临床微生物学检验的标本采集
微生物检验标本的正确采集及注意事项

微生物检验标本的正确采集及注意事项正确采集临床微生物标本,直接影响到微生物培养鉴定结果。
可靠的检验结果可以指导临床诊断治疗,为临床科学用药和成功的感染控制提供依据,是正确、合理使用抗菌药物,延缓细菌耐药,减少抗菌药物滥用和监测医院感染的第一步,也是最重要的一步。
为此应正确采集各种细菌学标本。
一、血液标本的采集1、采集方法(1)75%酒精清洁局部皮肤。
(2)待皮肤干后,再用2%—2.5%碘酒从穿刺点中心部位开始消毒,范围不应小于5cm(直径),且不能用手指触摸消毒后的皮肤。
(3)皮肤碘酒干后(约1min),穿刺采集血液,采血量成人5-10ml,婴幼儿1-5ml。
(4)采血后立即在床旁接种培养瓶,并迅速轻摇,充分混匀防止凝固,但又不可剧震以防溶血。
2、注意事项(1)怀疑菌血症应尽早采血,体温上升(38.5℃)采血可提高阳性率,但也要防止因等待而延误时机。
(2)对已经使用抗菌药物,而又不能停药者,也应在下次用药前采血。
切忌不要在静滴抗菌药物的静脉处采取血标本,也不能从静脉导管及动脉插管中取血。
(3)培养基与血液之比以10:1为宜,以稀释血液中的抗生素,抗体等杀菌物质;有人主张对接受抗菌药物治疗的病人,培养基与采血量之比可为20:1或大于这个比例。
(4)近年研究表明,将血液注入血培养基前,更换针头反而易导致污染。
(5)每例至少采血两次,间隔0.5-1h,以利于提高阳性率和区分感染菌与污染菌。
(6)疑为细菌性心内膜炎及布鲁氏病的病人,以肘动脉或股动脉采血为宜,除在发热期采血外,并要多次采血(24h 3-4次)和增加采血量(可增加10ml)。
(7)采血后立即送检,如不能立即送检可置室温,而不能放置冰箱。
(8)如临床表现很似败血症,而血培养多次阴性者,提示考虑厌氧菌和真菌感染的可能。
二、骨髓的采集1、采集方法在病灶部位或髂前(后)上脊处严格消毒后抽取骨髓1ml,注入血培养瓶内。
2、注意事项(1)骨髓内含有大量的单核巨噬细胞系统的细胞,因而骨髓培养对伤寒病人的诊断较血培养优越。
临床微生物标本的采集与运送图文

临床微生物标本的采集与运送在医学临床的诊断过程中,微生物检验是不可缺少的一环。
临床微生物标本的采集与运送是保证准确诊断的关键步骤之一。
本文将介绍临床微生物标本的采集与运送的一些注意事项。
1. 标本类型临床微生物标本通常包括血液、尿液、粪便、血培养瓶、脑脊液、切口分泌物等。
2. 采集方法2.1 血液标本采集血液标本时,一定要做好消毒工作。
选择采血部位后,用酒精或碘酒消毒,再用无菌针头采血,避免受污染。
血液标本采集后可以分成两份,一份用于血常规,另一份用于血培养。
2.2 尿液标本收集尿液标本时,要让患者用清洁肥皂清洁外阴部,再用无菌尿杯收集尿液,避免手部直接触摸尿杯和尿液。
尽量将尿液标本送至检验室的时间控制在2小时之内。
2.3 粪便标本采集粪便标本时,要确定所采集的粪便样本来自于患者的肛门临近处。
最好不要使用纸巾,而是用无菌容器收集粪便。
粪便标本采集窗口为3天。
2.4 血培养瓶标本采集血培养瓶标本时,首先要选择采血部位进行消毒,然后将血培养瓶插入采血针器上,打开外部装置,使血液顺利流入血培养瓶中。
采集集中在早晨时段,每次采集2-3个血培养瓶。
