【报告】实验7：失血性休克及其抢救
失血性休克及抢救
4、代偿表现 主要分三个方面： （1）自身输血 （2）自身输液 （3）血液重分布 5、代偿意义 ⑴有利于维持动脉血压 ⑵有利于心脑的血液供应
（二）休克失代偿期（decompensatory stage）
即休克第二期，又叫休克期或微循环淤滞期或淤血性缺氧期
1、发生机制
（1） 神经体液机制 1）酸中毒 分三个方面： 2）局部扩血管代谢产物增多 3）内毒素的作用 （2）血液流变学机制 此期微循环血液流变学发生了明显改变：血液流速显著 减慢，红细胞和血小板聚集，白细胞滚动、贴壁、嵌塞、血 液粘滞度增加，血液“泥化”（sludge）淤滞，微循环淤血， 组织灌流量进一步减少，缺氧更为严重。形成恶性循环，机 体失代偿。
结扎动脉远心端，将另一套线拨向远心 端后于近心端上动脉夹；剪开动脉一小切口， 将动脉插管插入并结扎好。
6. BL系统心电导线连接 (了解一下，这步可不做) 将导针插入四肢皮下：右前肢——红色，左前肢——黄色，左下肢— —绿色，右后肢——黑色。
7. BL系统操作： a、点击“实验项目” →“病理生理学模块” →“失血性休克” b、 或者按如下操作： “输入信号”→“1通道” →“压力”
5、失代偿后果 总的来说，有三个方面即： （1）回心血量急剧减少 （2）自身输液停止 （3）心脑血液灌流量减少 此时血压进行性下降
休克的防治：
一、积极预防休克的发生 二、早期发现，及时合理治疗
1. 补充循环血量（扩容） 补液原则是“需多少，补多少”
2. 纠正酸中毒和电解质紊乱 3. 合理使用血管活性药物 4. 保护细胞的药物
….k
k+30
回输血+5
放血次数
BP
（mmHg）
60
？
失血性休克实验报告
综合实验三重症急救——失血性休克及抢救报告人：徐子岩实验名称：失血性休克实验时间：2017年5月25日14:00-22:00实验地点：仙林基础医学楼机能学实验室实验人员：主管——邢思妍主操作人——许雅丽仪器监护——杨雪助手——徐子岩实验目的：1.学习动脉插管测量和记录动脉血压并观察神经体液因素对动脉血压的调节作用。
2.复制家兔失血性休克模型，探讨失血性休克的发病机理并分析抢救措施。
3.观察失血性休克时和抢救过程中动物的代谢功能代谢变化及微循环改变。
4.观察不同药物对动物血压指标的影响，并学习其作用机制。
实验材料：[动物] 新西兰纯种白兔[药品] 20%乌拉坦、利多卡因注射液、0.9％氯化钠注射液、125U/ml肝素溶液、1％普鲁卡因，7.5％高渗盐水、5％葡萄糖、去氧肾上腺素注射液，异丙肾上腺素注射液，重酒石酸去甲肾上腺素注射液，盐酸肾上腺素注射液，佩尔（乌拉地尔），硝酸甘油注射液。
[器材] 手术器械，注射器（1ml、5ml、10ml），动脉插管，压力换能器、生物信号采集处理系统、呼吸机。
针头（9号、16号）、头皮针、动脉导管、气管插管、兔手术台、听诊器、压力换能器、HX200型呼吸流量换能器、RM6240多道生理信号采集处理系统、输血输液装置、微循环观察装置。
实验步骤：动物体征：体重1.92kg，排便量大，难麻。
1. 家兔称重后耳缘静脉缓慢注射20%乌拉坦（按5ml/kg）麻醉。
待动物麻醉后，于仰卧位固定在兔手术台上。
2．连接心电电极，在生物信号采集系统中记录心电图。
3．手术局部剪毛，颈前正中切开皮肤6-8cm，直至下颌角上1.5-2cm，用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉，暴露气管及与气管平行的左右血管神经鞘，细心分离一侧鞘膜内的颈总动脉和迷走神经。
在气管下穿两根粗结扎线备用。
4．全身肝素化：经耳缘静脉注射125U/ml的肝素1ml/Kg进行全身肝素化。
5．结扎左颈总动脉远心端，做左颈动脉插管，将导管与动脉结扎固定，接上压力换能器，在生物信号采集系统中记录血压。
家兔失血性休克及其抢救实验报告
家兔失血性休克及其抢救实验报告
实验一：家兔失血性休克模型的建立
实验目的：本实验旨在建立家兔失血性休克模型，以便探究该病情的发生机制及抢救
措施。
实验材料和方法：本次实验材料均来自成年雄性家兔，共有15只，体质量均为2.5
kg左右，每只家兔体内取得150 ml鲜血，并以此构建失血休克模型，放置于恒温器中保
持恒温，监测家兔体温、血氧饱和度、心率等生理指标。
