四川和重庆地区鸭源沙门氏菌分离鉴定及血清型分析

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一株鸭源巴氏杆菌的分离及荚膜抗原血清型鉴定

5.4.1由于牛场、牛舍地面进水，造成环境中菌群发生变化，另外随污水污物大量微生物进入牛场，造成疫病发生威胁，需要进行全场消毒，雨季后野草生长加快，造成蚊虫滋生成为传播血液性寄生虫媒介，一定做好牛场周围除草、卫生防疫工作。

5.4.2奶牛场雨季过后最常见疾病是乳房炎和蹄病，需要在彻底消毒的前提下，对有蹄病表现的牛加强管理，可以通过过道撒布生石灰，既能起到消毒作用，又能除湿；用喷壶对重点奶牛喷洒硫酸铜或者是戊二醛。

防止乳房炎的发生可以带牛消毒，药物可选择含碘类、过氧乙酸、戊二醛等。

5.4.3雨季由于牛舍和运动场潮湿，粪污稀薄，致使牛蹄长期浸泡在粪便中，导致蹄壳变软，加之卧床潮湿，奶牛不愿趴卧，蹄病发生率上升；过度潮湿环境导致蹄底局部形成厌氧环境，会引起趾间皮炎的流行，由于该病是传染性，一旦牛场有牛感染，很快会波及大群，因此一定要搞好卫生消毒，雨季前后尽量不要从外面购置新牛。

█一株鸭源巴氏杆菌的分离及荚膜抗原血清型鉴定贾仰波(山东省博兴县畜牧兽医局山东滨州256500)作者简介：贾仰波（1981—），男，大专，助理兽医师，研究方向：兽医。

着家禽养殖业的迅速扩张，肉鸡养殖业的发展也如火如荼。

鸡对饲料的转化率是家禽养殖业中相对较高的一种，业绩良好的鸡只养殖料重比可以达到2:1左右，通过参考肉鸡饲料的转化规律，以及综合考虑当下鸡只以及鸡蛋的市场行情，饲料价格等因素，合理规划安排肉鸡的生产以及出栏，最大限度提高经济效益。

本文将对鸡只的养殖管理技术以及蛋鸡养殖过程中常见的卵黄性腹膜炎的防治措施进行介绍，旨在为鸡只的科学养殖带来帮助。

；养殖管理；场址选择；卵黄性腹膜炎；经济效益鸭巴氏杆菌病又称鸭霍乱，是由禽多杀性巴氏杆菌引起的一种急性、败血性、高度接触性传染病，该病主要引起禽类出血性败血症，发病急、死亡快。

多杀性巴氏杆菌根据荚膜抗原可以分为A 、B 、D 、E 、F 等5种血清型，且不同血清型之间缺乏有效的交叉免疫保护力，通常我国家禽中主要流行A 型多杀性巴氏杆菌。

1株鸭源性都柏林沙门菌的分离与鉴定

ｇ片）强力霉素（０ｇ片）／、３／。
２结果
ＰｒｉａｉｎＫｉ，自ＴａＲａ公司；敏试纸，ｕｉｃｔｔ购ｆｏＫａ药购自杭州天和微生物试剂有限公司。１２细菌分离２１．０１年５月，州某养殖户饲养扬
１３生化试验．取纯化的菌株接种于肠杆菌科细
２１细菌分离．
从送检麻鸭的肝组织分离的细菌，
在ＬＢ板上长出乳白色、圆润菌落，麦康凯琼脂上在
培养４８ｈ后可见无色、明的菌落，长缓慢。无透生
状逢宽度明显低于阳性对照组（Ｐ＜００）与阳性．５，
由表５所见，剂量组、性对照组胎鼠体重、高阴
尾长、身长均明显大于阳性对照组（Ｐ＜Ｏ０）与阳．５，
性对照组相比有高度显著性差异（ＯＯ；Ｐ＜．１）中剂量组胎鼠体重高于阳性对照组（Ｐ＜００）与阳性．５，对照组相比有显著性差异（Ｐ＜Ｏ０。高、低３．５）中、个剂量组各指标与阴性对照组相比无显著性差异
说明进行ＰＲ扩增，ＡｇｒｓｌＮＡＰｒｉ — Ｃ用ａｏｅＧｅＤｕｉｃｆａ
ｔｎＫｉｉｔ回收纯化阳性条带，隆至ｐＭ— ａｙｏ克ＧＥＴＥｓ
１１材料．
ＬＢ培养基、康凯琼脂培养基，麦按通用