2.5 脑脊液标本采集脑脊液标本需要医生进行,患者应严格卧床休息,医生在患者腰部,采用穿刺的方式进行脑脊液的采集。
2.6 切口分泌物标本采集切口分泌物标本时,需要选择无菌医用棉签,消毒采集部位。
在采集过程中,应尽量避免被采集部位感染污染到。
3. 运送方法临床微生物标本的运送是重要的环节。
标本在采集后应及时送至细菌学检验实验室。
并且在运送过程中需要遵循以下几点:3.1 收集后尽早送检临床微生物标本的采集窗口不长,应尽早将标本送至检验室进行分析。
3.2 标本容器和包装标本容器必须选择无菌容器,容器体积大小要相应合适。
送检前,要核对标本标签与标签上的医学记录是否一致。
标本包装时,应采取干燥、保温、防震、防漏、防碎的原则。
3.3 运输温度不同种类的标本,其运输温度介于4-25摄氏度之间。
临床微生物标本采集和运送基本原则

临床微生物标本采集和运送基本原则一、临床微生物标本采集基本原则1.标本来源与采集部位临床微生物标本主要来源于患者体内的各类体液、组织和生物材料。
采集部位包括呼吸道、消化道、泌尿生殖道、皮肤、创伤、手术部位等。
采集时应选择感染灶、病变部位或易感部位,以确保标本的代表性和可靠性。
2.采集工具与消毒采集微生物标本时,应使用无菌、一次性采集器具。
采集器具在使用前应进行消毒处理,以确保不会引入外来微生物污染。
消毒方法可选用高温、高压、化学消毒剂等。
3.采集操作步骤(1)准备工作:评估患者病情,向患者及家属解释采集目的和注意事项,取得患者知情同意。
(2)佩戴个人防护装备:口罩、手套、护目镜或面罩。
(3)消毒:使用消毒剂对采集部位进行皮肤消毒。
(4)采集:根据不同标本类型,进行相应操作,如穿刺、刮片、抽取等。
(5)封装:将采集完成的标本放入无菌容器中,密封,注明患者信息、采集部位、日期等。
二、临床微生物标本运送基本原则1.标本容器与标记运送微生物标本时,应选用防漏、耐压、易保存的容器。
容器表面应清晰标记患者信息、采集部位、标本类型等,以便于实验室接收和处理。
2.运送条件与时间要求微生物标本应在采集后尽快送达实验室,一般要求在2-4小时内完成。
运送过程中,应保持标本容器密封,避免剧烈晃动,确保标本质量。
3.运送过程中的注意事项(1)夏季高温时,可采取冰袋降温措施,防止标本变质。
(2)注意标本容器不离手,避免摔碎或泄露。
(3)如需长途运输,应采取适当包装,确保标本在运输过程中不受损。
三、标本质量控制与标准化1.微生物实验室的质量管理体系实验室应建立完善的质量管理体系,包括人员培训、设备维护、检测方法、室内质量控制等,以确保检验结果的准确性和可靠性。
2.标本接收与处理实验室接收标本时,应核对标本信息,检查标本容器、运送条件等。
对标本进行登记、分类、编号,并按照标准化流程进行处理。
3.室内质量控制与外部质量评估实验室应定期进行室内质量控制,包括质控品的检测、方法比对、仪器校准等。
临床微生物学检验标本的采集

答:不同类型的微生物对保存温度的要求不同。一般来说,细菌、真菌等可在4℃或-20℃冰箱中保存数天至数周;病毒等则需要 使用-80℃超低温冰箱进行长期保存。在选择保存温度时,应根据具体微生物类型和实验要求进行选择。
问题解答与经验分享
如何确保标本运输安全?