实验结果：按照实验设定，放血完毕后，家兔的体表温比刚开始实验时期降低了 1.2℃以上，血氧饱和度下降到80-90%以下，而心率却急剧上升到160-170次/分钟之外，家兔
还出现了瘙痒、抽搐、呕吐等典型症状，明显发现其已经进入失血性休克状态。
结论：本实验成功建立了家兔失血性休克模型，可供今后失血性休克研究及抢救策略
研究使用。
实验目的：本实验旨在考察用于家兔失血性休克的抢救策略的有效性，并找出最佳的
抢救方案。
实验材料和方法：经过安置好各个参数后，按照实验设计，将15只家兔随机分成3组，每组5只：对照组、抗血清组、血液制品组，分别给予相应的抢救治疗，比较形成失
血性休克的家兔休克恢复情况。
实验结果：经过1个小时的抢救，家兔失血性休克模型的生理指标有显著改善。
其中，血液制品组的体表温降幅最低，血氧饱和度下降最小，心率最低，可见血液制品组的抢救
措施最为有效。
结论：本次实验证实，在家兔失血性休克抢救中，最佳抢救方案应该采用血液制品抢救，并取得良好治疗效果。
机能学实验 失血性休克及抢救
失血性休克及抢救学号xxxxxxx姓名xxxxxx 日期2010-5-28一．实验目的：1.复制家兔失血性休克模型2.探讨失血性休克的发病机制3.分析失血性休克的抢救措施二．实验准备：1．动物：家兔一只，2.05kg，雄性2．药品：20%乌拉坦、肝素溶液（125U/ml）、3:2:1溶液（7.5%高渗盐水：低分子右旋糖酐：5%葡萄糖）、4% NaHCO3溶液、肾上腺素、去甲肾上腺素、酚妥拉明、异丙肾上腺素、多巴胺等3．器械：手术器械（剪毛剪，组织剪，止血钳，眼科剪，玻璃分针，止血夹等），注射器（50ml，20ml，10ml，1ml），针头（9号，16号），头皮针，动脉导管，气管插管，兔手术台，听诊器，压力换能器，HX200型呼吸流量换能器，RM6240多道生理信号采集处理系统。
三．实验步骤：1．家兔称后固定于手术台上，左耳耳缘静脉缓慢注射20%乌拉坦共12ml麻醉，待家兔麻醉后仰卧位固定于手术台上。
2．颈部剪毛，分离右侧颈总动脉，动脉插管，并连接三通管记录血压。
3．分离气管，做气管插管，插管另一端连接呼吸流量换能器。
4．将针形电极分别插入四肢踝部皮下，导联线按右前肢（绿）、左后肢（红）、右后肢（黑）的顺序连接，以记录心电图波形。
5．腹部左侧距中线2cm左右剪毛，做纵行切口，打开腹腔，牵出部分回肠，肉眼观察失血前后小肠微循环的变化。
6．连接RM6240信号采集处理系统，监测血压、呼吸、心电等生理指标。
7．从颈总动脉放血，至血压降至40mmHg左右停止放血，共放血20ml。
维持大约15min 后，做血气分析，并观察以上生理指标的变化。
8．失血性休克模型完成，实施抢救（以下均从耳缘静脉注射）：（1）依次输全血5ml，3：2：1溶液10ml；（2）注射4% NaHCO3溶液5ml；（3）注射肾上腺素0.3ml；（4）注射酚妥拉明0.2ml；（5）注射异丙肾上腺素0.1ml；（6）继续扩容，依次输全血10ml，3：2：1溶液5ml；（7）注射去甲肾上腺素0.1ml，10min后再次注射0.2ml；（8）由于家兔血压一直维持在20mmHg左右，故继续采取扩容，注射肾上腺素、去甲肾上腺素、异丙肾上腺素、多巴胺等措施，但均未使血压恢复到正常水平，宣布抢救失败，实验结束。
实验七 失血性休克及其抢救
失血性休克及其抢救[摘要] 目的观察兔在失血性休克时的表现，探讨失血性休克的发生机制。
进行失血性休克的抢救。
方法复制兔失血性休克模型，运用RM6240系统直接采集数据。
结果少量失血后，家兔心率加快，呼吸急促；大量快速失血后，家兔呼吸减微弱，血压明显下降，出现失血性休克症状。
结论家兔快速大量失血会引发休克，补充血容量是提高心输出量和改善组织灌流的基本措施。
[关键词] 失血性休克微循环障碍组织灌流失血性休克是由于血容量急剧减少,使组织器官血液灌流不足,从而产生机能、代谢严重障碍的一种全身性病理过程[1]。
本实验通过复制家兔失血性休克模型来探讨失血性休克的发生机制及其抢救。
1 材料家兔，哺乳动物手术器械；血压换能器，生物信号处理系统，1ml、10ml、50ml注射器，输液装置；氨基甲酸乙酯，生理盐水，肝素2 方法2.1实验数据连接和参数设置动脉插管固定于血压换能器上，血压换能器固定于铁支柱上，高度与心脏处于同一水平面。
压力换能器输出线接微机生物信号采集处理系统输入通道。
