淀粉的液化实验报告doc
淀粉水解化学实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解淀粉水解的基本原理和实验方法。
2. 掌握淀粉水解实验的操作步骤。
3. 通过实验观察淀粉水解过程中的现象，验证淀粉水解反应的发生。
4. 探讨影响淀粉水解反应的因素。
二、实验原理淀粉是一种天然高分子碳水化合物，主要由葡萄糖单元通过α-1,4-糖苷键和α-1,6-糖苷键连接而成。
淀粉水解是指将淀粉分解成较小的糖类物质，如麦芽糖、葡萄糖等。
在酸性条件下，淀粉与水发生水解反应，生成葡萄糖。
实验原理方程式如下：（C6H10O5）n + nH2O → nC6H12O6三、实验材料与仪器1. 实验材料：- 淀粉- 稀硫酸- 碘液- 氢氧化钠溶液- 新制氢氧化铜悬浊液- 银氨溶液- 碱性溶液2. 实验仪器：- 试管- 烧杯- 滴管- 酒精灯- 玻璃棒- 铁架台- 酒精喷灯四、实验步骤1. 准备淀粉溶液：称取一定量的淀粉，加入适量的蒸馏水，搅拌溶解，备用。
2. 水解反应：- 将淀粉溶液倒入试管中，加入适量的稀硫酸，搅拌均匀。
- 将试管放入烧杯中，用酒精灯加热，观察溶液的变化。
- 加热过程中，每隔一段时间取样，用碘液检测溶液中的淀粉含量，观察溶液颜色的变化。
3. 检验水解产物：- 当溶液颜色由蓝色变为淡黄色，表明淀粉已基本水解。
- 停止加热，用氢氧化钠溶液中和溶液中的稀硫酸，使溶液呈碱性。
- 加入新制氢氧化铜悬浊液，观察是否有砖红色沉淀生成，以验证葡萄糖的存在。
4. 验证淀粉水解程度：- 取少量水解后的溶液，加入碘液，观察溶液颜色的变化，以判断淀粉是否完全水解。
五、实验结果与分析1. 实验结果：- 在加热过程中，溶液颜色由蓝色逐渐变为淡黄色，说明淀粉发生了水解反应。
- 当溶液颜色由蓝色变为淡黄色时，停止加热，加入氢氧化钠溶液中和稀硫酸，使溶液呈碱性。
- 加入新制氢氧化铜悬浊液后，观察到砖红色沉淀生成，说明水解产物中含有葡萄糖。
- 加入碘液后，溶液颜色未发生明显变化，表明淀粉已基本水解。
2. 结果分析：- 实验结果表明，在酸性条件下，淀粉发生了水解反应，生成了葡萄糖。
淀粉的液化实验报告
淀粉的液化实验报告实验目的通过实验了解淀粉的液化过程及其影响因素，并探究合适的条件下淀粉液化的最佳状态。
实验原理淀粉的液化是指将淀粉颗粒分散在水中，并通过加热和机械搅拌，使淀粉颗粒发生溶胀、变软的过程。
液化的最终目的是将淀粉转化为可溶性的糊精，以便后续的糖化和发酵过程。
液化过程中的主要化学反应是淀粉颗粒的溶液化，即淀粉分子链的断裂和胶化。
液化过程中的主要影响因素包括温度、酸度、淀粉浓度和搅拌速度等。
合适的液化条件可以提高淀粉的溶解度和胶化程度，从而提高糊精的产率和质量。
实验步骤与结果1. 准备材料：淀粉溶液、电热板、玻璃棒、PH试纸等；2. 将淀粉溶液倒入锅中，加热至80；3. 在加热的同时，缓慢搅拌淀粉溶液；4. 测量溶液的PH值，记录下来；5. 观察淀粉溶液的状态，如是否变稠；6. 继续加热和搅拌，直至淀粉液化完全。
根据实验结果，我们记录了不同液化条件下淀粉的状态和溶液的PH值，如下表所示：条件淀粉状态溶液PH值80、pH5 未液化，浆糊状态 4.885、pH6 部分液化 5.290、pH7 完全液化 5.595、pH8 过度液化 5.8数据分析与讨论从实验结果可以看出，液化淀粉的最佳工艺条件为90和中性（pH7）环境。
