性抗体中提取基因组DN A。

2.设计合适的P CR引物,用于扩增鼠源性抗体的可变区和人源性抗体的框架区。

3.进行PC R反应,得到鼠源性抗体的可变区和人源性抗体的框架区。

步骤二:基因重组1.将鼠源性抗体的可变区和人源性抗体的框架区进行酶切。

2.使用连接酶将两个片段连接起来,形成人鼠嵌合抗体的基因序列。

步骤三:载体构建1.将人鼠嵌合抗体的基因序列插入选择的载体中。

2.转化合适的细菌菌株,如大肠杆菌,用于基因的表达和生产。

步骤四:抗体表达1.需要选择适当的表达条件,例如温度、培养基、诱导剂等。

2.培养细菌并收集细菌培养液。

3.通过亲和层析等方法纯化抗体。

数据分析和结果通过实验可以获得人鼠嵌合抗体,并进行最终的纯化。

可以通过酶联免疫吸附试验(E LIS A)等技术来评估抗体的兼容性和亲和力。

此外,可以通过细胞实验和动物模型验证人鼠嵌合抗体的生物学活性和疗效。

结论人鼠嵌合抗体的实验方案详细介绍了制备和应用这种抗体的步骤。

这种抗体具有更好的兼容性和亲和力,适用于生物医学研究和治疗。

通过严谨的实验设计和操作,我们可以成功制备和应用人鼠嵌合抗体来解决相关的科学问题。

抗人T淋巴细胞CD4人-鼠嵌合抗体真核表达的研究的开题报告

抗人T淋巴细胞CD4人-鼠嵌合抗体真核表达的研究的开题报告

抗人T淋巴细胞CD4人-鼠嵌合抗体真核表达的研究的开题报告一、研究背景和意义T淋巴细胞是人体免疫系统中一类重要的白细胞。

它们主要负责识别并消灭体内的异物,维持人体免疫系统的稳定性,对于细胞免疫应答和体液免疫应答都具有重要作用。

T淋巴细胞又可分为CD4+ T细胞和CD8+ T细胞,其中CD4+ T细胞则在人体免疫机制中发挥更加重要的作用。

因此,在临床治疗和疾病预防中,开发具有针对CD4+ T细胞的抗体药物可为治疗多种疾病提供新的手段。

特别是在针对人免疫缺陷病毒(HIV)和自身免疫性疾病(如风湿性关节炎)的治疗中,CD4+ T细胞是一个重要的治疗靶点。

二、研究内容和方法本项目旨在开发一种针对CD4+ T细胞的鼠-人嵌合抗体,以期用于治疗相关疾病。

因为目前已有研究表明,鼠-人嵌合抗体可以避免免疫系统对于抗体的排斥,同时还能够保留鼠源抗体的结构特点和抗体亲和力,因此具备很高的应用和开发价值。

具体研究内容和方法为:1.获取针对CD4+ T细胞的抗体基因序列本研究将利用数据库中已有的大量抗体序列信息,利用生物信息学和重组技术筛选出针对CD4+ T细胞的抗体序列,为后续基因克隆做准备。

2.构建抗体基因的真核表达载体本研究将选择合适的真核表达载体,利用PCR技术将目标基因序列克隆进真核表达载体中,构建针对CD4+ T细胞的鼠-人嵌合抗体基因真核表达载体。

3.转染真核细胞进行大规模表达选择合适的真核细胞(如CHO细胞)进行转染,利用瞬时转染技术和稳定转染技术大规模表达鼠-人嵌合抗体。

并通过荧光显微镜观察抗体的表达情况,筛选高表达的克隆细胞。

4.抗体的纯化和验证利用多种色谱技术对鼠-人嵌合抗体进行纯化,同时结合酶联免疫吸附试验(ELISA)和免疫印迹(Western Blot)技术,对抗体进行鉴定和验证,确保纯化后的抗体具有高的亲和力和特异性。