参数如下：开启RM6240系统，在“实验”菜单中选择“兔动脉血压调节”。
时间常数为直流，滤波频率100Hz，灵敏度12kPa，采样频率800Hz，扫描速度2s/div。
2.2手术准备2.2.1麻醉手术家兔称重后，按1g/kg体重的剂量于耳缘静脉注射200g/L的氨基甲酸乙酯麻醉。
动物麻醉后仰卧于手术台上，固定四肢，前肢交叉固定，用棉绳勾住兔门齿，将绳拉紧并缚于兔台铁架上。
2.2.2减去颈部被毛，切开颈部皮肤5-7cm，钝性分离颈部肌肉、暴露颈部气管和血管神经鞘，用玻璃分针仔细分离右侧颈外静脉和左侧颈总动脉，各穿两根线备用。
2.2.3颈外静脉插管先用血管夹夹住右侧颈外静脉近心端，再在远心端用线结扎，用剪刀在靠近结扎处静脉壁上剪一“V”字形开口，将静脉插管向心方向插入静脉，扎进固定。
打开血管夹。
将生理盐水以每分钟2滴的速度注入颈外静脉。
2.2.4颈总动脉插管先在左颈总动脉远心端结扎，再在近心端用动脉夹夹住。
失血性休克的实训报告
一、实训目的1. 理解失血性休克的概念、病因及临床表现。
2. 掌握失血性休克的诊断和治疗方法。
3. 提高临床护理技能，培养应对紧急情况的能力。
二、实训时间2023年3月25日三、实训地点某医学院校临床技能实训中心四、实训对象20名护理专业学生五、实训内容1. 失血性休克的概念及病因2. 失血性休克的临床表现及诊断3. 失血性休克的急救与治疗4. 实操演练：模拟失血性休克的抢救过程六、实训过程1. 理论学习首先，由带教老师讲解失血性休克的概念、病因、临床表现、诊断及治疗方法。
通过PPT展示，使学生了解失血性休克的病理生理机制，以及各种治疗措施的原理。
2. 临床案例分析带教老师结合临床案例，详细解析失血性休克的诊断和治疗方法，使学生掌握临床应用技巧。
3. 实操演练（1）模拟失血性休克的抢救过程① 患者模拟：由一名同学扮演失血性休克患者，表现出心率加快、血压下降、面色苍白等症状。
② 抢救过程：其他同学根据失血性休克的抢救流程，对患者进行急救处理。
包括：建立静脉通道、给予氧疗、监测生命体征、补充血容量、抗休克治疗等。
③ 案例讨论：抢救结束后，带教老师组织学生进行案例讨论，总结抢救过程中的优点和不足，并提出改进措施。
（2）失血性休克的护理操作① 静脉穿刺：学生在模拟人体上练习静脉穿刺技术，提高操作熟练度。
② 输液操作：学生在模拟人体上练习输液技术，确保输液速度和剂量准确。
4. 总结与反思实训结束后，带教老师对学生的表现进行点评，指出优点和不足，并提出改进建议。
学生针对实训过程中遇到的问题进行反思，总结经验教训。
七、实训收获1. 提高了学生对失血性休克的认知水平，掌握了失血性休克的诊断和治疗方法。
2. 增强了学生的临床护理技能，提高了应对紧急情况的能力。
3. 培养了学生的团队协作精神和沟通能力。
八、实训总结本次实训使学生掌握了失血性休克的临床知识和操作技能，提高了学生的临床思维能力和应急处理能力。
在今后的学习和工作中，学生应不断巩固所学知识，提高自身综合素质，为患者提供优质的护理服务。
机能实验失血性休克及其抢救
2. 纠正酸中毒和电解质紊乱
3. 合理使用血管活性药物
[实验步骤]： 家兔、称重、麻醉、固定
膀胱插管
气管插管
充生理盐水
右侧颈外静脉插管
充满肝素
左侧颈总动脉插管
全身血液肝素化 耳缘1ml/Kg 连接BL-420生物机能实验系统
少量失血(少于10%, 约10ml) 大量失血(20%-30%, BP30-40mmHg)
1.少量失血家兔是否发生休克？ 2.休克不同时期，会右哪些症状出现？
治疗：1.NE 0.2 ml 溶于10ml NS 滴注（5min） 2.快速回输血液
[观察指标]：
不同处理因素下实验结果
BP
（mmHg）
实验前 小量失血 大量失血 NE 输血
呼吸
(次/分)
尿量 耳朵ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ膜血管
（滴/分） 温度/颜色
[实验注意]：
1. 动静脉插管不要堵塞，固定 2. 三通管方向
[思考]：
失血性休克及其抢救
机能实验中心
[实验目的]：
1.复制失血性休克模型，观察休克发生发展 过程中血压和微循环血流等的变化
2.设计抢救方案，加深对于“休克发病的关 键不在于血压，而在于血流”的理论认识
[实验动物]： 家兔
[实验原理]：
休克的概念
.
