研究自来水中的菌群课题报告
(2023)微生物实验报告水中细菌总数和大肠菌群的检测(一)
(2023)微生物实验报告水中细菌总数和大肠菌群的检测(一)水中微生物实验报告实验概述•实验名称：水中微生物总数和大肠菌群的检测•实验时间：2023年•实验地点：实验室实验目的•检测水中微生物总数和大肠菌群的存在情况•评估水质卫生状况，指导水资源管理和人群健康实验方法1.采集不同来源的水样。
2.将水样制成不同浓度的稀释液。
3.取一定量的水样稀释液注入培养皿中。
4.加入适当培养基，进行菌落计数和形态特征观察。
5.通过酶促法检测大肠杆菌。
实验结果•来源于自来水厂的水样中，微生物总数为100CFU/mL，大肠菌群未检测到。
•来源于河流的水样中，微生物总数为1000CFU/mL，大肠菌群为20CFU/100mL。
•来源于地下水的水样中，微生物总数为10CFU/mL，大肠菌群未检测到。
结论•来源于自来水厂的水样水质较好，不存在大肠菌群的污染。
•来源于河流的水样水质较差，大肠菌群的检出说明存在污染，需进行水质治理。
•来源于地下水的水样水质较好，不存在大肠菌群的污染。
实验意义•检测水中微生物总数和大肠菌群的存在情况，有利于保障人类健康和水资源的可持续利用。
•提供科学依据和技术支持，指导水资源管理和水质卫生监测。
实验注意事项•实验过程需严格遵守无菌操作规范，防止样本污染。
•实验前需对实验设备、培养基等进行消毒处理，确保实验环境洁净。
•实验结束后，需妥善处理实验产生的废液、废料等。
实验展望•未来可进一步开展对水中其他微生物种类的检测，深入了解水生态系统的生物多样性。
•结合近年来人类活动和气候变化的影响，对水质卫生进行长期监测，及时掌握水质变化趋势。
•根据实验结果，制定针对性的水资源管理和水质卫生治理措施。
结语该实验通过检测水中微生物总数和大肠菌群，评估了水质的卫生状况。
实验结果表明，水质卫生状况与水源的来源密切相关。
希望通过类似的实验，加强对水质卫生状况的监测和管理，确保水资源的可持续利用，保障人们的用水安全和健康。
自来水中细菌菌落数和大肠菌群数的测定
实验五自来水中细菌菌落数和大肠菌群数的测定一、实验目的l．学习水样的采取方法、水样细菌总数测定的方法和平板菌落计数的原则。
2．学习水中大肠菌群数的测定方法。
二、实验原理细菌菌落总数是指水样经过处理，在一定条件培养后，所得1毫升检验样中所含细菌菌落的总数。
本实验应用平板菌落计数技术测定水中细菌总数。
由于水中细菌种类繁多，它们对营养和其他生长条件的要求差别很大，不可能找到一种培养基在一种条件下，使水中所有的细菌均能生长繁殖，因此，以一定的培养基平板上生长出来的菌落，计算出来的水中细菌总数仅是一种近似值。
目前一般是采用普通肉膏蛋白胨琼脂培养基。
大肠菌群是肠道中最普遍存在和数量最多的一群细菌，常将其作为人畜粪便污染的标志。
水被大肠菌群污染，就有可能存在病原菌污染，所以，大肠菌群是重要的水质卫生指标。
水中大肠菌群数是以液体稀释培养计数法测定，即100毫升检样中大肠菌群最可能数（most probable number，MPN）。
三、实验器材l．培养基（1）肉膏蛋白胨琼脂培养基蛋白胨1克，牛肉膏0.5克，氯化钠0.5克，琼脂1.5克，蒸馏水100mL，pH7.2～7.4。
121℃灭菌15min，备用。
