凝胶电泳法(SDS-PAGE)测定乳与乳制品中 β-乳球蛋白的含量

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变性与非变性电泳对牛羊乳蛋白质差异比较研究

变性与非变性电泳对牛羊乳蛋白质差异比较研究

第31卷 第6期 陕西科技大学学报 Vol.31No.6 2013年12月 JournalofShaanxiUniversityofScience&Technology Dec.2013倡 文章编号:1000‐5811(2013)06‐0109‐05变性与非变性电泳对牛羊乳蛋白质差异比较研究宋宏新,刘 静,张 歌,李红心(陕西科技大学生命科学与工程学院,陕西西安 710021)摘 要:主要采用十二烷基硫酸钠聚丙烯酰胺凝胶电泳法(SDS‐PAGE)和非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳法(Native‐PAGE)对新鲜牛羊乳及其酪蛋白清蛋白的区别进行分析检测,对比研究两种电泳方法测定结果的差异,并用两种方法分别检测了掺入不同浓度牛乳的羊乳样品.结果显示SDS‐PAGE法对牛羊乳酪白质的分离效果好,该条件下牛羊乳的区别主要是酪蛋白αs2‐CN和αs1‐CN,而native‐PAGE法则是对清蛋白分离效果较好,该条件下的主要区别是牛乳较羊乳多两条β‐乳球蛋白.两种电泳方法对掺入不同浓度的羊乳样品的检测阈值均为5%,但native‐PAGE效果更明显.关键词:SDS‐PAGE;Native‐PAGE;乳蛋白质;羊乳牛乳蛋白质差别中图法分类号:TS252.4 文献标识码:AThestudyofthedifferencesbetweencowandgoatmilkproteinsbySDS‐PAGEandnative‐PAGESONGHong‐xin,LIUJing,ZHANGGe,LIHong‐xin(CollegeofLifeScienceandEngineering,ShaanxiUniversityofScience&Technology,Xi′an710021,China)Abstract:Thisexperimentanalysisanddetectionfreshcowandgoatmilkandcaseinprotein,albuminproteinbysodiumdodecylsulphatepolyacrylamidegelelectrophoresis(SDS‐PAGE)andnativepolyacrylamidegelelectrophoresis(native‐PAGE),comparativetheresultsdiffer‐encesoftwoelectrophoresismethods.Andweredetectedthegoatmilksamplesdopedwithdifferentconcentrationsofcowmilkbybothmethods.TheresultsshowedthatbySDS‐PAGEcaseinproteinareseparatedbetter,andthemaindifferencesareαs2‐CNandαs1‐CN,whilenative‐PAGEseparatealbuminproteinbetter,andthemaindifferenceisthatcowmilkhastwoβ‐lactoglobulin,butgoatmilkhasn′t.Andthedetectionthresholdofthosetwokindsofelectrophoresismethodsofdetectedthegoatmilksamplesdopedwithdifferentconcentra‐tionsofcowmilkis5%.Butthenative‐PAGEismoreeffective.Keywords:SDS‐PAGE;Native‐PAGE;milkprotein;differencesbetweencowandgoatmilkprotein倡收稿日期:2013‐10‐14基金项目:陕西省教育厅科研计划项目(2013JC03)作者简介::宋宏新(1959-),男,陕西咸阳人,教授,研究方向:生物化学与分子生物学陕西科技大学学报第31卷0 引言乳与乳制品含有丰富的蛋白质、脂肪、乳糖、矿物质及多种维生素[1],是一类营养丰富的理想食品,牛乳和羊乳是两类重要的乳品工业原料.羊乳的营养物质易于吸收、风味独特[2],但羊乳资源相对匮缺,致使其市场价高量少,在利益驱动下不法商贩将牛乳掺入羊乳中降低成本,这种掺假不仅存在于羊乳及其制品中,更多地会出现在原料乳的收购过程.国际贸易对羊乳制品纯度要求高(大于95%),羊乳制品企业在生产经营过程对原料及产品的保真性检验是一个急待解决的问题,基于牛羊乳成分的差异比较研究是解决羊乳中掺入牛乳成分的技术关键.羊乳与牛乳的外观和主要化学成分相似,其差别主要是在脂肪酸、蛋白质种类等微观组成上.乳蛋白质是乳制品的重要营养质量指标之一,乳蛋白质主要包括酪蛋白和乳清蛋白两大类[3],乳脂肪球膜蛋白的含量相对较少.蛋白质的电荷和分子质量特性的聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)是蛋白质分离分析的良好方法,PAGE分为变性聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS‐PAGE)和非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳(native‐PAGE),两种电泳系统的主要差别是SDS‐PAGE添加SDS和疏基乙醇变性剂,并在加热条件下将聚合蛋白质充分变性为亚基进行分离,而native‐PAGE不含变性剂,多在低温条件下对天然构象的蛋白质(寡聚或单体)进行分离.SDS‐PAGE是乳品蛋白质研究应用最广泛的方法[4],native‐PAGE的研究报道较少,本实验通过对牛羊乳在变性及非变性条件下的电泳分析,建立分析牛羊乳蛋白质的方法,通过比较牛羊乳的蛋白质差异为羊乳中掺入牛乳成分的分析检验提供依据.1 材料与方法1.1 实验仪器分析天平(万分之一克),北京赛多利斯仪器系统公司;T‐1000型电子天平,江苏常熟双杰测试仪器厂;HC‐3018R高速冷冻离心机;WH‐3微型旋涡混合仪,上海泸西分析仪器厂;移液枪,德国艾尔德股份有限公司;101‐2A型电热鼓风干燥箱,天津市泰斯特仪器有限公司;PB‐10型酸度计,北京赛多利斯仪器系统公司;恒温水浴锅,国华电器有限公司;TS‐2型脱色摇床、恒温器,海门市其林贝尔仪器制造有限公司;HoeferminiVE型电泳槽,美国GE公司;BG‐Power600型电泳仪,北京百晶生物技术有限公司;JD‐801型捷达图像分析系统,江苏省捷达软件工程有限公司.1.2 实验药品及材料主要试剂:丙烯酰胺、N,N‐甲叉双丙烯酰胺,优级纯,美国Amersco公司;十二烷基硫酸钠(SDS),优级纯,美国USB公司;过硫酸铵,分析纯,北京化学试剂厂;四甲基乙二胺(TEMED),优级纯,北京化学试剂厂;α‐乳白蛋白、β‐乳球蛋白:美国Sigma公司;分子量标准蛋白Maker,科昊生物工程有限责任公司;硫酸铜、硫酸钾、Tris‐Base、巯基乙醇、考马斯亮兰R‐250、甘油、溴酚蓝、盐酸、甲醇、冰乙酸等其它常用试剂为分析纯级.1.3 样品及处理牛乳:西安未央区韩家湾奶牛场当天产的鲜乳.