实验一 免疫抗体的制备及效价检测.

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抗体制备及效价测定讲义

抗体制备及效价测定讲义

抗体制备及效价测定讲义实验一、兔抗人IgG制备一、实验材料1.实验动物:健康雄性家兔1只;2.抗原:纯化人IgG lmg;3.实验试剂:完全福氏佐剂(CFA),不完全弗氏佐剂(IFA),0.01M PBS(8 g NaCl,0.2 g KCl,2.9 g Na2HPO4.12H2O,0.2 g KH2PO4,以NaOH调节pH至7.2,加双蒸水至1000 mL),普鲁卡因溶液,肾上腺素,硫柳汞,叠氮钠。

4.实验用具:2.5mL、5mL注射器,10mL无菌小烧杯,塑料静脉插管,5mL无菌冻存管,250mL 无菌三角瓶,50mL无菌尖底离心管。

二、操作步骤1.抗原制备:将纯化的人IgG用0.01M PBS(pH7.2)或生理盐水稀释成lmg/mL,加入等体积无菌CFA或IFA 至5mL无菌冻存管中,置于超声波破碎仪上,粉碎头浸入液面下0.5-0.8 cm,离瓶底距离0.5 cm左右,以免打碎玻璃瓶,抗原置冰上,每次乳化10-15秒,间隔1分钟左右,反复乳化3-4次即。

将乳化剂滴入冷水中,若保持完整不分散,成滴状浮于水面,即乳化完全,为合格的油包水剂。

2.家兔免疫:(1)家兔捉拿方法:一只手抓住兔的颈部皮毛,将兔提起,用另一只手托其臀,或用手抓住背部皮肤提起来,放在实验台上,如图1:图1 家兔的捉拿方法(2)初次免疫:在家兔足掌、腋窝淋巴结周围、背部两侧、颌下、耳后等处选择6-10处免疫接种点,采用肌内、皮下或皮内注射,每点注射上述乳化人IgG抗原0.2mL。

