植物生理学实验指导

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植物生理学实验指导

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植物生理学实验指导.第3版
本实验指导书旨在介绍植物生理学的相关知识,指导并帮助广大学子更好地了解植物生理学,能够对实验结果给出合理解释,有助于将知识学习运用到实践中。

《植物生理学实验指导》第3版主要介绍以下内容:
1、植物生长观测:介绍如何正确观察植物的生长,及其生长过程中的变化特点;
2、植物水分特征:介绍植物对水分的需求、植物在水文环境下的适应性,以及植物组织的水力特性;
3、植物营养:介绍植物的营养需求,重点介绍植物对其异养性矿质元素的需求;
4、光合作用与环境:重点介绍植物光合响应性分析实验中被评价复杂反应的生理过程;
5、植物发育特征:介绍植物发育模式,重点讲解植物体态特征以及生物量动态;
6、植物抗逆性表达:介绍植物体内抗逆性的调控机制,以及解析植物诱发抗性反应的研究方法等。

植物生理实验指导

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目录实验一植物细胞的观测 (4)实验二植物液泡的观察 (6)实验三用染色法测定原生质的等电点 (6)实验四原生质运动的观察 (8)实验五细胞质壁分离法测定植物组织渗透势 (9)实验六叶绿体色素及其理化性质 (10)实验七叶绿体色素的分离──纸层析法 (12)实验八叶绿素的定量测定 (12)实验九植物光合强度的测定──改良半叶法 (13)实验十植物呼吸强度的测定 (14)实验十一离体线粒体的氧化作用和磷酸化作用 (15)实验十二植物呼吸酶的简易鉴定法 (17)实验十三植物组织水势的测定──小液流法 (19)实验十四植物伤流液的成份分析 (20)实验十五植物根系对矿质元素的选择吸收 (22)实验十六单盐毒害与混合盐的拮抗作用 (23)实验十七植物的溶液培养与矿质元素缺乏症 (23)实验十八硝酸还原酶活性的测定 (25)实验十九根系活力的测定(TTC法) (26)实验二十种子生活力的快速测定 (27)实验二十一植物生长区域的测定 (29)实验二十二生长素类物质对根芽生长的影响 (31)实验二十三生长素的生理效应及生物鉴定法 (32)实验二十四用水稻幼苗法测定赤霉素类物质的浓度 (33)实验二十五赤霉素对α-淀粉酶的诱导形成 (35)实验二十六细胞分裂素的保绿与阻止衰老的作用 (36)实验二十七细胞分裂素对菜豆叶片生长和衰老的效应 (37)实验二十八用棉花幼苗外植体测定脱落酸的活性 (38)实验二十九用萝卜子叶增重法测定细胞分裂素类物质的浓度或效价 (39)实验三十乙烯的生物测定──黄化豌豆幼苗的“三重反应” (40)实验三十一乙烯的催熟作用和对性别分化的影响 (41)实验三十二生长素和乙烯对叶片脱落的效应 (43)实验三十三开花刺激物在短日植物中通过嫁接的传递 (44)实验三十四花粉管的生长及其向化性 (46)实验三十五不良环境对植物的伤害 (47)实验三十六植物体内游离脯氨酸的测定 (48)实验三十七根际pH的显色测定 (49)实验三十八钾离子对气孔开度的影响49实验三十九希尔反应的观察50 实验四十植物离体叶片失水表型观察及其失水率测定 (51)植物生理学实验规则植物生理学实验的目的在于配合课堂教学,验证理论内容,并在实验过程中学习有关作物的植物生理学方面的实验室技术操作及一些田间应用方法,从而能够初步熟悉科学研究方法,分析实验结果并作出正确结论。

植物生理学作业指导书

植物生理学作业指导书

植物生理学作业指导书1. 实验目的本次实验旨在帮助学生加深对植物生理学相关知识的理解与应用,通过实际操作实验室中的常见技术和方法,培养学生的实验观察能力和数据分析能力。

2. 实验仪器和材料- 植物样本(如豆芽、植物叶片等)- 干燥器- 秤- 显微镜- 毛细管- 温度计- pH计- 高速离心机- 甘油3. 实验步骤3.1 实验准备3.1.1 准备不同植物材料,确保植物样本的健康状态。

