细胞研究方法和手段
细胞生物学的研究方法

细胞生物学的研究方法
细胞生物学是研究细胞的结构、功能和生理过程的科学。
在细胞生物学的研究中,有许多常用的方法。
以下是其中一些常见的研究方法:
1. 细胞培养:将细胞从其天然环境中分离出来,并在实验室中以适当的培养基中培养细胞。
细胞培养使得研究人员能够对细胞进行控制和观察。
2. 显微镜观察:使用光学显微镜或电子显微镜观察细胞的形态、结构和运动。
光学显微镜可以用来观察活细胞,而电子显微镜则能够提供更高分辨率的细胞图像。
3. 免疫细胞化学:使用特异性抗体与细胞中的特定蛋白质结合,然后通过染色或荧光探针,观察并分析这些蛋白质在细胞中的分布和表达水平。
4. 分子生物学技术:包括PCR、DNA克隆、基因测序和蛋白质表达等技术,可以用于研究细胞中的基因和蛋白质。
5. 细胞色素分析:利用生物化学检测方法,测定细胞内特定生物分子的含量和代谢活性,以研究细胞功能和代谢过程。
6. 分离和纯化细胞器:通过细胞破碎和离心技术,将细胞内不同的细胞器分离和纯化出来,以研究它们的结构和功能。
7. 基因编辑技术:如CRISPR/Cas9,可以对细胞中的基因进行精确编辑和改变,以研究基因对细胞功能的影响。
8. 活体成像:利用荧光探针或标记的蛋白质,观察和记录活细胞的动态变化,如细胞分裂、运动和细胞内信号传导等。
以上只是细胞生物学研究中的一些常见方法,实际研究中可能还会使用其他特定的技术和方法,具体取决于研究的目的和需要。
细胞生物学的实验方法和技术

细胞生物学的实验方法和技术细胞生物学是研究细胞结构、功能和生命活动的学科,可以帮助我们了解生命的起源和本质。
在细胞生物学领域,实验是非常重要的,因为只有通过实验才能获取丰富的数据和信息。
接下来,我们将介绍一些常用的细胞生物学实验方法和技术。
1. 细胞培养细胞培养是一种将细胞放置在含有营养物的培养基上的实验方法。
这种方法可以被应用于很多方面,例如研究基因表达、病理生理学和新药发现等领域。
细胞培养通常要求细胞处于可能生长和分裂的特定生长条件下,培养基的配方和组成要根据细胞类型进行调整。
2. 免疫荧光染色免疫荧光染色是一种将抗体特异性地与待检测蛋白质结合,然后用荧光染色剂标记抗体的实验方法。
这种方法被广泛应用于检测蛋白质的组织学定位、蛋白质相互作用和细胞信号传导等方面的研究。
3. 细胞色素c释放实验细胞色素c释放实验是通过检测细胞色素c的释放来检测细胞凋亡状况的实验方法。
这种实验需要将细胞暴露在合适的刺激条件下,然后收集细胞,用针头机械破碎并分离出线粒体,接着用色素c检测试剂。
此方法可以被应用于癌症治疗、新药研发和基础细胞生物学研究等领域。
4. 网格溶解实验网格溶解实验是一种检测细胞侵袭和扩散能力的实验方法,常用于研究细胞恶性生长、转移和肿瘤治疗等领域。
这种实验需要在培养皿中放置一层含有孔的膜,将预处理好的细胞悬浮在孔上方的区域,然后留置一段时间等待细胞穿过孔隙层次,最后收集并处理细胞样本,通过各种方式检测细胞侵袭和扩散的情况。
5. 蛋白-蛋白相互作用实验蛋白-蛋白相互作用实验是一种检测蛋白质互相作用的实验方法。
这种实验有几种方法,包括酵母对二杂交法、共免疫沉淀法和化学交联法等。
这些方法可以帮助我们了解蛋白质相互作用的机制,为研究信号转导、基因表达和疾病机理等领域提供参考资料。
以上是几种常用的细胞生物学实验方法和技术。
每一种方法都有自己独特的适用范围和步骤,研究者们需要根据具体的实验内容选择合适的方法。
细胞生物学的研究方法及其应用

细胞生物学的研究方法及其应用细胞生物学是一门研究生物体最基本单位——细胞的科学,它的研究对象是细胞的形态、结构、功能及其相互作用等。
随着科技的发展,细胞生物学的研究手段也在不断更新,使我们对细胞的了解更加深入。
本文将介绍细胞生物学的几种研究方法及其应用。
一、细胞培养技术细胞培养技术是细胞生物学中比较基础的研究手段,它是将组织和细胞移植到含有营养物质和生长因子的培养基中进行培养和繁殖,使其在体外长期存活和生长。
通过细胞培养,研究人员可以从难以获得的生物材料中获得大量的细胞,进行多种实验和研究。