奶牛健康状况良好,无乳房炎、消化道疾病等.羊乳:西安市北郊夏家堡某农户家关中奶山羊当天产的鲜乳.脱脂牛、羊乳:取新鲜牛、羊乳在4℃5000r/min下离心30min,弃去上层脂肪即得.牛、羊乳酪蛋白:酪蛋白的制备方法采用的是等电点沉淀法[5],脱脂乳加热37℃,用0.1mol/LHCl调pH(牛乳调至pH4.6,羊乳调至pH4.1),40℃保温30min沉淀酪蛋白,5000r/min离心10min,下层沉淀干燥即为酪蛋白.保留上清液用于清蛋白制备.牛、羊乳清蛋白:上步保留的离心上清过滤除去残留酪蛋白颗粒即为清蛋白液.羊乳中掺入不同比例牛乳样品的制备:分别取脱脂乳按脱脂羊乳和脱脂牛乳体积比(V∶V)95∶5、90∶10、80∶20、70∶30、60∶40、50∶50分别混匀,即制得掺入5%、10%、20%、30%、40%、50%脱脂牛乳的脱脂羊乳样品.α‐乳白蛋白:准确称量0.01gα‐乳白蛋白标准品溶于1mL纯净水中.β‐乳球蛋白:准确称量0.01gβ‐乳球蛋白标准品溶于1mL纯净水中.1.4 电泳方法1.4.1 SDS‐PAGE(1)样品处理:2×变性样品缓冲液(pH8.0:0.125mol/LTris‐HCl,2%SDS,10%甘油,0.1%溴酚蓝,5%巯基乙醇,调完pH后再加巯基乙醇).·011·第6期宋宏新等:变性与非变性电泳对牛羊乳蛋白质差异比较研究脱脂乳用蒸馏水稀释5倍,取一定量与等体积2×变性样品缓冲液混合.乳酪蛋白样品用0.05mol/L氢氧化钠溶液溶解成乳酪蛋白浓度6mg/mL,取一定量与等体积的2×变性样品缓冲液混合.乳清蛋白样品直接与等体积的2×变性样品缓冲液混合.α‐乳白蛋白和‐β‐乳球蛋白标准液与等体积的2×变性样品缓冲液混合.掺入不同比例脱脂牛乳的脱脂羊乳样品与等体积的2×变性样品缓冲液混合.所有样品电泳前用混合仪混匀,煮沸5~10min,10μL进样.(2)电泳及分析[6]:分离胶质量浓度为12.5%,浓缩胶质量浓度为3%[7],凝胶厚度为1mm的垂直不连续SDS‐PAGE,缓冲系统中含0.1%SDS,预电泳电流为15mA,样品进入分离胶后调到30mA.电泳结束后用考马斯亮蓝R‐250染色,甲醇、冰醋酸溶液脱色,用捷达图像分析系统对电泳图片进行扫描.以SDS‐PAGE分子量标准制作蛋白质(亚基)分子量对数与电泳迁移率的标准曲线,该曲线方程为logMW=-1.379x+2.134(MW—蛋白质分子量;x—电泳迁移率),R2=0.969,计算各蛋白组分的分子量大小.1.4.2 native‐PAGE(1)样品处理:2×非变性样品缓冲液不含SDS和巯基乙醇(1.25mLpH6.8,0.5mol/LTris‐HCl,3.0mL甘油,0.2mL0.5%溴酚蓝,5.5mL水.)乳酪蛋白固体样品的溶解,其它乳品样的稀释,液体样品与2×非样品缓冲液等体积混合与SDS‐PAGE样品处理相同,不同的是样品仅需用混匀仪充分混合不加热,10μL进样.(2)电泳及分析[8]:分离胶质量浓度为8%,浓缩胶质量浓度为5%[9],凝胶厚度为1mm的垂直不连续native‐PAGE,缓冲系统不含SDS,预电泳电流为15mA,样品进入分离胶后调到20mA.为防止蛋白质在电泳过程中变性,电泳在0~4℃进行.电泳结束后染色脱色等程序同SDS‐PAGE.2 实验结果与分析2.1 SDS‐PAGE对脱脂牛羊乳及其清蛋白酪蛋白样品进行SDS‐PAGE电泳结果见图1(左).M.分子量标准蛋白质;1.脱脂羊乳;2.脱脂牛乳;3.羊乳酪蛋白;4.牛乳酪蛋白;5.羊乳清蛋白;6.牛乳清蛋白;7.α‐乳白蛋白;8.β‐乳球蛋白图1 脱脂牛羊乳及清蛋白酪蛋白的SDS‐PAGEE(左)和native‐PAGE(右)图谱 SDS‐PAGE电泳可以将蛋白质变性为亚基,按其分子量大小进行分离,图1(左)显示从电泳的负极(上)到正极(下)可以显示乳中蛋白质(亚基)含量较大的组分有8种,依据分子量标准及两种牛乳α‐乳白蛋白和‐β‐乳球蛋白标注蛋白质,将其分为上(高分子量)、中(中分子量)和下(低分子量)3组,对其分子量和蛋白质种类进行以下讨论:上端的高分子量区域主要为血清白蛋白(72.1KD)和免疫球蛋白(IgG),SDS‐PAGE看到的IgG只是由于巯基乙醇和SDS变性裂解的IgG的重链[10],羊乳IgG重链的分子量(56.9KD)较牛乳(57.8KD)小.下端的小分子量组主要为β‐乳球蛋白(12.0KD)及α‐乳白蛋白(10.4KD),仅从分子量看,在此区间牛羊乳的差别不大.由图可见羊乳·111·陕西科技大学学报第31卷(泳道5)和牛乳(泳道6)清蛋白主要分布在高分子量和低分子量区.中间的中分子量区主要为羊乳和牛乳酪蛋白(泳道3和泳道4):αs1‐CN、αs2‐CN、β‐CN和κ‐CN4种,牛羊乳的差别明显,羊乳αs2‐CN分子量(35.9KD)大于牛乳αs2‐CN分子量(34.2KD),牛乳α‐CN含量比较多,羊乳β‐CN含量(条带更深)比较多.可见SDS‐PAGE对两种乳品蛋白质的分离较好,电泳条带多而清晰,并且有较好的重复性,两种乳品酪蛋白的区分最好.2.2 native‐PAGE对脱脂牛羊乳及其清蛋白酪蛋白样品进行native‐PAGE电泳结果见图1(右).native‐PAGE分离羊乳及牛乳蛋白质的电泳图谱条带明显比SDS‐PAGE条带少,中间区域的酪蛋白仅有两条,且条带拖尾不清晰,虽然也能显示两种乳品(泳道3和泳道4,泳道1和泳道2)的差别,但是信息量较少,推测是由于多种酪蛋白以胶束状态在native‐PAGE时泳动的特点.在下端的低分子区域可以看出乳清蛋白分离效果良好.羊乳与牛乳清蛋白的差别明显:羊乳清蛋白(泳道5)仅为一条带,表明羊乳非变性条件下羊乳的乳白蛋白和乳球蛋白聚合成一个较大的羊乳清蛋白(寡聚蛋白)而存在;牛乳清蛋白(泳道6)可分为三条,一条为牛α‐乳白蛋白(泳道7),最下端的两条为牛β‐乳球蛋白(泳道8),显示牛β‐乳球蛋白有两种不同聚合形式存在.比较两种牛标准清蛋白的native‐PAGE和SDS‐PAGE图谱发现:图1(左)中牛α‐乳白蛋白亚基是分子量最小的一条带(图1左泳道7),图1(右)则显示牛α‐乳白蛋白(图1右泳道7)分子量较牛β‐乳球蛋白大;图1(左)显示牛α‐乳白蛋白亚基仅一条带,图1(右)则为两条,此现象的合理解释是两种乳清蛋白的天然(非变性)状态都是由相同亚基(图1左为一条带)的多个亚基聚合而成的寡聚蛋白.native‐PAGE分离乳蛋白质的条带虽然较少,但是对清蛋白的分离效果良好,明显的差别是最下端的牛乳较羊乳体多两条β‐乳球蛋白条带,可以作为区别牛羊乳的良好标志.2.3 两种电泳方法检测羊乳中掺入牛乳结果及分析羊乳中掺入不同比例牛乳样品的两种电泳分析结果见图2.1.