34抗体的标记——生物素(Biotin)
几种常见的抗体标记方法-酶标记、荧光素标记、同位素标记、生物素标记

几种常见的抗体标记方法-酶标记、荧光素标记、同位素标记、生物素标记抗体标记主要有酶标记、荧光素标记、同位素标记、生物素标记等,还有一些其他的标记方法例如金标记,本文主要讲述了这些抗体标记的基本原理、操作步骤。
一、酶标记1、辣根过氧化物酶(HRP)标记辣根过氧化物酶(HRP)标记单抗和多克隆抗体的常用方法是过碘酸钠法。
其原理是HRP的糖基用过碘酸钠氧化成醛基,加入抗体IgG 后该醛基与IgG氨基结合,形成Schiff氏碱。
为了防止HRP 中糖的醛基与其自身蛋白氨基发生偶合,在用过碘酸钠氧化前先用二硝基氟苯阻断氨基。
氧化反应末了,用硼氢化钠稳定Schiff氏碱。
这里介绍两种程序。
程序一:(1)将5mg HRP溶于0.5ml 0.1mol/L NaHCO3溶液中;加0.5ml 10mmol/LNaIO4溶液,混匀,盖紧瓶塞,室温避光作用2小时。
(2)加0.75ml 0.1mol/L Na2CO3混匀。
(3)加入0.75ml小鼠已处理的腹水,或纯化单抗等(15mg/ml),混匀。
(4)称取SephadexG25干粉0.3g,加入一支下口垫玻璃棉的5ml注射器外筒内;随后将上述交联物移入注射器外套;盖紧,室温作用(避光)3小时或4℃过夜。
(5)用少许PBS将交联物全部洗出,收集洗出液,加1/20V体积新鲜配制的5mg/mlNaBH4溶液,混匀,室温作用30分钟;再加入3/20V NaBH4溶液,混匀,室温作用1小时(或4℃过夜)。
(6)将交联物过Sephadex g200或Sepharose6B(2.6×50cm)层析纯化,分管收集第一峰。
(7)酶结合物质量鉴定:克分子比值测定酶量(mg/ml)=OD403×0.4IgG量(mg/ml)=(OD280-OD403×0.3)×0.62克分子比值(E/P)=酶量×4/IgG量,一般在1-2之间。
酶结合率=酶量×体积/抗体,标记率一般为0.3-0.6,即1-2个HRP分子结合在一个抗体分子上,标记率可大于0.6,0.8,0.9;OD403/OD280等于0.4时,E/P约为1。
biotin标记蛋白原理

biotin标记蛋白原理
蛋白质标记技术是生命科学研究中的一项重要技术,可以用来研究蛋白质的结构、功能和相互作用等方面。
其中,一种常用的标记方法是使用生物素(biotin)进行标记。
生物素是一种小分子化合物,通过与蛋白质中的特定结构域相互作用,实现对蛋白质的特异性标记。
生物素标记的原理主要包括两个方面:生物素与蛋白质的亲和性和生物素与检测物质的亲和性。
在生物素标记中,通常会将生物素化合物与蛋白质结构域相互作用,将生物素引入到蛋白质中。
生物素与蛋白质之间的相互作用可以通过不同的方法实现,其中较常用的方法是通过生物素-蛋白质亲和素(BAP)相互作用。
BAP是一种革兰氏阳性菌
内生物素酶,它能够特异性地结合生物素,并形成坚固的结合,从而实现对蛋白质的标记。
一旦生物素成功地与目标蛋白质结合,就可以利用生物素与检测物质之间的亲和性来进行后续的检测和分析。
检测物质通常是与生物素结合的酶或荧光染料等,可以通过检测酶的活性或荧光信号来间接或直接地确定标记蛋白质的存在或活性。
通过生物素标记技术,可以实现对蛋白质的高特异性和高灵敏度的检测。