(3)二次免疫:第一次免疫后间隔2周再以lmg/mL人IgG抗原加等体积IFA乳化后于后腿肌肉或背部皮下多点加强免疫。

(4)三次免疫:第二次免疫后间隔1周再以lmg/mL人IgG抗原加等体积IFA乳化后于后腿肌肉或背部皮下多点加强免疫。

(5)终末免疫:第三次免疫后间隔1周再以lmg/mL人IgG抗原加等体积IFA乳化后于后腿肌肉或背部皮下多点加强免疫。

疫苗效价测定方法

疫苗效价测定方法

疫苗效价测定方法疫苗效价测定是评估疫苗质量和有效性的重要指标之一。

通过准确测定疫苗中的有效成分,可以确定疫苗的效力。

本文将详细介绍疫苗效价测定的方法及其步骤,旨在帮助读者了解和应用这一重要的测定方法。

一、疫苗效价测定方法的基本原理疫苗效价测定是通过实验方法测定疫苗中有效免疫物质的含量,进而评估疫苗的免疫力。

一般来说,疫苗效价的测定主要分为两种方法:生物学方法和化学物理方法。

生物学方法是通过动物实验来评估疫苗效力,如活病毒疫苗的TCID50法、灭活疫苗的保护性实验法等。

化学物理方法则是通过测定特定成分的含量来评估疫苗效力,如疫苗抗原含量的酶标法、蛋白质含量的比色法等。

1. 建立实验流程:首先,需要确定实验目的和所需测定的疫苗成分,然后制定实验方案和操作流程,确保实验的可重复性和准确性。

2. 样品制备:样品制备是疫苗效价测定的关键步骤之一。

根据实验方案,选择适当的方法提取和纯化疫苗中的有效成分。

具体方法可以根据疫苗类型和测定对象的不同而有所区别。

3. 样品检测:将制备好的样品进行检测,可以选择合适的化学物理方法或生物学方法进行测定。

比如通过酶标法检测疫苗中的抗原含量,或通过保护性实验评估疫苗的免疫力。

4. 数据处理和分析:根据实验结果,进行数据处理和统计分析,计算出疫苗中有效成分的含量,并评估疫苗的效力。

在此过程中,需要根据实验设计和原理进行相应的计算和判断。

三、疫苗效价测定方法的举例说明以灭活疫苗的抗体测定为例,介绍疫苗效价测定的具体步骤:1. 实验目的:评估灭活疫苗中免疫抗体的含量,以确定疫苗的效力。

2. 实验方案:按照标准操作要求,严格控制所有实验条件,包括实验设备、试剂和动物模型的选取。

3. 样品制备:将灭活疫苗经过特定处理提取出相关免疫抗体。

方法可以采用比色法、酶标法等。

4. 样品检测:选取合适的生物学方法,如酶联免疫吸附试验(ELISA),进行免疫抗体的定量测定。

5. 数据处理和分析:根据测定结果,计算出免疫抗体的含量,并进行统计分析。

抗体效价检测步骤

抗体效价检测步骤

抗体效价检测步骤抗体效价检测是一种用于确定特定抗体在溶液中的浓度的测试方法。

制定抗体检测方案的目的是为了发现一些疾病或病菌感染后体内的抗体水平,以便给这些人提供更好的诊断和治疗方案。

抗体检测可以帮助诊断多种疾病和监测免疫应答。

抗体效价检测的步骤:1. 确定抗原:首先,需要选择与所检测试物一致的合适抗原。

可以是病原体中的某个蛋白质、脂多糖、多糖等化合物。

2. 制备样品:接下来,需要制备出一定浓度的抗原,然后制备一定浓度的粗抗血清作为实验对象,这里抗血清就是被免疫动物或人的血清。

3. 设置不同浓度的样品和抗体:设置一系列不同浓度的测定样品和一定浓度的抗体,一般会先制作含有较多抗体的肯定样品和不含抗体的阴性对照样品。

4. 混合样品和抗体:添加不同浓度的抗体到不同浓度的抗原溶液中或在不同浓度的抗原中加入相同浓度的抗血清,稀释一定倍数(常用2倍)后,把稀释完后的溶液混合均匀。

5. 反应:将混合物加入试剂板中,以促使抗体与抗原结合并发生反应,在一定的条件下,让其反应一定的时间(常用30分钟到数小时)。

6. 洗涤:去掉未结合的物质,洗刷试管或板,这是为了减少误差,使试验结果更加可信。

7. 加入检测酶标记二抗:在试管或板中加入检测酶标记的二抗,这通常是一种抗体,其可与被检测抗体特异性结合。

8. 再次洗涤:去掉未结合的物质,称为第二次洗涤。

9. 加入底物:加入相应的酶底物,以促使反应物下一步的曝光和输送。

10. 停止反应:反应一定时间(通常为10–30分钟),使颜色发生变化,这里会加入用于停止反应的酸或酵素抑制剂。

11. 测定结果:测定反应颜色的浓度,以反映所检知物的含量,从而确定抗体效价,也就是可以得到测量结果,用来确定抗体的水平。

抗体效价检测是一种非常重要的诊断方法,它可以帮助医生和研究人员快速探讨细菌和疾病的数量变化,进而制作出更有效的治疗和疫苗。

抗体效价检测 标准

抗体效价检测 标准