3.1.2 对植物样本进行干燥处理,使其水分含量降至一定程度。

3.1.3 使用秤量取干燥后的植物样本质量,并记录下来。

3.2 水分传导实验3.2.1 取一段长度适当的毛细管,将其一端与水分容器相连,另一端插入植物茎部。

3.2.2 观察水分在毛细管中的上升高度,并记录下来。

3.2.3 根据水分上升高度计算植物茎部的水势。

3.3 光合作用实验3.3.1 准备好一片健康叶片,并在其表面涂抹甘油。

3.3.2 使用显微镜观察叶片中的叶绿素体,并记录下来。

3.3.3 在不同光强下测量光合作用速率,并绘制光合作用速率与光强之间的关系曲线。

3.4 酶活性实验3.4.1 取一定量的酶液,并在不同温度下进行酶活性测定。

3.4.2 使用高速离心机离心酶液,并测定上清液中的酶活性。

3.4.3 根据测定结果,分析酶活性与温度之间的关系。

4. 实验结果分析根据实验步骤中所记录的数据,对每个实验环节进行结果分析。

可以通过绘制图表、计算数据指标等方式呈现实验结果,并结合理论知识进行解释和讨论。

5. 思考题5.1 就水分传导实验结果,探讨植物水势与植物体内水分传导之间的关系。

5.2 对光合作用实验结果进行解读,分析光合作用速率与光强之间的关系,以及甘油对光合作用的影响。

5.3 对酶活性实验结果进行分析,并探讨酶活性与温度之间的关系。

6. 实验总结结合实验步骤、实验结果和思考题,总结本次实验的目的、方法、结果和意义,提出改进措施,并陈述你在本次实验中的收获和体会。

植物生理学实验指导

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植物生理学实验指导实验一小液流法测植物组织水势一、目的学会用小液流法和质壁分离法测植物组织水势和渗透势。

二、材料用具及仪器药品马铃薯、刀片、移液管、培养皿、蔗糖溶液(1mol/L),显微镜三、原理1、小液流法测植物组织水势植物细胞是一个渗透系统,若将植物细胞放在各种不同浓度的蔗糖溶液中时,由于细胞液的浓度与外界溶液的浓度(或水势)的差异。

两者便会发生水分的交换。

当ψ cell外>ψw cell时,细胞则吸水,细胞外溶液的浓度↑,细胞外溶液的比重↑。

当ψ cell外=ψw cell时,细胞液与细胞外溶液水分平衡,细胞外溶液的浓度不变,细胞外溶液的比重不变。

当ψ cell外<ψw cell时,细胞则失水,细胞外溶液的浓度↓,细胞外溶液的比重↓。

本实验是以有色液滴的比重变化确定等渗浓度。

根据公式,即可计算出外溶液的ψs,即ψs= - CiRT[i:离解系数,蔗糖等于1;c:等渗浓度;R:气体常数,0.0083 MPa·L/mol·K;T表示绝对温度,即273+t (实验时溶液的温度)]。

2、质壁分离法测渗透势ψw=ψp+ψs。

当ψ cell外>ψw cell时,细胞则吸水。

当ψ cell外<ψw cell时,细胞则失水,发生质壁分离。

当发生初始质壁分离时,ψp=0 ,ψw=ψs=ψ cell外= - CiRT四、方法步骤小液流法测植物组织水势1.按十字交叉法把1mol/L蔗糖溶液(母液)分别配成0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6 mol/L蔗糖溶液各10ml。

分别置于5支大试管中,编号作为实验组。

2.另取5支小试管对应于实验组编号,从实验组取2ml蔗糖溶液作为观察组。

3.切约2mm左右见方的马铃薯片。

4.把马铃薯片放入实验组,每组20片,20分钟后,加一点点亚甲基蓝粉末,摇匀。

5.用吸管吸蓝色液,伸入对应观察组中部,轻轻挤出一滴液滴,轻轻取出吸量管,观察液滴移动方向。

6.根据公式ψs=-CiRT,计算出所测材料的ψ cell质壁分离法测渗透势1、按十字交叉法把1mol/L蔗糖溶液(母液)分别配成0.1、0.2、0.3、0.5、0.6 mol/L 蔗糖溶液各2ml。

