ELISA实验操作中常见问题分析

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ELISA常见问题和处理

ELISA常见问题和处理

问题可能原因解决方法1、无颜色试剂孵育的时间没有按说明书操作。

确定生物素化抗体,连接的HRP试剂或链霉亲和素-HRP使用的时间是否适当。

2、不同试剂盒或不同批号的试剂混用。

重新检查试剂的标签,确准所有组分都属于正使用的试剂盒中的。

不能混用不同试剂盒或不同批号的试剂。

3、漏加酶检查操作流程,注意不要漏加5、HRP酶污染了叠氮钠使用新配制的试剂,禁含叠氮钠标准品有问题(若在标本孔中有信号)按说明书检查标准品的制备使用1瓶新标准品某一容器未洗净,残留灭活酶物质尽可能用试剂盒内容器,另觅一定要洁净、可靠使用含血清的缓冲液配制/复溶抗体重新确认所选用的试剂.漏加显色剂A或B加显色剂后观察一下液面高度试剂配制/使用有误将实验重做;严格按说明书操作,每次配制和使用前看清标签。

缓冲液污染配制新新鲜的缓冲液显色弱超过有效期的产品可能会产生很弱的信号。

检查产品的有效期加入试剂的体积和时间有误确定所使用的每一个试剂的体积正确的和加入的时间是适当的。

试剂、样品用前未能平衡用前试剂、样品置室温平衡10分钟左右缩短孵育时间能使实验的信号变弱。

检查孵育的时间。

在温度变化的环境内孵育酶标板。

确定孵育的温度,应避免温度的变化。

使用了被污染的试剂检查试剂是否被污染。

标准品/标本制备方法不规范检查标准品/标本的制备,标准品应按说明书进行复溶和稀释。

低温贮存的标本避免反复冻融,严禁使用溶血标本。

样品用NaN3防腐,抑制了酶的反应显色底物制备不规范检查底物的制备,如体积是否正确,混合是否恰当充分。

检测时间不当是否在规定的时间内检测。

仪器设定不正确,滤光片不匹配。

仪器是否设定正确,滤光片的使用等。

高背景(本底)洗涤操作不规范洗板不充分,使用手工洗板常出现。

最好使用洗板机,或使用洗瓶洗涤。

每孔应完全充满洗涤缓冲液,倾出时应迅速。

若使用洗板机,应校准并设定足够充满每孔的体积量。

板的内侧不应接触设备。

检查每孔是否有残留的洗液或每孔加样量的体积是否准确。

Elisa常见类型及实验标准操作方法与常见问题

Elisa常见类型及实验标准操作方法与常见问题

Elisa常见类型及实验标准操作方法与常见问题Elisa(酶联免疫吸附试验)是一种常见的免疫检测方法,广泛应用于医学、生物学、环境科学等领域。

Elisa的操作方法和常见问题对于熟练进行实验和解决实验中的问题都至关重要。

以下是Elisa的常见类型、实验标准操作方法以及常见问题的详细介绍。

一、常见类型:1. 间接Elisa:该方法利用抗体的特异性结合性质来检测特定抗原。

首先,在官网上涂上反应性抗原的试样,然后添加能与抗原结合的一抗,再加入与一抗结合的二抗和标记物,最后通过颜色变化来测定抗原的含量。

2. 直接Elisa:该方法利用特异性抗体与抗原的结合性质来检测特定抗原。

在官网上涂上反应性抗原的试样,然后加入能与抗原结合的标记抗体和标记物,最后通过颜色变化来测定抗原的含量。

二、实验标准操作方法:1.样品制备:收集要检测的样品,并进行必要的处理和制备,如离心、稀释等。

2.官网涂布:将样品或标准物质涂在官网上,并在适当的温度条件下孵育一段时间,使其抗原完全吸附到官网上。

3.阻断:用适当的阻断缓冲液或血清阻止非特异性结合。