脱脂牛乳;2.脱脂羊乳;3‐8.分别为掺入5%、10%、20%、30%、40%、50%脱脂牛乳的脱脂羊乳图2 羊乳中掺入牛乳的SDS‐PAGE(左)和native‐PAGE(右)图谱 比较SDS‐PAGE(图2左)和native‐PAGE(图2右)图谱可以看出,前者分离乳蛋白质的条带多而清晰,能够比较全面的表征乳蛋白质的组成.SDS‐PAGE图谱显示牛乳IgG-H分子量比羊乳大,含量较羊乳少,最明显的差别是酪蛋白αs2‐CN的分子量和αs1‐CN含量,牛乳αs1‐CN含量较羊乳多(条带颜色较深),当向羊乳中掺入5%含量的牛乳时(图2左,泳道3)就可以看出条带的差异.图2(右图,泳道1和泳道2)显示native‐PAGE对酪蛋白及高分子量清蛋白分离不好,但是最前端小分子乳清蛋白差别明显,牛乳较羊乳多出两条β‐乳球蛋白条带,羊乳随着掺入脱脂牛乳比例·211·第6期宋宏新等:变性与非变性电泳对牛羊乳蛋白质差异比较研究的变化,β‐乳球蛋白条带(泳道2‐8)从无到有并逐渐加深,两条β‐乳球蛋白条带可以作为羊乳中掺入牛乳的特征蛋白,实验显示的检测阈值为5%.比较羊乳和牛乳蛋白质差异,SDS‐PAGE显示的αs2‐CN和αs1‐CN在较多的蛋白质条带中较难区分,而native‐PAGE显示的两条β‐乳球蛋白条带从无到有更易观察识别,以其差别为基础建立的羊乳中掺入牛乳成分更可取.3 结论对牛乳和羊乳及由其制得的酪蛋白清蛋白进行两种电泳方法分析比较发现以下特点:SDS‐PAGE法由于变性可以将聚合蛋白变性成单体蛋白质或亚基,该条件下的电泳分离效果好,可以显示更多的电泳条带(8~10条),在该条件下牛羊乳最主要的差别是酪蛋白,羊乳αs2‐CN分子量(35.9KD)大于牛乳αs2‐CN分子量(34.2KD),羊乳αs2‐CN含量较高,而牛乳αs1‐CN含量较高(条带更深);native‐PAGE法乳品中蛋白质是以天然(非变性)的完整聚合蛋白质进行分离,酪蛋白变条带少(几种酪蛋白聚合成酪蛋白胶束)且分离效果较差;小分子量的乳清蛋白分离好,羊乳有一条较大的羊乳清蛋白(羊乳的乳白蛋白和乳球蛋白聚合成一个蛋白质),而牛乳清蛋白分有一条牛α‐乳白蛋白,最下端有两条牛β‐乳球蛋白,这也是native‐PAGE显示羊乳和牛乳蛋白质最明显的差别,可以作为羊乳中掺入牛乳的检测特征目标蛋白.比较而言,n‐ative‐PAGE更能明显区分牛羊乳,当羊乳中掺入5%牛乳时,在native‐PAGE电泳图谱中就可以看出明显差异.从电泳操作方法比较,SDS‐PAGE比较成熟,结构较稳定,反映的酪蛋白种类信息更多,native‐PAGE试剂少不变性,要求在较低温度下进行,蛋白质的溶解性对分析影响较大,更适应于乳清蛋白分析,可以作为羊乳中掺入牛乳的有效检测方法之一.进一步比较两种电泳清蛋白电泳结果,天然状态的羊乳清蛋白与牛乳清蛋白的差别显著,然而,有关羊乳清蛋白质中的乳白蛋白和乳球蛋白是如何聚集和其蛋白质结构特点的细节,还有待更深入的蛋白质结构解析研究,羊乳清蛋白质与牛乳清蛋白质的不同,究竟是如何影响羊乳的加工和营养消化特性也有待研究.native‐PAGE可以作为羊乳中掺入牛乳成分的有效检测方法.参考文献[1]唐 萍,田 晶,佘振宝.奶制品中蛋白质测定的毛细管电泳法研究[J].分析科学学报,2006,22(1):5‐8.[2]程潄兰,姚 莉,崔惠玲,等.WTO背景下的中国奶业发展前景[J].农业经济问题,2002,23(3):12‐14.[3]宋宏新,刘立新,柏红梅,等.牛乳中蛋白质的电泳分析技术研究[J].食品与机械,2010,26(6):51‐53.[4]陈丹华.蛋白质凝胶电泳及其分析应用[J].分析科学学报,1995,11(3):75‐86.[5]汪家政,范 明.蛋白质技术手册[M].北京:科学出版社,2000:67.[6]韩奕奕,黄菲菲,王建军,等.凝胶电泳法(SDS‐PAGE)测定乳与乳制品中β‐乳球蛋白的含量[J].乳业科学与技术,2009,32(2):74‐77.[7]宋宏新,李敏康.现代生物化学实验技术教程[M].陕西:陕西人民出版社,2000:160‐162.[8]HamesB.D.,D.Rickwoodeds.Gelelectrophoresisofpro‐teins:Apracticalapproach[M].London:IRLPress.,1981.[9]希尔德布兰特F,伊格莱西P.分子医学技术[M].林建银,译.北京:北京科学出版社,2001:54‐56.[10]KinghornNM,NorrisCS,PatersonGR.Comparisonofcapillaryelectrophoresiswithtraditionalmethodstoana‐lysebovinewheyproteins[J].JChromatogrA,1995,700:111‐123.·311·变性与非变性电泳对牛羊乳蛋白质差异比较研究作者:宋宏新, 刘静, 张歌, 李红心, SONG Hongxin, LIU Jing, ZHANG Ge, LIHongxin作者单位:陕西科技大学生命科学与工程学院,陕西西安,710021刊名:陕西科技大学学报(自然科学版)英文刊名:Journal of Shaanxi University of Science and Technology (Natural ScienceEdition)年,卷(期):2013(6)1.唐 萍;田 晶;佘振宝奶制品中蛋白质测定的毛细管电泳法研究[期刊论文]-分析科学学报 2006(01)2.程潄兰;姚 莉;崔惠玲W T O 背景下的中国奶业发展前景 2002(03)3.宋宏新;刘立新;柏红梅牛乳中蛋白质的电泳分析技术研究[期刊论文]-食品与机械 2010(06)4.陈丹华蛋白质凝胶电泳及其分析应用 1995(03)5.汪家政;范 明蛋白质技术手册 20006.韩奕奕;黄菲菲;王建军凝胶电泳法(SDS-PAGE)测定乳与乳制品中 β-乳球蛋白的含量[期刊论文]-乳业科学与技术 2009(02)7.宋宏新;李敏康现代生物化学实验技术教程 20008.Hames B.D;D.Rickwood Gel electrophoresis of pro-teins:A practical approach 19819.希尔德布兰特F;伊格莱西P;林建银分子医学技术 200110.Kinghorn N M;Norris C S;Paterson G R Comparison of capillary electrophoresis with traditional methods to ana-lyse bovine w hey proteins 1995本文链接:/Periodical_xbqgyxyxb201306024.aspx。