答:在运输前应仔细检查容器是否密封良好,并使用足够的吸收材料包裹容器以防意外泄漏。同时,在运 输过程中应确保标本处于适当的低温环境中,并标识清晰以便实验室准确接收和处理。
结果分析
考虑患者为败血症,革兰氏阴性杆菌为致病菌。结合患者临床表现和 实验室检查结果,制定相应的治疗方案。
案例二:尿路感染诊断思路探讨
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病例介绍 患者女性,60岁,因尿频、尿急、尿痛就诊。查 体显示尿道口红肿,有脓性分泌物。
实验室检查 尿常规结果显示白细胞增多,细菌培养阳性。
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诊断思路
根据患者临床表现和实验室检查结果,初步诊断 为尿路感染。进一步进行细菌鉴定和药敏试验, 以指导临床治疗。
保存时间 不同类型的微生物标本保存时间不同,应根据具体要求进 行保存。一般来说,细菌、真菌等可保存数天至数周,病 毒等则需要长期保存。
标本运输注意事项
保持低温
在运输过程中,应确保标本处于适当的低温环境中,以防止微生 物死亡或变异。
防止泄漏
运输前应检查容器是否密封良好,防止标本泄漏。同时,应使用 足够的吸收材料包裹容器,以防意外泄漏。
为临床诊断和治疗提供准确、可靠 的微生物学依据,指导合理用药。
微生物学检验目的
01
02
03
确定病原体种类
通过检验标本中的微生物, 明确病原体种类,为针对 性治疗提供依据。
评估病情严重程度
临床微生物标本采集和运送基本原则

临床微生物标本采集和运送基本原则有:
第一,要及时采集微生物标本,做病原学检查。
第二,严格执行无菌操作,减少和避免污染。
第三,标本采集之后,要立即送到实验室,床旁接种可以提高病原菌的检出率。
第四,尽量的在使用抗菌药物之前采集标本,这样对于结果的影响比较小一些。
第五,以棉拭子采集的标本如咽拭子、肛拭子或伤口拭子要立刻送检。
第六,盛标本容器须经灭菌处理,不要使用消毒剂。
第七,送检标本应注明来源和检验目的,使实验室能正确选用相应的培养基和适宜的培养环境,必要时应注明选用何种抗菌药物。
第八,对于混有正常菌群的污染标本,要做定量或半定量培养,然后判断是感染菌和定植菌。
第九,对分离到的病菌,要做药敏实验,提倡分级报告和现实报告。
临床微生物标本规范化采集和送检

临床微生物标本规范化采集和送检临床微生物标本规范化采集和送检是确保实验室检测结果准确性和可靠性的关键步骤。
在临床诊断和治疗过程中,微生物标本的采集和送检必须严格按照规范进行,以保证检测结果的科学性和临床应用的有效性。
本文将对临床微生物标本规范化采集和送检的相关问题进行详细讨论。
一、微生物标本的采集1. 采集工具采集微生物标本时,应使用无菌采集工具,如无菌棉签、无菌注射器、无菌拭子等。
采集工具应一次性使用,避免交叉感染。
2. 采集方法(1)棉签采集法:适用于采集分泌物、排泄物等标本。
将无菌棉签蘸取适量标本,轻轻涂抹于无菌培养基表面,注意避免棉签与培养基接触过紧,以免污染。
(2)拭子采集法:适用于采集皮肤、黏膜等表面标本。
将无菌拭子轻轻擦拭采集部位,将拭子置于无菌培养基中,轻轻按压使标本附着于培养基表面。
(3)注射器采集法:适用于采集深部组织、关节液等标本。
将无菌注射器刺入采集部位,抽取适量标本后,将注射器置于无菌培养基中,拔出活塞使标本流出。
3. 采集注意事项(1)严格遵守无菌操作原则,防止标本污染。
(2)采集标本时,应尽量减少对标本的挤压,避免细胞破裂、毒素释放等现象。
(3)采集标本后,应尽快送检,避免长时间存放导致病原体死亡或变异。