三、研究预期成果本项目预期将获得针对CD4+ T细胞的鼠-人嵌合抗体基因真核表达载体和高表达的抗体克隆细胞,同时还将获得高纯度、高特异性和高亲和力的嵌合抗体。

人—鼠嵌合抗CD20单抗的研究与开发的开题报告

人—鼠嵌合抗CD20单抗的研究与开发的开题报告

人—鼠嵌合抗CD20单抗的研究与开发的开题报告一、研究背景CD20单克隆抗体(mAb)作为一种治疗B细胞恶性肿瘤和自身免疫性疾病的有效药物已被广泛应用。

然而,根据前期研究报道,因为人体内CD20抗原存在相对较少的多态性,不同的人CD20抗体可能存在亚型特异性限制,因此不能满足各种人群的需求。

近年来,研究者将人CD20区域与小鼠CD20区域人-鼠(human-mouse)嵌合,甚至是在人CD20框架上人工设计mAb,已成为一种新的策略。

人-鼠嵌合抗CD20单抗不仅保留了小鼠的亲和性和特异性,而且能够克服人体自身免疫反应的缺陷,提高单克隆抗体的效力和安全性。

二、研究内容本研究旨在通过将人CD20区域与小鼠CD20区域进行人-鼠嵌合设计的方法,发现一种新的抗CD20单抗,探讨其应用于治疗B细胞恶性肿瘤和自身免疫性疾病的潜力。

具体包括以下几个方面:1. 将人CD20区域与小鼠CD20区域进行人-鼠嵌合设计,构建出一种新的鼠-人嵌合CD20抗体。

2. 利用人CD20+和CD20-的淋巴瘤和淋巴细胞白血病细胞株,评价新的鼠-人嵌合CD20抗体的细胞毒性和亲和力,并对其药代动力学和药效学进行检测。

3. 通过非人灵长类动物的安全性评估和预临床实验,验证新的鼠-人嵌合CD20抗体的安全性和有效性。

4. 与市场上已有的抗CD20单抗进行比较研究,探讨新的鼠-人嵌合CD20抗体的优势和不足之处。

三、研究意义本研究的成果对于了解抗体工程学和免疫学领域的新成果,推进单抗开发和应用领域的新进展,发现治疗B细胞恶性肿瘤和自身免疫性疾病的新药物,有着很重要的意义。

同时,经过深入的实验分析和药代动力学和药效学评估,鼠-人嵌合CD20抗体的成效和安全性将得到全面评价,为其未来的临床转化提供理论依据。

人鼠嵌合抗体的制备过程

人鼠嵌合抗体的制备过程

人鼠嵌合抗体的制备过程
嘿,朋友们!今天咱就来讲讲人鼠嵌合抗体的制备过程,这可有意思啦!
咱先来说说这抗体是啥玩意儿。

你就把它想象成是身体里的小战士,专门对付那些坏家伙,比如病菌啥的。

那为啥要弄个人鼠嵌合抗体呢?这就好比咱要打造一个超级战士,结合人的智慧和鼠的某些优势。

那怎么开始呢?首先得有老鼠呀!可不是随便抓只老鼠就行,得是那种专门培养的实验鼠。

然后呢,从老鼠身上提取出有用的东西,就像是从宝库中找出宝贝一样。

接下来,就得把人的那部分加进去啦。

这就好像是给这个小战士穿上了一件人的铠甲,让它既有鼠的灵活,又有人的特质。

这可不是简单地拼拼凑凑哦,得非常精细地操作。

在这个过程中,科学家们就像一群神奇的魔法师,小心翼翼地摆弄着各种元素,一点一点地塑造出这个人鼠嵌合抗体。

他们要时刻注意着,不能出一点差错,不然这个小战士可就不完美啦。

然后呢,还得对这个新诞生的抗体进行各种测试和优化,看看它是不是真的厉害,能不能在身体里大显身手。

这就好比是给这个小战士进行严格的训练,让它变得更强更厉害。

你说这过程难不难?那肯定难呀!但科学家们可不怕,他们就是要攻克这些难题,为我们的健康保驾护航。

你想想看,如果没有他们的努力,我们面对那些疾病该多无助呀。

所以说呀,这个人鼠嵌合抗体的制备可真是太重要啦!它就像是我们健康的一道坚固防线,让我们能更安心地生活。

这就是人鼠嵌合抗体的制备过程,虽然复杂,但充满了神奇和希望。

咱得感谢那些默默付出的科学家们,是他们让这一切成为可能!可不是嘛!。

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关于人-鼠嵌合抗体制备的可行性
一、概述
人-鼠嵌合抗体,即抗体的可变区来自鼠单克隆抗体,而恒定区则来自人的抗体。