4.添加(初级)抗体:加入特异性的初级抗体,让其与官网上的抗原结合。

5.洗涤:用缓冲液洗涤掉未结合的初级抗体。

6.添加(二级)抗体:加入特异性的二级抗体,使其与初级抗体结合,并将标记物引入实验系统。

7.洗涤:用缓冲液洗涤掉未结合的二级抗体。

8.底物添加:加入含有底物的溶液,使底物被标记物催化,产生颜色反应。

9.反应终止:加入适当的溶液将反应停止。

10.测定:通过检测底物催化反应产生的颜色变化,使用酶标仪等设备测量并分析光密度。

三、常见问题:1.如何选择合适的抗体和标记物?2.如何优化实验条件?在实验过程中,可以通过优化浓度和孵育时间等条件来提高实验的敏感性和特异性。

可以尝试不同浓度的抗体和试剂,并对孵育时间和温度进行调整。

3.如何处理实验结果?实验结果通常会通过测量光密度来表示。

典型的Elisa实验结果可以使用标准曲线进行定量,或者通过比较样品和对照组的光密度差异来进行定性判断。

ELISA实验操作中常见问题分析

ELISA实验操作中常见问题分析

ELISA实验操作中常见问题分析由于ELISA(酶联免疫试验)具有灵敏度较高、特异性好的特点,已广泛应用于各种传染性疾病的筛查如肝炎、爱滋、优生优育等。

虽然洗板只是ELISA实验重要环节中的一个,但作为专业的洗板机生产厂家,我们必须对影响ELISA实验结果各因素有一定的认识。

优质的试剂,良好的仪器和正确的操作是保证ELISA 检测结果准确可靠的必要条件。

如不注意,就易出现白板、花板、色弱和假阳性等现象。

尤其是花板现象(就是空白、阴性、阳性对照以及室内质控孔结果正常,而标本孔的OD值却明显偏高)是各个厂家洗板机调试中经常遇到的问题。

现将ELISA实验操作中注意事项总结如下,以期给大家带来一些启发,以改善洗板机的安装调试水平,提高临床检测质量。

1 标本及采集、贮运因素严重溶血,以HRP 为标记的ELISA 测定中,残留在孔内的血红蛋白具有过氧化物酶样活性,催化底物显色造成假阳性;混有红细胞的血清易沉淀或附着在聚乙烯孔内不易洗净;如有细菌污染,菌体中可能含有内源性HRP,也会产生假阳性反应;标本凝固不全,有时为了争取时间快速检测,常在血液还未开始凝固时即强行离心分离血清,使血清中仍残留部分纤维蛋白原,在ELISA测定过程中可以形成肉眼可见的纤维蛋白块,易造成假阳性结果;采血试管洗涤不彻底、反复使用易交叉污染;塑料试管能吸附抗原物质,样本久置在塑料管内会使样本内抗原含量下降造成假阴性。

血清标本宜在新鲜时检测,严重溶血标本禁用。

一般说来,在5 天内测定的血清标本可放置于4℃,标本在冰箱中保存时间过长导致血清IgG 聚合,使间接法的试剂本底加深。

超过一周测定的需-20℃保存。

冻结血清融解后,蛋白质局部浓缩,分布不均,应充分混匀并避免产生气泡。

混浊或有沉淀的血清标本应先离心或过滤,澄清后再检测。

反复冻融会使抗体效价跌落,所以测抗体的血清标本如需保存作多次检测,宜少量分装冰存;最好使用一次性玻璃试管或真空管采血管;并使用非抗凝标本,肝素抗凝血浆会增加OD值,可能与高浓度肝素具有强大的负电荷能吸附酶标记物不易洗脱有关;EDTA、酶抑制剂(如NaN3)可抑制ELISA系统中辣根过氧化物酶活性;血液标本采集后必须使其充分凝固后再分离血清,或标本采集时用带分离胶的采血管或于采血管中加入适当的促凝剂。

ELISA中常见问题及解决方法!

ELISA中常见问题及解决方法!