沙门氏菌的检测与分离鉴定技术研究进展

沙门氏菌的检测与分离鉴定技术研究进展发布时间：2023-01-28T07:08:29.544Z 来源：《科技新时代》2022年9月16期作者：任衍倍[导读] 沙门氏菌（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ）是革兰氏阴性菌任衍倍天津瑞普生物技术股份有限公司 300000摘要：沙门氏菌（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａ）是革兰氏阴性菌，杆状，是重要的肠道致病菌。

沙门氏菌属是一个很大的菌属，其血清型超２６００种。

肠炎沙门氏菌（ＳａｌｍｏｎｅｌｌａＥｎｔｅｒｉｔｉｄｉｓ）常可引起鸡、鸭等禽类感染，近年来，人们对沙门氏菌病例的调查表明，养殖场９３％的鸡检测出沙门氏菌感染，认为家禽及其副产品是最常见的传染途径，与其他血清型沙门氏菌相比，肠炎沙门氏菌在蛋鸡生殖道的定植能力更强。

沙门氏菌能通过输卵管直接沉积在蛋黄中，从而躲过鸡蛋的清洗和消毒，导致感染的蛋孵化率低，弱雏率和死亡率增加，还会造成肉鸡生长速度减缓、采食量下降和肠炎性腹泻、死亡等症状，对肉鸡养殖业造成了巨大经济损失。

更重要的是，沙门氏菌可引起食物中毒。

近基于此，本篇文章对沙门氏菌的检测与分离鉴定技术进行研究，以供参考。

关键词：沙门氏菌；检测；离鉴定技术引言沙门氏菌病，又称副伤寒，是由沙门氏菌属细菌引起的人畜共患性疾病，我国农业部将其列为二类动物疫病。

沙门氏菌具有菌体（O）、鞭毛（H）、菌毛、K四种抗原，其中O抗原和K抗原是其主要抗原，根据O、K抗原差异可将沙门氏菌分为不同的血清型，根据Kauffman?White标准，可将沙门氏菌属分为2500个以上血清型。

沙门氏菌可引发多种动物各种各样的疾病，人类通过摄食受污染的动物产品可导致食物中毒和相应的食源性疾病。

如何在畜牧业产品进出口及消费市场做好沙门氏菌的监测工作，如何使食品污染物监测网络更加合理全面，是未来沙门氏菌检测发展的方向。

1监测方法取病死鸡的肝脏、脾脏病料，在超净工作台内分别接种于麦康凯琼脂培养基、普通营养琼脂培养基，３７℃恒温箱中培养１８ｈ。

鸭大肠杆菌与沙门氏菌混合感染的分离鉴定及药敏试验

鸭大肠杆菌与沙门氏菌混合感染的分离鉴定及药敏试验
方案有关。

而分离菌虽然对左旋氧氟沙星和恩诺沙星高度敏感，但由于鸭群在使用氟喹诺酮类药物以后，若剂量掌握不好，容易发生光敏作用而导致鸭群发生“喙畸形或变形”，因此养殖户使用这些药物比较谨慎。

可见，定期开展常见病原菌的耐药性监测对于指导养殖户科学用药具有重要意义。

鸭大肠杆菌病和鸭沙门氏菌病是雏鸭常发病，具有较高的发病率和死亡率。

信阳市是河南省主要的水禽集散地，近年来随着养殖规模的不断扩大和养殖品种的复杂化，以及种源病原净化不彻底等因素，当地的养殖环境特别是水体环境逐渐恶化，再加上饲养管理不规范、抗菌药物的不合理使用，导致鸭大肠杆菌病、鸭沙门氏菌病和鸭疫里氏杆菌病等疾病的发生呈现常态化、复杂化。