抗体效价检测标准
抗体效价检测是测定抗体的物理状态及其在体内的滞留时间,以其与抗原反应的多少来表示其免疫效果的一种方法。

通常用于诊断和治疗某些免疫相关疾病。

抗体效价检测的具体标准可能因疾病、检测方法和实验室而异,但一般都会遵循以下步骤:
1. 准备试剂:包括抗体样本、抗原、缓冲液、标记物等。

2. 样本处理:将抗体样本进行处理,如稀释、离心等,以去除杂质和干扰因素。

3. 抗原-抗体反应:将抗原与抗体样本混合,在一定温度下反应一定时间,使抗原和抗体充分结合。

4. 洗涤:去除未结合的抗原、抗体和干扰物质。

5. 检测:根据所采用的检测方法,如酶联免疫吸附试验(ELISA)、免疫荧光技术等,对反应产物进行检测。

6. 结果判断:根据实验结果判断抗体效价是否正常。

通常,效价高于正常值表示抗体水平较高,可能存在免疫相关疾病或感染;效价低于正常值则表示抗体水平较低,可能存在免疫缺陷或疾病进展。

需要注意的是,不同的检测方法和实验室可能有不同的标准范围和操作流程。

因此,在进行抗体效价检测时,应遵循所采用的方法和实验室的标准操作规程。

抗体效价检测步骤

抗体效价检测步骤

抗体效价检测步骤抗体效价检测是一种常用的方法,用于评估抗体样品的质量和活性。

该检测可以确定抗体样品中所含抗体的浓度以及其与靶标结合的能力。

以下是抗体效价检测的一般步骤:1. 制备样品和控制组:首先需要准备抗体样品和相应的阳性和阴性对照物。

阳性对照物是对于靶标已知有高亲和力的抗体样品,而阴性对照物则是不包含任何抗体的样品。

2. 稀释样品:将抗体样品进行连续稀释,通常从高浓度开始,以便确定抗体效价的范围。

每一次稀释应按照一定比例进行,如1:2或1:10等。

3. 设置试验板:将稀释好的抗体样品、阳性和阴性对照物,以及含有靶标的试验物添加到试验板中的孔中。

每个样品应设置多个孔,以获得平均效价。

4. 孵育:将试验板置于孵化器中,在适当的温度和时间下进行孵育。

这有助于抗体与靶标结合,并形成固定复合物。

5. 洗脱:将试验板的孔洗脱干净,以去除未结合的抗体。

这可以通过重复洗涤孔中添加和去除缓冲液来实现。

6. 反应:加入检测抗体,这是一种能与固定复合物中的抗原结合的二抗。

检测抗体通常被标记,以便进行可视化。

典型的标记物包括酶,如辣根过氧化物酶(HRP),或荧光染料,如荧光素等。

7. 反应孵育:将试验板放回孵化器中,在合适的温度下进行孵育。

这有助于检测抗体与固定复合物结合,并形成更大的复合物。

8. 洗脱:类似于步骤5,洗涤试验板的孔,以去除未结合的检测抗体。

9. 可视化:根据检测抗体的标记物,对于酶标记的检测抗体可以加入亮色底物,并观察色素的产生。

对于荧光标记的检测抗体,则可以在荧光显微镜下直接观察发光信号。

10. 数据分析:根据样品和对照组的可视化结果,测定抗体效价。

通常使用半最大抗体效价(EC50)来表示抗体效价,即抗体浓度在50%时与靶标结合。

抗体效价检测是一个常见的实验技术,它在抗体研究和生物医学领域有着广泛的应用。

通过正确执行上述步骤,可以准确地确定抗体样品的效价和活性,进一步支持科研和临床应用。

血清抗体效价的测定

血清抗体效价的测定

实验报告
10.选择波长630nm,将酶标板置于载板台上,开始扫描,测定OD值。

结果如下所示:
思考题:
1.查阅资料,了解共有哪些类型的ELISA实验,以及本实验中所用ELISA属于哪一类?答:本实验中所用ELISA属于间接法ELISA。

①直接ELISA
原理:将抗原与固相载体连接,洗涤除去未结合的抗原及杂质。

加酶标抗体进行孵育。

固相免疫复合物上的抗原与酶标抗体结合。

彻底洗涤未结合的酶标抗体。

此时固相上带有的酶量与标本中受检抗原的量相关。

加底物反应。

直接法主要用于测定抗原。

②间接法ELISA
原理:将抗原与固相载体相连结,形成固相抗原。

洗涤除去未结合的抗原及杂质。

加入特异性一抗与固相抗原相结合,形成固相抗原抗体复合物。

经洗涤后,加酶标二抗。

固相免疫复合物中的抗体与酶标二抗结合,从而间接地标记上酶。

洗涤后,加底物显色。

③双抗夹心法ELISA
原理:双抗体夹心法适用于测定二价或二价以上的大分子,但不适用于小分子抗原。

将特异。

1-1-免疫血清制备及效价测定

1-1-免疫血清制备及效价测定
制备旳免疫血清旳质量(特异性、亲和力及效价高下)受多种原因旳影响, 主要涉及抗原旳性质、免疫动物旳种类及状态、免疫剂量、免疫途径及免疫方案 (免疫次数、间隔时间以及免疫佐剂旳使用等等)。所以要取得高质量旳免疫血 清需先经过预试验探索拟定最佳免疫方案。