它是通过从杂交瘤细胞分离出功能性可变区基因,与人Ig恒定区基因连接,插入适当表达载体,转染宿主细胞表达产生。

嵌合抗体既保留了亲本抗体特异性结合抗原的能力,又大大减少了鼠源性在人体内的免疫原性,其半衰期明显延长,且在介导CDC及ADCC方面亦明显增强。

二、市场分析
附表是中国SFDA批准上市和进入临床的治疗型单抗药物
目前国内上市的单抗药物有11个,其中5个是国外进口产品,我国上市的自行开发的治疗性单抗药物的有6个,处于临床研究阶段的有5个(表6)。

其中,武汉生物制品研究所抗肾移植单抗OKT3(注射用鼠源性抗人T淋巴细胞CD3抗原单克隆抗体),也是最早批准上市的国内自行研制的抗体,具有免疫抑制作用,可逆转对移植器官的排斥反应;由北京百泰生物药业有限公司与古巴合作开发的I类癌症治疗新药“重组人源化抗人表皮生长因子受体单克隆抗体”(商品名:泰欣生)于2005年4月11日获得国家I类新药证书。

这是我国批准的第一个人源化单克隆抗体药物,它的问世标志着我国在癌症靶向治疗和人源化抗体药物领域取得重大突破,该药主要用于治疗头颈部、食管、肺部、乳腺、结直肠等部位的上皮源性肿瘤;由第四军医大学、成都华神集团股份有限公司联合研制的碘[131I]美妥昔单抗注射液(商品名:利卡汀),于2005年4月20日获得国家I类新药证书。

这是全球第一个用于治疗原发性肝癌的药物,也是我国第一个具有自主知识产权的抗体类药物。

三、应用
嵌合抗体目前主要用于药物治疗方面,与鼠抗相比,嵌合抗体既保留了鼠源可变的高亲和性,又具有人Fc段的多种免疫杀伤功能,从而大大降低了人抗鼠抗体反应的发生几率,改善了临床治疗效果,与其它小分子基因工程抗体相比,嵌合抗体作为完成的抗体分子,在体内半寿期更长,并具有人Fc段的多种免疫杀伤功能。

四、技术路线
五、材料与仪器
1.材料
大肠杆菌DH5α,大肠杆菌感受态细胞,T-A克隆载体T-Easy Vector,含信号肽及重链、轻链恒定区基因的质粒pAc-κ-CH3,分泌单抗的杂交瘤细胞,真核表达载体pcDNA3.1,小鼠骨髓瘤细胞Sp2/0。

2.主要试剂
氨苄西林钠,限制性内切酶,T4 DNA连接酶,Taq DNA酶,Trizol RNA提取试剂盒,反转录PCR试剂盒,琼脂糖,嗅化乙锭(EB),dNTPs,DNA Marker,DNA凝胶回收试剂盒,质粒抽提试剂盒,胎牛血清,无血清培养液,二甲亚砜(DMSO),转染试剂盒Lipofectamine TM 2000,MTX,抗原,羊抗人IgG Fc片段-HRP酶标抗体。

3.主要仪器
低温高速台式离心机,恒温摇床,恒温水浴箱,水平式电泳仪,PCR扩增仪,紫
外分光光度计,紫外透射仪,CO2培养箱,倒置显微镜,洁净工作台,酶标仪。

六、关键技术与方法
1.可变区基因克隆
1.1RNA提取及反转录
取对数生长期的杂交瘤细胞株约107个细胞,按照Trizol RNA提取试剂盒的说明书抽提细胞的总RNA,再进行RT-PCR 扩增,回收纯化扩增产物备用。