在这种条件下，淀粉的液化程度最高，溶液的PH值也相对稳定。
在实验中观察到，低温下淀粉无法完全液化，形成浆糊状态；高温下淀粉液化过度，导致溶液黏稠度降低。
这说明温度是控制淀粉液化效果的重要因素。
另外，PH值也对液化效果有影响。
过酸或过碱的环境会抑制淀粉的液化，而近中性的环境有利于淀粉分子链的断裂和胶化。
因此，控制液化过程中的酸碱度十分关键。
实验结论通过本次实验，我们得出了以下结论：1. 液化淀粉的最佳工艺条件为90和中性（pH7）环境；2. 温度是影响淀粉液化效果的重要因素；3. 过酸或过碱的环境会抑制淀粉的液化，近中性的环境有利于淀粉的溶解和胶化。
实验改进为了进一步探究淀粉的液化过程，可在后续实验中进行以下改进：1. 考察不同酸度对淀粉液化效果的影响；2. 考察不同淀粉浓度对液化效果的影响；3. 探究其他因素（如搅拌速度）对淀粉液化的影响。
生化实验淀粉的实验报告
一、实验目的1. 学习淀粉的提取和鉴定方法。
2. 掌握淀粉酶的活性测定方法。
3. 了解淀粉在生物体内的作用。
二、实验原理1. 淀粉是一种由葡萄糖分子组成的多糖，广泛存在于植物中，是植物储存能量的主要形式。
2. 淀粉酶是一种能够催化淀粉水解的酶，根据其作用方式可分为α-淀粉酶和β-淀粉酶。
3. 淀粉酶活性可以通过测定在一定时间内淀粉水解的量来衡量。
三、实验材料与仪器1. 材料：马铃薯、淀粉酶、碘液、蒸馏水、盐酸、氢氧化钠、酚酞指示剂等。
2. 仪器：天平、烧杯、试管、滴管、移液管、恒温水浴锅、分光光度计等。
四、实验步骤1. 淀粉的提取（1）称取一定量的马铃薯，去皮，切成小块。
（2）将马铃薯块放入烧杯中，加入适量的蒸馏水，用研钵捣碎。
（3）将捣碎后的马铃薯浆液过滤，收集滤液。
（4）向滤液中加入适量的盐酸，调节pH值为4.5。
（5）将调好pH值的滤液加热至60℃，保持30分钟。
（6）将加热后的滤液冷却，用蒸馏水定容至100mL。
2. 淀粉的鉴定（1）取少量提取的淀粉溶液，加入碘液，观察颜色变化。
（2）将淀粉溶液滴在载玻片上，用显微镜观察淀粉颗粒的形态。
3. 淀粉酶的活性测定（1）取一定量的淀粉酶溶液，加入适量的淀粉溶液，混合均匀。
（2）将混合液置于恒温水浴锅中，设定温度为37℃。
（3）每隔一定时间，取出少量混合液，加入碘液，观察颜色变化。
（4）根据颜色变化，计算出淀粉酶的活性。
五、实验结果与分析1. 淀粉的鉴定：提取的淀粉溶液加入碘液后，溶液呈蓝色，证明提取的淀粉成功。
2. 淀粉酶的活性测定：根据颜色变化，计算出淀粉酶的活性为X单位。
六、实验讨论1. 淀粉的提取过程中，盐酸的作用是调节pH值，使淀粉酶活性适宜。
2. 淀粉酶的活性受温度、pH值等因素的影响，本实验中选取了适宜的温度和pH值进行测定。
3. 实验过程中，要注意操作规范，避免误差的产生。
七、实验总结通过本次实验，我们学习了淀粉的提取和鉴定方法，掌握了淀粉酶的活性测定方法，了解了淀粉在生物体内的作用。
淀粉转化实验报告模板
一、实验目的1. 了解淀粉的化学性质及其转化过程。
2. 掌握淀粉水解实验的基本原理和方法。
3. 熟悉淀粉酶的活性测定及影响因素。
二、实验原理淀粉是一种天然高分子碳水化合物，主要由葡萄糖单元组成。
在淀粉酶的作用下，淀粉分子可以水解成葡萄糖。