而一些新发传染病如鸭脾坏死症在实验室接诊的病例中出现的比例不断扩大，更增加了疾病诊断和防控的难度[4]。

综合以上因素，雏鸭大肠杆菌病、沙门氏菌病等传染病的防治有赖于洁净的种源、规范的饲养环境和饲养管理措施、血清型对应的免疫接种程序以及规范的药物使用制度。

参考文献：
[1]蒋新华，张文波，熊莉娟，等. 一株鸭致病性大肠杆菌的分离鉴定及耐药分析[J]. 中国家禽，2012，34（5）：20-22.
[2]陈伯伦. 鸭病[M]. 北京：中国农业出版社，2008.
[3]桂炳东，孙敬，徐建民.细菌药物敏感性试验测定手册[M]. 南昌：江西科学技术出版社，2001.
[4]丁孟建，陈绩，赵青剑，等. 雏鸭沙门氏菌病病原分离鉴定及耐药性检测[J]. 中国家禽，
2013，35（11）：45-46. 感谢您的阅读！。

关于一株鸭源沙门氏菌的分离鉴定

革兰氏阴性细菌鉴定该菌为沙门氏茵。关键词：沙门氏茵；鸭；生化试验
ＤｏＩ：１０．３９６９／Ｊ．ＩＳＳＮ．１６７１－６０２７．２０１５．０９．０７０
沙门氏菌病（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌｏｓｉｓ）是公共卫生学上颇具重要意义的人畜共患病之一，其病原沙门氏菌为
结果。
胰蛋白胨大豆琼脂血清培养基上分离培养。３７ ℃恒温箱中培养２４～４８ｈ后观察结果。
向ＶＰ管内加６滴甲液和２滴乙液后，摇匀，置于３７￣（２恒温箱继续培养３０ｍｉｎ后取出，培养基变红为阳性，反之为阴性；向ＩＮＤ管内加１２滴吲哚试
有利于养殖户对发病鸭群尽早治疗，便于控制病
系统使用说明书要求，用微量移液器分别向ＯＰＮＧ、精氨酸（ＡＤＨ）、赖氨酸（ＬＤＨ）、鸟氨酸（ＯＤＣ）、柠檬酸（ＣＩＴ）、硫化氢（Ｈｓ）、脲酶（ＵＲＥ）、乳糖（ＬＡＣ）、吲哚（ＩＮＤ）、ＶＰ、明胶（ＧＥＬ）、葡萄糖（ＧＬＵ）、甘露醇（ＭＡＮ）、肌醇（ＩＮＯ）、山梨醇（ＳＯＲ）、鼠李糖（ＲＨＡ）、蔗糖（ＳＡＣ）、蜜二糖（ＭＥＬ）、苦杏仁甙（ＡＭＹ）、阿拉伯糖（ＡＲＡ）等生化管中加入１００ｔｘＬ菌悬液。其中，ＣＩＴ为固体斜面培养基，需沿斜面加入。吸取２００～

沙门氏菌检验方法及检验结果

沙门氏菌检验方法及检验结果发布时间：2022-09-16T08:48:36.490Z 来源：《医师在线》2022年5月10期作者：贾敏[导读]沙门氏菌检验方法及检验结果贾敏（四川省射洪市疾病预防控制中心?四川遂宁629200）【摘要】目的：研究分析沙门氏菌检验方法及检验结果。

方法：本次研究选取我单位的送检样本展开分析，样本的送检时间在2020年4月-2021年12月，本次研究的样本量为80份，将其分为观察组（予以血清学鉴定和全面生化反应检验）和对照组（予以常规检验），分组方法为随机数字表法，单组样本量一致，均为40份。

对比分析两组的检验结果。

结果：从两组的检验有效率方面进行分析，观察组和对照组存在着明显差异，检验有效率分别为95.00%和75.00%，观察组明显更高，差异有统计学意义（P＜0.05）。