（2）乳糖胆盐发酵培养液蛋白胨2克，猪胆盐0.5克，乳糖1克，0.5%中性红水溶液0.5mL，蒸馏水100mL，pH 7.4。
分装到三角瓶和试管中，并放入一倒置杜氏小管。
115℃灭菌15min，备用。
双料发酵管除蒸馏水外，其它成分加倍，三倍料发酵管各组分用量增加至三倍。
2. 仪器或其他用具培养箱，试管，杜氏小管，三角烧瓶，带玻璃塞瓶，培养皿，吸管，等。
四、实验内容l．水样的采取(1) 取样瓶的灭菌准备好清洁的容量为100毫升的磨砂口带塞瓶，瓶的颈部和上部用牛皮纸覆盖，并用线捆好，然后160～170℃干热灭菌2h。
(2) 自来水的采取为了取得典型的水样，取自来水样时，至少应先放水5min，以冲去龙头口所带的微生物。
水中细菌培养结果与分析实验报告
水中细菌培养结果与分析实验报告摘要：水质是生态系统中重要的环境因素之一，水中细菌的种类和数量对生态系统的健康和稳定性起着重要作用。
本实验通过采集水样，利用凝胶培养和荧光定量PCR技术，对水样中的细菌进行培养和鉴定。
结果显示，水样中细菌数量较多，种类丰富，包括常见的肠道菌和病原菌。
这些结果提示我们必须重视水质的检测和治理，以维护水生态系统的稳定和生态健康。
关键词：水质、细菌、培养、鉴定、实验报告引言水质是影响生态系统健康的关键因素之一，其中细菌的种类和数量直接影响着水体的质量。
随着工业和农业的发展，水污染已成为全球关注的焦点之一。
水中的细菌主要来源于农业废水、工业废水和生活废水等。
因此，对水中细菌的培养和鉴定非常重要，可以评估水质状况和及时采取相关措施来保护水环境。
本实验旨在通过凝胶培养和荧光定量PCR技术，对水样中的细菌进行培养和分析，以期得到水样中细菌的种类和数量分布情况。
材料与方法1.样品采集：选取两个不同水源的水样作为实验材料，使用无菌容器采集水样，并立即送至实验室进行处理。
2.细菌培养：将水样均匀悬浮后，分别采用平板培养法和液体培养法进行细菌的培养。
平板培养法使用琼脂平板培养基，通过在平板上涂布悬浮液并在适宜条件下孵育，观察并统计菌落数量。
液体培养法使用含有养分的液体培养基，通过在培养基中加入悬浮液，以适宜条件下摇床培养，观察并统计菌液浓度。
3.细菌鉴定：采用荧光定量PCR技术对培养后的细菌进行鉴定。
使用细菌特异引物和荧光标记探针，进行PCR扩增反应，并通过荧光定量PCR仪读取结果。
根据荧光信号的强度和特定峰值，确定细菌的种类和数量。
结果与讨论1.细菌培养结果：通过平板培养法和液体培养法，成功培养出水样中的细菌，并观察到菌落数量较多。
平板培养法结果显示，水样A中的菌落形成较为集中，而水样B中的菌落分布相对分散。
液体培养法结果显示，水样A中的细菌浓度较高，而水样B中的细菌浓度较低。
2.细菌鉴定结果：通过荧光定量PCR技术，对培养后的水样进行了鉴定。
检测水中细菌实验报告
检测水中细菌实验报告实验目的本实验旨在探究不同水源中细菌的存在情况，以检测水质是否安全，并且比较不同水源中细菌的数量差异。
实验材料1. 不同水源的取样瓶- A组：自来水，B组：河水，C组：井水2. 细菌培养基3. 培养皿4. 恒温培养箱5. 显微镜6. 微生物鉴定手册实验步骤1. 将取样瓶置于实验台上，避免受到其他污染源的干扰。
2. 分别取代表性的自来水、河水和井水样品，并将每个样品分别装入对应组别的取样瓶中。
3. 将每个样品的取样瓶稍微晃动，以确保细菌均匀分布于水中。
4. 取样瓶的标签上注明所属组别。