(Concept of shock)
多种原因引起的有效循环血量 减少，使组织微循环灌流量严重不 足，以致细胞损伤、各重要器官功 能代谢严重障碍的全身性病理过程。
病因分类
❖ 失血性休克 (Hemorrhagic shock) ❖ 创伤性休克 (Traumatic shock) ❖ 烧伤性休克 (Burn shock) ❖ 感染性休克 (Infective shock) ❖ 心源性休克 (Cardiogenic shock) ❖ 过敏性休克 (Anaphylactic shock) ❖ 神经源性休克 (Neurogenic shock)
失血性休克 实验报告
失血性休克实验报告失血性休克实验报告引言：失血性休克是一种严重的疾病，常常由于大量失血导致血液容量不足，进而引发多器官功能衰竭。
为了更好地了解失血性休克的病理机制和治疗方法，我们进行了一系列实验。
本实验旨在通过模拟失血性休克的过程，观察动物体内的生理变化，并探索有效的治疗方法。
实验设计：我们选择了小鼠作为实验动物，将其分为实验组和对照组。
实验组小鼠经过大量失血处理，而对照组则不进行任何处理。
在实验过程中，我们使用了多种检测手段，包括生理学指标监测、组织病理学观察等。
实验过程：首先，我们给实验组小鼠进行了大量失血处理，模拟失血性休克的情况。
失血量的控制是实验的关键，我们在此过程中采取了严格的控制措施，确保失血量达到预定的标准。
随后，我们对实验组小鼠进行了生理学指标的监测，包括血压、心率、呼吸频率等。
结果显示，失血后实验组小鼠的生理指标明显下降，与对照组相比存在明显的差异。
接下来，我们进行了组织病理学观察。
我们选择了心脏、肝脏、肾脏等重要器官进行切片，并使用染色技术进行观察。
实验结果显示，失血后实验组小鼠的器官组织发生了明显的病理变化，包括细胞水肿、坏死等。
结果分析：通过以上实验结果，我们可以得出以下结论：失血性休克会导致生理指标的下降，器官组织发生病理变化。
这些结果与临床观察相符，进一步验证了我们模拟失血性休克的实验的可靠性。
讨论：在实验过程中，我们还尝试了一些治疗措施，以期找到有效的方法来缓解失血性休克的病理变化。
我们给实验组小鼠进行了输血治疗，结果显示，输血能够明显提高实验组小鼠的生理指标，并减轻器官组织的病理变化。
这表明，输血是一种有效的治疗手段，可以在一定程度上挽救失血性休克患者的生命。
然而，我们也发现输血并非完美的治疗方法。
在实验过程中，我们观察到一些实验组小鼠在输血后出现了过敏反应，甚至死亡。
这提示我们需要进一步研究输血治疗的适应症和副作用，以期提高治疗的安全性和有效性。
结论：通过本次实验，我们深入了解了失血性休克的病理机制和治疗方法。
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失血性休克及其抢救
（浙江中医药大学第一临床医学院）
【摘要】目的：复制兔失血性休克模型。
观察兔在失血性休克的表现，探讨失血性休克的发生机制。
了解失血性休克的抢救。
方法：用右颈总动脉放血，左颈总动脉用以测量血压，右颈总静脉输血、输液进行抢救。
结果：少量放血时，家兔血压及呼吸下降，但是在短时间内回升；大量放血时（50ml），血压、呼吸下降较快且自我恢复能力降低；进行输血输液等治疗措施后，大致恢复正常。
结论：少量失血，机体的自身代偿作用可以使血压恢复正常；失血过多，机体会发生失代偿作用；经输血输液等治疗后，血压可恢复基本正常。
【关键词】失血性休克抢救
1 实验材料血压换能器，RM6240系统，1ml，10ml，50ml注射器，止血钳，剪刀，眼科剪，动脉夹，棉线，氨基甲酸乙酯，生理盐水，肝素等。