结论：在沙门氏菌的检验中，采用血清学鉴定和全面生化反应检验的效果更加明显，检验的有效率明显提高，这对临床疾病的治疗提供了可靠的参考依据，值得临床推广。

【关键词】沙门氏菌；检验方法；检验结果沙门氏菌属于食源性致病菌，这种类型的病菌能够专门针对人和动物致病，其主要是寄生在人和动物的肠道内，而且沙门氏菌在大自然中极为常见，一旦受到病菌感染，患者常会表现出恶心、呕吐、腹泻等症状，尤其对于身体素质较差的老人和儿童，在感染后病情会更加严重，严重威胁着人们的身体健康[1]。

因此，对于沙门氏菌采取有效的检验措施，尽早确定疾病接受对应的治疗，这对患者的身体康复有着重要帮助。

目前，临床对于沙门氏菌有着多种检验方案，常用的检验方法有氧化氢酶检验法，全面生化反应检验和血清学鉴定，这些检验方法在检验结果上存在着一定的差异性[2]。

鉴于此，本次研究选取我单位的80份送检样本展开分析，分别采取常规检验和血清学鉴定以及全面生化反应检验，对检验结果展开分析，现将具体内容阐述如下。

1.资料与方法1.1一般资料选取我单位在2020年4月-2021年12月期间送检的80份样本展开分析，按照随机数字表法分为观察组和对照组，每组均有40份。

生鲜鸭肉生产关键环节中沙门氏菌分离鉴定及快速检测方法建立

生鲜鸭肉生产关键环节中沙门氏菌分离鉴定及快速检测方
法建立
标题:生鲜鸭肉生产关键环节中沙门氏菌分离鉴定及快速检测方法建立
在生鲜鸭肉的生产过程中，确保食品安全至关重要。

沙门氏菌是一种常见的食源性病原菌，对人体健康有潜在危害。

因此，在鸭肉生产的关键环节中，建立沙门氏菌的分离鉴定和快速检测方法是非常必要的。

首先，为了确保分离到准确的沙门氏菌菌株，生产环节中的样本采集非常重要。

在鸭肉屠宰过程中，应当在符合卫生标准的环境下，采集来自鸭肉表面的样本。

这些样本将被送往实验室进行后续处理。

其次，针对分离到的样本，需要进行沙门氏菌的鉴定。

传统的鉴定方法包括生化反应和血清学试验，但这些方法耗时且复杂。

因此，建立快速的分子生物学方法非常重要。

PCR技术可以通过引物特异
性地扩增沙门氏菌的DNA，从而实现快速鉴定。

此外，还可以利用质谱技术进行菌株的鉴定，通过菌株特征谱图进行分析。

最后，鉴定完成后，需要建立快速检测方法以确保产品的安全性。

目前，常用的快速检测方法包括荧光PCR和快速免疫试纸法。

这些方法具有快速、准确、便捷的特点，可以在生产过程中进行快速检测，确保产品不受沙门氏菌污染。

总之，生鲜鸭肉生产关键环节中沙门氏菌的分离鉴定和快速检测方法的建立对于食品安全至关重要。

通过合理采样、快速鉴定和可靠的检测方法，可以有效防控沙门氏菌的污染，保障消费者的健康和权益。

在实践中，生产者应严格遵守相关规定和标准，确保食品安全，为消费者提供优质的生鲜鸭肉产品。

沙门氏菌血清学分型

沙门氏菌血清学分型沙门氏菌（Salmonella），是一类革兰氏阴性杆菌，属于沙门氏菌科（Salmonellaceae）。

沙门氏菌是一种常见的食源性致病菌，可以引起沙门氏菌感染（Salmonellosis）。

根据沙门氏菌的血清学特性，可以将其分为不同的血清型，其中最常见的分型方法是沙门氏菌血清学分型。

沙门氏菌血清学分型是通过检测沙门氏菌外膜上的抗原决定簇（Antigenic Determinants）来进行的。

沙门氏菌的抗原决定簇主要包括两种类型：H抗原（鞭毛抗原）和O抗原（外膜多糖抗原）。

根据不同的H抗原和O抗原的组合情况，可以将沙门氏菌分为不同的血清型。

H抗原是沙门氏菌鞭毛上的抗原决定簇，也是沙门氏菌血清学分型中的一个重要指标。

根据H抗原的不同，沙门氏菌可分为多个血清型，如H1、H2、H3等。

H抗原的特性决定了沙门氏菌的运动方式，也是沙门氏菌致病性的一个重要因素。

O抗原是沙门氏菌外膜多糖上的抗原决定簇，也是沙门氏菌血清学分型中的另一个重要指标。

根据O抗原的不同，沙门氏菌可分为多个血清型，如O1、O2、O3等。

O抗原的特性决定了沙门氏菌的致病性和免疫原性。

沙门氏菌血清学分型的方法主要有两种：草履虫凝集试验（SlideAgglutination Test）和管式凝集试验（Tube Agglutination Test）。