ELISA中常见问题及解决方法!ELISA试验以灵敏度较高、特异性较好的特点在临床上得到了广泛的应用,但操作中的各个环节对试验的检测效果影响较大,如不留意,有可能导致显色不全、花板等结果。

我将操作中各个环节常消失问题的缘由及解决方法总结如下,以期给同行带来一些启发,提高试验质量。

下面分析Elisa试验操作中可能影响结果的缘由,并给出相应的解决方法。

1 选择试剂选择质量优良的检测试剂,严格根据试剂说明书进行操作,操作前将试剂在室温下平衡30-60分钟。

2 加样可能缘由:1)血清或血浆标本分别不好即进行加样;2)手工操作中,加样板过多造成加样后放入孵箱前等待时间过长(特殊是室内温度较高时);3)加完标本再加酶试剂时酶溅出孔外。

解决方法:①标本为血清:最好将血液先自然存放1-2小时后,再用3000rmp离心15分钟;标本为血浆:必需使用含抗凝剂的血液标本收集管,采血后必需马上颠倒采血管混合5-10次,放置一段时间后,3000rpm离心15分钟;若在几天内检测,可放在2-8℃冰箱中,若要贮存,则置于-20℃的低温冰箱内。

②加样后准时放入孵箱。

③加酶试剂后用吸水纸在酶标板表面轻拭吸干。

④假如采纳AT或其他全自动加样,最好选择FAME或其他后处理仪器加酶试剂。

⑤标本较多时,请分批操作。

3 孵育可能缘由:1) 孵育时未贴封片或加盖,使标本或稀释液蒸发,吸附于孔壁,难于清洗彻底;2) 孵育时间人为延长,导致非特异性结合紧附于反应孔四周,难以清洗彻底。

解决方法:①贴封片或加盖;②按说明步骤严格掌握操作时间。

4 洗板可能缘由:1) 采纳手工洗板,孔与孔之间液体交叉;2) 采纳半自动洗板机洗板时,洗液量不足,导致洗板不彻底;洗板针堵塞,抽吸不完全;洗板不畅,导致洗板效果差;3) 反应板过多造成洗板等待时间长。

解决方法:①保证洗液注满各孔,洗板针畅通,洗完板后最好在吸水纸(选择洁净、无或少尘的吸水材料)上轻轻拍干;②合理支配,或多用几台洗板机。

ELISA实验做不好?我们为您汇总了常见的30个问题!

ELISA实验做不好?我们为您汇总了常见的30个问题!

ELISA实验做不好?我们为您汇总了常见的30个问题!ELISA(免疫酶联吸附实验)是免疫学基础实验之一,大部分生命科学领域的科研工作者对其都不陌生。

因为其特异性强,灵敏度高,可精确定量的特性,在基础科研和临床诊断中,ELISA技术都应用广泛,相信很多关注我们的小伙伴也都做过ELISA。

ELISA实验步骤少,流程短,购买的即用型试剂盒也都有指导性很强的操作说明书,单次实验3-6小时即可得到结果,实验小白也可以很快的上手。

但是,各位同学可不要轻视哦,ELISA和WB、IHC等基础免疫实验一样,都是易学难精,上手容易,但想要得到稳定的结果,还是要花一点心思的。

小编在这里汇总了一些做ELISA的客户咨询我们的问题,把其中有代表性的集中做成了FAQ,大家快看看这其中有没有困扰你ELISA实验的问题吧~Q: ELISA可以检测胞内蛋白么?A:可以的,大部分ELISA指标均为炎症因子、趋化因子等分泌类型蛋白,支持的样本类型也多为血清、血浆、细胞培养上清等液体样本。

如需检测胞内蛋白,首先需要确认待测指标是否在胞内表达,然后选用支持组织匀浆样本的ELISA试剂盒即可,将组织样品或细胞样品进行裂解,提取胞内蛋白后进行蛋白定量,保证每孔上样总蛋白量一致即可。

Q: ELISA可以测DNA的表观么?A:不可以,ELISA是利用免疫学原理,定量检测蛋白质表达的技术。

测DNA表观遗传学,主要是检测DNA甲基化,可以选用ChIP 技术。

Q:夹心法ELISA实验中的捕获抗体和检测抗体是同一个抗体么?A:不是的,在双抗夹心法ELISA实验中,会同时用到捕获抗体和检测抗体,这两个抗体是针对同一抗原蛋白的不同抗原位点的两种抗体,这样才可以同时结合抗原分子。

这也是双抗夹心法ELISA不适用与小分子抗原和半抗原等待测指标的原因。

Q:试剂盒里面有捕获抗体么?A:即用型ELISA试剂盒中,捕获抗体已经预包被至试剂盒中的ELISA板上,没有单独的捕获抗体提供,直接使用ELISA板孵育稀释后的样本及标准品即可。