生物素标记的蛋白质可以被用于免疫印迹、免疫组化、流式细胞术和免疫沉淀等多种实验技术中,帮助研究者探究蛋白质的功能和相互作用。
总结来说,生物素标记蛋白质的原理是通过生物素与蛋白质之间的特异性亲和性相互作用,将生物素引入到蛋白质中,并利用生物素与检测物质的亲和性进行后续的检测和分析。
该技术在生命科学研究中具有广泛的应用,并为科研工作者提供了一种重要的工具。
biotin标记抗体原理

biotin标记抗体原理宝子们,今天咱们来唠唠这个超有趣的biotin标记抗体的原理呀。
咱先得知道biotin是啥,它呀,就像一个小小的魔法标签。
想象一下,它是那种超级可爱又独特的小贴纸。
Biotin也叫生物素,它在这个生物化学的小世界里可有着大本事呢。
抗体呢,就像是一群超级英雄,在我们的身体里到处巡逻,专门找那些外来的坏家伙,像细菌啊,病毒啊之类的。
但是呢,有时候我们想更好地追踪这些英雄的行动,或者让它们能更好地完成任务,就需要给它们做个特别的标记,这时候biotin就闪亮登场啦。
Biotin标记抗体的原理其实就像是一场超有爱的牵手游戏。
Biotin有个很特别的结构,这个结构就像是它伸出来的小手。
而抗体呢,也有一些可以和这只小手紧紧握住的地方。
这些地方就像是为biotin准备的小挂钩。
当我们把biotin和抗体放在一起的时候,它们就会自动地牵起手来,就这么自然又神奇地结合在一起啦。
你看啊,这个结合可不是随随便便的。
它有着很精确的化学相互作用。
Biotin的结构决定了它能准确无误地找到抗体上的结合位点,就像钥匙和锁一样匹配。
而且一旦它们结合上了,就还挺牢固的呢,不会轻易地分开。
这就好比是两个人一旦牵上手,就紧紧拉着不松开啦。
那这个标记有啥用呢?用处可大啦。
比如说在一些科学研究里,我们想看看抗体在细胞里或者在动物体内到底跑到哪里去了,就可以借助biotin这个小标签。
因为我们可以用带有特殊标记的东西,比如说荧光标记的东西,它能专门识别biotin。
这样一来,只要有标记了biotin的抗体存在的地方,就会闪闪发光啦,就像在黑夜里找到了宝藏一样。
我们就能清楚地看到抗体在身体里的行踪,是跑到细胞的这个角落了,还是聚集在某个组织周围了。
再说说在诊断方面的用处吧。
如果我们怀疑身体里有某种疾病相关的东西,比如特定的蛋白质。
我们可以用标记了biotin的抗体去检测。
这个抗体就会像小侦探一样,找到那些可疑的蛋白质,然后因为有biotin这个小标签,我们就能很容易地检测到它们之间的结合。
biotin标记蛋白原理

Biotin标记蛋白的原理主要基于生物素(Biotin)与亲和素(Avidin)之间的高亲和力相互作用。
生物素是一种小分子,可以与亲和素结合,形成稳定的复合物。
通过将生物素标记到目标蛋白上,可以与亲和素结合,从而实现目标蛋白的富集、分离和检测。
生物素标记蛋白的方法通常包括将生物素与目标蛋白结合的生物素化反应。
这个过程可以通过将生物素的化学基团与目标蛋白的氨基或羧基基团共价连接来实现。
连接生物素和目标蛋白的化学基团可以是琥珀酰亚胺酯、马来酰亚胺或叠氮化物等。
亲和素是一种天然存在于生物体内的蛋白质,具有非常高的亲和力和特异性,可以与生物素结合形成高亲和力的复合物。
通过将亲和素固定在固相支持物上,可以捕获与亲和素结合的生物素标记的目标蛋白。
这一过程可用于蛋白质的富集、纯化和检测。
Biotin标记蛋白的原理还广泛应用于免疫分析、蛋白质组学、生物分子相互作用等领域。