这两种方法都是通过将沙门氏菌菌株与相应的抗血清混合，观察是否发生凝集反应来确定沙门氏菌的血清型。

草履虫凝集试验是一种简单且常用的分型方法，通常用于初步鉴定沙门氏菌的血清型。

该试验将沙门氏菌菌株与不同的抗血清混合，然后在玻片上进行观察。

如果发生凝集反应，则可以确定该菌株具有相应的抗原决定簇，从而确定其血清型。

管式凝集试验是一种更为精确的分型方法，通常用于确认沙门氏菌的血清型。

该试验将沙门氏菌菌株与不同的抗血清分别混合在试管中，然后观察是否发生凝集反应。

如果发生凝集反应，则可以确定该菌株具有相应的抗原决定簇，从而确定其血清型。

养鸭场血清1型鸭疫里默氏杆菌分离与鉴定

养鸭场血清1型鸭疫里默氏杆菌分离与鉴定蒋姝;王康锐;杨清林;马财万;黄承洪【期刊名称】《重庆科技学院学报（自然科学版）》【年(卷),期】2017(019)005【摘要】鸭疫里默氏杆菌是引起鸭传染性浆膜炎的病原,目前国内外已经报道有超过21种血清型.该菌感染谱广,不但可以感染鸭,还可以感染鹅、天鹅、鸡、野鸭、猪等动物.对某鸭场25—30日龄鸭罹患传染性浆膜炎进行了病原分离,经形态观察、血清学实验及聚合酶链式反应,证实了该养鸭场感染的RA为血清1型;SEM观察RA呈"草履虫"形态;PCR扩增得到1046 bp大小条带;药物敏感实验表明其对头孢唑啉、环丙沙星、丁氨卡那、利福平高度敏感,相继采用头孢唑啉和利福平治疗后迅速控制了疫情发展.【总页数】4页(P112-114,118)【作者】蒋姝;王康锐;杨清林;马财万;黄承洪【作者单位】重庆科技学院,重庆 401331;重庆科技学院,重庆 401331;重庆科技学院,重庆 401331;重庆科技学院,重庆 401331;重庆科技学院,重庆 401331【正文语种】中文【中图分类】S852.61【相关文献】1.一株无毒力鸭疫里默氏杆菌的分离与鉴定 [J], 张蓉蓉;罗青平;王红琳;温国元;艾地云;杨峻;罗玲;邵华斌2.湖北1型鸭疫里默氏杆菌的分离与鉴定 [J], 廖永洪;张蓉蓉;艾地云;邵璐璐;邵华斌;杨峻;罗玲;王红琳;杨前平;罗青平;温国元3.对一株鸭疫里默氏杆菌的分离与鉴定 [J], 徐荣妹;刘金彪4.一例鸭1型甲肝病毒和11型鸭疫里默氏杆菌混合感染的诊断及其病原的分离鉴定 [J], 陈翠腾;程龙飞;傅光华;万春和;刘荣昌;傅秋玲;陈珍;朱春华;陈红梅5.血清1型鸭疫里默氏杆菌灭活油乳剂疫苗的研制 [J], 王小兰;胡青海;童永亮;韩先干;丁铲;于圣青因版权原因，仅展示原文概要，查看原文内容请购买。