本实验通过测定淀粉水解过程中葡萄糖的生成量，来了解淀粉的转化过程。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：- 淀粉- 淀粉酶- 葡萄糖标准溶液- 酚酞指示剂- 硫酸铜溶液- 氢氧化钠溶液- 水浴锅- 试管- 移液管- 离心机- pH计2. 实验仪器：- 电子天平- 恒温水浴锅- 移液管- 离心机- pH计四、实验步骤1. 准备淀粉酶溶液：称取适量淀粉酶，用蒸馏水溶解，配制成一定浓度的淀粉酶溶液。
2. 淀粉水解：取一定量的淀粉溶液，加入适量淀粉酶溶液，调节pH值至适宜范围，置于恒温水浴锅中进行水解反应。
3. 水解反应结束后，取出溶液，加入适量硫酸铜溶液和氢氧化钠溶液，混匀。
4. 将溶液置于离心机中离心，取上清液。
5. 使用移液管取一定量的上清液，加入酚酞指示剂，观察颜色变化。
6. 将溶液滴定至终点，记录消耗的葡萄糖标准溶液体积。
7. 根据葡萄糖标准溶液的浓度和消耗体积，计算淀粉水解产生的葡萄糖量。
五、实验数据记录与分析1. 记录实验过程中各步骤的温度、pH值等条件。
2. 记录实验过程中淀粉酶溶液的浓度、水解时间等参数。
3. 记录实验过程中消耗的葡萄糖标准溶液体积。
4. 根据实验数据，绘制淀粉水解曲线，分析淀粉转化过程。
5. 讨论实验结果，分析影响淀粉转化效率的因素。
六、实验结果与讨论1. 实验结果显示，随着水解时间的延长，淀粉水解产生的葡萄糖量逐渐增加。
2. 当水解时间达到一定值后，葡萄糖生成量趋于稳定，说明淀粉已基本转化。
3. 实验结果表明，pH值、淀粉酶浓度、水解温度等因素对淀粉转化效率有显著影响。
4. 在适宜的pH值、淀粉酶浓度和水解温度条件下，淀粉转化效率较高。
怎么写淀粉实验报告
怎么写淀粉实验报告一、实验目的本次实验的目的是通过实验方法研究淀粉的性质和特点，了解淀粉的结构和功能，并掌握相关实验技能。
二、实验原理淀粉是一种多糖类化合物，由α-葡萄糖分子串联而成。
在酸性环境下，淀粉会分解为单糖葡萄糖分子，通过添加碘液可以观察到淀粉的蓝色反应。
三、实验器材和试剂实验器材：- 烧杯- 试管- 实验夹- 针管- 酒精灯试剂：- 淀粉溶液- 碘液- 盐酸溶液- 葡萄糖溶液四、实验步骤1. 取一烧杯，加入适量的淀粉溶液。
2. 加入适量的盐酸溶液，进行酸性条件下的淀粉分解反应。
3. 用针管将碘液滴加到淀粉溶液中，观察颜色变化，并进行记录。
4. 将加热后的淀粉溶液与原始淀粉溶液进行比较，观察并记录颜色变化。
5. 将葡萄糖溶液与淀粉溶液混合，观察颜色变化，并进行记录。
五、实验结果实验结果如下：1. 在酸性条件下，淀粉溶液与盐酸溶液反应后，淀粉分解为单糖，混合溶液呈现橙黄色。
2. 加入碘液后，淀粉溶液由透明变为蓝黑色，表示淀粉与碘反应生成碘化淀粉。
3. 加热后的淀粉溶液呈现橙红色，与未加热的淀粉溶液呈现颜色差异。
4. 将葡萄糖溶液与淀粉溶液混合后，颜色变化不明显，仍呈现蓝黑色。
六、实验讨论从实验结果中可以得出以下结论：1. 淀粉在酸性条件下容易分解为单糖，而在中性或碱性条件下不容易分解。
2. 碘液可以作为淀粉分子的检测试剂，在有淀粉存在时呈现蓝色反应。
3. 加热后的淀粉溶液与未加热的淀粉溶液呈现颜色差异，可能由于加热导致淀粉分子结构发生变化。
4. 淀粉与葡萄糖的混合溶液颜色变化不明显，说明葡萄糖不会影响淀粉与碘的反应。
七、实验总结通过这次实验，我对淀粉的性质和特点有了一定的了解。
我学会了如何通过实验方法检测淀粉的存在以及分解反应，掌握了实验操作的技巧。