牛乳清蛋白中β-乳球蛋白的分离纯化

牛乳清蛋白中β-乳球蛋白的分离纯化

牛乳清蛋白中β-乳球蛋白的分离纯化
吴凤;王志耕;王子龙;董娟娟
【期刊名称】《包装与食品机械》
【年(卷),期】2008(026)004
【摘要】结合硫酸铵分段盐析和凝胶层析两种方法,从牛乳乳清蛋白中分离、提纯出β-乳球蛋白.通过SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳检测蛋白成分,结果显示:①在20%~30%、70%~80%盐析段只有两条带,分别是β-乳球蛋白和α-乳清白蛋白带,得到较纯的蛋白;②再用SephadexG-50凝胶过滤层析,电泳结果显示只有一条带,并与标准β-乳球蛋白带一致,得到较纯的β-乳球蛋白.
【总页数】3页(P32-33,40)
【作者】吴凤;王志耕;王子龙;董娟娟
【作者单位】安徽农业大学畜产品品质与工程研究室,合肥,230036;安徽农业大学畜产品品质与工程研究室,合肥,230036;安徽农业大学畜产品品质与工程研究室,合肥,230036;安徽农业大学畜产品品质与工程研究室,合肥,230036
【正文语种】中文
【中图分类】TS252.4
【相关文献】
1.消除乳清蛋白中β-乳球蛋白致敏性的研究进展 [J], 李永涛;张兰威;孔保华
2.人乳、牛乳、羊乳中乳清部分氨基酸组成及乳清蛋白中蛋白质二级结构的对比[J], 张熙桐;关博元;孔繁华;刘彪;陶冬冰;武俊瑞;岳喜庆
3.脱盐牛乳乳清粉中β-乳球蛋白的分离纯化 [J], 杨章昀;冯郑珂;潘家荣
4.高效液相色谱法测定乳清蛋白中的α乳白蛋白和β乳球蛋白及其改性降敏 [J], 赵倩如;朱丽英;赵权宇;江凌
5.超高效液相色谱-串联三重四极杆质谱法测定乳清蛋白粉中α-乳白蛋白和β-乳球蛋白 [J], 杜娟;郑云鹏;董洪涛;张凤霞
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SDS-PAGE法对乳及乳制品中主要蛋白的定性和定量分析