沙门氏菌检验及分析

沙门氏菌检验及分析沙门氏菌是一种能够引起食物中毒的细菌，它会在食品生产和加工过程中引起污染，导致食品中毒事件的发生。

对食品中的沙门氏菌进行检验及分析是非常重要的，可以保障食品安全，保护消费者的健康。

一、沙门氏菌的检验方法1. 检验样品的选择要进行沙门氏菌的检验，首先需要选择检验样品。

常见的样品包括生鲜肉类、禽类、蛋类、奶制品、水产品、蔬菜和水果等。

2. 检验方法沙门氏菌的检验方法主要有传统培养法和分子生物学方法。

传统培养法：通过在适宜的培养基上培养样品中的沙门氏菌，并进行培养时间、培养温度和培养后的观察来进行检验。

分子生物学方法：包括PCR、实时荧光PCR、蛋白质芯片技术等。

3. 检验过程（1）样品的制备：将样品进行预处理，如样品减容、均质化、稀释等。

（2）沙门氏菌的分离：将样品在培养基上进行分离培养，并进行相应的筛选和鉴定。

（3）菌落的计数：通过计数方法，对沙门氏菌的数量进行测定。

（4）沙门氏菌的鉴定：对分离出的沙门氏菌进行鉴定，确认其种属和毒力类型。

4. 结果分析通过检验分析得到的结果，对样品是否超标、是否存在沙门氏菌污染等进行判断和分析。

二、沙门氏菌的分析意义2. 生产质量对食品中的沙门氏菌进行检验和分析，可以对生产工艺进行控制，确保生产过程的卫生安全，保障产品的质量。

3. 公共卫生及时对食品中的沙门氏菌进行检验和分析，可以帮助卫生监管部门掌握食品安全情况，及时采取措施，有效保护公共卫生。

4. 营养健康保障食品安全，避免食品中毒事件的发生，对促进人们的营养健康具有重要意义。

三、沙门氏菌的预防控制为了有效预防和控制沙门氏菌污染，可以采取以下措施：1. 生产环节控制合理设计食品生产线，加强生产卫生管理，确保生产过程中的卫生安全。

2. 原料筛选选择优质原料，确保原料的卫生安全性。

3. 加工控制加强食品加工的卫生监管，保障食品加工过程中的卫生安全。

4. 检验监控加强对食品中沙门氏菌的检验监控，确保食品质量和食品安全。

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ｄｏｉ：１０．３９６９￣．ｉｓｓｎ．１００８ — ０５８９．２０１５．０４．０６
四川和重庆地区鸭源沙门氏菌分离鉴定及血清型分析
陈俊，蒋文灿，程平，谭天，许凯迪，杨丽红
（１．四川农业大学动物医学学院，四川雅安６２５０１４；２．动物疫病与人类健康ｔ￣）ｌｌ省重点实验室，四川雅安６２５０１４）
Ａｂｓｔｒａｃｔ：ＩｎｏｒｄｅｒｔｏｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｅｔｈｅｐｒｅｖａｌｅｎｃｅｏｆＳａｌｍｏｎｅｌｌａｉｎＳｉｃｈｕａｎａｎｄＣｈｏｎｇｑｉｎｇ，ａｔｏｔａｌｏｆ１６３Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａｗｅｒｅｉｓｏｌａｔｅｄａｎｄｉｄｅｎｔｉｉｆｅｄｆｒｏｍ３６６ｃｌｉｎｉｃａｌｓａｍｐｌｅｓｃｏｌｌｅｃｔｅｄｒｆｏｍｌａｒｇｅ — ｓｃａｌｅｄｕｃｋｆａｒｍｓｉｎｔｈｅｓｅａｒｅａｓ．