同时，在实验过程中需要注意安全，正确使用实验器材和试剂，严格遵守实验室的操作规程。
实验的结果与我的预期相符，实验结论具有一定的可靠性。
通过这次实验，我对淀粉的结构和功能有了更深入的认识。
淀粉_水_实验报告
一、实验目的1. 了解淀粉在水中的溶解和膨胀过程；2. 探究淀粉与水分子之间的相互作用；3. 分析淀粉在水中的溶解度与温度、时间等因素的关系。
二、实验原理淀粉是一种天然高分子碳水化合物，由许多葡萄糖单元通过α-1,4-糖苷键和α-1,6-糖苷键连接而成。
在水溶液中，淀粉分子与水分子发生相互作用，导致淀粉的溶解和膨胀。
实验过程中，通过观察淀粉在水中的溶解、膨胀现象，以及测量不同条件下淀粉的溶解度，可以了解淀粉与水分子之间的相互作用。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：淀粉、蒸馏水、烧杯、量筒、温度计、搅拌棒、电子天平、烘箱、干燥器等。
2. 实验仪器：恒温水浴锅、计时器、滴定管、pH计等。
四、实验步骤1. 溶解实验（1）称取1.0g淀粉，放入烧杯中；（2）加入50mL蒸馏水，用搅拌棒搅拌均匀；（3）将烧杯放入恒温水浴锅中，设定温度为60℃，恒温搅拌30分钟；（4）取出烧杯，用滤纸过滤，收集滤液；（5）用电子天平称量滤液质量，计算溶解度。
2. 膨胀实验（1）称取1.0g淀粉，放入烧杯中；（2）加入50mL蒸馏水，用搅拌棒搅拌均匀；（3）将烧杯放入恒温水浴锅中，设定温度为60℃，恒温搅拌30分钟；（4）取出烧杯，用滤纸过滤，观察滤液和滤渣的颜色变化；（5）将滤渣放入烘箱中，在105℃下烘干至恒重，称量滤渣质量。
3. 影响因素实验（1）温度：在20℃、40℃、60℃、80℃的水中分别进行溶解实验，观察溶解度变化；（2）时间：在60℃的水中，分别搅拌5分钟、10分钟、20分钟、30分钟，观察溶解度变化；（3）pH值：在pH值为4、7、10的水中分别进行溶解实验，观察溶解度变化。
五、实验结果与分析1. 溶解实验实验结果显示，在60℃的水中，淀粉的溶解度为25.2g/100mL。
随着温度的升高，淀粉的溶解度逐渐增大。
2. 膨胀实验实验结果显示，在60℃的水中，淀粉滤液呈蓝色，滤渣呈白色。
随着搅拌时间的延长，滤液颜色逐渐变浅，滤渣颜色逐渐变深。
淀粉的实验实验报告
一、实验目的1. 掌握淀粉的基本性质和实验方法；2. 了解淀粉的提取和鉴定方法；3. 掌握淀粉在食品和医药领域的应用。
二、实验原理淀粉是一种天然高分子碳水化合物，广泛存在于植物种子、根茎等部位。
淀粉在食品、医药、化工等领域具有广泛的应用。
本实验主要研究淀粉的提取、鉴定和应用。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：土豆、玉米、小麦、面粉等；2. 仪器：天平、烧杯、漏斗、滤纸、碘液、显微镜、pH计等。
四、实验步骤1. 淀粉的提取（1）称取适量土豆，洗净去皮，切成小块；（2）将土豆块放入烧杯中，加入适量水，用搅拌器搅拌；（3）将混合液过滤，收集滤液；（4）将滤液煮沸，加入适量氯化钠，搅拌，静置；（5）将混合液过滤，收集滤液，即为淀粉溶液。
2. 淀粉的鉴定（1）取少量淀粉溶液，加入碘液，观察颜色变化；（2）取少量淀粉溶液，加入适量稀硫酸，观察颜色变化；（3）取少量淀粉溶液，加入适量氢氧化钠溶液，观察颜色变化；（4）取少量淀粉溶液，加入适量硫酸铜溶液，观察颜色变化。
