聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳分离血清蛋白
血清蛋白聚丙烯酰胺凝胶电泳
在血清蛋白聚丙烯酰胺凝胶电泳结果中，如果出现异常的蛋白条带，如过亮、过暗或异常迁移率，可 能提示某些疾病或生理变化。这些异常条带可能与炎症、感染、肿瘤或代谢紊乱等病理状态相关，需 要进一步的临床和实验室检查以明确诊断。
结果分析
总结词
结合临床信息和实验室数据，对血清蛋白聚丙烯酰胺 凝胶电泳结果进行分析。
应用
聚丙烯酰胺凝胶电泳广泛应用于蛋白质组学、生物医药等领域，用于分 离、鉴定和纯化蛋白质，了解蛋白质的组成和功能。
02 实验原理
CHAPTER
血清蛋白的分离原理
分子筛效应
聚丙烯酰胺凝胶作为分子筛，能够根据蛋白质分子量大小进行分离，分子量小 的蛋白质容易进入凝胶孔洞，移动距离短；分子量大的蛋白质不容易进入凝胶 孔洞，移动距离长。
实验结果可靠性验证
对比已知标准品
通过与已知标准品进行比较，可以验证实验结果的准确性。 如果实验结果与标准品一致，则说一样品进行检测，并将结果 进行比较。如果不同方法得到的结果一致，则说明实验结 果是可靠的。
统计学分析
通过统计学分析，可以评估实验结果的可靠性和准确性。 例如，可以采用方差分析、回归分析和相关系数等方法对 实验结果进行统计分析。
总结词
通过观察分离出的血清蛋白条带，可以了解蛋白质的种类和数量。
详细描述
在聚丙烯酰胺凝胶电泳结果中，可以清晰地看到不同分子量和电荷的蛋白质被分离成不同的条带。根据条带的亮 度、清晰度和数量，可以初步判断血清中蛋白质的种类和数量。
异常蛋白条带的解读
总结词
异常蛋白条带的出现可能提示某些疾病或生理变化。
血清蛋白聚丙烯酰胺凝胶电泳
目录
CONTENTS
• 介绍 • 实验原理 • 实验步骤 • 结果解读 • 实验注意事项
SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳测定蛋白质分子量
精选2021版课件
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5.“SDS — 聚丙稀酰胺凝胶电 泳法测定蛋白质分子量”一实验的开 设达到了与国内同类院校相当的较高 水平。
对本科生的实验教学、本科生的 论文设计、研究生的高级生化实验等 方面都充实了内容。
精选2021版课件
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精选2021版课件
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（二）特点：
SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳，是在 聚丙烯酰胺凝胶系统中引进SDS（十二 烷基磺酸钠）。
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蛋白质在一定浓度的含有强还原剂 的SDS溶液中，与SDS分子按比例结合， 形成带负电荷的SDS-蛋白质复合物。
蛋白质丧失了原有的电荷状态形成 仅保持原有分子大小为特征的负离子团 块，降低或消除了各种蛋白质分子之间 天然的电荷差异，因此在进行电泳时，
电泳分类：移动界面电泳、区带电泳等。
区带电泳 是在半固相或胶状介质上加一个点或一薄 层样品溶液，然后加电场，分子在支持介质上或支 持介质中迁移。
精选2021版课件
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区带电泳使用不同的支持介质，有
滤纸、纤维素粉、聚氯乙烯树脂、淀 粉凝胶、琼脂凝胶、醋酸纤维素膜， 现在则多用聚丙烯酰胺（PAGE）和 琼脂糖凝胶。
球蛋白（去年完成的基金项目）