二、微生物标本的送检1. 送检时间微生物标本采集后,应尽快送检,一般不超过2小时。
如无法及时送检,应将标本置于4℃冷藏保存,并在24小时内送检。
2. 送检途径微生物标本应采用专用运送容器,避免与其他物品接触。
标本运送过程中,应注意保持容器密封,防止标本污染。
3. 标本接收实验室接收微生物标本时,应详细核对标本信息,包括患者姓名、性别、年龄、采集部位、采集时间等。
如发现标本不符合要求,应立即与临床工作人员沟通,重新采集标本。
4. 标本处理实验室接收标本后,应按照实验室规程进行对标本的处理,包括开盖、分区、接种、培养等。
在处理过程中,严格遵守无菌操作原则,防止标本污染。
临床微生物检验标本采集规范要求★

24小时尿
记录尿量,将尿液混匀后取适量用于 检验。
粪便标本采集
自然排便
排便后用干净竹签取粪便 表面部分。
直肠拭子
在特殊情况下,如肠道感 染,可用直肠拭子采集粪 便。
粪便量
一般需采集足够量的粪便 用于检验。
呼吸道标本采集
痰液
患者自行咳出痰液,避免唾液和 鼻咽部分泌物。
支气管肺泡灌洗
在特殊情况下,如重症肺炎,可通 过支气管肺泡灌洗采集呼吸道标本 。
确定采集时间
根据患者的病情和检验目的,选择最 佳的采集时间,如空腹采集、餐后采 集等。
注意采集时间与用药时间的间隔,避 免药物对检验结果的影响。
采集人员防护措施
采集人员应穿戴符合要求的防护服、手套、口罩等,确保自 身安全。
采集过程中应遵循无菌操作原则,避免交叉感染和环境污染 。
02
标本采集方法
足或采集方法不当导致检验结果出现偏差。
03
标准化采集时间
根据疾病类型和病情发展,选择合适的采集时间可以提高检验准确性。
例如,对于急性感染患者,应在发热期采集标本;对于慢性感染患者,
应选择在疾病活动期采集。
保障患者安全
减少交叉感染风险
遵循无菌操作原则可以降低交叉感染的风险,保护患者安全。
避免患者不适
采集过程中,应避免接触非检 验部位,确保标本不受污染。
采集后应及时送检,避免长时 间存放导致污染。
防止标本变质
采集的标本应尽快送检,避免长时间 存放导致变质。
保存过程中应定期检查,确保标本质 量。
对于需要长时间保存的标本,应采取 适当的保存措施,如低温、干燥等。
其他注意事项
采集前应了解患者病情和用药情 况,避免干扰检验结果。
临床微生物学检验标本的采集

快速运输
03
在运输过程中应尽量缩短时间,选择适当的交通工具,保持容
器密封、避光、防震,以确保标本质量不受影响。
05
临床微生物学检验标本采集的常见问
题及解决方案
采集方法不当
总结词
采集方法不正确可能导致微生物污染或样本质量下降,影响检验结果的准确性。
详细描述
采集过程中应遵循无菌操作原则,正确使用采集工具,避免交叉感染。对于不同种类的标本,应采用不同的采集 方法和注意事项。
尿液标本
尿常规检查
检测尿液中的蛋白质、糖、酮体等成分,辅助诊断肾脏疾病和糖尿病等。
尿培养
用于检测尿液中的病原菌,如尿路感染等。
粪便标本
粪便常规检查
检测粪便中的红细胞、白细胞、寄生 虫等,辅助诊断消化道疾病。
粪便培养
用于检测粪便中的病原菌,如细菌性 痢疾等。
呼吸道标本
痰液检查
通过痰液中的细胞和病原菌,辅助诊断呼吸道感染。
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采集时机不当
总结词
采集时机不合适可能影响微生物的存活和繁殖,进而影响检验结果。
详细描述
应根据检验目的和要求选择合适的采集时机,如空腹采集血液、尿液等。同时,应注意采集过程中的 时间控制,避免长时间暴露在空气中。
采集容器选择不当
总结词
采集容器选择不当可能导致微生物死亡或繁殖受限,影响检验结果。
详细描述
量。