3. 淀粉的应用（1）食品领域：淀粉在食品工业中主要用作增稠剂、稳定剂、乳化剂等。
例如，在面包、糕点、饮料等食品中添加淀粉，可以改善食品的口感和质地；（2）医药领域：淀粉在医药领域具有广泛的应用，如淀粉酶、淀粉酶抑制剂等。
淀粉酶是一种消化酶，可以帮助人体消化淀粉，降低胃肠道疾病的发生率；（3）化工领域：淀粉在化工领域主要用于制备淀粉衍生物，如淀粉酯、淀粉醚等。
这些衍生物在涂料、胶粘剂、纺织等领域具有广泛的应用。
五、实验结果与分析1. 淀粉的提取通过实验，成功从土豆中提取出淀粉溶液，观察到溶液呈透明状。
2. 淀粉的鉴定（1）加入碘液后，淀粉溶液呈现蓝色，证明其中含有淀粉；（2）加入稀硫酸后，淀粉溶液颜色逐渐变浅，说明淀粉在酸性条件下不稳定；（3）加入氢氧化钠溶液后，淀粉溶液颜色逐渐变浅，说明淀粉在碱性条件下不稳定；（4）加入硫酸铜溶液后，淀粉溶液呈现蓝色，说明淀粉与铜离子反应生成蓝色络合物。
淀粉水解实验报告
淀粉水解实验报告篇一：淀粉水解糖的制备淀粉水解糖的制备一实验目的：（1）通过实验，了解淀粉糊化及酶法制备淀粉糖浆的基本原理；（2）掌握淀粉酶解法制备淀粉糖浆的实验方法。
二实验原理水解淀粉为葡萄糖的方法有三种，即酸解法，酶解法，酶酸法及双酶法。
本实验采用的是双酶法将淀粉水解成葡萄糖。
首先利用的是α-淀粉酶将淀粉液化，转化为糊精及低聚糖，使淀粉可溶性增加；接着利用糖化酶将糊精及低聚糖进一步水解，转化为葡萄糖。
三实验器材1，实验材料玉米粉α—淀粉酶（2000u／g）糖化酶（50000 u／g）2，仪器设备恒温水浴槽真空泵抽滤纸及布氏漏斗四操作步骤50克淀粉置于400毫升烧杯中，加水100毫升，搅拌均匀，配成淀粉浆，用5% Na2CO3调节pH=—，加入1毫升5%CaCL2溶液，于90-95℃水浴上加热，并不断搅拌，淀粉浆由开始糊化直至完全成糊。
加入液化型α---淀粉酶1克，不断搅拌使其液化，并使温度保持在70℃。
然后将烧杯移至电炉加热到95℃至沸，灭活10分钟。
过滤，滤液冷却到55℃，加入糖化酶1克，调节pH=，于60-65℃恒温水浴中糖化3-4小时，即为淀粉糖浆，若要浓浆，可进一步浓缩。
称重篇二：实验一淀粉酸水解制糖与还原糖的测定实验一淀粉酸水解制糖与还原糖的测定一、试验目的①掌握酸法制糖的工艺与方法；②掌握还原糖的测定方法。
二、酸水解制糖原理在淀粉酸水解过程中，有如下三种反应：在水解过程中，淀粉的颗粒结构被破坏，α－－糖苷键及α－－糖苷键在酸的催化下被切断，示踪同位素原子O18研究证明，H＋先与H2O结合生成H3O ＋，H3O＋能与糖苷键的氧原子结合生成不稳定化合物Ⅰ，随后C1－O键断裂生成C1正碳离子Ⅱ，H2O与具有正电荷的C1结合，再使C1失去H＋，完成糖苷键的水解过程。
三、实验仪器7230型分光光度计、水浴锅或电炉、100mL量筒、100mL或50mL容量瓶9个、10mL与2mL移液管各1支、250mL 烧杯、250mL锥形瓶2个、布氏漏斗、真空泵、牛皮纸。
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淀粉的液化实验报告篇一：淀粉液化及糖化实验淀粉液化及糖化实验一、实验目的1. 掌握用酶解法从淀粉原料到水解糖的制备原理及方法；2. 掌握还原糖的测定方法。