（三）纯化免疫球蛋白G DEAE-离子交换纤维素法纯化免疫球蛋白G子量（ 连续四个单项实验）。
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（1）制胶（简单叙述）（双层胶，摸索胶浓度）
A.将玻璃板用蒸馏水洗净晾干, 准备2个干 净的锥形瓶。把玻璃板在灌胶支架上固定好。
开封后溶于200µl蒸馏水，置-20℃保存，使用前室温融化，沸水浴中加热3-5分钟后上样。
。 样品1：称3mg样品1，加2 ml蒸馏水溶解
医学课件聚丙烯酰胺凝胶电泳分离血清蛋白
去，用滤纸吸干余水。加浓缩胶，封
水。室温下聚合20-30min。
2. 上样和电泳：将凝胶管插入电泳槽槽底橡胶塞 孔中，加入电极缓冲液与下电泳槽，随后放入凝 胶管及上槽，除气泡, 加样品液50μl至浓缩胶面。 加电解液直至装满上电泳槽。电泳约1.5hr。 3. 染色，观察结果：将胶从玻璃管中取出，注意 不要弄断凝胶。凝胶考马斯亮蓝染色，然后脱色， 脱色至背景清晰。观察结果。
聚丙烯酰胺凝胶电泳分离血清蛋白
电泳基本原理：
电泳是指带电粒子在电场的作用下，发生定向泳
动的现象。
电泳技术指利用电泳现象对混合物进行分离分析 的技术。
蛋白质N端游离氨基，C端游离羧基以及侧链上 一些基团在一定pH条件带电荷， 因此可以用 电泳技术分离和鉴定。
COO╱ + H+ Pr ←————→ ╲ + OHNH2 PH>PI COOCOOH ╱ + H+ ╱ Pr ←————→ Pr ╲ + OH╲ NH3+ NH3+ PH<PI
影响电泳速度的因素：
样品本身：带电量，分子大小作用
聚丙烯酰胺凝胶电泳分类
按凝胶装置分为盘状电泳及板状电泳
盘状电泳通常是不连续系统，利用缓冲液离子成分、 pH、凝胶孔径进行电泳，带电颗粒电泳时具有电荷效 应、分子筛效应、 浓缩效应。
结果示意图：
γ β α 2 α1 清蛋白
注意事项：
1．丙烯酰胺和甲叉双丙烯酰胺是神经毒性试剂，
对皮肤有刺激作用，注意避免直接接触。 2．制胶时，要充分摇匀，加速剂TEMED最后加。 3．注意观察实验现象：分界面，浓缩效应 . 4. 氨基黑染色﹑脱色﹑染液回收。
05 生物化学实验--聚丙烯酰胺凝胶电泳法分离血清蛋白质
聚丙烯酰胺凝胶电泳法分离血清蛋白质【目的】1 ． 掌握圆盘电泳分离血清蛋白的操作技术。
2 ．熟悉 聚丙烯酰胺凝胶电泳的原理。
【原理】带电粒子在电场中向着与其自身电荷方向相反的电极移动，称为电泳。
聚丙烯酰胺凝胶电泳（ PAGE ）就是以聚丙烯酰胺凝胶作为电泳介质的电泳。
在电泳时，蛋白质在介质中的移动速率与其分子的大小，形状和所带的电荷量有关。
聚丙烯酰胺凝胶是一种人工合成的凝胶，是由丙烯酰胺（ Acr ）单体和少量交联剂 N,N- 亚甲基双丙烯酰胺（ Bis ）在催化剂 过硫酸铵（Ap ） 和加速剂 四甲基乙二胺（ TEMED ） 的作用下发生聚合反应而制得的（其化学结构式见第 2 篇第 1 章）。
聚丙烯酰胺凝胶具有网状结构，其网眼的孔径大小可用改变凝胶液中单体的浓度或单体与交联剂的比例来加以控制。
根据血清蛋白分子量的大小，学生实验一般选用 7 ％聚丙烯酰胺凝胶分离血清蛋白质。
不连续聚丙烯酰胺凝胶电泳利用浓缩效应、分子筛效应和电荷效应的三重作用分离物质（见第 2 篇第 1 章）， 使样品分离效果好， 分辨率较高。
一般醋酸纤维薄膜电泳只能把血清蛋白质分离出 5 ～ 7 条带，而聚丙烯酰胺凝胶电泳却能分离出十几条到几十条来（图 3-4 ），是目前较好的支持介质， 应用十分广泛。
图 3-4 血清蛋白聚丙烯酰胺凝胶电泳图谱根据凝胶支持物的形状不同，分为垂直板电泳和盘状电泳两种，二者原理相同。
本实验采用的盘状电泳是在直立的玻璃管中，以孔径大小不同的聚丙烯酰胺凝胶作为支持物，采用电泳基质的不连续体系，使样品在不连续的两相间积聚浓缩（浓缩效应）成厚 度 为 10 -2 cm 的起始区带，然后再利用 分子筛效应和电荷效应的双重作用在分离胶中 进行电泳分离。