ELISA常见问题

ELISA常见问题

1、ELISA试验的稳定性问题做ELISA实验时,结果老是重复性不上,相同的材料和相同的操作方法做出的结果就截然不同,上午做时其OD在1.5,下午做时就是0.9了,所以都没有办法下结论,为什么会差异这么大呀?(1)多设平行空孔,请别人代劳,以判断究竟是否操作问题(2)对于活性非常高的包被物和酶标记物,如果第一次选择的范围恰好在其平台位置边缘,那么在重复的时候,每次取样带来的微量误差就很容易导致大的偏差了,特别是线性比较好的原料试剂,这个就很正常了。

建议每次取样的时候只使枪尖一点点位于液面下,以免吸嘴外面沾有少量抗原or抗体or酶而使结果重复不上。

2、酶不稳定,有何高招?(1)保存浓度尽量高些,(2)另外可以添加牛血清白蛋白等蛋白保护剂,以避免其被吸附或沉降以及被蛋白酶所降解。

(3)加入50%甘油-20度保存、避免反复冻融。

(4)还可以加入防腐剂防止长菌(注意不能用叠氮钠,其对HRP活性有很大影响)(5)现在一些公司也有商品化的酶标保护剂供应,可以考虑一下酶类的稳定性与保存方法的很大关系。

干燥的制品一般比较稳定,在低温情况下其活性可在数日甚至数年无明显变化,贮藏要求简单,只要将干燥的样品置于干燥器内(内装有干燥剂)密封,保持0-4度冰箱即可。

液态稳定性较差,贮藏时应注意以下几点:1、样品不能太稀,必须浓缩到一定浓度才能封装贮藏,样品太稀易降解、变性。

2、一般需加入防腐剂和稳定剂,酶常用的稳定剂有硫酸铵糊、蔗糖、甘油等,也可加入底物和辅酶以提高其稳定性。

此外,钙、锌、硼酸等溶液对某些酶也有一定保护作用。

3、贮藏温度要求低,避免反复冻融。

3、ELISA试验中不加标本的OD值反而高于加人的阴性标本的OD值,是什么原因呀?做夹心法ELISA试验中不加标本的OD值反而高于加人的阴性标本的OD值,是什么原因呀?最大的原因是封闭的效果不好,应该调整封闭液;可以尝试不同的封闭剂(BSA、胶脂奶粉、明胶等)、不同的封闭浓度、时间,试试哪个效果好阴性的里面的其他蛋白起到了封闭的效果4、边缘的阴性OD值老是比中间的偏高,什么原因呢?我做ELISA时,有一段时间在板的最后一条板孔的阴性的OD值经常比在中间的高,有时候高出0.1个OD,导致实验经常重复,但原因也找不到在哪里?这可能是由于ELISA的边缘效应造成的。

ELISA实验操作中常见问题分析

ELISA实验操作中常见问题分析

ELISA实验操作中常见问题分析严峻溶血,以HRP 为标记的ELISA 测定中,残留在孔内的血红蛋白具有过氧化物酶样活性,催化底物显色造成假阳性;混有红细胞的血清易沉淀或附着在聚乙烯孔内不易洗净;如有细菌污染,菌体中可能含有内源性HRP,也会产生假阳性反应;标本凝固不全,有时为了争取时刻快速检测,常在血液还未开始凝固时即强行离心分离血清,使血清中仍残留部分纤维蛋白原,在ELISA测定过程中能够形成肉眼可见的纤维蛋白块,易造成假阳性结果;采血试管洗涤不完全、反复使用易交叉污染;塑料试管能吸附抗原物质,样本久置在塑料管内会使样本内抗原含量下降造成假阴性。

2、试剂的阻碍a.分子量大。

合成肽采纳化学方法制备,由于工艺的局限,合成数量有限,只能达到数百个氨基酸;而利用基因工程制备的抗原,分子量更大。

d.纯化难度大。

基因工程抗原的纯化技术难度较大。

合成多肽抗原是按照蛋白质抗原分子的某一抗原决定簇的氨基酸序列人工合成的多肽片段。

合成肽抗原有以下特点:a.分子量太小;b.一样只含有一个抗原决定簇;c.纯度高;d.稳固性差。

国内乙肝两对半试剂厂家较多;不同厂家出产的试剂灵敏度与特异性存在一定的差别,资料显示,不同厂家试剂的特异性和敏锐性分别为89.4%—99.3%,78%—89%存在较大差异。