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植物生理学实验指导周祖富黎兆安主编广西大学实验规则1. 做好实验前的预习及准备。

每次实验前务必将指定项目的实验指导仔细阅读,熟悉每项实验的目的、原理、方法和操作程序,并复习教材或笔记中有关部分,使实验进行时能独立操作及分析实验结果2. 保特室内安静,在实验中不得随意走动或谈话,以免影响他人实验。

3. 要爱惜国家财物。

每一位同学应本着爱护国家资财及节约的精神,对器具谨慎使用,如有损坏,应立即报告指导教师,并进行登记。

4.遵守仪器、器具使用规定。

贵重仪器使用时,应有教师在旁指导,未明了正确使用方法前,切勿乱动,以免损坏仪器。

凡属公用器具及药品,不得拿到自己桌上,用后应放回原处,以便他人使用。

5. 保特室内的清洁卫生。

实验室不准随地吐痰或乱掷废纸屑。

每次实验结束后,每组负责清洗并整理本组的实验器具及桌面,以养成良好的工作习惯;值日生应负责扫地、抹桌、倒污水等工作,以保特实验室的整洁。

6. 认真做好实验观察及实验报告。

当实验有继续观察必要时,应按时观察。

凡需同学负责照管的实验,必须按规定管理。

7. 实验完毕后,应按规定格式书写实验报告,并按指定日期交给指导教师批阅。

实验报告内容应包括:实验日期;实验题目;实验目的;实验基本原理;实验材料、仪器设备、药品;实验方法与步骤;实验结果与分析。

8. 实验结果应根据自己实验所得如实记录,不得擅自修改。

如因不严格按实验操作规程进行实验,而导致实验失败时,必须重做。

前言《植物生理学》是农学、园艺、植保、农业资源与环境和生物技术等专业必修的专业基础课程,植物生理学实验是该课程重要的实践性教学环节。

通过实验,进一步加深学生对基础理论的认识和理解,加强对学生基本实验技能的训练和动手能力的培养,使学生初步掌握植物生理的基本测定方法和技术,提高学生分析问题和解决问题的能力,为今后参与科学研究奠定基础。

本教材根据《植物生理学》的各章节内容编写,目的在于让学生较全面接触和了解植物生理学各个过程的实验技术方法。

植物生理学实验指导

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植物生理学实验指导 Prepared on 24 November 2020植物生理学实验指导目录植物材料的采集、处理与保存植物生理实验使用的材料非常广泛,根据来源可划分为天然的植物材料(如植物幼苗、根、茎、叶、花等器官或组织等)和人工培养、选育的植物材料(如杂交种、诱导突变种、植物组织培养突变型细胞、愈伤组织、酵母等)两大类;按其水分状况、生理状态可划分为新鲜植物材料(如苹果、梨、桃果肉,蔬菜叶片,绿豆、豌豆芽下胚轴,麦芽、谷芽,鳞茎、花椰菜等)和干材料(小麦面粉,玉米粉,大豆粉,根、茎、叶干粉,干酵母等)两大类,因实验目的和条件不同,而加以选择。

植物材料的采集和处理,是植物生理研究测定中的重要环节。

在实际工作中,往往容易把注意力集中在具体的仪器测定上,而对于如何正确地采集和处理样品却不够注意,结果导致了较大的实验误差,甚至造成整个测定结果的失败。

因此,必须对样品的采集、处理与保存给予足够的重视。

一、原始样品及平均样品的采取、处理植物生理研究测定结果的可靠性(或准确性),首先取决于试材对总体的代表性,如果采样缺乏代表性,那么测定所得数据再精确也没有意义。

所以,样品的采集除必须遵循田间试验抽样技术的一般原则外,还要根据不同测定项目的具体要求,正确采集所需试材。

目前,随着研究技术的不断发展,应该不断提高采样技术的水平。

在作物苗期的许多生理测定项目中都需要采集整株的试材样品,在作物中后期的一些生理测定项目中,如作物群体物质生产的研究,也需要采集整株的试材样品,有时虽然是测定植株的部分器官,但为了维持器官的正常生理状态,也需要进行整株采样。