【器材】1 ．电泳仪直流稳压电源，电压 400 ～ 500V ，电流 50mA 。
2 ．垂直管型圆盘电泳装置目前这类装置的种类很多，可根据不同的实验要求选择其中的一种。
血清蛋白的电泳的实验报告
血清蛋白的电泳的实验报告
血清蛋白的电泳实验报告
血清蛋白是人体血液中最主要的蛋白质成分之一，它们在维持血液渗透压、运
输营养物质和调节免疫功能等方面发挥着重要作用。
电泳是一种常用的实验技术，可以通过电场作用下将蛋白质分离成不同的带状，从而对血清蛋白进行分
析和鉴定。
在本次实验中，我们使用了聚丙烯酰胺凝胶电泳技术对血清蛋白进行了分离。
首先，我们将血清样品加入到电泳凝胶槽中，然后施加电场使蛋白质在凝胶中
移动。
由于不同蛋白质的大小、电荷和形状不同，它们在电场作用下会以不同
的速度移动，最终形成不同的带状。
通过观察电泳结果，我们可以看到血清蛋白在凝胶上形成了多个明显的带状。
根据已知的标准蛋白质的电泳迁移率，我们可以对这些带状进行鉴定和定量分析。
通过比较实验样品的电泳图谱和标准样品的电泳图谱，我们可以确定血清
中不同蛋白质的含量和种类。
在实验中，我们发现血清蛋白主要可以分为白蛋白、球蛋白、转铁蛋白等多个
带状，它们在电泳图谱上呈现出清晰的分离和特征性的迁移率。
这些结果为我
们进一步了解血清蛋白的组成和功能提供了重要的参考。
总的来说，血清蛋白的电泳实验为我们提供了一种快速、准确地分析血清蛋白
的方法，对于临床诊断和疾病治疗具有重要意义。
通过对血清蛋白的电泳分析，我们可以更好地了解人体内蛋白质的组成和功能，为疾病的诊断和治疗提供科
学依据。
希望通过我们的努力，可以为医学科研和临床实践带来更多的启发和
突破。
血清蛋白的分离——聚丙烯酰胺凝胶电泳法
血清蛋白的分离——聚丙烯酰胺凝胶电泳法【摘要】目的 1.、学习聚丙烯酰胺凝胶电泳原理。
2、掌握聚丙烯酰胺园盘电泳的操作技术。
3、比较醋酸纤维薄膜电泳与本法分离血清蛋白质的效果。
方法采用聚丙烯酰胺凝胶电泳法对血清蛋白进行电泳分离，最后与醋酸纤维薄膜电泳的条带进行比较。
结果聚丙稀酰胺凝胶电泳法电泳鸡血清蛋白，在凝胶染色后出现了5条染色带。
结论聚丙烯酰胺凝胶电泳法分离血清蛋白的效果要比醋酸纤维薄膜电泳好得多。
【关键词】聚丙烯酰胺凝胶电泳法、电泳、血清蛋白近年来我国家禽发生禽流感病状很严重，为了更好的预防和治疗禽流感，我们决定先采用聚丙烯酰胺凝胶电泳法初步的鉴定鸡血清中含有几种蛋白质，因为大多数病毒都是依赖蛋白质为原料进行复制增多的。
然后再用考马斯亮蓝R250对电泳出来的凝胶进行染色、鉴定。
同时，也为了比较聚丙酰胺凝胶电泳法与醋酸纤维素薄膜电泳法分离血清蛋白的效果。
对象与方法一、对象1、检测标本：选取一只健康的鸡，杀鸡取血置于一个大烧杯内，用分离法分离血清。
2鸡血清的提取：采用高速离心机对原血进行高速离心，上清液就是鸡血清。
二、方法1、原理（1）盘状电泳是在区带电泳原理的基础上，以孔径大小不同的聚丙烯酰胺凝胶作为支持物，采用电泳基质的不连续体系（即凝胶层的不连续性、缓冲液离子成分的不连续性、pH的不连续性及电位梯度的不连续性），使样品在不连续的两相间积聚浓缩成很薄的起始区带（厚度为10-2厘米），然后再进行电泳分离。
盘状电泳名称来源即由于此法的原理是依靠基质不连续性（discontinuity），凑巧分离出的区带也很象圆盘状（discoid shape），取“不连续性”及“圆盘状”的英文字头“disc”。
因此，英文名称为disc electrophoresis，中文直译为盘状电泳。
仪器装置：上下两个槽为圆形或方形，其中注入缓冲液。
上下槽的缓冲液中分别有正、负电极通入。
上槽底部有很多小孔，可插入装有聚丙烯酰胺凝胶的玻璃管。