细胞培养技术在药物筛选、细胞变异、细菌感染等方面都有广泛的应用。
例如,在肿瘤治疗中,通过培养患者的肿瘤细胞,可以对其进行敏感性测试,筛选出最佳的治疗方案。
此外,还可以通过细胞培养的方法提取细胞内的 mRNA 或 DNA 进行一系列的分子生物学实验。
二、细胞分离技术细胞分离技术是指将复杂的细胞混合物中的不同类型的细胞分离出来,以便进一步研究。
细胞分离技术有多种方法,比较常用的有洗涤法、筛选法和离心法等。
细胞分离技术的应用十分广泛,如在干细胞移植中,为了避免移植的细胞类型过于复杂,需要先将干细胞分离出来。
此外,在癌症研究中,通过分离出癌细胞和正常细胞,可以更好地研究其生长机理和治疗方法。
三、光学显微镜技术光学显微镜技术是最基础的细胞观察手段,通过光学显微镜可以观察到细胞的形态、结构和运动等。
随着测量技术和计算机视觉的不断发展,现在研究人员可以对细胞及其内部结构进行三维成像和动态观察。
光学显微镜技术可用于对细胞的形态、生理学特征、代谢和运动等状态进行观察。
例如,在生长发育的研究中,光学显微镜可以被用来跟踪细胞分裂和发育过程的中间几个阶段,从而更好地理解细胞生长与分裂的机理。
四、电镜技术电镜技术是对细胞结构和形态的高级观察手段。
通过电镜技术可以观察细胞超微结构,如细胞核、内质网、线粒体和细胞膜等。
电子显微镜技术主要有透射电镜和扫描电镜两种。
细胞遗传学的研究方法与技术

细胞遗传学的研究方法与技术细胞遗传学是研究细胞遗传性状传递和变异的学科,其发展得益于先进的研究方法和技术。
本文将介绍几种常见的细胞遗传学研究方法和技术,包括细胞培养、细胞染色体分析、细胞基因突变分析和分子生物学技术的应用。
一、细胞培养细胞培养是细胞遗传学研究的基础,通过将细胞放入含有营养物质和适宜环境的培养基中,使其在人工环境下生长和繁殖。
常用的培养细胞有哺乳动物细胞、真菌细胞和昆虫细胞等。
细胞培养可用于研究细胞的生长动力学、细胞周期、细胞分裂、细胞分化以及药物对细胞的作用等。
二、细胞染色体分析细胞染色体分析是研究细胞遗传物质结构和功能的重要方法。
通过制备和染色细胞的染色体,可以观察到染色体的形态、数量和结构等特征。
常用的细胞染色体分析方法包括常规染色体分析、荧光原位杂交技术(FISH)和比较基因组杂交等。
这些技术可用于观察染色体异常(如染色体缺失、重排和易位等)与疾病之间的关联,以及染色体在细胞遗传中的作用。
三、细胞基因突变分析细胞基因突变分析是研究细胞基因变异和突变的重要方法。
通过利用特定的突变诱变剂(如化学物质或辐射)处理细胞,可以诱发细胞中基因的突变。
常用的细胞基因突变分析方法包括突变筛选、突变鉴定和突变累积等。
这些技术可用于研究细胞基因突变对生物表型的影响,以及与人类疾病的关联。
四、分子生物学技术的应用分子生物学技术在细胞遗传学研究中起着重要作用。
这些技术包括DNA提取与纯化、聚合酶链式反应(PCR)、DNA测序、克隆与重组等。
利用这些技术,可以分析细胞中的基因序列与表达,研究基因与蛋白质相互作用和调控机制等。
此外,还可以应用分子生物学技术进行基因编辑和基因修复,如CRISPR-Cas9技术。
研究细胞功能的方法

研究细胞功能的方法细胞是生物体的基本单位,细胞功能的研究对于理解生命的基本原理和治疗疾病具有重要意义。
为了研究细胞功能,科学家们开发了多种方法和技术,以下将介绍其中一些常用的方法。
1. 显微镜观察显微镜是研究细胞的基本工具之一,可以通过放大细胞和细胞器的形态和结构来研究细胞功能。
光学显微镜可以观察到细胞的形态、大小和内部结构,而电子显微镜则可以更高分辨率地观察到细胞的超微结构,如细胞核、线粒体和内质网等。
2. 细胞培养细胞培养是一种将细胞从体内或体外获取,并在营养液中培养和繁殖的方法。
通过细胞培养,可以研究细胞的生长、分化、增殖和死亡等基本生理过程,以及细胞对外界刺激的响应和反应。
3. 细胞染色技术细胞染色技术通过染色剂与细胞的特定结构或分子相互作用,使其在显微镜下可见。
常用的细胞染色技术包括荧光染色、免疫染色和核酸染色等。
荧光染色可以通过标记特定抗体或荧光探针来观察特定蛋白质或核酸的分布和表达水平。