5. 在实验室中，为每个组别准备三个培养皿，并在每个培养皿中倒入细菌培养基（约满一半）。
6. 分别将A组、B组和C组的水样倒入相应的培养皿当中。
7. 用试管夹将每个培养皿退出4毫升的液体（水样+培养基），并转移到三个不同的培养皿中，确保菌液均匀地分散。
8. 紧密盖上培养皿的盖子，将其放入恒温培养箱中，设置合适的培养温度（例如37）。
9. 培养72小时后，取出培养皿进行观察，并使用显微镜观察细菌的形态。
10. 根据细菌的形态和相应的实验结果，使用微生物鉴定手册进行细菌的鉴定与分类。
实验结果观察培养皿后，我们发现以下结果：- A组（自来水）：培养皿上观察到一些细菌的生长，但数量较少。
- B组（河水）：培养皿上观察到大量细菌的生长，并且形成了密集的细菌菌落。
- C组（井水）：培养皿上观察到适量细菌的生长，数量介于A组和B组之间。
实验分析根据细菌的生长情况，可以初步得出以下结论：1. 自来水中的细菌数量较少，说明自来水的水质较为安全。
2. 河水中的细菌数量较多，可能存在潜在的食品污染风险，需要处理后才能安全饮用。
3. 井水中的细菌数量处于中等水平，需要进一步检测和处理，以确保水质安全。
实验总结通过实验我们了解到不同水源中细菌的存在情况，同时比较了各个水源中细菌数量的差异。
实验结果显示，自来水的水质较为安全，而河水和井水中细菌的数量则需要进一步处理。
自来水中细菌的测定
自来水中细菌总数的测定【摘要】本实验应用平板菌落技术测定水中细菌总数。
以一定的培养基平板上生长出来的菌落，计算出来的水中细菌种数仅是一种近似值。
实验用普通牛肉膏蛋白胨琼脂培养基在保证无菌的环境下，采取自来水的样品，利用培养基制作平板，计数。
国家饮用水标准规定，饮用水中大肠菌群数每升中不超过3个，细菌总数每毫升不超过100个。
所谓细菌总数，指1毫升或1克检样中所含的细菌菌落的总数。
按菌落计数方法进行计数，得到如下结果：在显微镜下可观察到众多的菌落且种类繁多，取其平均值得到，菌落数为65/mL，自来水中细菌总数为65/mL，符合国家饮用水标准。
【关键词】自来水细菌总数平板菌落计数技术牛肉膏蛋白胨琼脂培养基自来水的微生物学检验，特别是肠道细菌的检验，在保证饮水安全和控制传染病上有着重要意义，同时也是评价水质状况的重要指标。
应用平板计数技术测定水中细菌总数是用微生物测水质的常用方法。
由于水中细菌种类繁多，它们对营养和其他生长条件的要求差别很大，不可能找到一种培养基在一种条件下，使水中所有的细菌均能生长繁殖，因此，以一定的培养基平板上生长出来的菌落，计算出来的水中细菌总数仅是一种近似值。
目前一般是采用普通牛肉膏蛋白胨琼脂培养基。
通过此方法我们能够计算出水中的细菌总数，从而判断自来水是否符合国家标准，是否受到污染。
1材料与方法1.1 水样的采取先在自来水龙头周围放置酒精灯进行灭菌，再放开水龙头使水流5min后，以灭菌三角烧瓶接取水样，以待分析。
1.2 固体培养基的制作牛肉膏蛋白胨培养基的配方如下：牛肉膏 1.5g 蛋白胨 5.0g NaCl 2.5g水500mL pH 7.4～7.6将培养基配方比例依次准确地称取牛肉膏、蛋白胨、NaCl放入烧杯中，牛肉膏常用玻棒挑取，放在小烧杯或表面皿中称量，用热水溶化后到入烧杯。
也可放在称量杯中，称量后直接放入水中，这时如稍微加热，牛肉膏便会与称量纸分离，然后立即取出纸片。