减少外界干扰
在采集过程中应尽量减少外界因 素的干扰,如避免过度挤压、避 免接触非采集部位等,以降低外
界微生物的混入。
采集后的保存和运
及时处理
01
采集后的标本应及时进行处理,避免长时间放置,以免影响微
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临床微生物学检验的标本采集一、血液和骨髓细菌学检验标本的采集(一)适应症菌血症、败血症和感染性骨髓炎等感染菌的培养鉴定和药物敏感试验。
(二)病人准备1.凡怀疑菌血症和败血症的患者,采血培养时,应尽量在未使用抗菌素前采血,如已使用过抗菌素,应尽量选择抗菌素在体内浓度最低时采血,或在病人第二次使用抗菌素之前采集血培养标本。
2.应在病人发热期或寒颤时采集(三)标本采集1.血培养瓶领取:凭医嘱和检验申请单到检验科细菌室领取。
按照实际情况选择相应类型的血培养瓶:如灰色瓶盖为普通成人培养瓶;粉红色盖为儿童需氧菌培养瓶;紫色盖为厌氧菌培养瓶。
2.将患者信息录入相应的血培养瓶条码中,并在作好病人姓名、科别、床号等标识。
2.采集方法:严格消毒病人采血部位和血培养瓶口,抽一定量血液或骨髓后,无菌注入血培养瓶内,轻轻摇匀。
3.标本量:成人每次采血5~10ml,小儿采血3~5ml,骨髓2~3ml,采血量足够则阳性率高,反之阳性率减低。
(四)注意事项1.抽血、抽骨髓和接种时,须严格注意无菌操作,避免污染杂菌。
2.从抽血、抽骨髓到接种入瓶,动作要快,防止血液凝固。
3.成人不明原因发热、怀疑血流细菌感染时宜在不同部位抽血2套,每套2瓶(需氧、厌氧各一瓶)。
4.怀疑伤寒、亚急性细菌性心内膜炎及布鲁氏菌病的病人等,一般一日抽血三次培养,必要时需追加次数。
(五)标本送检和保存1.标本采集后应及时送检,一般不超过1h送交细菌室。
2.送检过程中应注意防止培养瓶打破或其它潜在性污染可能。
二、痰液或下呼吸道分泌物细菌学检验标本的采集(一)适应症肺炎、肺气肿、支气管炎、鼻窦炎、肺结核等感染菌的培养鉴定、药物敏感试验和抗酸菌检查。
(二)病人准备1.尽量在未使用抗菌素前留取标本。
准备好无菌标本容器,贴上条码、标明标识。
2.住院病人应留取清晨起床第一口痰。
为减少正常菌群的污染,嘱患者早上起床后用清水或生理盐水漱口,不要刷牙,除去鼻咽分泌物。
(三)标本采集1.一般病人用力咳出气管深处或肺部痰液,留于无菌标本容器内。
2.对无痰、少痰或痰不易咳出时,可用加温45℃的生理盐水雾化吸入,以使痰液易于咯出。
3.幼儿痰液收集困难时,可用清毒棉拭子刺激喉部引起咳嗽反射,用棉拭子采集标本。
4.通过气管穿刺获得痰液,即环状软骨下穿刺取肺分泌物,主要用于厌氧菌培养。
采集后立即排出注射器内空气,插入无菌的橡皮塞或直接注入厌氧培养瓶内送检。
6.浓缩法找抗酸杆菌应留取24小时痰(不少于5ml)。
7.痰标本直接染色找抗酸杆菌,应送检三份痰标本,最好连续3日。
(四)注意事项1.痰液标本应为气管深处或肺部咳出的真正呼吸道分泌物,切忌简单地将口水当成痰液送检。
2.痰液标本采集时不得混入唾液、鼻分泌物、食物和漱口水。
3.用不吸水的无菌容器盛留标本,所用容器须加盖,避免污染。
4.怀疑为嗜血杆菌感染时,应随留即送。
(五)标本送检和保存标本采集后应立即送检,如欲保存可置冰箱中,防止标本在运送中被污染。
三、尿液细菌学检验标本采集(一)适应症泌尿系统感染细菌的培养鉴定和药物敏感试验。
(二)患者准备1.尽量在未使用抗菌素前留取标本。
准备好无菌试管,贴上条码、标明标识。
2.住院病人应留取早晨每一次尿液(浓缩尿液)。
3.女病人先用肥皂水及1:1000高锰酸钾水溶液冲洗外阴部及尿道口。