免疫染色则可以通过特定抗体与细胞表面或内部蛋白质的结合来研究细胞的功能和相互作用。
核酸染色可以用来观察细胞的DNA或RNA含量和分布情况。
4. 分子生物学技术分子生物学技术是研究细胞功能的重要手段之一,包括DNA克隆、PCR、基因敲除和基因表达等技术。
DNA克隆可以用于获取目标基因的大量复制,以便进行后续的研究;PCR技术可以在体外扩增特定DNA片段,用于基因分型、检测和定量等;基因敲除技术可以通过人为干预细胞的基因组,研究特定基因的功能和调控机制;基因表达技术可以通过转染外源基因到细胞中,研究目标基因的功能和表达水平。
5. 蛋白质组学蛋白质组学是研究细胞中蛋白质的种类、结构和功能的方法。
通过质谱技术可以鉴定和分析细胞中的蛋白质组成,进而研究细胞的代谢途径、信号传导和蛋白质相互作用等。
蛋白质组学还可以用于研究细胞的蛋白质修饰和翻译后修饰等重要生理过程。
6. 基因组学基因组学是研究细胞中基因组的组成、结构和功能的方法。
细胞生物学研究方法

细胞生物学研究方法细胞生物学是生物学的重要分支,它研究细胞的结构、功能和活动特征。
而现代细胞生物学的研究方法却是非常多样化的。
一、细胞培养技术细胞培养技术是现代细胞生物学最重要的实验手段之一。
它可以用来研究细胞的生长、分裂、分化和死亡等基本生物学过程,同时也可以用来筛选和测试新药物。
在细胞培养方面,流行的方法包括传统的水平指向法、悬浮式培养法、三维培养法等。
其中,三维培养法是比较新的技术,它可以用来模拟体内的三维环境,提高细胞培养的成功率。
二、显微镜技术显微镜是细胞生物学研究中必不可少的工具。
根据不同的研究目标,可以使用不同的显微镜。
光学显微镜用于观察细胞表面结构和细胞内分子分布,而电子显微镜用于观察细胞的内部结构和纳米级别的分子组成。
与传统显微镜相比,近年来兴起的超分辨率显微镜则更加革命性。
超分辨率显微镜可以在纳米级别下观察细胞内部的生物活动,这种技术又被称为“光学雷达”。
三、基因编辑技术基因编辑技术是一种能够修改基因的方法,它可以用于研究某些基因在细胞生物学中的作用。
最著名的一种基因编辑技术是CRISPR/Cas9,它可以精确地切割DNA序列,进而实现基因的精准编辑。
基因编辑技术的核心技术是分子生物学,分子生物学技术的快速发展促进了基因编辑技术的加速发展。
同时,这些技术也正在被用于战胜某些遗传疾病。
四、蛋白质组学技术蛋白质组学技术是一种研究细胞内蛋白质分布、结构和功能的技术。
目前,主要的蛋白质组学技术包括蛋白质电泳、蛋白质质谱和蛋白质芯片技术等。
在这些技术中,蛋白质质谱技术是一个较为常用的技术。
蛋白质质谱技术可以快速而准确地识别和定量细胞内蛋白质。
它可以被用作生物医学和生命科学的研究手段,推动蛋白质研究的发展。
总之,在现代细胞生物学研究中,许多方法都得到了迅速发展。
这些方法的应用广泛,它们推动着细胞生物学的不断前进。
未来,我们相信这些工具将继续提高我们对细胞结构、功能及疾病机制的认识。
细胞生物学研究中的新技术与方法

细胞生物学研究中的新技术与方法细胞生物学是研究细胞结构、功能、发生和发展等方面的科学。
过去几十年间,随着科技的迅猛发展,细胞生物学的研究也取得了长足的进步。
新的技术与方法不断涌现,为细胞生物学领域的研究提供了更多的选择和工具。
本文将介绍一些在细胞生物学研究中常用的新技术与方法,并探讨它们的应用和意义。
一、单细胞测序技术单细胞测序技术是一种可以对单个细胞进行基因组和转录组测序的方法。
通过单细胞测序,可以揭示不同细胞之间的遗传和功能差异,为我们深入了解细胞的复杂性提供了契机。
这项技术在癌症研究、生殖细胞发育和免疫调节等领域具有重要意义。
以癌症研究为例,通过单细胞测序技术,研究人员可以分析肿瘤组织中不同细胞的基因组和转录组变化,揭示肿瘤细胞的异质性以及可能的耐药机制。
这有助于我们更好地理解肿瘤的发生发展,并为精准医疗提供理论基础。
二、蛋白质组学技术蛋白质组学技术是研究细胞中蛋白质组成和功能的方法。
蛋白质是细胞中最重要的功能分子,能够参与细胞的各种生物学过程,包括信号传导、代谢调控等。