通过将生物素标记到抗体、蛋白质或其他分子上,可以与亲和素结合,实现信号的放大和检测,从而提高检测的灵敏度和特异性。
几种常见的抗体标记方法-酶标记、荧光素标记、同位素标记、生物素标记

几种常见的抗体标记方法-酶标记、荧光素标记、同位素标记、生物素标记抗体标记主要有酶标记、荧光素标记、同位素标记、生物素标记等,还有一些其他的标记方法例如金标记,本文主要讲述了这些抗体标记的基本原理、操作步骤。
、酶标记1 、辣根过氧化物酶(HRP) 标记辣根过氧化物酶(HRP) 标记单抗和多克隆抗体的常用方法是过碘酸钠法。
其原理是HRP 的糖基用过碘酸钠氧化成醛基,加入抗体IgG后该醛基与IgG 氨基结合,形成Schiff 氏碱。
为了防止HRP中糖的醛基与其自身蛋白氨基发生偶合,在用过碘酸钠氧化前先用二硝基氟苯阻断氨基。
氧化反应末了,用硼氢化钠稳定Schiff 氏碱。
这里介绍两种程序。
程序一:(1)将5mg HRP 溶于0.5ml 0.1mol/L NaHCO3 溶液中加0.5ml 10mmol/LNaIO4 溶液,混匀,盖紧瓶塞,室温避光作用2 小时。
(2)加0.75ml 0.1mol/L Na2CO3 混匀。
(3)加入0.75ml 小鼠已处理的腹水,或纯化单抗等(15mg/ml) ,混匀。
(4)称取SephadexG25 干粉0.3g ,加入一支下口垫玻璃棉的5ml 注射器外筒内;随后将上述交联物移入注射器外套;盖紧,室温作用(避光)3小时或4C过夜。
(5)用少许PBS 将交联物全部洗出,收集洗出液,加1/20V 体积新鲜配制的5mg/mlNaBH4 溶液,混匀,室温作用30 分钟;再加入3/20V NaBH4溶液,混匀,室温作用1小时(或4C过夜)。
(6)将交联物过Sephadex g200 或Sepharose6B(2.6 X 50cm)层析纯化,分管收集第一峰。
(7)酶结合物质量鉴定:克分子比值测定酶量(mg/ml)=OD403 X 0.4IgG 量(mg/ml)=(OD280- OD403X 0.3) X 0.62克分子比值(E/P)=酶量X 4/IgG量,一般在1-2之间。
酶结合率=酶量X体积/抗体,标记率一般为0.3-0.6,即1-2个HRP 分子结合在一个抗体分子上,标记率可大于0.6,0.8,0.9;OD403/OD280 等于0.4 时,E/P 约为1 。
生物素标记核酸方法

生物素标记核酸方法引言:生物素标记核酸方法是一种常用的实验技术,用于检测、定位和研究核酸的功能和分布情况。
生物素(Biotin)是一种小分子化合物,具有较强的亲和力和特异性,可以与酶和抗体等蛋白质结合,从而实现对核酸的标记和检测。
本文将介绍生物素标记核酸的原理、方法和应用。
一、生物素标记核酸的原理生物素标记核酸的原理基于生物素与亲和剂的结合。
生物素能够与亲和剂如酶、抗体等特异性结合,形成稳定的复合物。
通过将亲和剂标记在生物素上,就可以实现对核酸的标记。
常用的生物素标记方法包括生物素标记末端法、生物素标记引物法和生物素标记缺口法等。
二、生物素标记核酸的方法1. 生物素标记末端法生物素标记末端法是一种将生物素标记在核酸的末端的方法。
首先,将核酸末端修复,以便连接生物素分子。
然后,在核酸末端上引入生物素分子,通过特定的酶或化学试剂进行连接。
最后,通过适当的检测方法,如酶标测定法或荧光探针法,可以检测到生物素标记的核酸。