有的厂家酶标板孔间A值差大于15%;标记酶的活性及显色液的稳固比较差。

使用质劣的试剂必定导致结果的假阳性或假阴性。

因此。

选择高质量的试剂是保证结果准确的关键之一。

•选择试剂时应选择灵敏度高、特异性好、稳固性好、批间差小、操作方便省时的优良检测试剂,国家参比实验室每年对各厂家的试剂进行质量评估并定期公布评估结果,可作为选择试剂的要紧依据。

•要注意试剂的批号和出厂日期,尽管试剂的有效期多为1年。

最好选择刚出厂的试剂使用。

不同厂家的试剂不能混用。

不同方法学的检测试剂,会使两对半结果显现一些不同。

例如:在实际工作中常用ELISA检测HBsAg结果为阴性,而电化学发光检测为阳性。

ELISA实验操作中常见问题分析

ELISA实验操作中常见问题分析

ELISA实验操作中常见问题分析1 标本及采集、贮运因素严峻溶血,以HRP 为标记的ELISA 测定中,残留在孔内的血红蛋白具有过氧化物酶样活性,催化底物显色造成假阳性;混有红细胞的血清易沉淀或附着在聚乙烯孔内不易洗净;如有细菌污染,菌体中可能含有内源性HRP,也会产生假阳性反应;标本凝固不全,有时为了争取时刻快速检测,常在血液还未开始凝固时即强行离心分离血清,使血清中仍残留部分纤维蛋白原,在ELISA测定过程中能够形成肉眼可见的纤维蛋白块,易造成假阳性结果;采血试管洗涤不完全、反复使用易交叉污染;塑料试管能吸附抗原物质,样本久置在塑料管内会使样本内抗原含量下降造成假阴性。

血清标本宜在新奇时检测,严峻溶血标本禁用。

一样说来,在5 天内测定的血清标本可放置于4℃,标本在冰箱中储存时刻过长导致血清IgG 聚合,使间接法的试剂本底加深。

超过一周测定的需-20℃储存。

冻结血清融解后,蛋白质局部浓缩,分布不均,应充分混匀并幸免产动气泡。

混浊或有沉淀的血清标本应先离心或过滤,澄清后再检测。

反复冻融会使抗体效价跌落,因此测抗体的血清标本如需储存作多次检测,宜少量分装冰存;最好使用一次性玻璃试管或真空管采血管;并使用非抗凝标本,肝素抗凝血浆会增加OD值,可能与高浓度肝素具有强大的负电荷能吸附酶标记物不易洗脱有关;EDTA、酶抑制剂(如NaN3)可抑制ELISA系统中辣根过氧化物酶活性;血液标本采集后必须使其充分凝固后再分离血清,或标本采集时用带分离胶的采血管或于采血管中加入适当的促凝剂。

2、试剂的阻碍ELISA 诊断试剂经历了从合成肽向基因工程抗原的过渡。

由于历史的缘故,人们往往以反应本底的好坏来衡量ELISA 反应试剂盒,因此有些厂家为了保持较好的本底采纳了单片段基因工程抗原及合成肽包被,该类试剂盒的流行病学敏锐度不够,稳固性也成问题。

也有厂家坚持试剂盒高的流行病学敏锐度,科学地对待反应结果。

基因工程抗原较合成肽抗原有无可比拟的优越性,就HCV-ELISA 试剂盒来讲,第一代产品为合成肽抗原,要紧是HCV 特异性抗原决定簇的肽片段;第二代产品包被的抗原既有基因工程抗原又有合成肽,只是当时的基因工程抗原不全,仅包括了HCV 的核心区片段;第三代产品差不多上采纳了基因工程抗原,而且这些抗原包括更多、更稳固、纯度更高的HCV 特异性抗原。

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ELISA实验操作中常见问题分析ELISA实验操作中常见问题分析由于ELISA(酶联免疫试验)具有灵敏度较高、特异性好的特点,已广泛应用于各种传染性疾病的筛查如肝炎、爱滋、优生优育等。