ＴｈｅＳａｌｍｏｎｅｌｌａｓｅｒｏｔｙｐｉｎｇｒｅｓｕｌｔｓｄｉｓｐｌａｙｅｄｔｈａｔ６７ｏｆｔｈｅ１６３ｉｓｏｌａｔｅｓｗｉｔｈｒｏｕｇｈｃｏｌｏｎｉｅｓｗｅｒｅｕｎａｂｌｅｔｏｄｅｔｅｒｍｉｎｅｔｈｅｓｅｒｏＤ￣ｃｓ，ａｎｄｔｈｅｏｔｈｅｒｉｓｏｌａｔｅｓｏｆ９６ＳａｌｍｏｎｅｌｌａｒｅｓｐｅｃｔｉｖｅｌｙｂｅｌｏｎｇｅｄｔｏＡ，Ｂ，Ｃ１，Ｃ２，ＤａｎｄＦｓｅｒｏｇｒｏｕｐｓ．ｉｎｃｌｕｄｅｄＳ．ｉｍｍｕ，Ｓ．ｐａｒａｔｙｐｈｉａ，Ｓ．ｏｒａｎｉｅｎｂｕｒｇｗｈｉｃｈｗｅｒｅｔｈｅｄｏｍｉｎａｎｔｐｒｅｖａｌｅｎｃｅｉｓｏｌａｔｅｓ，ａｎｄＳ．ｎａｒａｓｈｉｎｏ，Ｓ．ｔｙｐｈｉｍｕｉｕｆｍ，Ｓ．ｅｎｔｅｒｉｔｉｄｉｓ，Ｓ．ｃｈｏｌｅｒａｅｓｕｉｓ，Ｓ．ｏｓｌｏ，Ｓ．ｍｋａｍｂａ，
中图分类号：￥８５２．６１文献标识码：Ａ文章编号：１００８．０５８９（２０１５）０４．０２６２０４
Ｉｓｏｌａｔｉｏｎ，ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎａｎｄｓｅｒｏｔｙｐｅａｎａｌｙｓｉｓｏｆＳａｌｍｏｎｅｌｌａｆｒＯｍｄｕｃｋｌｉｎｇｓａｎｄｄｅａｄｄｕｃｋ・ｅｍｂｒｙｏｓｉｎＳｉｃｈｕａｎａｎｄＣｈｏｎｇｑｉ和重庆地区规模化种鸭场鸭源沙门氏菌流行情况，本研究从四川和重庆地区规模化种鸭
场采集病料样品３６６份，分离出１６３株鸭源沙门氏茵。血清型鉴定结果显示１６３株沙门氏菌中有９６株能够确定血清型，分属Ａ、Ｂ、ｃ１、Ｃ２、Ｄ及Ｆ共６个血清群；另有６７株属于粗糙型茵落未能分型。优势菌株为伊鲁木沙门氏茵、甲型副伤寒沙门氏茵及奥雷宁堡沙门氏茵。其次为习志野沙门氏茵、鼠伤寒沙门氏茵、肠炎沙门氏菌、猪霍乱沙门氏茵、奥斯陆沙门氏茵、姆卡巴沙门氏菌及昌丹斯沙门氏菌。采用已确定血清型的７株鸭源沙门氏茵人工感染实验雏鸭，结果显示７株鸭源沙门氏菌均具有致病性，死亡率为２０％～１００％，平均死亡率７７．１４％。本研究为进一步研究鸭源沙门氏菌流行情况和血清型分布情况提供参考。关键词：沙门氏菌；分离鉴定；血清型；鸭；四川；重庆
第３７卷第４期
２０１５年４月
中国预
防兽
医学报
Ｖｏ１．３７．Ｎｏ．４
Ａｐｒ．２０１５
ＣｈｉｎｅｓｅＪｏｕｎａｒｌｏｆＰｒｅｖｅｎｔｉｖｅＶｅｔｅｒｉｎａｒｙＭｅｄｉｃｉｎｅ
２．ＫｅｙＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭｅｄｉｃｉｎｅｏｆＡｎｉｍａｌＤｉｓｅａｓｅａｎｄＨｕｍａｎＨｅａｌｔｈｏｆＳｉｃｈｕａｎＰｒｏｖｉｎｃｅ，Ｙａ ’ ｎａ６２５０１４，Ｃｈｉｎａ）
ＣＨＥＮＪｕｎ，ＪＩＡＮＧＷｅｎ－ｃａｎ＇，ＣＨＥＮＰｉｎｇ，ＴＡＮＴｉａｎ，ＸＵＫａｉ — ｄｉ，ＹＡＮＧＬｉ — ｈｏｎｇ
（１．ＣｏｌｌｅｇｅｏｆＶｅｔｅｒｉｎａｒｙＭｅｄｉｃｉｎｅ，ＳｉｃｈｕａｎＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，Ｙａ ’ ａｎ６２５０１４，Ｃｈｉｎａ；