2. 生物素标记引物法生物素标记引物法是一种将生物素标记在核酸引物上的方法。
在引物的适当位置引入生物素分子,并通过特定的酶或化学试剂进行连接。
接下来,使用生物素标记的引物与待检测的核酸进行反应,形成生物素标记的核酸引物-目标核酸复合物。
最后,通过适当的检测方法,如PCR、电泳或原位杂交等,可以检测到生物素标记的核酸。
3. 生物素标记缺口法生物素标记缺口法是一种通过特定酶切割核酸,形成生物素标记的缺口的方法。
首先,在核酸的适当位置引入生物素分子,并通过特定的酶或化学试剂进行连接。
然后,使用特定酶切割核酸,使核酸链断裂形成缺口,并在断裂的位置上引入生物素标记。
最后,通过适当的检测方法,如原位杂交或荧光显微镜观察等,可以检测到生物素标记的核酸。
三、生物素标记核酸的应用1. 分子生物学研究生物素标记核酸方法在分子生物学研究中广泛应用。
例如,通过生物素标记的引物进行PCR扩增,可以检测和定量目标核酸的存在和表达水平。
生物素标记引物

生物素标记引物生物素标记引物是一种在分子生物学实验中常用的工具,可以用来检测、定位和分离特定的核酸或蛋白质。
本文将从生物素标记引物的原理、应用以及优缺点等方面进行介绍。
一、生物素标记引物的原理生物素标记引物的原理是利用生物素与亲生素之间的高度特异性结合。
生物素(biotin)是一种小分子化合物,与维生素H同属于B 族维生素。
生物素标记引物通常是通过在引物的末端或内部加入生物素分子,使得引物与生物素之间形成稳定的结合。
这种结合可以通过生物素与亲生素之间的非共价相互作用(如亲和力、电荷吸引力等)来实现。
生物素标记引物在分子生物学实验中有广泛的应用。
其中,最常见的应用包括:1. 探针:生物素标记引物可以与特定的DNA或RNA序列结合,用于检测目标序列的存在和定位。
这种技术常被应用于杂交、原位杂交、Northern blot和Southern blot等实验中。
2. 亲和纯化:生物素标记引物可以与生物素结合蛋白质特异性亲生素结合,通过亲和层析等技术将目标蛋白质从复杂的混合物中分离和纯化。
3. 免疫印迹:生物素标记引物可以与生物素结合的抗体结合,用于检测目标蛋白质的存在和定量。
这种技术常被应用于Western blot等实验中。
4. 荧光检测:生物素标记引物可以与荧光染料结合,用于荧光定量PCR、荧光原位杂交等实验中,从而实现对DNA或RNA的快速、敏感的检测。
三、生物素标记引物的优缺点1. 优点:(1)高度特异性:生物素与亲生素之间的结合是高度特异性的,可以准确地检测目标分子的存在和定位。
(2)稳定性:生物素与亲生素之间的结合是稳定的,不易受到环境因素的影响。
(3)灵敏度:生物素标记引物可以通过荧光或酶的反应来增强信号,从而提高检测的灵敏度。
2. 缺点:(1)成本较高:与其他标记方法相比,生物素标记引物的成本较高。
(2)标记容易:生物素标记引物的标记过程相对复杂,需要一些特殊的试剂和步骤。
(3)标记效率不高:生物素标记引物的标记效率一般较低,需要进行一定的优化。
生物素化标记作用

生物素化标记在免疫组化中起到了至关重要的作用。免疫组化是一种常用的分子生物学实验技术,用于检测细胞或组织中特定蛋白质的存在和定位。生物素化标记可以将生物素与抗体结合,形成生物素化抗体复合物。通过与细胞或组织中目标蛋白质的结合,生物素化抗体复合物可以用于检测目标蛋白质的表达和定位,从而帮助研究者了解蛋白质在细胞或组织中的分布和功能。