水处理微生物实验报告
水处理微生物实验报告实验目的：通过研究水处理微生物的作用，了解微生物在水处理中的应用和重要性。
实验材料和方法：材料：自来水、废水、细菌培养基、平板、试管、显微镜等。
方法：1. 取自来水和废水样品，分别装入试管中。
2. 对试管中的样品进行稀释，得到不同浓度的样品。
3. 用吸管吸取一定量的稀释后的样品，均匀涂抹在细菌培养基平板上。
4. 将涂抹后的平板放入培养箱中，25培养24小时。
5. 取出培养好的平板，观察菌落的形态和数量。
6. 用显微镜观察菌落中的微生物，记录种类和数量。
实验结果：经过观察，可以发现自来水样品在平板上的菌落数量相对较少，且菌落颜色较浅。
而废水样品在平板上的菌落数量较多，菌落颜色较深。
通过显微镜观察，可以看到菌落中存在大量不同形态的微生物。
实验讨论：1. 自来水中的微生物数量较少，这是因为自来水经过消毒处理，微生物已经被杀灭或大量减少。
2. 废水中的微生物数量较多，这是因为废水中存在大量有机物质，为微生物提供了生存和繁殖的条件。
3. 废水中的微生物种类较多，包括细菌、真菌、藻类等。
这些微生物具有不同的代谢特点，对水中有机物质进行分解和降解，从而净化水体。
4. 废水处理中常使用微生物处理技术，利用微生物的降解能力进行废水处理。
通过培养和筛选适宜的微生物，可以提高废水处理效果，达到净化水体的目的。
实验结论：水处理微生物在废水处理中发挥着重要的作用。
通过研究微生物的生长和降解特性，可以优化水处理工艺，提高废水的处理效果。
同时，对自来水中的微生物进行研究也有助于了解水质的健康和安全情况。
因此，对水处理微生物的研究具有重要的意义。
研究某省直饮水的微生物检测调查研究
研究某省直饮水的微生物检测调查研究目的研究分析某省直饮水的微生物检测调查结果，评估直饮水的卫生质量。
分法在该省直饮水中进行采样、检测，检测直饮水中的微生物，检测的4个指标为总大肠菌群、菌落总数、大肠埃希菌和耐热性大肠菌群。
结果本次选取8个监测点对直饮水样本进行抽取，农村、城镇各4个监测点，样本总数为630个，在所有样本中，微生物指标合格的样本数量为428个，总合格率为67.9%；在农村、城镇的样本微生物检测中，菌落总数、大肠埃希菌、全项指标合格率不存在明显差异，但城镇样本中的总大肠菌群合格率较农村高（P＜0.05）；其中，直饮水不合格的主要原因为总大肠菌群和菌落总数。
结论该省直饮水的卫生质量有待加强，相关部门应加强管理，加大力度对农村的直饮水进行管理。
标签：微生物检测；直饮水；研究；调查直饮水是对市政集中式供水等原水进行过滤、氧化、吸附、消毒等处理，并采用具有封闭性的独立循环管道进行输送的水，是人们能够进行直接饮用的水[1]。
直饮水具有快捷方便等优势，从而在公共场所、生活小区等得到广泛使用，包括学校、家庭、宾馆、企业等。
当直饮水的水质污染，则会严重威胁人们的健康及生命安全[2]。
本次研究对某省的直饮水进行微生物检测，分析该省的水质状况，现进行具体报道。
1 资料与方法1.1一般资料本次研究选取8个监测点进行直饮水样本采集，其中，农村、城镇均为4个监测点，农村、城镇的检测样本数分别为308个、322个，检测的样本总数为630个。
1.2方法针对采集的样本采用GB/T5750.12-2006《生活饮用水标准检验方法微生物指标》[3]对样本中的微生物进行检测。