虽然洗板只是ELISA实验重要环节中的一个,但作为专业的洗板机生产厂家,我们必须对影响ELISA实验结果各因素有一定的认识。

优质的试剂,良好的仪器和正确的操作是保证ELISA 检测结果准确可靠的必要条件。

如不注意,就易出现白板、花板、色弱和假阳性等现象。

尤其是花板现象(就是空白、阴性、阳性对照以及室内质控孔结果正常,而标本孔的OD值却明显偏高)是各个厂家洗板机调试中经常遇到的问题。

现将ELISA实验操作中注意事项总结如下,以期给大家带来一些启发,以改善洗板机的安装调试水平,提高临床检测质量。

1 标本及采集、贮运因素严重溶血,以HRP 为标记的ELISA 测定中,残留在孔内的血红蛋白具有过氧化物酶样活性,催化底物显色造成假阳性;混有红细胞的血清易沉淀或附着在聚乙烯孔内不易洗净;如有细菌污染,菌体中可能含有内源性HRP,也会产生假阳性反应;标本凝固不全,有时为了争取时间快速检测,常在血液还未开始凝固时即强行离心分离血清,使血清中仍残留部分纤维蛋白原,在ELISA测定过程中可以形成肉眼可见的纤维蛋白块,易造成假阳性结果;采血试管洗涤不彻底、反复使用易交叉污染;塑料试管能吸附抗原物质,样本久置在塑料管内会使样本内抗原含量下降造成假阴性。

血清标本宜在新鲜时检测,严重溶血标本禁用。

一般说来,在5 天内测定的血清标本可放置于4℃,标本在冰箱中保存时间过长导致血清IgG 聚合,使间接法的试剂本底加深。

超过一周测定的需-20℃保存。

冻结血清融解后,蛋白质局部浓缩,分布不均,应充分混匀并避免产生气泡。

混浊或有沉淀的血清标本应先离心或过滤,澄清后再检测。

反复冻融会使抗体效价跌落,所以测抗体的血清标本如需保存作多次检测,宜少量分装冰存;最好使用一次性玻璃试管或真空管采血管;并使用非抗凝标本,肝素抗凝血浆会增加OD值,可能与高浓度肝素具有强大的负电荷能吸附酶标记物不易洗脱有关;EDTA、酶抑制剂(如NaN3)可抑制ELISA系统中辣根过氧化物酶活性;血液标本采集后必须使其充分凝固后再分离血清,或标本采集时用带分离胶的采血管或于采血管中加入适当的促凝剂。

2、试剂的影响ELISA 诊断试剂经历了从合成肽向基因工程抗原的过渡。

由于历史的原因,人们往往以反应本底的好坏来衡量ELISA 反应试剂盒,因此有些厂家为了保持较好的本底采用了单片段基因工程抗原及合成肽包被,该类试剂盒的流行病学敏感度不够,稳定性也成问题。

也有厂家坚持试剂盒高的流行病学敏感度,科学地对待反应结果。

基因工程抗原较合成肽抗原有无可比拟的优越性,就HCV-ELISA 试剂盒来讲,第一代产品为合成肽抗原,主要是HCV 特异性抗原决定簇的肽片段;第二代产品包被的抗原既有基因工程抗原又有合成肽,只是当时的基因工程抗原不全,仅包括了HCV 的核心区片段;第三代产品基本上采用了基因工程抗原,而且这些抗原包括更多、更稳定、纯度更高的HCV 特异性抗原。