生物素化标记还广泛应用于蛋白质亲和纯化技术中。蛋白质亲和纯化是通过特定的亲和剂选择性地富集目标蛋白质的技术。生物素化标记可以将生物素引入到亲和剂(如亲和树脂、亲和抗体等)中,形成生物素化亲和剂。通过与目标蛋白质的结合,生物素化亲和剂可以用于选择性地富集目标蛋白质,从而帮助研究者纯化和分析蛋白质。
生物素化标记还可以应用于荧光显微镜分析中。荧光显微镜是一种常用的细胞和组织成像技术,可以用于研究生物体内部结构和功能。生物素化标记可以将生物素与荧光染料结合,形成生物素化荧光探针。通过与目标结构或分子的特异性结合,生物素化荧光探针可以用于实现对目标结构或分子的高分辨率成像,从而帮助研究者观察和分析生物过程。
生物素化标记在原位杂交实验中也发挥着重要的作用。原位杂交是一种用于检测特定核酸序列在细胞或组织中的存在和定位的技术。生物素化标记可以将生物素引入到探针(通常是亮氨酸探针)中,形成生物素化探针。通过与目标核酸序列的互补配对,生物素化探针可以用于检测目标核酸序列的存在和定位,从而帮助研究者了解基因表达和调控的机制。
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抗体/蛋白的生物素(Biotin)标记
一般每个抗体可以标记3~5个生物素,标记时,生物素与抗体的比率受抗体浓度影响,对于10 mg/ml 的抗体溶液来说,生物素应超过蛋白12倍(摩尔数),对于2 mg/ml 的抗体溶液应超过20倍,生物素也可以直接以粉末的形式加入蛋白溶液中。
蛋白样品不得含有叠氮钠、BSA、甘氨酸、Tris或其他任何有自由氨基的添加物。
SOP35 抗体/蛋白的生物素(Biotin)标记
1. 抗体/蛋白的前处理:
1.1 选择适当截留的超滤柱中加入400μl 标记反应溶液(0.1M PBS pH 7.2),加入1mg抗体,混匀。
1.2 4℃,6,000rpm,离心2min,弃滤液;于超滤柱中再加入200μl标记反应溶液,混匀。
4℃,6,000rpm,离心2min,
1.3 重复步骤1.2 6~7次。
1.4 混匀超滤柱中的残留的液体,室温静置1min;将超滤柱反转倒置于一新的超滤管中,4℃,6,000rpm,2min,收集液体。
1.5 取50μl PBS于超滤柱中混匀,静置1min。
倒置超滤柱,4℃,6,000rpm,2min,收集液体。
1.6 步骤1.4 与步骤1.5 的收集的滤液合并,用标记反应溶液调节抗体浓度到2mg/ml,4℃放置备用。
2. 生物素的标记:
2.1 将生物素溶解在合适的溶剂中(请参照所选购生物素的说明书,不同的生物素其溶剂不同),浓度为20mg/ml,按照生物素与抗体分子摩尔比1:20的比例加入抗体溶液,室温反应1h。
2.2 葡聚糖凝胶分离纯化/透析袋或者超滤管去除游离生物素及其他试剂。
2.3 将抗体保存于合适的抗体保存液。
进行抗体标记的时候,需要对抗体性质、交联剂和标记物的性质非常了解,否则很难标记出高品质的抗体;标记量低,导致信号值低;标记量太高,不但容易造成背景,并且还容易由于标记物的聚集造成信号拮抗,反而降低或者淬灭信号值。
标记物的种类繁多,不同类型的标记物其性质完全不一样,标记物很难选择和把握,建议初学者使用专业化的试剂盒进行标记,或者直接委托专业化公司标记。
福因德生物提供以下抗体标记相关产品,同时可以提供抗体/蛋白标记服务。