实验十一 聚丙烯酰胺凝胶电泳分离蛋白质
实验十一聚丙烯酰胺凝胶电泳分离蛋白质一、目的1、掌握聚丙烯酰胺凝胶电泳技术；2、掌握同工酶遗传标记的分析方法。
二、原理聚丙烯酰胺凝胶电泳简称为PAGE(Polyacrylamide gel electrophoresis)，是以聚丙烯酰胺凝胶为作为支持介质的一种常见电泳技术。
聚丙烯酰胺凝胶由单体丙烯酰胺（Acr）和甲叉双丙烯酰胺聚合而成，聚合过程由自由基催化完成。
催化聚合的常用方法有两种：化学聚合法和光聚合法。
化学聚合法以过硫酸铵（AP）为催化剂，以四甲基乙二胺（TEMED）为加速器。
在聚合过程中，TEMED催化过硫酸铵产生自由基，后者引发丙烯酰胺单体聚合，同时甲叉双丙烯酰胺与丙烯酰胺链间产生甲叉键交联，从而形成三维网状结构。
由于同工酶的酶蛋白分子的大小和结构不同，携带的电荷种类和数量不同，所以可用凝胶电泳将它们一一分开。
在适宜酶催化反映的条件下提供酶作用的底物，再利用特殊的显色反应以显示产物的形成或底物的消失，就可以看到经电泳分离后的同工酶谱带。
同工酶的鉴定过程通常如下：1、从植物样品中提取粗酶液；2、聚丙烯酰胺凝胶电泳把样品中酶带分开；用专一作用底物和特殊染料把需要分析的酶染色，显示同工酶谱。
同工酶技术是通过电泳和组织化学方法进行特异性染色而把酶蛋白分子分离，并将其位置和活性直接在染色区带以酶谱的形式标记出来。
分离同工酶的方法有：电泳法、层析法、酶学法和免疫学其中以电泳法最为普遍，电泳法中又以垂直平板聚丙烯酰胺凝胶电泳分辨率为最好。
聚丙烯酰胺凝胶电泳有三种物理效应：1、样品的浓缩效应；2、凝胶的分子筛效应；3、一般的电泳分离的电荷效应。
三、仪器、设备、药品及材料仪器、设备：电泳仪、电泳槽、离心机、移液管、装凝胶用的玻璃管（内径为5mm、长度为90mm）。
垂直板电泳装置图药品：三羟甲基氨基甲烷（Tris）、四甲基乙二胺（TEMED）、丙烯酰胺（Acr）、价差双丙烯酰胺（Bir）、甘氨酸、过硫酸铵（AP）、蔗糖、溴酚蓝、联苯胺、过氧化氢。
生物化学实验五《聚丙烯酰胺凝胶盘状电泳分离血清蛋白》课件
➢ 分辨率高 ➢ 用于复杂和特殊样品的分离
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不连续电泳的四种不连续体系
➢凝胶的不连续 ➢缓冲液成份的不连续 ➢缓冲液pH值的不连续 ➢电压梯度的不连续
不连续电泳的三种物理效应
➢ 样品的浓缩效应 ➢ 凝胶的分子筛效应 ➢ 电荷效应
电泳的过程三种效应同时存在，对蛋白样品起协同作用，使样品各组 分按照带电量、分子质量及形状按一定的顺序分离。
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三、实验步骤
封槽
清洁、干燥的小玻管一端，用Parafilm贴封后垂直放在管架上
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制胶和灌胶
分离胶：A:C:D:E＝1:2:3:2（V/V） 浓缩胶：B:C:D:E＝2:1:5:2（V/V）
➢ A: pH8.9 Tris/Hcl缓冲液
➢ B: pH6.7 Tris/Hcl缓冲液
➢ C: 30% Acr-Bis贮存液
电泳
➢ 连接电极，上负下正； ➢ 浓缩胶：3mA／管，分离胶：4mA／管； ➢ 待示踪染料接近凝胶管底部约0.5cm处，切断电源。
剥胶
取下凝胶管，用注射器吸取一定量的蒸馏水，将针头插入胶柱-与管内壁之间 ，边注水边旋转玻管，直至胶柱与管壁分离，然后用洗耳球轻轻在玻管的一 端加压，使凝胶柱从玻管缓慢滑出，将凝胶柱置于干净的试管内，用蒸馏水 冲洗几次。
实验五 聚丙烯酰胺凝胶盘状电泳分离血清蛋白 动物医学院动物生化教研室
1
一、实验目的