第三代试剂的敏感度大大提高了。

基因工程抗原与合成肽抗原的区别如下:基因工程抗原是抗原基因在质粒载体中原核或真核表达的蛋白质抗原,多以大肠杆菌或酵母菌为表达系统。

该类抗原与合成肽相比具有以下特点:a.分子量大。

合成肽采用化学方法制备,由于工艺的局限,合成数量有限,只能达到数百个氨基酸;而利用基因工程制备的抗原,分子量更大。

b.稳定性好。

包被的抗原的稳定性可使试剂盒的效期得到保证,早期以合成肽为包被抗原的试剂盒效期只有3-4 个月,采用基因工程抗原后效期大大延长了。

c.基因工程抗原将特异性抗原决定簇基因融合表达,表达产物包含更多的抗原决定簇,可提高试剂盒的灵敏度,提高检出率。

d.纯化难度大。

基因工程抗原的纯化技术难度较大。

合成多肽抗原是根据蛋白质抗原分子的某一抗原决定簇的氨基酸序列人工合成的多肽片段。

合成肽抗原有以下特点: a.分子量太小;b.一般只含有一个抗原决定簇;c.纯度高;d.稳定性差。

国内乙肝两对半试剂厂家较多;不同厂家出产的试剂灵敏度与特异性存在一定的差别,资料显示,不同厂家试剂的特异性和敏感性分别为89.4%—99.3%,78%—89%存在较大差异。

有的厂家酶标板孔间A值差大于15%;标记酶的活性及显色液的稳定比较差。

使用质劣的试剂必然导致结果的假阳性或假阴性。

因此。

选择高质量的试剂是保证结果准确的关键之一。

•选择试剂时应选择灵敏度高、特异性好、稳定性好、批间差小、操作方便省时的优良检测试剂,国家参比实验室每年对各厂家的试剂进行质量评估并定期公布评估结果,可作为选择试剂的主要依据。

•要注意试剂的批号和出厂日期,虽然试剂的有效期多为1年。

最好选择刚出厂的试剂使用。

不同厂家的试剂不能混用。

不同方法学的检测试剂,会使两对半结果出现一些不同。

例如:在实际工作中常用ELISA检测HBsAg 结果为阴性,而电化学发光检测为阳性。

除方法学的灵敏度外;还存在使用单抗或多克隆抗体试剂的差别。

单抗对变异抗原或亚型乙肝标志物检测存在差异,建议试剂厂家对剂的制备应该考虑亚型及型浓度的问题。

3、操作技术的影响操作过程的控制:⑴严格按照试剂说明书进行操作。

操作前将试剂在室温下平衡30~60min。

⑵加样后及时放人孵箱。

标本较多时,要分批操作。

按说明步骤严格控制操作时间,防止孵育时间人为延长,导致非特异性结合紧附于反应孔周围,难以清洗彻底。

(3)封板温育时,各孔一定要封严,防止阳性标本的液体蒸发,产生周边现象从而导致“花板”的出现。

(4)用洗板机洗板时,保证洗液注满各孔,洗板针畅通,洗完板后最好在吸水纸(选择干净、无或少尘的吸水材料)上轻轻拍干:还要防止针口有纤维蛋白或异物,这些异物在洗板的过程中易产生拖带现象而导致“花板”的出现。

(5)合理安排检测量,以免反应板过多造成洗板等待时间长。

(6)加酶试剂后用吸水纸在酶标板表面轻拭吸干。

(7)显色剂尽量在临用前配制,坚持不用过期显色剂,肉眼可见浅蓝色的TMB显色剂不用。

(8)加样时保持显色剂不外流;A、B液应避免接触金属器械。

加终止液时应避免产生气泡。

(9)应保证酶标板清洁,整个操作过程中保证酶标板不接触次氯酸。

以上的措施可以使“花板”降至最低限度。

从而提高检测的特异性。

并得到更准确、可靠的实验结果。

加样吸嘴的洁净与否和吸量的准确性,直接影响检测结果。

由于吸嘴构造特殊,导致清洗困难,加大了交叉污染的机会。

建议用一次性吸嘴。

加样器也要经常清洗,定期校准。

加样时应将所加物加在ELISA 板孔的底部,避免加在孔壁上部,并注意不可溅出。

温浴影响,在建立ELISA 方法作反应动力学研究时,实验表明,两次抗原抗体反应一般在37℃经1-2 小时,产物的生成可达顶峰。

为避免蒸发,板上应加盖,也可用塑料贴封纸或保鲜膜覆盖板孔,反应板不宜叠放,以保证各板的温度都能迅速平衡。

应注意温育的温度和时间应按规定力求准确。

由于公司的试剂盒温育是在空气浴中完成,采用水浴会造成值偏高或花板。

另外温育中还有边缘效应,边上的值会偏高,建议为了客观的判断结果,将质控放在非边缘位置。

96孔酶标板结构特别;易产生边缘效应,抗原抗体结合及酶促反应对温度有严格要求,酶标板周围与内部孔升降温速率不同,造成周边与内部孔结果差异;干浴与水浴存在明显的差异,尽可能使用水浴,并要求固相板放入水中,减少受热不均,贴密封膜,防止污物浸入。