测定免疫血清中抗体效价旳措施诸多,如凝集反应、沉淀反应、溶血反应、 ELISA分析等均可用于对抗体效价旳测定。
此次试验将采用溶血试验测定所获免疫血清旳效价。
• 抗原旳两种特征:免疫原性与抗原性
• 免疫原性旳本质——异物性
• 与机体亲缘关系越远,组织构造旳差别越 大,异物性越强。
试验材料
1. 40% SRBC 2. 18-22g旳BALB/C系小白鼠 3. 无菌1ml 注射器 4. 抗凝剂(枸橼酸钠或肝素) 5. 新鲜豚鼠血清(作为补体用) 6. 小试管等
实验内容
1、免疫动物
首次免疫小鼠为腹腔注射40%绵羊红细胞 (SRBC)0.2ml,后来分别于第4天、第7天和第10 天时间,以相同免疫剂量、相同免疫途径加强免疫。
小ห้องสมุดไป่ตู้腹腔注射
1. 小鼠腹腔注射能够用1ml旳注射器,配合4号针头。 2. 腹腔注射时右手持注射器,左手旳小指和无名指抓住小鼠旳
尾巴,另外三个手指抓住小鼠旳颈部,使小鼠旳头部向下。 这么腹腔中旳器官就会自然倒向胸部,预防注射器刺入时损 伤大肠、小肠等器官。进针旳动作要轻柔,预防刺伤腹部器 官。 3. 尤其是对于体重较小旳小鼠,腹腔注射时针头能够在腹部皮 下穿行一小段距离,最佳是从腹部一侧进针,穿过腹中线后 在腹部旳另一侧进入腹腔,注射完药物后,缓缓拔出针头, 并轻微旋转针头,预防漏液。
试验1-1 免疫血清制备及效价测定
实验目旳和要求
1、学习抗血清旳制备措施; 2、掌握抗血清旳搜集和保存措施; 3、掌握免疫血清效价旳测定措施。

抗体效价的Elisa测定

抗体效价的Elisa测定

戊二醛法, 过碘酸氧化法 将酶与Ab交联在一起
Ag-Ab-抗Ab-HRP
TMB+H2O2 产物(黄色,OD450)+H2O
图一 直接型Elisa
图二 间接型Elisa
图三 双抗体夹心型ELISA
图四 固相抗体竞争型ELISA 未知抗原量=A(1)-A(2)
每次反应后都要反复洗涤? 1. 确保反应旳定量反应 2. 预防重叠反应,引起非特异现象。
HIV (human immunodeficiency virus) detection
Partially purified, inactivated HIV antigens
antigens pre-coated onto an ELISA plate
部分纯化,灭活病毒抗原 抗原涂到酶标板
Patient serum which contains antibodies. If the patient is HIV+, then this serum will contain antibodies to HIV, and those antibodies will bind to the HIV antigens on the plate.病人血清中具有抗体。假如病人是艾滋病毒+,那么这个血清具有
N eg a tiv e C o n tro l 0 .1 5 3
A ssa y P a tien tA P a tien tB P a tien tC C o n tro l
O .0 5 5
0 .4 1 2
1 .9 9 9
0 .1 2 3
Protein protein interaction---ELISA
1.Remove the stacking gel from the gel.
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实验一免疫抗体的制备及效价检测
一.教学目标:本实验是单克隆抗体技术的免疫阶段的过程,为单克隆抗体技术提供免疫淋巴细胞。

了解免疫的原理,掌握免疫方法和抗血清的制备技术,掌握双向
免疫扩散法测定抗体的效价。

二.重点难点:给小鼠注射抗原的实验操作,小鼠心脏取血的实验操作。

载玻片琼脂
凝胶板打孔实验操作。

三.授课方式与教学方法:讲解原理、实验操作示范或具体指导。

四.教学内容:
实验原理
机体的特异性免疫反应是指机体受抗原物质刺激后产生体液免疫和细胞免疫的过程。

一种抗原能否引发抗体反应,一方面取决于抗原分子表面有无特异性的化学结构---抗原决定簇,另一方面取决于机体有无相应的免疫活性细胞。

当上述两个条件具备时,抗原进入机体经过一定的潜伏期,抗体效价逐步上升,达到高峰后,能维持一短暂的时期,以后又逐渐下降,但当第二次接触相同的抗原时,抗体的上升较前次为快,高峰时的效价也比前次为高。