① 掌握聚丙烯酰胺凝胶盘状电泳的原理； ② 学习聚丙烯酰胺凝胶盘状电泳的操作技术； ③ 了解血清蛋白的主要成份。
2
二、实验原理
➢ 不连续系统聚丙烯酰胺凝胶电泳中，蛋白样品通过浓缩胶的浓 缩按分子大小排列成层，然后进入分离胶，随着电泳的不断进行 ，不同大小、电荷的蛋白质分子逐渐被分开。
聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳分离血清蛋白
聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳分离血清蛋白［实验目的］(1) 学习聚丙烯酰胺凝胶垂直电泳原理。
(2) 掌握聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳的操作技术。
(3) 比较醋酸纤维薄膜电泳与聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳分离血清蛋白的操作效果。
［实验原理］带电质点在电场作用下，会向两极移动；带正电荷的移向负极，带负电荷的移向正极, 这种现象称为电泳。
(简称Acr)和交联剂N,N-甲叉双丙烯酰胺(简称Bis) (简称TEMED 和催化剂过硫酸铵(简称AP)或核黄素的(polyacrylamide gel electrophoresis ［实验试剂］ 1、待测样品：新鲜血清 2、制备分离胶、浓缩胶有关试剂:(1) 凝胶缓冲液：称取 1 mol/L HCl 48ml,Tris( 三羟基氨基甲烷)36.6g,TEMED 0.23mL,加重蒸馏水至80mL 使其溶解，调pH8.9，然后加重蒸馏水定容至 100mL ，至棕色瓶，冰箱储藏。
(2) 分离胶贮液，一般有两种配法:i 28% Acr-0.735 % Bis 贮液：丙烯酰胺28.0克，甲叉双丙烯酰胺 0.735克，加重蒸馏水使 其溶解然后定容至 100mL.ii 30 % Acr-0.8 % Bis 贮液：Acr30.0克,Bis0.8 克，加重蒸馏水使其溶解定容至 100mL.以上两种溶液需用棕色试剂瓶盛放,4 C 储存，一般可放置一个月左右.(3) 分析纯过硫酸铵(AP) (AR)0.14g 加重蒸水100mL,棕色瓶,4 C 储存仅能用一周，最好当天 配置.上述三种试剂用于制备分离胶 . ⑷ 浓缩胶缓冲液：称取 1mol/LHCL48mL,Tris5.98g,TEMED 0.46mL,加重蒸水至80mL,调pH6.7,用重蒸水定容至100mL,棕色瓶4 C 储存. (5)浓缩胶贮液：称取Acr10g , Bis2.5g ，加重蒸水溶解定容 100mL,过滤后至棕色瓶 4C 贮存。
血清蛋白的分离——
（2）分离胶的制备
试剂名称 分离胶缓冲液（ph8.9） 分离胶凝胶贮液
蒸馏水
用量（ml) 2.5ml 5.0ml 2.5ml
将以上三种试剂混合均匀后， 置于真空干燥器中
过硫酸铵，置于真空干燥器 中，抽气10min
抽气10min 10.0ml
按上表格配胶，二者抽气后混合均匀，小心不 要在溶液中搅出气泡，以免过多接触空气。
(3) 浓缩胶制备（同垂直板）：
按垂直板的方案进行配制，配制好后，立
即加入到已配制好的分离胶上面至短玻璃板上 端约1cm，然后放于日光灯下10 分钟左右浓缩 胶就开始凝胶，30~50 分钟左右凝好（凝缩胶 变为乳白色为准）。
2.加样
将 电极缓冲液稀释10 倍后倒入电泳装置的上.下槽 中（注意需没过玻璃管的上下端），用微量注射 器通过缓冲液在每个玻璃管的凝胶表面加约5ul 的 样品
将分离胶上层的水倒去，再用滤纸吸去多余的 水（注意不要碰破胶面），为下一步做准备。
(3)浓缩胶制备：
试剂名称
用量（ml)
浓缩胶缓冲液（ph6.7)
0.5ml
浓缩胶贮液
1.0ml
40%蔗糖
2.0ml
将以上三种试剂混合均匀后， 置于真空干燥器中，