二、实验原理在发酵过程中，因有些微生物不能直接利用淀粉，当以淀粉为原料时，必须先将淀粉水解成葡萄糖，才能供发酵使用。
一般将淀粉水解为葡萄糖的过程成为淀粉的糖化，所制得的糖液成为淀粉水解糖。
水解淀粉为葡萄糖的方法包括酸解法、酸酶结合法和酶解法。
实验室常采用酶解法制备淀粉水解糖。
酶解法是指利用淀粉酶将淀粉水解为葡萄糖的过程。
酶解法葡萄糖可分为两步：第一步是利用α-淀粉酶将淀粉转化为糊精及低聚糖，使淀粉的可溶性增加，这个过程称为液化；第二步是利用糖化酶将糊精或低聚糖进一步水解，转变为葡萄糖的过程，这个过程在生产上成为糖化。
淀粉的液化和糖化都是在酶的作用下进行的，故该方法也称为双酶法。
1. 酶解法液化原理淀粉的酶解法液化是以α-淀粉酶作为催化剂，该酶作用于淀粉的α-1,4-糖苷键，从内部随机地水解淀粉，从而迅速将淀粉水解为糊精及少量麦芽糖，所以α-淀粉酶也称内切淀粉酶。
淀粉受到α-淀粉酶的作用后，其碘色反应发生以下变化：蓝色→紫色→红色→浅红色→不显色（即显碘原色）。
酶解法液化因生产工艺不同分为间歇法、半连续法和连续法；液化设备分为管式、罐式和喷射式；加酶方法包括一次加酶法、二次加酶法和三次加酶法；根据酶制剂的耐温性分为中温酶法、高温酶法及中温酶和高温酶混合法。
本实验采用：高温酶法，间歇式，罐式，一次加酶法。
2. 酶解法糖化原理淀粉的酶解法糖化是以糖化酶为催化剂，该酶从非还原末端以葡萄糖为单位依次分解淀粉的α-1,4-糖苷键或α-1,6-糖苷键，由于是从链的一端逐渐一个个地切断为葡萄糖，所以糖化酶也成为外切淀粉酶。
淀粉糖化的理论收率：因为在糖化过程中有水的参与反应，故糖化的理论收率为111.1%(C6H10O5) n +H2O →n C6H12O6三、实验仪器与试剂1. 仪器分光光度计、恒温水浴锅、烘箱、滴定管、酸度计、电炉、离心机、白瓷板、烧杯、试管等。
2. 试剂玉米淀粉、α-淀粉酶、糖化酶、PH试纸、盐酸、葡萄糖溶液、DNS试剂、无水酒精等。
磷酸-柠檬酸缓冲液（PH6.0）：称取磷酸氢二钠（Na2HPO4·12H2O）45.23 g，柠檬酸（C6H8O7·H2O）8.07 g，用蒸馏水溶解定容至1000 mL，配好后应以酸度计调整PH值为6.0。
原碘液（存储液）：称取0.5 g碘和5.0 g碘化钾，研磨，溶于少量蒸馏水中，然后定容至100 mL，储存于棕色瓶中备用。
稀碘液（工作液）：取1 m/L原碘液用蒸馏水稀释100倍（当天制备）。
反应终止液：0.1 mol/L硫酸。
四、实验方法1. 淀粉的液化配置30%的淀粉乳（按照0.1 L配制）两份，调节PH值至6.5，加入氯化钙（固形物0.2%，钙离子的存在可以保持α-淀粉酶在水解过程中保持活力和稳定性），加入α-淀粉酶（12~20 U/g淀粉）；在剧烈搅拌下，先加热至72 ℃，保温15 min；再加热至90 ℃，并维持30 min，中间不停止搅拌，以达到所需的液化程度（DE值15~18%）；取小样检测碘色反应呈棕红色；液化反应后，再升温至100~120 ℃，保持5~8 min，以凝聚蛋白质；以6000 r/min离心5 min得到上清液。
2. 淀粉的糖化迅速将上述上清液用盐酸将PH调至4.2~4.5，同时迅速降温至60 ℃；然后加入糖化酶（酶活力为10000 U的酶液0.5 mL），于60 ℃保温1~2 h；当用无水酒精检验无糊精存在时，将溶液PH值调至4.8~5.0，同时，将溶液加热至80 ℃，保温20 min；然后将溶液温度降至60~70 ℃，以6000 r/min 离心5 min即得到糖上清液；量取该糖液体积，取样分析还原糖含量(测定方法参见附录“葡萄糖含量的测定（3,5-二硝基水杨酸比色法）”相关内容)。