SDS-PAGE法对乳及乳制品中主要蛋白的定性和定量分析

I FOOD INDUSTRY I 97FOOD INDUSTRY I THEORYSDS-PAGE法对乳及乳制品中主要蛋白的定性和定量分析文 刘利娟鹤壁职业技术学院肪层,留取清液备用,清液、水、样品缓冲液以1:1:2的混合,沸水浴加热10min ,10000r/min 离心10min ,取清液分装,备用。

称取1g 婴幼儿配方奶粉样品,用双蒸水定容至10mL ,10000r/min ,转速下离心15min ,步骤同鲜牛乳样品。

1.3.2 电泳条件配制15%分离胶:30%丙烯酰单体胺储备6mL,分离胶缓冲液3mL ,10%SDS 120μL ,双蒸水3mL ,10%过硫酸铵60μL ,TEMED 6μL 。

配制4%浓缩胶:30%丙烯酰单体胺储备0.67mL ,浓缩胶缓冲液1mL ,10%SDS 40μL ,双蒸水3.33mL ,10%过硫酸铵30μL ,TEMED 10μL 。

将制备好的胶放入电泳槽内,加入电极缓冲液,将梳子垂直缓慢地拔出,分别对样品和标准品进行不同浓度、不同体积进样。

预电泳电压80V ,分离胶与浓缩胶分界处改为130V 电压完成电泳。

0.1%考马斯亮蓝溶液染色1h ,脱色液洗脱过夜,至凝胶背景为透明无色。

2. 结果与分析2.1 分离胶浓度的选择SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳有两种系统,即只有分离胶的连续系统和有浓缩胶与分离胶的不连续系统。

本实验采用不连续系统的优点在于样品可以在进入分离胶之前在浓缩胶上达到相同的速度,即使样品达到相同的初速度和初始值。

带电胶粒在电场作用下向着与自身相反的电荷方向移动,且分子量越小的粒子,受到的阻力越小,分子迁移的速度越快,分子量越大的粒子收到的阻力越大,迁移速度婴幼儿配方奶粉是以母乳为标准,选自优质乳牛的奶源,对牛奶的主要蛋白质成分调整,使其最大限度地接近母乳,从而更适合婴儿的肠胃吸收和营养需求。

牛乳中的蛋白质主要分为酪蛋白和乳清蛋白两个重要组成部分,其中酪蛋白占乳总蛋白含量约80%,酪蛋白主要包含αs 1-酪蛋白、αs 2-酪蛋白、β-酪蛋白和Ƙ-酪蛋白四种蛋白质,分别占总酪蛋白的比例为4:1:4:1,乳清蛋白占乳总蛋白含量约20%,乳清蛋白主要由α-乳白蛋白(Q-LA )、β-乳球蛋白(B-LG )、免疫球蛋白(Ig )和牛血清蛋白(BSA )组成,分别占总乳清蛋白的5:2:8:5。

实验二 聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)鉴定免疫球蛋白

实验二 聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)鉴定免疫球蛋白


4、转膜:(半干转)(PVDF膜0.22UM)
半干转移中,一般恒流(1-1.5mA/cm2,60-90min), 恒压的话15v 60分钟就可以了。
5、关闭电源,用镊子夹取PVDF膜,转移到塑料盒中,加入 5%脱脂奶粉4℃封闭过夜。 6、弃去封闭液,用TBST洗膜3次,每次5min 7、加入一抗,室温平缓摇动2h;
二、原理

Western Blotting简称蛋白质印迹法。蛋白质 样品经SDS-PAGE电泳后,凝胶所含的样品蛋 白质区带通过电泳方法转移、固定到载体 (如硝酸纤维素膜)上,固相载体以非共价 键的形式与蛋白质结合,从而固定蛋白质; 以膜上的蛋白或多肽为抗原,与相应的第一 抗体起免疫反应,再和酶标记的第二抗体反 应,用适当的溶液漂洗去未结合抗体后,置 含底物的溶液中温育,即可检测出样品中的 特异蛋白质组分。
三、试剂与器材
1、膜转移缓冲液
2、TBST缓冲液
3、封闭液 含有5%脱脂奶粉的TBST液。
4、DAB显色
实验器材



半干转移槽 PVDF (聚偏氟乙烯)膜 两张厚的滤纸 刀片 塑料盒
四、操作步骤


1、当表达产物的SDS-PAGE电泳结束时,带上手套, 剥胶,切6-8张滤纸和一张PVDF膜,它们的大小与凝 胶完全吻合。 2、在一塑料盒里加入少量转膜液,将滤纸与胶浸泡 于其中5-10min;PVDF膜浸入甲醇中2min 3、制备“夹心饼”:(膜可比滤纸稍大,防止短路) 提起滤纸平放在盒盖上,用洁净15ml离心管压走多 余的buffer,以不滴水为宜,平铺在半干转印槽上, 再将湿润的膜(实验室统一剪角标记)放在该层滤纸 上;接下来将已切角的胶平铺在膜上,在最上层再铺 上滤纸并压走多余液体。

牛乳与母乳中低聚糖的测定方法及其不同泌乳时期变化规律的研究

牛乳与母乳中低聚糖的测定方法及其不同泌乳时期变化规律的研究

牛乳与母乳中低聚糖的测定方法及其不同泌乳时期变化规律的研究低聚糖是指重量分子量低于5000的有机物,通常由几个到几十个单糖单元组成的糖链,广泛存在于植物和动物体内,具有重要的生理活性和生化功能。