除研究作物群体物质生产外,对于作物生理过程的研究来说,许多生理指标测定中的整株采样,也只是对地上部分的采样,没有必要连根采样,当然对根系的研究测定例外。

采样时间因研究目的而不同,如按生育时期或某一特殊需要的时间进行。

除逆境生理研究等特殊需要外,所取植株应是能代表试验小区正常生育无损伤的健康植株。

植物生理学实验指导张志良

植物生理学实验指导张志良

植物生理学实验指导引言植物生理学是研究植物内部生物化学和物理活动的科学。

通过实验的方法研究植物的生理过程和生理功能,能够帮助我们更好地了解植物的生长发育、代谢、适应环境等方面的机制。

本实验指导将介绍几个常见的植物生理学实验,并详细说明实验的步骤和注意事项。

实验一:光合作用的测定实验目的通过测定植物光合作用的速率,了解光合作用的基本原理和影响因素。

实验材料和设备•高度光合作用活跃的绿叶片•蒸馏水•滤纸•光合色素提取液•盐酸•詹氏液•光合作用速率测定仪实验步骤1.准备一片新鲜的绿叶片,并使用滤纸将其表面的水分吸干。

2.将绿叶片放入提取瓶中,加入适量的蒸馏水,盖好瓶盖,放置在强光下静置30分钟。

3.将提取瓶中的绿叶片取出,并将其压碎,制成绿叶片提取液。

4.在一次容器中加入10ml绿叶片提取液,同时加入1ml盐酸,用詹氏液调节为酸性条件。

5.将调节好酸性的绿叶片提取液瞬时注入光合作用速率测定仪中。

6.根据测定仪的说明书进行操作,记录每个时间点下的光合作用速率值。

注意事项•实验中所使用的绿叶片应当是光合作用活跃的绿叶片,新鲜度较高。

•测定的过程中应注意光照的稳定性,以免影响光合作用速率的准确性。

•实验过程中应注意安全操作,避免盐酸和其他化学试剂的直接接触。

实验二:渗透压的测定实验目的通过测定植物细胞内外溶液的渗透压差,了解渗透压的基本原理和影响因素。

实验材料和设备•草莓或马铃薯等含有较多汁液的植物组织•单质水•盐水•倒置显微镜•毛细管实验步骤1.取一片新鲜的含有较多汁液的植物组织,如草莓或马铃薯。

2.用刀将该组织剪碎,并将碎片放入一个玻璃杯中。

3.加入适量的单质水,使植物组织完全浸泡其中,静置12小时。

4.取一根毛细管,在一端封闭后,用吸管吸取约5cm 长的盐水,并保持液柱不断。

5.将封闭端的毛细管插入玻璃杯中,并用胶带固定在较深的位置。

6.进行倒置显微镜观察,记录质点的运动情况。

7.根据质点的运动情况,判断渗透压差的大小。

植物生理学实验指导

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植物生理学实验指导目录植物材料的采集、处理与保存..................................... 实验一拟南芥种植和形态观察................................... 实验二植物细胞的活体染色和死活的鉴定......................... 实验三植物原生质体的分离和融合............................... 实验四植物叶面积测定原理、方法和步骤......................... 实验五植物细胞渗透势的测定(质壁分离法)..................... 实验六植物组织水势的测定(小液流法)......................... 实验七植物根系活力的测定(TTC法)............................ 实验八根系总吸收面积和活跃吸收面积的测定..................... 实验九离体叶绿体的制备以及完整度的测定....................... 实验十叶绿体色素的提取、分离和理化性质....................... 实验十一植物叶片光合速率的测定(改良半叶法)................. 实验十二氧电极法测定植物组织的光合与呼吸速率................. 实验十三小篮子法(广口瓶法)测定植物的呼吸速率. (37)实验十四谷物淀粉含量的测定(旋光法)......................... 实验十五类似生长素对种子萌发的影响........................... 实验十六赤霉素对α-淀粉酶的诱导形成........ 错误!未指定书签。

实验十七植物种子生活力快速测定............................... 实验十八植物光周期现象的观察................................. 实验十九植物抗逆性的测定(电导仪法)....... 错误!未指定书签。

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实验一小液流法测植物组织水势一、目的学会用小液流法和质壁分离法测植物组织水势和渗透势。