抽气10min
核黄素
0.5ml
按上表所示配胶，抽气后加核黄素0.5ml,混匀， 立即加入到已配制好的分离胶上面至短玻璃板 上端约0.5cm，插入加样梳，放于日光灯下10 分钟左右浓缩胶就开始凝胶，30~50分钟左右 凝好（凝缩胶变为乳白色为准），凝好后小心 拔去加样梳。
将缓冲液回收至试剂瓶中，还可用1-2 次 （注意将正负级的缓冲液分开回收）。
4.剥胶 将固定螺丝旋松，取出硅橡胶框，将一块
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聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳分离血清蛋白[实验目的](1)学习聚丙烯酰胺凝胶垂直电泳原理。
(2)掌握聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳的操作技术。
(3)比较醋酸纤维薄膜电泳与聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳分离血清蛋白的操作效果。
[实验原理]带电质点在电场作用下，会向两极移动；带正电荷的移向负极，带负电荷的移向正极，这种现象称为电泳。
聚丙烯酰胺凝胶是由单体丙烯酰胺(简称Acr)和交联剂N,N-甲叉双丙烯酰胺(简称Bis)在加速剂N，N，N'，N'—四甲基乙二胺(简称TEMED)和催化剂过硫酸铵(简称AP)或核黄素的作用下聚合交联成三维网状结构的凝胶，以此凝胶为支持物的电泳称为聚丙烯酰胺凝胶电泳(polyacrylamide gel electrophoresis，简称PAGE)。
[实验试剂]1、待测样品：新鲜血清2、制备分离胶、浓缩胶有关试剂：(1)凝胶缓冲液：称取1 mol/L HCl 48ml,Tris(三羟基氨基甲烷)36.6g,TEMED 0.23mL,加重蒸馏水至80mL 使其溶解，调pH8.9，然后加重蒸馏水定容至100mL ，至棕色瓶，冰箱储藏。
(2)分离胶贮液，一般有两种配法：ⅰ28％Acr-0.735％Bis贮液：丙烯酰胺28.0克，甲叉双丙烯酰胺0.735克,加重蒸馏水使其溶解然后定容至100mL.ⅱ30％Acr-0.8％Bis贮液:Acr30.0克,Bis0.8克,加重蒸馏水使其溶解定容至100mL.以上两种溶液需用棕色试剂瓶盛放,4℃储存,一般可放置一个月左右.(3)分析纯过硫酸铵(AP)(AR)0.14g加重蒸水100mL,棕色瓶,4℃储存仅能用一周,最好当天配置.上述三种试剂用于制备分离胶.(4)浓缩胶缓冲液:称取1mol/LHCL48mL,Tris5.98g,TEMED 0.46mL,加重蒸水至80mL,调pH6.7,用重蒸水定容至100mL,棕色瓶4℃储存.(5)浓缩胶贮液:称取Acr10g，Bis2.5g，加重蒸水溶解定容100mL，过滤后至棕色瓶4℃贮存。
(6)40％蔗糖溶液（W/V）(7)核黄素4.0mg,加重蒸水溶解,定容至100mL,棕色瓶4℃贮存.以上(4)-(7)4种溶液用于配置浓缩胶.3.Tris-甘氨酸电极缓冲液(pH8.3)称取Tris 6.0g,甘氨酸28.8g,加蒸馏水至900mL,调pH之后定容至1000mL,4℃贮存,使用前稀释10倍.4. 0.1％溴酚蓝指示剂.5.染色液染色液种类较多,染色方法也不完全相同,详细染色法如下:本实验采用0.05％考马斯亮蓝R250染色液中,含20％磺基水杨酸,其优点是染色固定同时进行,背景易脱色.0.05％考马斯亮蓝R250的20％磺基水杨酸染液:考马斯亮蓝0.05g,磺基水杨酸20g,加蒸馏水至100mL,过滤后至试剂瓶内保存. 6.脱色液0.1mol/lNaCl溶液 7.