近年来,随着牛奶和母乳中低聚糖的研究日趋深入,人们对不同泌乳时期牛乳和母乳中低聚糖的测定及其变化规律的研究也变得越来越重要。

牛乳和母乳中低聚糖的测定方法主要包括凝胶电泳(SDS-PAGE)、液相色谱法(HPLC)和比色法(Colorimetry)等。

凝胶电泳是目前最常用的一种方法,可以有效地检测到牛乳和母乳中的低聚糖。

该方法的原理是将低聚糖通过特定的溶剂缓冲溶液中的聚合物进行电泳,然后通过分析电泳gels中形成的条带来评价低聚糖含量。

液相色谱法则主要用于测定低聚糖的种类和其组成百分比,其原理是通过溶剂提取牛乳和母乳中的低聚糖,再分析其在各次色谱柱上异构体色谱表现。

比色法则可以实时检测低聚糖的含量,其原理是通过对低聚糖的特定反应,使低聚糖同时与其他物质发生可见的化学反应,从而可以通过测定发生反应后的颜色深浅来判断低聚糖含量。

不同泌乳时期牛乳和母乳中低聚糖的变化规律表明,孕期牛乳和母乳中的低聚糖含量较低,而初乳中的低聚糖含量明显高于孕期的水平。

在产后的泌乳期,低聚糖含量会逐渐减少,但仍然保持较高水平,并且泌乳时期低聚糖的组成也发生了变化,其中葡萄糖和木糖含量明显高于孕期。

此外,由于母乳和孕期牛奶中低聚糖的组成有所不同,母乳中的麦芽糖含量明显高于牛乳,而前者中木糖和阿拉伯糖含量较低。

从上述变化规律可知,牛乳和母乳中低聚糖含量以及其组成在泌乳时期有明显的变化,对其营养价值和生理功能产生了重要的影响。

因此,基于对不同泌乳时期牛乳和母乳中低聚糖的测定和分析,我们可以更深入地了解其营养成分,从而为妈妈们和宝宝们提供更多的营养保健建议。

综上所述,牛乳和母乳中低聚糖的测定方法及其不同泌乳时期变化规律的研究极具重要意义,针对这一问题的研究有助于我们更好地理解牛乳和母乳中的营养成分,从而为妈妈们和宝宝们提供完善的营养保健建议。

凝胶电泳法(SDS-PAGE)测定乳与乳制品中 β-乳球蛋白的含量

凝胶电泳法(SDS-PAGE)测定乳与乳制品中 β-乳球蛋白的含量
凝胶用水清洗三次,浸泡在盛有考马斯亮蓝
染色液的器皿中,染色 12 h。染色后的凝胶用脱 色也浸泡脱色,至凝胶背景无色为止。用光密度 仪对凝胶进行测定分析,根据光密度值计算 β-乳 球蛋白的含量。
受到较大的阻力而被滞后,这样蛋白质在电泳过 程中就会根据其各自分子量的大小而被分离。因 此,采用不连续系统,对相同样品,相同电流下, 在 5%、12%、15%以及 20%的分离胶上进行电泳, 对分离效果进行了比较,见图 1-图 4。
2.5 确定检出限 根据限量要求,对 0.2376 mg/mL 的标准样品
(较接近于空白样品)20 个平行样进行电泳,得到 标准偏差,由 LOD=3×SD 得到检出限。液态奶中 为 24 mg/100mL,奶粉、奶酪中为 240 mg/100g。 2.6 实际样品的测定
用 SDS -PAGE 测 定 β - 乳 球 蛋 白 的 标 准 溶
述,改良的考马斯亮蓝染色与传统考马斯亮染色 液,其测定结果表明 β-乳球蛋白的标准溶液与
相比,不仅使用低毒的有机试剂,缩短了脱色时 光密度值之间存在着较好的线性关系,相关系数
间,并且能达到与传统考马斯亮蓝染色的定量效 r 为 0.99,回归方程分别为 Y=1.5452X-0.7139,
目前 β-乳球蛋白常用的检测方法有高效液 相色谱法[2-3]和电泳法[4-8],与液相方法相比,电泳 法具有成本低、操作简单,耗时短,重复性高等特 点。
收稿日期:2008-10-22
1 材料与方法
1.1 材料与仪器 30%丙烯酰胺单体贮备液、1 mol/L Tris-HCl
缓 冲 液 ,pH 6.8、1.5 mol/L Tris -HCl 缓 冲 液 ,pH 8.8、10%过硫酸铵、10%SDS 溶液、N,N, N’,N’-四 甲基乙二胺(TEMED)溶液;样品缓冲液(4 mg 溴 酚蓝,1.6 mL 1 mol/L Tris-HCl 缓冲液,pH 6.8,4 mL SDS 溶液,1.2 mL β-巯基乙醇,100%甘油 2.2 mL,全部混合后用水稀释定容至 20 mL);

乳与乳制品中非蛋白氮含量的测定

乳与乳制品中非蛋白氮含量的测定

乳与乳制品中非蛋白氮含量的测定
邵秋荣;张文;方邢有
【期刊名称】《分析试验室》
【年(卷),期】2009(28)B05
【摘要】用12%的三氯乙酸沉淀乳与乳制品中的原蛋白,过滤沉淀后,检测乳与乳制品中的非蛋白氮的含量。

滤液经与硫酸铜、硫酸钾一同加热消化,使氮分解,分解出的氨与硫酸结合生成硫酸铵。

然后碱化蒸馏使氨游离,用硼酸吸收后,用0.01 mol/L HCl滴定,根据酸的消耗量乘以换算系数,即为样品中非蛋白氮的含量。

【总页数】2页(P240-241)
【关键词】乳;乳制品;蛋白;氮含量;掺假
【作者】邵秋荣;张文;方邢有
【作者单位】顺德出入境检验检疫局
【正文语种】中文
【中图分类】TS252.1;S823.5
【相关文献】
1.凝胶电泳法(SDS-PAGE)测定乳与乳制品中β-乳球蛋白的含量 [J], 韩奕奕;黄菲菲;王建军;吕春
2.乳制品中非蛋白氮含量测定的不确定度评定 [J], 陈永元;乐琼
3.信息化教学在高职“乳与乳制品检测技术”课程中的应用——以乳及乳制品酸度的测定为例 [J], 池慧芳; 韩永霞; 高丽霞
4.碱水解法测定乳及乳制品中脂肪的含量 [J], 晏凯; 刘晓彤; 刘悦; 李凤娟; 于磊; 马英伟; 李培丹
5.信息化教学在高职“乳与乳制品检测技术”课程中的应用——以乳及乳制品酸度的测定为例 [J], 池慧芳;韩永霞;高丽霞
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乳与乳制品常规理化指标检验蛋白质含量的检测