①细菌总数的检测方法：在严格无菌操作下，将充分混匀的1 ml水样采用灭菌吸管进行吸取，将其在灭菌平皿内注入，将营养琼脂培养基15 ml（冷却温度为45℃）与水样混匀，进行冷却并处于凝固状态，随后将平皿进行翻转，并放置在培养箱（36℃±1℃）中进行48 h的培养，最后对菌落进行计数。
自来水中的微生物群落结构与功能研究
自来水中的微生物群落结构与功能研究自来水是当代生活中不可或缺的水源之一，而其中的微生物群落结构与功能对于水质安全和人类健康起着重要作用。
本文将探讨自来水中的微生物群落结构与功能，并分析其与水质安全的关系。
一、自来水中的微生物群落结构自来水中的微生物群落主要包括细菌、真菌和病毒等微生物，其组成和多样性受到多种因素的影响。
研究表明，自来水中的微生物群落与水源、处理工艺、管网腐蚀和水龄等因素密切相关。
自来水的水源是微生物群落组成的重要因素之一。
水源的不同会导致微生物的多样性差异，而水源的受污染程度也会直接影响微生物的种类和数量。
例如，生活污水排放、农业和工业废水的混入会引起微生物群落的变化，增加致病微生物的存在。
自来水处理工艺也对微生物群落结构产生影响。
不同的处理工艺会引起微生物数量以及菌群组成的差异。
一些处理工艺如过滤、混凝和消毒等能够有效去除微生物，减少水质风险。
管网腐蚀也会影响自来水中的微生物群落结构。
管网腐蚀会释放出金属离子，如铁、锰等，这些离子可作为微生物的营养源，进而促进微生物的繁殖。
此外，管网腐蚀还能够为微生物提供生长的良好环境。
水龄是自来水中微生物群落结构的另一个重要因素。
水龄指自来水从处理厂到用户使用的时间。
长时间停留在管网中的水会导致微生物的繁殖和生长，增加微生物群落的复杂性和多样性，进而影响水质安全。
二、自来水中微生物群落功能自来水中的微生物群落不仅仅参与到水质安全的形成过程中，还具备一定的功能。
微生物通过降解水中的有机物和杀灭病原微生物等途径，发挥着重要的水质净化作用。
微生物群落降解有机物是自来水净化过程中不可或缺的一环。
微生物通过代谢有机物，将其分解为无机物，从而减少水中的有机负荷。
这种降解过程在自来水处理厂和管网中都能够发生。
微生物群落对抗病原微生物也是自来水中微生物功能的重要方面。
研究表明，一些微生物具有抑制病原微生物生长的能力，通过竞争营养物质或产生抑菌物质等途径，减少病原微生物的存在，提高自来水的安全性。
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研究自来水中的菌群课题报告
水也是微生物存在的天然环境，水中微生物的主要来源是：水中的水生性微生物、来自土壤径流、降雨的外来菌群和来自下水道的污染物和人畜的排泄物等。
目前我国规定生活饮用水的标准为1毫升水中细菌总数不超过100个；所谓细菌总数，指1毫升水样中所含的细菌菌落的总数。
本实验应用平板菌落技术
1、测定水中细菌总数。
目前一般采用普通牛肉膏蛋白胨琼脂培养基
2、在保证无菌的环境下，采取自来水的样品，利用培养基制作平板。
按菌落计数方法进行计数，通过实验测得的菌数对照国家饮用水标准来判断水质。
自来水的微生物学检验，在保证饮水安全和控制传染病上有着重要意义，同时也是评价水质状况的重要指标。
引言：水是微生物广泛分布的天然环境。
各种天然水中常含一定数量的微生物。
水中微生物的主要来源是：水中的水生性微生物、来自土壤径流、降雨的外来菌群和来自下水道的污染物和人畜的排泄物等。