男病人应翻转阴茎包皮,先用肥皂水清洗,再用灭菌水冲洗。
再用无菌纱布或干棉球拭干。
(三)标本采集1.无菌导尿法:由临床医生或护士采用导尿术留取尿液10ml左右,盛于无菌试管中送检。
因多次重复导尿易造成逆行性感染,故此法较少用。
2.中段尿法:病人冲洗外阴部及尿道口以后,让病人排尿,弃去前半部分尿液,收集中段尿3-5ml盛于用洒精火焰消毒管口后的无菌试管中,立即塞好塞子送检。
3.肾盂尿法:由临床医师采集左右肾盂尿送检,左右侧的标本应标记明确,以免出现错误。
4.24小时尿法:做结核杆菌集菌时,可收集24小时尿液,将沉淀部分盛于洁净瓶内送检。
(四)注意事项1.尿液标本的采取和培养最大的问题是污染杂菌,故应严格执行无菌操作。
2.标本采取后应立即送检和接种,因放置时间长杂菌容易在尿液标本中生长繁殖,影响正确诊断。
3.尿液标本不得加入防腐剂和消毒剂,否则会影响阳性率的检出。
(五)标本送检和保存尿液标本采集后,常规≤2h送交实验室,4℃≤24h送检,防止标本在运送中污染。
实验室收取标本后,应立即接种。
四、粪便细菌学检验标本采集(一)适应症肠道致病菌的培养鉴定和药物敏感试验。
(二)患者准备尽量在未使用抗菌素前留取标本。
准备好无菌标本容器,贴上条码、标明标识。
(三)标本采集1.自然排便采集法:取有粘液、脓血部分的粪便2~3克置于无菌标本容器中。
如为稀水便,可直接收集适量容器于无菌培养管中,盖好盖子送检。
2.直肠拭子采集法:在无法获得粪便的情况下,可用无菌生理盐水湿润无菌肠拭子,插入肛门2-4cm,在肛门括约肌处轻轻转动拭子一圈,擦取直肠表面的黏液后取出,盛入无菌试管中送检。
3.02号菌培养:用检验科准备的02号菌专用的带盖子的无菌容器管,亦可用无菌生理盐水湿润无菌肠拭子,插入肛门2-4cm处,在轻轻转动拭子一圈,擦取直肠表面的黏液后取出,盛入无菌试管中送检。
(四)注意事项1.粪便标本含有多种杂菌,为防止污染必须注意标本的采集方法。
标本容器内不能混入尿液、消毒剂及其他化学药品,以避影响病原菌生长。
2.为提高阳性检出率标本采集要新鲜,因陈旧标本大大影响阳性检出率。
如能进行床边培养,则更能提高阳性率。
3.直肠拭子采集法,患者不能自行采集;除婴儿患者外,不推荐用拭子做常规病菌培养。
4.采集粪便标本应注意在急性期,使用抗菌素前作培养。
(五)标本送检和保存标本采集后要及时送检,防止标本在运送中污染。
五、脓液和病灶分泌物细菌学检验标本的采集(一)适应症外伤、手术及烧伤感染、疖肿、骨髓炎等病原菌的培养鉴定和药物敏感试验。
(二)患者准备尽量在未使用抗菌素前留取标本。
准备好无菌试管,贴上条码、标明标识。
(三)标本采集1.开放性脓肿和病灶分泌物:用无菌生理盐水或75%乙醇擦去表面渗出物和污染物,用无菌拭子深入病灶底部或边缘部,采集脓性分泌物,以无菌操作置于无菌试管中送检。
2.封闭性脓肿和病灶分泌物:以无菌操作法,用无菌注射器抽取脓汁适量于无菌试管。
如疑为厌氧菌感染时,取材后立即将注射器内空气排尽,刺入无菌橡皮塞中送检。
(四)注意事项1.开放性脓肿和病灶标本采集前,必须对病灶表面及周围皮肤进行消毒处理。
2.局部伤口敷用药物在2小时以内、烧伤在12小时内均不应采集标本,此时获得阳性结果的机会甚少。
3.采集标本时必须严格无菌操作,以防杂菌污染。
(五)标本送检和保存1.标本采集后要及时送检,防止标本在运送中污染。
如不能立即送检应置冰箱中保存。
2.厌氧培养标本绝不可冷冻,宁可在室温中保存。
六、眼、耳、鼻、咽拭子细菌学检验标本的采集(一)适应症眼、耳、鼻、咽等感染部位,病原菌的培养鉴定和药物敏感试验。
(二)患者准备尽量在未使用抗菌素前留取标本,以清晨起床采集为宜。
准备好无菌试管,贴上条码、标明标识。