二、材料用具及仪器药品马铃薯、刀片、移液管、培养皿、蔗糖溶液(1mol/L),显微镜三、原理1、小液流法测植物组织水势植物细胞是一个渗透系统,若将植物细胞放在各种不同浓度的蔗糖溶液中时,由于细胞液的浓度与外界溶液的浓度(或水势)的差异。

两者便会发生水分的交换。

当ψ cell外>ψw cell时,细胞则吸水,细胞外溶液的浓度↑,细胞外溶液的比重↑。

当ψ cell外=ψw cell时,细胞液与细胞外溶液水分平衡,细胞外溶液的浓度不变,细胞外溶液的比重不变。

当ψ cell外<ψw cell时,细胞则失水,细胞外溶液的浓度↓,细胞外溶液的比重↓。

本实验是以有色液滴的比重变化确定等渗浓度。

根据公式,即可计算出外溶液的ψs,即ψs= - CiRT[i:离解系数,蔗糖等于1;c:等渗浓度;R:气体常数,0.0083 MPa·L/mol·K;T表示绝对温度,即273+t(实验时溶液的温度)]。

2、质壁分离法测渗透势ψw=ψp+ψs。

当ψ cell外>ψw cell时,细胞则吸水。

当ψ cell外<ψw cell时,细胞则失水,发生质壁分离。

当发生初始质壁分离时,ψp=0 ,ψw=ψs=ψ cell外= - CiRT四、方法步骤小液流法测植物组织水势1.按十字交叉法把1mol/L蔗糖溶液(母液)分别配成0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6 mol/L蔗糖溶液各10ml。

分别置于5支大试管中,编号作为实验组。

2.另取5支小试管对应于实验组编号,从实验组取2ml蔗糖溶液作为观察组。

3.切约2mm左右见方的马铃薯片。

4.把马铃薯片放入实验组,每组20片,20分钟后,加一点点亚甲基蓝粉末,摇匀。

5.用吸管吸蓝色液,伸入对应观察组中部,轻轻挤出一滴液滴,轻轻取出吸量管,观察液滴移动方向。

6.根据公式ψs=-CiRT,计算出所测材料的ψ cell质壁分离法测渗透势1、按十字交叉法把1mol/L蔗糖溶液(母液)分别配成0.1、0.2、0.3、0.5、0.6 mol/L 蔗糖溶液各2ml。

2、材料处理:用刀片在蚕豆叶表皮划一方格,用镊子撕下表皮,迅速投入每梯度溶液。

3、镜检确定等渗溶液:视野中1/2细胞在角隅处发生轻度质壁分离的溶液为等渗溶液。

4、计算渗透势。

五、溶液配法:六、思考题1、用小液流法测植物组织水势和质壁分离法测植物组织渗透势有何区别?2、毛细吸量管为何轻轻挤出一滴液滴,为何轻轻取出? 太快了会造成液滴直接滴下去,影响实验结果3、小液流法和质壁分离法测得的植物组织水势和渗透势与真实值是否完全相等?为什么?用质壁分离法测定的植物细胞渗透势测量值略大于实际值。

小液流法测定植物组织的水势测量值略小于实际值。

实验2 叶绿体色素的提取分离及其性质鉴定一、目的学会叶绿体色素提取和分离的方法,了解叶绿体色素的性质。

二、材料用具及仪器药品1、层析液配方:石油醚20ml+丙酮2ml+苯1ml ,90标号汽油2、天平、研钵、烧杯、量筒、滤纸、表面皿、剪刀、95%乙醇、汽油、漏斗、滴管、手电3、新鲜菠菜叶三、原理叶绿体含有叶绿体色素,叶绿体色素主要包括有Chla 、Chlb 、叶黄素和胡萝卜素,可用有机溶剂乙醇、丙酮等将它们提取出来。

纸层析法是分离叶绿体色素最简单的方法。

它的原理是利用混合色素中各个成分物理、化学性质的差别,分别以不同程度分布于两相中(即固定相和流动相)。

由于它们以不同的速度移动,从而达到分离的目的。

叶绿体色素容易受光的破坏,变成褐色。

叶绿体色素具有荧光现象。

叶绿素分子的镁可被铜替代,形成铜代叶绿素。

叶绿体色素对不同波长的光具有吸收作用。

四、操作方法1、叶绿体色素的提取称取新鲜菠菜叶片5克,剪碎,放在研钵中,加95%乙醇5m1,加石英砂和碳酸钙少许,共研磨成匀浆(约10分钟),加95%乙醇10m1研磨5分钟,过滤。