水中的病原菌主要来自于人和动物的传染性排泄物。
自来水指通过水处理厂净化、消毒后生产出来的符合国家饮用水标准的供人们生活、生产使用的水必须符合国家生活饮用水卫生标准。
细菌总数是指水样在一定条件下培养后，所得1毫升水样所含菌落的总数。
本实验只包括一群能在营养琼脂上发育的嗜中温的需氧的细菌菌落总数。
本实验应用平板计数技术测定水中细菌总数是用微生物测水质
的常用方法。
由于水中细菌种类繁多，它们对营养和其他生长条件的要求差别很大，不可能找到一种培养基在一种条件下，使水中所有的细菌均能生长繁殖，因此，以一定的培养基平板上生长出来的菌落，计算出来的水中细菌总数仅是一种近似值。
目前一般是采用普通牛肉膏蛋白胨琼脂培养基。
通过此方法我们能够计算出水中的细菌总数，从而判断自来水是否符合国家标准，是否受到污染。
实验用普通牛肉膏蛋白胨琼脂培养基在保证无菌的环境下，采取自来水的样品，利用培养基制作平板，计数。
国家饮用水标准规定，饮用水中大肠菌群数每升中不超过3个，细菌总数每毫升不超过100个。
所谓细菌总数，指1毫升或1克检样中所含的细菌菌落的总数。
按菌落计数方法进行计数，得到如下结果：在显微镜下可观察到众多的菌落且种类繁多，取其平均值得到，自来水中细菌总数为87每毫升，符合国家饮用水标准。
材料与方法
一、材料、试剂与仪器
（1）实验材料自来水；
（2）实验试剂牛肉膏蛋白胨灭菌水；
（3）实验仪器高压蒸气灭菌锅培养皿三角烧瓶天平牛角匙PH试纸；吸量管麻绳牛皮纸量筒玻璃棒电炉温度计。
二、实验方法
（1）灭菌，首先将高压蒸气灭菌锅的内锅层取出,再向外锅内加入适量的水,使水面与三角搁架相平为宜。
（2）放回内层锅,并加入用报纸包好的培养皿、三角烧瓶。
（3）加盖，并将盖上的排气软管插入内层锅的排气槽内。
再以两两对称的方式同时旋紧相对的两个螺旋，使螺旋松紧一致，勿使漏气。
（4）用电炉加热，并同时打开排气阀，使水沸腾以排除锅内的冷气。
待冷空气完全排尽后，关上排气阀，让锅内的温度随蒸气压力增加而逐渐上升。
当锅内压力上升到所需压力时，控制热源，维持压力至所需时间。
（5）灭菌时间到后，切断电源，让灭菌锅内温度自然下降，当压力表的压力降至“0”时打开排气阀，旋松螺旋，打开盖子，取出灭菌物品。
水样的采取，放开水龙头使水流5min后，用已灭菌的三角烧瓶接取水样，以待分析。
制备牛肉膏蛋白胨培养基
（1）称量
按培养基配方依次准确的称取牛肉膏、蛋白胨、Na Cl放入烧杯中。
牛肉膏常用玻璃棒挑取，放在称量纸上，称量后直接放入水中，稍微加热，牛肉膏便会与称量纸分离，然后立即取出纸片。
（2）溶化
在上述烧杯中先加入少于所需要的水量，用玻璃棒搅匀，然后，在石棉网上加热使其溶解，将称好的琼脂放入已溶的药品中，再加热溶化，最后补足所损失的水分。
（3）调PH
在未调PH前，先用精密PH试纸测量培养基的原始PH，如果偏酸，用滴管向培养基中逐滴加入试剂，边加边搅拌，并随时用PH试
纸测其PH，直至PH达7点6。
反之，用进行调节。
细菌总数测定
（1）灭菌吸管吸取1毫升水样，注入其中一套灭菌的培养皿中。
共做两个平皿。
（2）分别倾注约15毫升已溶化并冷却到45摄氏度左右的肉膏
蛋白胨琼脂培养基，并立即在桌上作平面旋摇，使自来水和培养基混匀。
（3）另取一空的灭菌培养皿，倾注肉膏蛋白胨琼脂培养基15毫升，作空白对照。