乳与乳制品常规理化指标检验蛋白质含量的检测

乳与乳制品常规理化指标检验蛋白质含量的检测乳与乳制品中常见的蛋白质种类包括酪蛋白、乳清蛋白和乳酸菌蛋白等。

其中,酪蛋白是乳与乳制品中最主要的蛋白质组分,占据了乳中总蛋白质的75%以上。

乳清蛋白是乳与乳制品中的另一主要蛋白质成分,它具有良好的水溶性和生物利用度。

常规理化指标检验蛋白质含量的方法主要有几种,包括Kjeldahl法、琼脂糖凝胶电泳和紫外吸收光谱法等。

Kjeldahl法是一种用于测定有机氮含量的经典方法,也是乳与乳制品中蛋白质含量检测的常用方法之一、该方法的原理是通过将样品中的蛋白质分解为氨基酸,然后将氨基酸转化为氨,并以氨的形式测定样品中的氮含量。

通过乘以适当的因子,可以计算出样品中蛋白质的含量。

琼脂糖凝胶电泳是一种常用的蛋白质分析方法,可以用于检测乳与乳制品中蛋白质的组成和含量。

该方法利用蛋白质在电场中的迁移速率与其分子量之间的关系,通过测定蛋白质在凝胶上的迁移距离,可以推断出蛋白质的分子量和含量。

紫外吸收光谱法是一种基于蛋白质在特定波长下具有吸光性的原理,通过测定吸收光谱的变化来确定样品中蛋白质的含量。

这种方法简单、快速,并且无需破坏性地处理样品,因此在乳与乳制品中蛋白质含量的检测中得到了广泛应用。

除了上述常见的方法外,还有其他一些新型的蛋白质检测方法正在不断发展中,例如质谱法、免疫测定法等。

这些方法具有高灵敏度和高选择性,能够准确地测定乳与乳制品中蛋白质的含量。

在实际的生产和质量控制中,对乳与乳制品中蛋白质含量的检测是至关重要的。

通过对产品中蛋白质含量的监测,可以及时发现和解决质量问题,确保产品的标准化和稳定性。

总之,常规理化指标检验乳与乳制品中蛋白质含量的方法多种多样,每种方法都具有其特定的优点和适用范围。

选择适当的方法,并根据实际情况进行合理的检测,对于乳与乳制品的生产和质量控制具有重要的意义。

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Han Yiyi, Huang Feifei, Wang Jianjun,Lv Chun
(Shanghai Dairy Products Quality Supervision and Inspection Center, Shanghai 200436, P. R. China)
Abstract: A rapid quantitative method for determination of β-lactoglobulin in milk and dairy products by SDS-PAGE electrophoresis has been developed. The method had good relativity (r=0.99) and good analytic precision (RSD<10 %), with the LOD of 24 mg/100mL in milk and 240 mg/100g in milk powder and cheese. This method is fast, simple, reliable,so it can be applied in the determination of β-lactoglobulin in milk and dairy products. Key words: β-lactoglobulin; SDS-PAGE electrophoresis; milk and dairy products
按表 1 所示配制 12 %分离胶及 3 %浓缩胶
表 1 不连续电泳的凝胶配方(垂直电泳)
贮液 丙烯酰胺单体贮备液 浓缩胶缓冲液贮备液 分离胶缓冲液贮备液 十二烷基磺酸钠溶液(10%)
水 N,N, N′,N′-四甲基乙二胺溶液
(TEMED) 过硫酸铵溶液/100g·L-1
3 %浓缩胶 2.5 mL 0.6 mL — 50 μL 1.82 mL
果。
详见表 4。
表 4 不同浓度的 β-乳球蛋白与光密度值的线性关系
浓度(/ mg·mL-1)
0.238 0.594 1.188 1.782 2.376 2.97
3.56 4.572 5.94 7.128
光密度值
0.253 0.346 0.544 0.66 1.104 1.25 1.552 1.944 2.586 3.116
凝胶用水清洗三次,浸泡在盛有考马斯亮蓝
染色液的器皿中,染色 12 h。染色后的凝胶用脱 色也浸泡脱色,至凝胶背景无色为止。用光密度 仪对凝胶进行测定分析,根据光密度值计算 β-乳 球蛋白的含量。
受到较大的阻力而被滞后,这样蛋白质在电泳过 程中就会根据其各自分子量的大小而被分离。因 此,采用不连续系统,对相同样品,相同电流下, 在 5%、12%、15%以及 20%的分离胶上进行电泳, 对分离效果进行了比较,见图 1-图 4。
表 2 电流强度与电泳时间一览表(单胶)
电流/mA
10
15
20
30
60
耗时/min 180
90
70
60
30
通过上表可以看出,电流越大,电泳时间越
短;另一方面,当电流增加到 60 mA 时,可以明显
感觉到电泳中产生的热量,由于产生的热量会引
起介质温度升高,这会对分离效果造成潜在的影
响。综合考虑,我们选择 30 mA 的电流,既可快速 地进行电泳,又不会在电泳过程中产生大量的热
固体样品:称取 1 g 样品,精确到 0.1 mg,加 适量水溶解,定容至 10 mL,取 1 mL 依次加入 1 mL 水和 2 mL 样品缓冲液,沸水浴加热 3-5 min, 磁力搅拌器搅拌 4 h,离心 5 min,去除脂肪,取清 液分装,在-20 ℃保存,备用。 1.2.2 分离胶及浓缩胶制备
2.5 确定检出限 根据限量要求,对 0.2376 mg/mL 的标准样品
(较接近于空白样品)20 个平行样进行电泳,得到 标准偏差,由 LOD=3×SD 得到检出限。液态奶中 为 24 mg/100mL,奶粉、奶酪中为 240 mg/100g。 2.6 实际样品的测定