2、分离叶绿体色素方法一:用滴管吸取上面的色素提取液4~5滴。

一滴一滴地滴在滤纸的中央(滤纸要平放在表面皿或培养皿上)。

待色素点风干后,向该色素点上慢慢滴加汽油,使四种色素(叶绿素a 、叶绿素b 、叶黄素、胡萝卜素)在滤纸上分离出来,四种色素在滤纸上的移动速度是胡萝卜素(橙黄色)>叶黄素(黄色)>叶绿素a(蓝绿色)>叶绿素b (黄绿色)。

方法二:取一块预先干燥处理过的定性滤纸,将它剪成长约10cm ,宽约1cm 的滤纸条。

编号 母液 ml 蒸馏水 ml 溶液浓度 mol/L 1 2 8 0.2 2 3 7 0.3 3 4 6 0.4 4 5 5 0.5 5 6 4 0.6 6 7 3 0.7用毛细管吸取色素提取液。

在滤纸条的一端(约距这一端的1cm处)划出一条滤液细线,等滤液干燥后,再重复划4~5次。

将滤纸条的另一端(约距这一端1cm处)拆成“V”字形,并将它挂在放有层析液的烧杯壁上(注意:色素线要略高于层析液面,且滤纸条下端最好不要碰到烧杯壁),盖上培养皿。

经几分钟后,观察色素带的分布,最上端为胡萝卜素,其次是叶黄素,再次是叶绿素a,最后是叶绿素b。

3、叶绿体色素的性质鉴定(1)叶绿体色素的皂化反应取2.5ml叶绿体色素提取液,加2.5ml30%KOH-甲醇液,充分摇匀,加5ml苯摇匀,静置10分钟,观察。

(2)叶绿素的荧光现象取上述色素乙醇提取液少许于试管中,在反射光和透射光下观察色素提取液的颜色有什么不同。

反射光下观察到的溶液颜色,即为叶绿素产生的荧光现象。

(3)光对叶绿素的破坏作用取上述色素乙醇提取液少许,分装在2支试管中,1支试管放在暗处(或用黑纸包裹),另1支试管放在强光下(太阳光),经2—3小时后,观察两支试管中溶液的颜色有何不同?(4)叶绿素分子的取代反应取上述色素乙醇提取液少许于试管中,1滴1滴地加入盐酸,直至溶液出现褐绿色,此时叶绿素分子已遭破坏,形成去镁叶绿素。

然后加醋酸铜晶体1小粒,慢慢地在酒精灯上加热溶液,使溶液又产生亮绿色,此即表明铜已在叶绿素分子中替代了原来镁的位置。

(5)光对叶绿体色素的破坏取上述色素乙醇提取液少许于试管中,在光和暗条件下观察色素提取液的颜色有什么不同。

五、实验报告1、将纸层析法分离叶绿体色素的实验结果贴在实验报告纸上,并给予分析。

2、解释叶绿体色素的光学性质。

六、思考题1、Chla、Chlb、叶黄素和胡萝卜素在滤纸上的分离速度不一样,这与它们的分子量有关吗?关系不大,主要与它们的极性大小有关2、什么叫叶绿素的荧光现象?铜代叶绿素有荧光现象吗?叶绿素的酒精溶液在透射光下为翠绿色,而在反射光下为棕红色。

这个红光就是叶绿素受光激发后发射的荧光。

这个现象就是荧光现象铜代叶绿素没有荧光现象,将叶绿素分解了实验3 叶绿体色素的吸收光谱、叶绿素a和b含量的测定一、目的了解叶绿体色素的吸收光谱的绘制方法,学会叶绿素a、b含量的测定方法,了解叶片中叶绿素a、b的含量。