（4）待培养基凝固后，倒置于37摄氏度温箱中，培养24小时，进行菌落计数。
两个平板的平均菌落数即为1毫升自来水的细菌总数。
实验数据与分析
根据我国饮用水卫生标准规定，每毫升细菌总数37摄氏度培养24小时不得大于100，而本实验中测得结果是24每毫升，因此，所
取的自来水样符合标准。
对照组中的菌数应为0个，但实验测得数据为60个，这主要是
因为有杂菌混入，杂菌来源可能：培养皿灭菌不充分；灭菌后在空气中放置又落入杂菌；培养基倾入培养皿后没有立即加盖；配置培养基
时反复升降温（没有立即转移使培养基凝固），使一些杂菌产生抗性;做实验时灭菌后对着培养基呼气也可能造成细菌污染。
所以在以后的试验中必须注意实验操作的严密性。
由于培养基是倒置的，所以可以观察到绝大多数的细菌着生在培养基表面。
这是由于菌种在固体培养基上借助重力作用而形成的，有利于菌落计数。
倒置培养基时应降温至45摄氏度，以免温度过高烫死大肠杆菌。
切记不能过低，防止培养基凝固。
倾注培养基后要将平皿在桌面上做匀速旋转，将培养基和自来水样摇匀，在培养基中观察时可见一些菌苔就是平皿没有摇匀的结果。
菌落记数方法
1、先计算相同稀释度的平均菌落数，若其中一个平板有较大片状菌苔生长时，则不应采用，而应以为片状菌苔生长的平板作为该稀释度的平均菌落数。
若片状菌苔的大小不到平板的一半，而其余的一半菌落分布又很均匀时，则可将此一半的菌落数乘2以代表全平板的菌落数，然后再计算该稀释度的平均菌落数。
2、首先选择平均菌落数在30至300之间的，则只有一个稀释度的平均菌落数符合此范围时，则以该平均菌落数乘其稀释倍数即为该水样的菌落总数。
3、若有两个稀释度的平均菌落数均30至300之间，则按两者菌落总数之比值来决定。
若其比值小于2，应采取两者的平均数；若大于2，则取其中较小的菌落总数。
4、若所有稀释度的平均菌落数均大于300，则应按稀释度最高
的平均菌落数乘以稀释倍数。
5、若所有稀释度的平均菌落数均小于30，则应按稀释度最低的平均菌落数乘以稀释倍数。
6、若所有稀释度的平均菌落数均不在30至300之间，则以最近300或30的平均菌落数乘以稀释倍数。
实验注意事项
1、倒置培养基时应降温至45摄氏度左右，温度过高会烫死部分细菌，实验结果受影响，如观察结果中菌落过分稀少就可能是这一因素引起的；温度过低培养基提前凝固，无法倒入培养皿。
2、倾注培养基后要将培养皿在桌面上做匀速旋转，将培养基和自来水样摇匀，在培养基中观察时可见一些菌苔就是平皿没有摇匀的结果。
3、培养基不能反复升降温，倾入培养皿后应立即加盖，且灭菌后不应在空气中放置，以免杂菌混入。
4、在实验操作过程中操作者尽量避免对着培养基呼气，人类呼出气体中含大量细菌，可能会影响实验结果，致使菌落数过多。
讨论
本实验的成败在于灭菌、无菌操作技术、培养基的温度等方面是否操作正确，因此接种过程中务必防止杂菌的侵入。
同时要使培养基和自来水样本摇匀，若二者没有摇匀在培养基中可见一些菌苔。
由于菌种在固体培养基上是借助重力作用而形成的，所以观察到绝大多数
的细菌着生在培养基表面。
在培养过程中由于细菌之间的相互抑制也会使计数菌落减少。
因此，只有在实验不需要精确的情况下才可使用此方法。
虽然水中存在大量的细菌且种类繁多，但由于牛肉膏蛋白胨所提供的生长条件的限制，培养基中所得的细菌群落大部分为大肠杆菌，呈圆片状。