保存液甘油10mL,冰乙酸7mL,加蒸馏水至100mL 8.1％琼脂糖溶液琼脂1g,加已稀释10倍的电极缓冲液,加热溶解,4℃贮存备用，使用时取出加热成液体，待稍微冷却后用胶头滴管吸取使用，胶头滴管使用完后立即清洗干净. [实验仪器]夹心式垂直板电泳槽，样品槽模板，直流稳压电源（电压300—600V ，电流50—100mA ），吸量管（1mL ，5mL ，10mL ），烧杯，细长头滴管，1mL 注射器及6号长针头，微量注射器，水泵或油泵，真空干燥器，培养皿（直径120mm ），玻璃板，日光灯一台[实验步骤] 一、安装夹心式垂直板电泳槽夹心式垂直板电泳槽操作简单，不易渗漏，其装置如图1.导线接头2.下贮槽3.凹形橡胶框 1.样品槽模板 2.长玻璃板4.样品槽模板5.固定螺丝6.上贮槽 3.短玻璃板 4.凹形橡胶框7.冷凝系统各部件依下列顺序组装:(1)装上贮槽和固定螺丝，勿使上下贮槽在外连通，使用橡皮管时用夹子夹住.(2)玻璃板洗净后用吹风机吹干，清洗玻璃板时不得用刷子刷，可用纱布或海绵擦洗，以免在玻璃表面上留下刮痕，清洗后不得用纸或布擦干，将长短玻璃板分别插在硅相框的凹形槽中，注意勿用手接触灌胶面的玻璃。
(3)将已插好玻璃板的橡胶框平放在上贮槽上，短玻璃板应面对上贮槽。
(4)将下贮槽的销孔对准已装好螺丝销钉的上贮槽，双手以对角线方式旋紧螺丝帽。
(5)竖直电泳槽，在长玻璃板下端与硅模框交界的缝隙内加入已融化的1％琼脂，其目的是封住空隙，凝固后的琼脂应避免里面有气泡。
二、配胶目前用于PAGE（聚丙烯酰胺凝胶电泳）凝胶贮液有30％Acr-0.8％Bis及28％Acr-0.735％Bis 2种，以它们为母液可以配置不同浓度的分离胶。
不同浓度的分离胶及浓缩胶配置方法见下表：三、制备凝胶板PAGE有连续体系和不连续体系，其灌胶方式不完全相同，分别叙述如下：a)连续体系本实验采用28％Acr-0.735％Bis 凝胶贮液，从冰箱取出各种贮液，平衡至室温后，按上表的配比配制20mL 7.0％凝胶。
前三种溶液混合在一小烧杯内，（3）号液单独放置一小烧杯。
二者抽气后混合均匀，立即用细长头滴管将分离胶溶液加到凝胶膜长、短玻璃板间的夹缝内，当加至距离短玻璃板上缘约0.5cm时，停止加胶，轻轻将样品槽模板（梳子）插入。
在上、下贮槽中倒入蒸馏水，液面不能超过上贮槽的短玻璃板，防止蒸馏水进入凝胶之中。
作用是增加压力，防止凝胶渗漏。
凝胶液在混合后15min开始聚合，约30min-1h完成聚合作用。
聚合后，在样品槽模板梳齿下缘与凝胶界面间有折射率不同的透明带。
看到透明带后继续放置半小时，再用双手取出样品槽模板，动作要轻，用力均匀，以防弄破加样凹槽。
凹槽中残留液体可用窄滤纸条轻轻吸取，切勿插进凝胶中，应保持加样槽凹面平整。
放掉上、下贮槽中的蒸馏水，在上下两个电极槽倒入电极缓冲液，液面应没过短玻璃板上方约0.5cm。
b)不连续体系不连续体系采用不同孔径及pH的分离胶与浓缩胶，凝胶制备分两步进行。
i.分离胶制备：根据实验要求，本实验需20mL pH8.9 7.0％PAA溶液，配置方法见凝胶配置表。
其加胶方式不同于连续体系。
混合后的凝胶溶液，用细长头的滴管加至长、短玻璃板的狭缝内，加至距离样品模板梳齿下端约1cm。
用1mL注射器在凝胶表面轻轻加一层重蒸馏水,用于隔绝空气,使胶面平整,为防止渗漏,在上、下贮槽中加入略低于胶面的蒸馏水，上下槽两侧加入25o C～30o C温水，有助于凝胶。
约30min-60min凝胶完全聚合，可以看到水与凝固的胶面有折射率不同的界线，用滤纸吸去多余的水，但不要碰破胶面。
ii.浓缩胶的制备：浓缩胶为3.75％PAA，其配制方法见凝胶配置表。
即（4）︰（5）︰（6）︰（7）=1︰3︰3︰1。
混合均匀后用细长头的滴管将凝胶溶液加到长、短玻璃板的窄缝内（即分离胶上方），距短玻璃板上端0.5cm处，轻轻加入样品槽模板。
在上、下贮槽中加入蒸馏水，但是不能超过短玻璃板上缘。