抗体持续的时间也较长,此也称为再次反应。

完全福氏佐剂的使用能够延长抗原在体内的存留时间,增加可溶性抗原的免疫性。

通常制备抗体时常用完全福氏佐剂加强免疫。

抗原、抗体在合适的浓度和比例条件下,抗原和其相应的抗体在有固相支持的液相环境中各自发生扩散。

分子双向扩散接触时形成肉眼可见的沉淀线反应。

抗体的效价即时指与固定浓度的抗原发生沉淀反应时所需的最小抗体浓度。

实验步骤
1.动物的选择:选择2-3个月以上的小鼠。

免疫作好标号。

分笼饲养。

2.抗原的选择:将抗原(纤维素酶)稀释为4 mg/ml,即可与佐剂混合制成乳剂用于动物免疫。

3.佐剂和抗原乳剂的制备
佐剂完全福氏佐剂:轻矿物油(石腊油)8.5 ml;羊毛脂1.5 ml;灭活结核杆菌10 mg。

抗原乳剂制备(1)油剂:矿物油和羊毛脂按比例混合,高压8磅20分钟灭菌后作为油剂,使用前微火融化。

(2)水剂:灭活结核杆菌1 mg/ml + 抗原4 mg/ml (均为终浓度)。

(3)油剂和水剂1:1混合。

混合方式:研磨或者注射器混合。

4.免疫方法:小鼠背部皮下多点注射,每点0.1ml。

第一次免疫:实验组小鼠加佐剂的抗原。

A组3只(头部有黄色):每只小鼠背部、腋下多点注射,共计0.4 ml磷酸缓冲液。

B组3只(尾部有黄色):每只小鼠背部、腋下多点注射,共计0.4 ml 2mg/ml纤维素酶液。

C组6只(中部有黄色):每只小鼠背部、腋下多点注射,共计0.4 ml加佐剂的抗原乳剂。

第二次免疫:第3周实验组小鼠不加佐剂抗原。

A组3只(头部有黄色):每只小鼠背部、腋下多点注射,共计0.4 ml磷酸缓冲液。

B组3只(尾部有黄色):每只小鼠背部、腋下多点注射,共计0.4 ml 2mg/ml纤维素酶液。

C组3只(中部有黄色):每只小鼠背部、腋下多点注射,共计0.4 ml2mg/ml纤维素酶液。

第三次免疫:第二次免疫后1周,实验组小鼠不加佐剂抗原。

A组3只(头部有黄色):每只小鼠背部、腋下多点注射,共计0.4 ml磷酸缓冲液。

B组3只(尾部有黄色):每只小鼠背部、腋下多点注射,共计0.4 ml 2mg/ml纤维素酶液。

C组6只(中部有黄色):每只小鼠背部、腋下多点注射,共计0.4 ml2mg/ml纤维素酶液。

5.抗血清的制备
第三次免疫一周后,眼眶取血或心脏取血。

收集的血液置于室温下1h左右,凝固后,置4℃下,过夜(切勿冰冻)析出血清,离心,4000rpm,10min。

在无菌条件,吸出血清,分装(0.05~0.2ml),贮于-40℃以下冰箱,或冻干后贮存于4度冰箱保存。

6.抗体的效价检测:双向免疫扩散法。

琼脂凝胶板的制备:胶布包围一片载玻片使之形成不透水的槽。

用生理盐水加热溶解琼脂配成1%溶液,均匀浇注于玻片内。

注意勿产生气泡,琼脂厚度约2.5mm。

打孔:待琼脂凝固后,用去尖头的吸头(直径约为3-4mm)在凝胶上打孔,孔间距为3-5mm。

在小孔中加少量加热的液体琼脂,防止渗漏。

打孔样式为梅花样,如图:
加样:加样于孔内,左中间孔为抗原;右中间孔为无关抗原(牛血清白蛋白);边孔为不同浓度的抗体(系列用生理盐水稀释的抗体1-1/2-1/4-1/8-1/16-1/32)。

注意不要外溢(加满为止)。

结果观察:加样完毕,将琼脂板平放于湿盒内,在室温或37 扩散18-24小时后,观察结果。

实验结果
要求学生观察反应结果,计算抗体的效价。

结果讨论
要求学生根据实验结果进行分析讨论
五.课堂小结:
根据学生的实验结果进展和结果进行总结。

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