五、实验结果1. 在详细记录实验数据基础上完成下表，计算淀粉转化率。
③葡萄糖含量计算六、实验思考1. 分析糖化酶用量对糖化效果的影响？2. 淀粉液化过程中几个保温过程有何作用？附录1：葡萄糖含量的测定（3,5-二硝基水杨酸比色法）一、实验原理本实验是利用3,5-二硝基水杨酸（DNS）试剂与还原糖溶液共热后被还原成棕红色的氨基化合物，在一定范围内还原糖的含量和棕红色物质颜色深浅的程度成一定比例关系，故可用于比色测定。
葡萄糖与3,5-二硝基水杨酸试剂反应生成的有色物质在540 nm波长下有最大吸收峰，故在此波长下进行比色测定。
二、实验方法1. 标准曲线的绘制取6支大试管，分别编号0~5，按下表1加入各种试剂。
表1 葡萄糖含量的测定将各试管中溶液振荡均匀后，在沸水浴中准确煮沸5 min，将试管取出迅速用冷水冷却至室温，加入蒸馏水15 mL，摇匀。
在540 nm波长下，用0号试管作为空白调零，测定其他试管内溶液的吸光度。
以吸光度为纵坐标，葡萄糖含量为横坐标，绘制标准曲线。
2. 样品的测定将发酵液5 mL，以5000 r/min离心5 min，取上清液1 mL置于试管中，加入DNS试剂3mL，振荡混匀后，在沸水浴中准确煮沸5 min，取出迅速用冷水冷却至室温，加入蒸馏水15 mL，摇匀。
在540 nm波长下，用0号试管作为空白调零，测定其他试管内溶液的吸光度。
利用Origin或Excel 软件绘制的标准曲线，求出样品中葡萄糖的含量。
篇二：玉米淀粉的液化与糖化玉米淀粉的液化与糖化一、实验目的1、掌握用酶法水解淀粉制备水解糖的原理及方法。
2、掌握还原糖的化学测定和比色测定方法。
二、实验仪器、设备和材料1设备25升罐（可用本院25升发酵罐代替）；装料按20升计，采用小型板框过滤机压滤，烘箱；水桶，量筒。
2分析仪器分光光度计，水浴锅，糖度计，滴定管，电炉，白瓷板，三角瓶，阿贝折光仪，比重瓶，pH计。
3实验主要原料：玉米淀粉，高温液化酶和糖化酶。
三、实验原理、过程和方法1、主要过程：通过双酶法制糖，从玉米淀粉原料出发，经配料，糊化，液化和糖化，过滤，制备成淀粉水解糖。
本实验所得到的糖液，可用于下一批酵母发酵实验。
2、配料：称重，按照20升有效体积，配制30%淀粉乳。
取样烘干至恒重，测定淀粉中的水分含量。
3、糊化和液化糊化原理：将淀粉乳加热，淀粉颗粒膨胀，由于颗粒的膨胀，晶体结构消失，变成糊状液体，淀粉不再沉淀，这种现象称为糊化。
不同的淀粉的糊化温度不同。
如玉米淀粉开始糊化的温度为62.0℃,中点温度为67℃，终结温度为72℃。
糊化分为：预糊化（吸水），糊化（体积膨胀）。
糊化过程中，要防止淀粉的老化（分子间氢键已断裂的糊化淀粉又重新排列形成新的氢键的过程）。
液化原理：液化是利用液化酶使糊化淀粉水解到一定的糊精和低聚糖程度，粘度大大降低，流动性增加。
液化方法分：酸法、酶酸法、酶法等。
以生产工艺不同又分为间歇法，半连续和连续式；液化设备有：管式、罐式、喷射式。
加酶方法有：一次加酶、二次加酶、三次加酶。
根据酶制剂的耐温性分为中温酶法、高温酶法、或中温酶和高温酶混合法。
本实验采用：高温酶法，间歇式，罐式，二次加酶法。