二、材料用具及仪器药品菠菜叶片、721分光光度计、天平、研钵、剪刀、容量瓶(25ml)、漏斗、滤纸、乙醇(95%)。

三、原理叶绿素a 、b 在波长方面的最大吸收峰位于665nm 和649nm ,同时在该波长时叶绿素a 、b 的比吸收系数K 为已知,我们即可以根据Lambert Beer 定律,列出浓度C 与光密度D 之间的关系式:D 665=83.31Ca+18.60C b (1)D 649=24.54Ca+44.24 C b (2)(1)(2)式中的D 665、D 649为叶绿素溶液在波长665nm 和649nm 时的光密度。

为叶绿素a 、b 的浓度、单位为每升克数。

82.04、9.27为叶绿素a 、b 在、在波长665nm 时的比吸收系数。

16.75、45.6为叶绿素a 、b 在、在波长649nm 时的比吸收系数。

解方程式(1)(2),则得 :C A =13.7 D 665—5.76 D 649 (3)C B =25.8 D 649—7.6 D 665 (4)G=C A +C B =6.10 D 665+20.04 D 649 (5)此时,G 为总叶绿素浓度,C A 、C B 为叶绿素a 、b 浓度,单位为每升毫克,利用上面(3)(4)(5)式,即可以计算叶绿素a 、b 及总叶绿素的总含量。

四、方法步骤叶绿素a 和b 含量的测定1.称取0.1克新鲜叶片,剪碎,放在研钵中,加入乙醇10ml 共研磨成匀浆,再加5ml 乙醇,过滤,最后将滤液用乙醇定容到25ml 。

2.取一光径为1cm 的比色杯,注入上述的叶绿素乙醇溶液,另加乙醇注入另一同样规格的比色杯中,作为对照,在721分光光度计下分别以665nm 和649nm 波长测出该色素液的光密度。

3、计算结果:叶绿素a 含量(mg/g. FW )=2.01100025⨯⨯A C叶绿素b 含量(mg/g.FW )=2.01100025⨯⨯B C 叶绿素总量(mg/g.FW )=2.01100025⨯⨯G 黄色素和绿色素的分离将叶绿体色素的酒精提取液10毫升倒入分液漏斗中,倾斜漏斗,并沿其壁慢慢加入15毫升汽油(或乙醚),轻轻摇动5分钟,静置片刻后,溶液即分为两层,上层为绿色的汽油层,主要含有叶绿素。

弃去上层绿色的汽油层,测定下层黄色溶液的吸收光谱。

五、实验报告计算所测植物材料的叶绿素含量。

绘制黄色溶液的吸收光谱。

六、思考题测定叶绿素a 、b 含量为什么要选用红光的波长?如何绘制4种叶绿体色素的吸收光谱。

叶绿素a ,b 主要吸收红光,蓝紫光,而蓝紫光不容易取得,所以选择红光。

根据测定结果,以波长为横坐标绘制曲线,以测定结果为纵坐标,此即叶绿体色素的吸收光谱曲线。

实验4 叶绿体、光和CO2是光合作用的必要条件一、目的了解光合作用的必要条件二、材料用具及仪器药品天竺葵、银边吊兰、广口瓶、烧杯、1%NaHCO3溶液、3%KOH溶液、95%乙醇、酒精灯、培养皿、滴管、黑纸片、I2-KI溶液(配制:2gKI溶于5ml水中,再加1gI2,溶解后加水595ml)。

三、原理光合作用是绿色植物吸收太阳光的能量。

同化CO2和H2O为机物质,并释放出O2过程,其中光、CO2、叶绿素是光合作用的必要条件,由于一般植物的光合作用能产生淀粉,故以淀粉能否生成即知光合作用是否进行,可借助于淀粉与I—KI产生蓝色反应检查出来。

四、方法步骤1、证明光合作用中叶绿体的必要性。

在早上10时后,选择生长正常的银边吊兰叶放在烧杯中加水煮沸,然后将水倒掉,加入95%乙醇,放在水浴锅里煮沸(注意装着酒精的烧杯不能直接在火焰上加热,以免发生危险),直至叶绿素全部浸出,叶片呈白色为止,此时用镊子取出叶片,并将其展开于表面皿上,滴上I—KI溶液,观察其颜色的变化,可见到原有绿色的部分呈现出蓝色,而非绿色部分则呈白色。

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