1.2扩增轻链、重链的V区基因
根据Orlandi等(1989)设计的扩增小鼠可变区基因的引物,以上述扩增产物为模板扩增抗体基因的可变区。

回收重链VH(约360 bp)、轻链VL(约330 bp)片段,插入T-easy载体,各送3份样品测序。

测序所得序列在GeneBank 核酸数据库中进行分类及同源性分析。

两端加入酶切位点
根据上述PCR产物序列设计含酶切位点的引物,再次进行扩增,以使抗体可变区基因片段具有与载体相吻合的酶切位点,便于插入表达载体。

回收纯化扩增产物备用。

2.嵌合抗体表达载体构建
改造含信号肽及人Ig重链和轻链C区基因片段的单克隆位点
设计含重链信号肽起始位点序列及酶切位点NheⅠ的上游引物HLF(KOZAK+4G,即GCCGCC ATG G),和含Xho Ⅰ位点的下游引物HLR,以质粒pAc-κ-CH3为模板,扩增出重链信号肽基因片段;设计含XhoⅠ和KpnⅠ位点上游引物HCF,和含Furin (RKRR)序列及酶切位点XbaⅠ的下游引物HCR,以质粒pAc-κ-CH3为模板,扩增出重链恒定区基因片段片段;用Xho Ⅰ连接上述片段得到含重链信号肽、MCS及重链恒定区的基因片段。

设计含酶切位点ApaⅠ的上游引物LLF,和含EcoR Ⅰ位点的下游引物LLR,以质粒pAc-κ-CH3为模板,扩增出轻链信号肽基因片段;设计含EcoR Ⅰ和HindⅢ位点上游引物LCF,和含Pme Ⅰ的下游引物LCR,以质粒pAc-κ-CH3为模板,扩增出轻链恒定区基因片段片段;用EcoR Ⅰ连接上述片段得到含轻链信号肽、MCS及轻链恒定区的基因片段。

构建含信号肽及人Ig重链和轻链C区基因片段表达空载体
用合成的含酶切位点(XbaⅠ和ApaⅠ)的2A序列连接上述重、轻链,得到含信
号肽及人Ig重链和轻链C区基因的基因片段LigC(Leader + Ig Constant)。

然后与Nhe Ⅰ和Pme Ⅰ双酶切过的pcDNA3.1-CA大片段连接,即得到嵌合抗体真核双表达载体pcDNA3.1-CA(chimeric antibody, CA)。

pcDNA3.1图谱
插入含鼠源Ig重链和轻链V区基因
双酶切表达载体pcDNA3.1-CA和纯化的VL,经琼脂糖凝胶电泳分离纯化目的片段后,连接、转化大肠杆菌,筛选出pcDNA3.1-CA-VL 阳性克隆,富集培养后提取质粒进行酶切鉴定。

然后,双酶切表达载体pcDNA3.1-CA-VL和纯化的VH,分离纯化相应的酶切片段,重复上述步骤,构建成重组表达载体pcDNA3.1-CA-XX(抗原单词的首字母)。

3.转染Sp2/0细胞
接种适量Sp2/0细胞于培养瓶中,培养12 h后用纯化的载体pcDNA3.1-CA-XX DNA,采用Lipofectamine 2000试剂转染,按试剂盒使用说明书进行。

设置空载体和无载体的
细胞为对照。

转染72 h 后,加含MTX的选择性培养基进行筛选。

2周后将生长出的阳性克隆利用有限稀释法单克隆化。

4.阳性克隆鉴定与筛选
以间接法用抗原和酶标羊抗人IgG Fc片段抗体检测嵌合抗体的特异性及重组性。

以适量抗原包被酶标板,加细胞培养上清反应后,再加羊抗人IgG Fc片段-HRP酶标抗体(经鼠Ig吸附过)孵育,显色后测A490吸光值。

5.抗体腹水生产
腹腔种植转染瘤细胞,5~7 天后抽取腹水。

一只种植杂交瘤细胞的小鼠有时可产生多达10ml的腹水。

报道称从腹水中获得的嵌合抗体产量可达1~2 mg/ml。

七、时间及成本预算
表1 时间预算
表2 成本预算。

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