1.采集眼部标本时,患者于采集前不得用药物冲洗眼部;2.采集咽崃部标本时,患者于采集前数小时不能用消毒液漱口;3.采集鼻窦内标本量,患者于采集前数小时不能使用消毒药物;4.外耳正常可有细菌寄生,采集标本时局部需进行必要的消毒。
(三)标本采集1.眼结膜标本:预先沾湿拭子,在结膜上滚动采集标本。
2.眼角膜标本采集:在麻醉下,用刮勺在溃疡或创伤边缘刮取碎屑,直接接种在培养基平板上并进行涂片。
3.口腔咽部标本:先用拭子揩去溃疡或创面浅表分泌物,再另用拭子采集溃疡边缘或底部标本送检。
4.患有外耳炎患者,需要深部耳拭子,因为浅表拭子可能遗漏链球菌引起的蜂窝组织炎。
5.鼻标本留取:用一根无菌棉拭子,伸进一侧鼻孔约2.5cm处,与鼻黏膜接触,轻轻地旋转拭子,蘸取黏膜上分泌物,缓缓抽出,置于运送培养基或将拭子置于无菌试管中送检。
(四)注意事项1.标本采取前数小时不得用消毒液漱口或涂抹病灶局部。
对刚治疗过或用药物冲洗过眼部的患者,最好在12-24小时后采集标本,以免药物影响细菌生长。
2.用棉拭子采集标本时应小心、认真、准确地在采集部位采取,避免触及舌、口腔黏膜和唾液,以免污染。
3.疑为白喉时,应在咽喉部深层组织中采取标本,而表面渗出液多为类白喉杆菌和葡萄球菌。
4.采集扁桃体标本时应以小窝部为宜。
5.眼部感染所获取标本量很少,建议医生取样后直接接种在培养基平板上并行涂片。
(五)标本送检和保存1.眼、耳、鼻、咽拭子所获取标本量一般较少,容易干燥而使细菌死亡,所以标本采集后应立即送检,常规培养于2小时内必须运送实验室。
2.眼睛、内耳标本绝对不可以冷藏。
七、脑脊液细菌学检验标本采集(一)适应症化脑和流脑时,病原菌的培养鉴定和药物敏感试验。
(二)患者准备1.尽量在未使用抗菌素前留取标本。
准备好无菌试管,贴上条码、标明标识。
2.患者在采集标本之前避免精神紧张和恐惧,积极配合医生采集标本。
(三)标本采集1.由临床医生以无菌操作方法,行腰穿抽取脑脊髓液2~3ml,置于无菌试管内,及时送检。
(四)注意事项1.用于细菌学检查标本应保温送检(20℃),不可置于冰箱保存,否则会导致细菌死亡,尤其是脑膜炎奈瑟菌、肺炎链球菌及流感嗜血杆菌。
2.不同检验需要脑脊液量:细菌培养≥1ml,真菌≥2ml,抗酸杆菌≥2ml。
3.怀疑脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌或肺炎链球菌时,标本采集后立即送检或床边接种。
因为脑膜炎奈瑟菌能产生自溶酶,离体后迅速自溶;流感嗜血杆菌或肺炎链球菌容易死亡。
4.怀疑新型隐球菌感染者,应另留取0.5ml脑脊液于无菌试管中送检。
(五)标本送检和保存1.CSF采集后,置于无菌试管中,应尽快(15min内)运送到实验室,绝不可冷藏。
遇天气寒冷时应注意在保温条件下送检。
2.标本送检过程中,应防止盖子脱落而引起标本污染。
八、穿刺液细菌学检验标本采集包括:胸腹水、心包液、关节腔液、鞘膜积液等(一)适应症胸膜炎、腹膜炎、心包炎、化脓性关节炎时,相应病原菌的培养鉴定和药物敏感试验。
(二)患者准备1.尽量在未使用抗菌素前、或在停止用药1~2天后留取标本。
2.准备好无菌试管,贴上条码、标明标识。
为防止穿刺液凝固,可在无菌试管中预先加入无菌肝素0.5ml。
3.患者在采集标本之前避免精神紧张和恐惧,积极配合医生采集标本。
(三)标本采集1.各种穿刺液标本,由临床医师以无菌穿刺术抽取。
心包液和关节液等抽取量约为1~5ml,胸水和腹水抽取量约为5~10ml。
标本抽取后,立刻将其注入含有无菌抗凝剂的无菌试管中,轻轻混匀。
2.疑为厌氧菌感染时,取材后立即将注射器内空气排尽,刺入无菌橡皮塞中送检。