洗涤在ELISA 过程中虽不是一个反应步骤,但却决定着实验的成败。

ELSIA 就是靠洗涤来达到分离游离的和结合的酶标记物的目的。

通过洗涤以清除残留在板孔中没能与固相抗原或抗体结合的物质,以及在反应过程中非特异性地吸附于固相载体的干扰物质。

聚苯乙烯等塑料对蛋白质的吸附是普遍性的,而在洗涤时应把这种非特异性吸附的干扰物质洗涤下来。

可以说在ELISA 操作中,洗涤是最主要的关键技术,应引起操作者的高度重视,操作者应严格按要求洗涤,不得马虎。

洗涤液多为含非离子型洗涤剂的中性缓冲液,各种试剂盒的洗液不要混用。

聚苯乙烯载体与蛋白质的结合是疏水性的,非离子型洗涤剂既含疏水基团,也含亲水基团,其疏水基团与蛋白质的疏水基团借疏水键结合,从而削弱蛋白质与固相载体的结合,并借助于亲水基团和水分子的结合作用,使蛋白质回复到水溶液状态,从而脱离固相载体。

洗涤液中的非离子型洗涤剂一般是吐温20,其浓度可在0.05%-0.2%之间,高于0.2%时,可使包被在固相上的抗原或抗体解吸附而减低试验的灵敏度。

洗液需要稀释,应按要求稀释。

配制洗液应用新鲜的和高质量的纯化水,电导率小于1.5μs/cm,洗液如果结晶应待其融解后配制。

手洗条件一致性较差,对结果影响较大,防止洗液在孔内形成气泡。

半自动与全自动冼板机使用不当也会影响结果,血清中残留的的纤维蛋白丝或洗涤液析出的结晶易使洗板机针小孔全阻塞或半阻塞状态,造成未结合标记酶洗脱不彻底,导致“花板”造成假阳性或假阴性;所以操作洗板机过程中要不时观察洗板机针孔内洗液的通畅状况,及时纠正,洗板机不用时应用去离子水清冼几遍。

保证洗板浸泡时间为40 秒左右,孔内液体被洗板机吸得越干净洗涤效果更好,手工洗板4.显色和比色TMB 经HRP 作用后,约40 分钟显色达顶峰,随即逐渐减弱,至2 小时后即可完全消退至无色。

TMB 的终止液有多种,叠氮钠和十二烷基硫酸钠(SDS)等酶抑制剂均可使反应终止。

这类终止剂尚能使蓝色维持较长时间(12-24 小时)不褪,是目视判断的良好终止剂。

此外,各类酸性终止液则会使蓝色转变成黄色,此时可用特定的波长(450nm)测读吸光值。

酶标比色仪简称酶标仪,通常指专用于测读ELISA 结果吸光度的光度计。

酶标仪的主要性能指标有:测读速度、读数的准确性、重复性、精确度和可测范围、线性等等。

优良的酶标仪的读数一般可精确到0.001,准确性为±1%,重复性达0.5%。

酶标仪不应安置在阳光或强光照射下,操作时室温宜在15 -30℃,使用前先预热仪器15-30 分钟,测读结果更稳定。

测读A 值时,要选用产物的敏感吸收峰,如OPD用492nm 波长。

有的酶标仪可用双波长式测读,即每孔先后测读两次,第一次在最适波长(W1),第二次在不敏感波长(W2),两次测定间不移动ELISA 板的位置,最终测得的A 值为两者之差(W1-W2)。

双波长式测读可减少由容器上的划痕或指印等造成的光干扰。

肉眼判断结果时,显色浅不易观察,影响结果的准确性,必须使用酶标仪检测,以保结果一致性。

5.HooK效应影响随着ELISA一步法的应用,一些标本中抗原含量过高,产生HooK效应。

影响检测结果,采用同步稀释测定或使用线性范围高的两对半定量法可以减HooK反应的发生。

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