蛋白质组学技术的发展为我们揭示蛋白质组份、相互作用与功能提供了重要手段。
例如,质谱法是一种常用的蛋白质组学技术,在蛋白质鉴定和定量中起到了关键作用。
利用质谱法,研究人员可以鉴定和定量细胞中的蛋白质,进而研究它们的功能和相互作用。
这有助于我们理解细胞中复杂的调控网络,揭示疾病发生机制,并发现新的治疗靶点。
三、CRISPR-Cas9基因编辑技术CRISPR-Cas9基因编辑技术是一种通过改变细胞基因组的方式,实现对特定基因的精准编辑。
相比传统的基因编辑方法,CRISPR-Cas9技术具有操作简便、高效准确的优势,已经成为细胞生物学研究中的重要工具。
通过CRISPR-Cas9技术,研究人员可以精确地切除、替换或添加目标基因,从而研究该基因在细胞功能中的作用。
此外,CRISPR-Cas9技术还可以用来建立疾病模型、筛选药物靶点等。
细胞学的研究方法和应用

细胞学的研究方法和应用细胞学是研究细胞结构、功能和化学成分的学科,是现代生命科学的基础学科之一。
细胞学研究成果对人类健康、疾病防治、生物工程、农业、环境保护等方面都有重要的应用价值。
本文将介绍细胞学常用的研究方法和应用。
一、细胞培养细胞培养是最常用的细胞学实验手段,利用体外培养技术维持细胞生长繁殖并进行多种实验。
细胞培养可以分为原代培养和细胞株培养。
原代培养是将从动物或植物组织中获得的细胞进行短期(一周内)的培养,以得到初代培养细胞。
而细胞株培养则是将初代培养细胞转移至培养皿中并长期培养,获得可供长期保存的细胞株。
通过细胞株培养,可以大规模生产目标蛋白、药物等生物制品。
二、荧光显微镜荧光显微镜是一种利用荧光染料使生物标本发出亮光的显微镜。
荧光显微镜可以用于研究细胞内蛋白质的分布和功能,生物分子的互动,细胞分裂和凋亡等。
例如,利用荧光染料标记细胞膜、内质网、线粒体等细胞组分,形成有别于其他细胞组分的荧光信号,以定位它们在细胞内的位置和形态。
荧光显微镜还可以实时观察细胞分裂过程中染色体的运动和结构变化,探究涉及细胞周期调控的分子机制。
三、细胞流式仪细胞流式仪是一种高效、精确的细胞分析仪器,可运用于多个领域,如细胞大小和复杂度的分析、单个细胞内表达量的测定、单个细胞的染色体分析等。
细胞流式仪能够快速高效地获取细胞的生理和形态信息,并且可以以单个细胞为单位进行分析。
它所产生的结果极其精确,为研究细胞的状态和变化提供了高效的工具。
四、蛋白质组学蛋白质组学是一种通过系统性地鉴定、分离、测定、分析、鉴定和功能注释蛋白质来全面认识生命活动的科学,是细胞学的关键发展方向之一。
蛋白质组学技术的应用范围极广,如研究人类疾病的分子机制,筛选治疗疾病的药物,生物制品的产生和提纯,食品安全等等。
五、基因编辑技术基因编辑技术也是近年来成为热门的研究手段,包括CRISPR/Cas9等多种技术。
这些技术可以删除、插入或替换细胞中特定的基因序列,实现基因组的改造。
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三、细胞融合
定义(cell fusion)两个或多个细胞融合成一个细胞的现象。
类型:自发型、人工型、
人工融合的条件:
a.灭活病毒仙台病毒
b.化学试剂PEG
c.电融合(低压聚集成串,高压脉冲融合)
步骤:异核体细胞→杂种细胞。
Exercises
人 鼠 细 胞 杂 交 实 验
细胞融合的应用----单克隆抗体技术
三、体外DNA扩增法 (PCR)
聚合酶链式反应(polymerase chain reaction,PCR)
链式反应? 方法: 1.反应液成分:PCR缓冲液、引物、dNTP、模板、水、
DNA聚合酶(Taq酶) PCR法优点:①倍增量大②反应时间短③灵敏度高 PCR进展:扩增长度:200~10Kbp ,方法增多。
1.差速离心法
原理:大小、形状分离
①1,000g,10分钟→细胞核或细胞。 ②8,000g,20分钟→线粒体、溶酶体、过 氧化物酶体。 ③15,000g,1小时→沉淀细胞膜。 ④100,000g,3小时→沉淀微粒体 ⑥150,000g →沉淀核糖体和病毒。
问题?