2 实验对象家兔
3 实验步骤
3.1实验系统连接及参数设置：血压换能器固定在铁支柱上，高度与心脏同一平面。
压力换能器输出线接微机生物信号采集处理系统输入通道。
3.2手术准备
3.2.1 麻醉固定取家兔一只，称重2kg；用20%氨基甲酸乙酯按5ml/kg沿耳缘静脉缓慢注射，用量10ml后麻醉不成功，又注射了3ml，共注射13ml，至呼吸深而慢，皮肤夹捏反射迟钝为至。
背位固定。
3.2.2 颈部手术剪去颈前被毛，颈前正中切开皮肤6~7cm，直至下颌角上1.5cm，用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉，暴露气管及气管平行的左、右血管神经鞘。
用玻璃分针分离两侧颈总动脉，穿两根线备用。
分离右侧颈外静脉，穿两根线备用。
3.2.3 颈总动脉插管
1）在左颈总动脉远心端结扎，近心端用动脉夹夹住，并在动脉下面穿线备用。
用眼科剪在靠近结扎处动脉壁上剪一“V”字形切口，将动脉插管向心方向插入颈总动脉内，扎紧固定。
打开动脉夹。
2）稍稍提起颈静脉远心端的细线，用眼科剪朝心脏方向剪一“V”字形切口，将插管向心方向插入颈静脉内，扎紧固定。
3）右颈总动脉连接已肝素化的50ml注射器，内含3ml肝素。
3.2.4 复制失血性休克模型
1）少量放血右颈总动脉缓慢放血30ml，使血压降至60mmHg,持续5min。
2）大量放血少量放血5min后，大量放血3min，使平均动脉压降至40mmHg左右，如血压回升，可再放血，持续20min共放血30ml。
3.2.5 失血性休克抢救将注射器内的50ml血液从颈外静脉输回原血，观察血压变化。
然后再输入生理盐水（60—100滴/min）进行抢救。
4 实验结果：
少量放血时，家兔血压及呼吸下降，但是在短时间内回升；大量放血时（50ml），血压、呼吸下降较快且自我恢复能力降低；进行输血输液等治疗措施后，大致恢复正常。
5 实验讨论
讨论：休克是多种原因引起的急性循环障碍，使全身组织血液灌流量严重不足，导致细胞损伤，各重要生命器官发生严重障碍的全身性病理过程。
失血导致血容量减少是休克常见的原因。
1）少量放血时，血压下降，颈动脉窦和主动脉弓压力感受器受到的刺激减少，传入神经冲动减少，使心迷走神经中枢紧张性减弱，心交感和缩血管中枢紧张性增强，再通过相应的传出神经，结果使心迷走神经传出冲动减少，心交感神经传出冲动增加，心率加快，心输出量增加，缩血管神经纤维传出冲动增加，血管收缩，外周阻力升高，因而使动脉血压回升。
这是机体自身的代偿功能，使血压和组织灌流量保持基本正常。
2）大量放血时，血容量急剧减少，静脉回流不足，心输出量减少，血压下降；加之压力感受器反射活动减弱，引起交感神经强烈兴奋，外周血管收缩，组织有效血压灌流量不足，此时机体发生失代偿，因此发生休克。
3）对于失血性休克的抢救，补充血容量是提高心输出量和改善组织灌流的基本措施。
从家兔颈静脉输血输液后家兔生命体征基本恢复。
通过输血和生理盐水，增加血液灌流，改善微循环功能，抢救失血性家兔。
血压是指血液在血管内流动时,对血管壁产生的单位面积的侧压力。
影响血压的因素主要通过增减血容量,或扩缩血管。
颈静脉输生理盐水增加了家兔血管内的血容量,提高家兔血压。
结论：少量失血时为缺血性缺氧期，机体的自身代偿作用可以使血压恢复正常；失血过多，机体会发生失代偿作用；经输血输液等治疗后，血压可恢复基本正常。
6 参考文献：陆源林国华杨午鸣主编机能学实验教程（第二版）科学出版社P141—P142 张志雄主编生理学上海科学技术出版社第四章血液循环P79
黄玉芳主编病理学中国中医药出版社第十二章休克。