有分离胶的连续系统和有浓缩胶与分离胶的不 连续系统。在不连续系统中,样品在电泳过程中 首先通过浓缩胶,在进入分离胶前由于等速电泳 现象而被浓缩。进入分离胶后,由于聚丙烯酰胺 的分子筛作用,小分子的蛋白质可以容易的通过 凝胶孔径,阻力小,迁移速度快;大分子蛋白质则
β-乳球蛋白标准品
牛奶平行样 奶粉平行样
中图分类号:TS252.1
文献标识码:A 文章编号:1671-5187(2009)02-0074-04
The Determination of β-lactoglobulin Content in Milk and Dairy Products by SDS-PAGE Electrophoresis
其他乳清蛋白和酪蛋白较好的分离效果。同时, 随着分离胶浓度的增大,β-乳球蛋白的迁移距离 越短,因此,在 β-乳球蛋白的迁移距离相同的情 况下,分离胶浓度越大,电泳时间也逐渐增加,考
虑到时间因素,我们认为 12%的分离胶浓度更加 适用于 β-乳球蛋白的检测。 2.2 电流的选择
对相同样品在 12%分离胶上分别在 10 mA、 15 mA、20 mA、30 mA 以及 60 mA 电流下进行电 泳,电泳时间与电流强度的比较表 3。
乳清蛋白主要由乳白蛋白、乳球蛋白组成, 乳白蛋白约占乳清蛋白的 68%,乳白蛋白还可细 分为:α-乳白蛋白约占乳清蛋白的 19.7%,β-乳 球蛋白约占乳清蛋白的 43.6%,血清白蛋白约占 乳清蛋白的 4.7%。有文献报道,β-乳球蛋白具有 降低胆固醇的功效,在酸性胃肠道内具有抗酸能 力,能够进入人体循环系统,容易被吸收。另外, β-乳球蛋白能够对脂溶性营养素如维生素 A 和 维生素 E 进行预结合,从而促进它们的吸收[1]。因 此被认为是多功能蛋白,在营养上的角色备受重 视。定量检测乳与乳制品中 β- 乳球蛋白的含量, 可以明示乳制品的营养价值,给予消费者以更好 的选择。
用 SDS -PAGE 测 定 β - 乳 球 蛋 白 的 标 准 溶
述,改良的考马斯亮蓝染色与传统考马斯亮染色 液,其测定结果表明 β-乳球蛋白的标准溶液与
相比,不仅使用低毒的有机试剂,缩短了脱色时 光密度值之间存在着较好的线性关系,相关系数
间,并且能达到与传统考马斯亮蓝染色的定量效 r 为 0.99,回归方程分别为 Y=1.5452X-0.7139,
韩奕奕等:凝胶电泳法(SDS-PAGE)测定乳与乳制品中 β-乳球蛋白的含量
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RAD 公司)。 1.2 实验方法 1.2.1 样品制备
液体样品:取 1 mL 样品,依次加入 1 mL 水 和 2 mL 样品缓冲液,沸水浴加热 3-5 min,磁力 搅拌器搅拌 4 h,离心 5 min,去除脂肪,取清液分 装,在-20 ℃保存,备用。
目前 β-乳球蛋白常用的检测方法有高效液 相色谱法[2-3]和电泳法[4-8],与液相方法相比,电泳 法具有成本低、操作简单,耗时短,重复性高等特 点。
收稿日期:2008-10-22
1 材料与方法
1.1 材料与仪器 30%丙烯酰胺单体贮备液、1 mol/L Tris-HCl
缓 冲 液 ,pH 6.8、1.5 mol/L Tris -HCl 缓 冲 液 ,pH 8.8、10%过硫酸铵、10%SDS 溶液、N,N, N’,N’-四 甲基乙二胺(TEMED)溶液;样品缓冲液(4 mg 溴 酚蓝,1.6 mL 1 mol/L Tris-HCl 缓冲液,pH 6.8,4 mL SDS 溶液,1.2 mL β-巯基乙醇,100%甘油 2.2 mL,全部混合后用水稀释定容至 20 mL);
在考察染色时间、脱色时间、图像背景的同 时,对同一样品分别在两块凝胶上做 8 个平行 样,进行凝胶电泳,两块胶分别采用两种方法染 色,得到的 β-乳球蛋白含量如表 3。
表 3 同一样品使用不同染色方法得到 β-乳球蛋白含量
浓度(/ mg·mL-1)
1
2
3
4
5
6
7
8
平均值/
RSD
(mg·mL-1) /%
5 μL
25 μL
12 %分离胶 12 mL — 7.5 mL 300 μL 10 mL
20 μL
200 μL
1.2.3 上样 将制备好的凝胶放入电泳槽中,并灌入新配
置的电极缓冲液。用微量进样器分别加入 β-乳球 蛋白标准溶液 2 μL 和试样 2 μL。 1.2.4 参考电泳条件
(恒电流):浓缩胶中浓缩 30 mA;分离胶中分 离 30 mA。 1.2.5 染色及脱色
电极缓冲液 (Tris-甘氨酸系统:0.025 mol/L Tris,0.192 mol/L 甘氨酸,0.1 % SDS,pH 8.3);
考马斯亮蓝染色液,2.5 g/L; β-乳球蛋白 1 标准品 (纯度≥90 %,SIGMA 公司):精确称取 0.0100 g β-乳球蛋白标准品,用 样品缓冲液定容至 10 mL,沸水浴中加热 3-5 min,在-20 ℃以下保存;配制成相当浓度的系列 β-乳球蛋白标准溶液。 BIO-RAD 凝胶电 泳仪及光密 度 仪 (BIO -
β-乳球蛋白标准品 牛奶平行样
奶粉平行样 奶酪平行样
图 1 5%分离胶分离效果
β-乳球蛋白标准品
牛奶平行样 奶粉平行样 奶酪平行样
图 2 12%分离胶分离效果
β-乳球蛋白标准品
牛奶平行样 奶粉平行样 奶酪平行样
图 3 15%分离胶分离效果
2 结果与分析
2.1 分离胶浓度的选择 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳有两种系统,即只
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《乳业科学与技术》 2009 年第 2 期 (总第 135 期)
凝胶电泳法(SDS-PAGE)测定乳与乳制品中 β-乳球蛋白的含量
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