间歇液化法工艺流程：配制30%的淀粉乳，PH值6.5，加入氯化钙（对固形物0.2%），加入液化酶(加酶量根据酶制剂厂商的要求)，在剧烈搅拌下，先加热至72℃，保温15min，再加热至90℃，并维持30min，以达到所需的液化程度（DE值：15—18%）。
碘反应呈棕红色：最好在液化后，再升温至120℃，保持5—8 min，以凝聚蛋白质，改进过滤。
4、糖化糖化理论：糖化的理论收率：因为在糖化过程中，水参与反应，故糖化的理论收率为111.1%。
（C6H10O5）n+nH2O=nC6H12O6 淀粉水葡萄糖162 18 180糖化实际收率：实际收率=淀粉转化率：指100份淀粉中有多少份淀粉被转化为葡萄糖。
淀粉转化率的计算：转化率DE值：用DE值表示淀粉水解的程度或糖化程度。
糖化液中还原性糖以葡萄糖计，占干物质的百分比称为DE值。
DE值计算：DE=[糖液体积(V)?糖液葡萄糖浓度%(C)]?100% [投入淀粉量(W)?淀粉含量(C)]还原糖用裴林氏法等法测定，浓度表示：葡萄糖g/100ml糖液；干物质用阿贝折光仪测定，浓度表示：干物质g/100ml 糖液。
影响DE值的因素：糖化时间：最初糖化时，糖化速度快，DE值显著上升；但24h后，当DE值达到90%以上时，糖化速度显著放慢。
液化DE值与糖化DE值的关系：液化程度应控制适当，太低或太高均不利。
原因是液化程度低，则粘度大，难操作；同时，由于液化程度低，底物分子少，水解机会少，影响糖化速度；液化程度低，易发生老化；但液化超过一定程度，则不利于糖化酶与酶与糊精生成络合结构，影响催化效率，造成糖化液的最终DE值低。
故应在碘试本色的前提下，液化DE值越低，则糖化液的最高DE值越高。
一般液化DE值应控制在12—18%。
酶制剂用量与糖液DE值的关系：糖化时间与糖化酶用量关系表：为加快糖化速度，可以提高酶用量，缩短糖化时间。
但酶用量太高，反而使复合反应严重，最终导致葡萄糖值降低，在实际生产中，应充分利用糖化罐的容量，尽量延长糖化时间，减少糖化酶用量。
糖化酶参考用量：液化DE值17%，淀粉乳33%，60℃，pH4.5，酶制剂（NoVo-150）用量：0.75-1ml/kg绝干淀粉，或150 u/g绝干淀粉。
糖化时间36 h。
糖化工艺流程：液化结束后，迅速将料液用酸将pH调至4.2-4.5，同时迅速降温至60℃，加入糖化酶，60℃保温数小时后，当用无水酒精检验无糊精存在时，将料液pH调至4.8—5.0，同时，将料液加热至80℃，保温20min，然后将料液温度降至，开始过滤。
5过滤在发酵罐内将料液冷却至60—70℃；洗净板框过滤机，装好滤布；接好板框滤机的管道；泵料过滤；热水洗涤（60—70℃）；空气吹干；过滤结束后，洗净过滤机及有关设备。
量取糖液体积；取样分析还原糖浓度。
6、组织形式：每班分为四组，每7-8个学生。
四个罐分别由四组操作，加酶量可互不相同，或分为两种，每两组选定一种酶的浓度，以便做出不同加酶量条件下还原糖动力曲线。
四、实验分析项目和方法分析试剂：测定液化反应终点（碘反应）；总糖（裴林法）；还原糖（水杨酸比色法）的测定方法；原料淀粉含量的测定，原料含水量的测定（烘干称重法）；糖液透光率（分光光度计法）；糖化终点测定（无水乙醇检验）；糊化液和糖化液DE值；用分光分度计对料液透光度的测定方法。
五、数据处理在详细记录实验数据的基础上完成实验报告。
计算转化率：各组配合实验，不同加酶量条件下还原糖浓度动力学曲线。