在距电极槽10cm处用日光灯或者太阳光照射，进行光聚合，但是不要造成大的升温。
凝胶由淡黄透明变成乳白色，则表示聚合作用开始。
继续光照，使凝胶完全聚合，聚合完成后放置30-60min，轻轻取出样品槽模板，用窄滤纸条吸去凹槽中多余的液体，加入电极缓冲液，使液面没过短玻璃板约0.5cm，即可加样。
注：本次试验采用不连续体系，以达到较好的分离效果四、加样用微量注射器取5微升样品，通过缓冲液，小心地将样品加到凝胶凹形样品槽底部，待所有凹形样品槽内都加了样品，即可开始电泳。
五、电泳将直流稳压电泳仪的正极与下槽相连，负极与上槽连接。
接通冷却水，打开电泳仪开关，开始时将电流调至10mA。
待样品进入分离胶时，将电流调至20-30mA，当蓝色染料迁移至距离橡胶框下端1cm时，电泳完成。
关闭冷却水开关及电源。
收集上、下贮槽电极缓冲液，取出硅胶框，用钢铲轻轻将一块玻璃撬开移走，将凝胶板置于大培养皿中染色。
六、染色本实验用0.05％考马斯亮蓝R250染色液，染色与固定同时进行，染色时加热，染色30min 左右。
七、脱色用0.1mol/L的NaCl浸泡漂洗数次，直至背景蓝色褪去，但注意不要过久，能看清楚蛋白质带即可。
[注意事项]1.器材不洁净会影响凝胶聚合，所有器材均应严格清洗。
玻璃板应浸泡在重铬酸钾洗液3-4h 或0.2mol/L KOH的酒精溶液中20min以上，用清水冲洗，再用纱布或海绵蘸洗涤液洗净，最后用蒸馏水冲洗干净，直接阴干或者用吹风吹干。
2.用琼脂封底和灌胶时不能出现气泡，以免影响电泳时电流的通过。
3.取出样品槽模板以及用滤纸吸取多余液体时应注意不能弄破胶面，动作要轻，用力要均匀。
4.电泳时正负极不能接错。
[思考题]1.为什么要在样品中加入含少许溴酚蓝的40％蔗糖溶液？蔗糖及溴酚蓝的用途各是什么？2.上、下电极缓冲液电泳后，能否混合存放？为什么？3.根据实验过程的体会，总结做好聚丙烯酰胺凝胶垂直板电泳的关键步骤有哪些？[评分标准]1.按时上课：+5；2.实验台卫生：+10；3.实验操作：+25；4.预习报告：+10；5.实验报告：①实验现象、图样描述（+15）；②思考题的分析解答（+20）；③实验心得（+5）（自评、互评）；④实验日志（+10）盘状聚丙烯酰胺凝胶电泳分离血清蛋白(选学)【目的和要求】1.掌握盘状聚丙烯酰胺凝胶电泳的基本原理。
2.学习盘状聚丙烯酰胺凝胶电泳的操作技术，包括制胶、灌胶、加样、电泳、剥胶、染色及脱色等。
3.了解盘状聚丙烯酰胺凝胶电泳的应用，利用盘状聚丙烯酰胺凝胶电泳分离血清蛋白质和血清球蛋白-血清清蛋白-铁氧还原蛋白的混合液。
【实验原理】盘状聚丙烯酰胺凝胶，是由丙烯酰胺单体和少量的交联剂甲叉双丙烯酰胺，在催化剂的作用下聚合交联而成的三维网状结构的凝胶。
改变单体的浓度或单体与交联剂的比例，可以得到不同孔径的凝胶，将次凝胶灌装于直立的玻璃管中，再加样品，进行电泳分离，称为盘状聚丙烯酰胺凝胶电泳。
一般常采用7.5%的盘状聚丙烯酰胺凝胶分离蛋白质，2.4%的分离核酸。
盘状聚丙烯酰胺凝胶电泳又常分为两大类，第一类是连续的凝胶电泳，第二类是不连续的凝胶电泳不连续的凝胶电泳亦可称为盘状电泳。
在这种电泳过程中，除去一般的电荷效应外，还有两种物理效应：（1）凝胶对样品分子的筛选效应：颗粒小，形状为圆球形的样品分子，移动较快；颗粒大形状不规则的样品分子，通过凝胶孔洞时受到的阻力较大，移动较慢。
（2）不连续系统对样品的浓缩效应：高度的浓缩效应，大大提高电泳分离的分辨率，特别适用于稀浓度的样品的分离。
【实验试剂与仪器】试剂：新鲜不溶血的动物细胞，凝胶缓冲液（pH=8.9），分离胶缓冲液（28%Acr-0.735%Bis），浓缩胶缓冲液（pH=6.7），浓缩胶贮液，过硫酸铵溶液（当天用当天配置），核黄素铵溶液，40%蔗糖溶液，Tris-甘氨酸电极缓冲液（pH=8.3），0.1%溴酚蓝指示剂，染色液，脱色液。