差速离心法分离不纯:某些慢沉降颗粒被裹到快沉降颗
→三胚层分化 外胚层成神经、表皮等。 中胚层发育为肌、骨等。 内胚层发育成消化道及肺的上皮等。
→组织→器官→系统→胚胎
①全能干细胞(totipotent stem cell):如受精卵、植物细
胞、动物初期卵裂细胞(人类八细胞期)能形成个体。 ②多能干细胞(pluripotent stem cell):如:胚胎干细胞、 能形成多种细胞和器官。 胚胎干细胞(embryo stem cell)指囊胚内细胞团, 成体干细胞几乎存在于所有组织如:骨髓、外周血、骨骼 肌、肝、胰、角膜、视网膜、牙髓等 ③单能干细胞:成体干细胞能,能形成少数几种细胞和组织。
a.离心法:按大小、密度离心分离。 b.吸附法:
材料粘附分离法:玻璃或塑料。 抗原抗体吸附分离法:抗原对抗体
c.流式细胞仪
流程:
荧光标记→分散细胞 →细胞单个通过→激光照射 →接受计算机识别
→充电→分选→收集
用途:
细 胞 群 类 型 、 细 胞 内 的 DNA 、 RNA、蛋白质的含量、 细胞的生命活动等
聚丙烯酰胺凝胶电泳
聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)分类:
普通PAGE、 SDS- PAGE、等电聚焦PAGE、双向PAGE。
①普通聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE) 原理:丙烯酰胺单体用甲叉丙烯酰胺在催化剂(过硫酸铵、
TEMED)交链成筛状物。
特点:复杂、贵、分离范围小、加样量大、分辨率高等。
②SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳 原理:十二烷基硫酸钠(SDS )在还原剂二硫苏糖醇(DTT)
粒的沉降块中。
处理方法:将产物重悬→反复离心→可纯化。
2.速度沉降法 (区带离心法)
优点:不易扩散、分离效果好 方法:
管预铺密度梯度溶液(通常;蔗糖 5%~20%) →细胞匀浆液溶于稀盐溶 液→铺薄层→离心→细胞器呈区带 移动。
3.平衡沉降法
问题?
原理:密度与浮力分离 方法:氯化铯溶液与细胞匀浆混合→超
柱 层 析 分 离 原 理
柱层析分类:所选择的充填颗粒
离子交换层析、 凝胶过滤层析 亲和性层析、 疏水性层析 例1:离子交换层析:充填颗粒带有正电或负电。
例2:凝胶过滤层析:层析柱装满多孔性的凝胶颗粒。
三、蛋白质电泳法 原理:带电荷的分子在电场中的运动。
电泳分类:根据支持物分类:
琼脂糖凝胶电泳
离体时间与改变成正比。应该注意!
细胞培养
培养条件:无菌、营养物、刺激因子、温度、PH值等。
分类:原代培养、传代培养。 (一)原代培养: 狭义定义:培养1代细胞;广义定义:培养1~10代细胞。
过程:
①取材,年龄与材料 ②剪碎与过滤
③消化(胰蛋白酶、胶原酶)。
④后续处理(离心、清洗、接种、细胞分选)
生长状况:贴壁现象、接触抑制现象。
帮助下,SDS与蛋白质肽链结合成梭状,SDS的负电荷掩盖了 蛋白质的电荷,
梭状物只与肽链的分子量有关。
问题?
③等电聚焦电泳 原理:
蛋白质的氨基酸残基解离与是等电点(PI) 两性电解质(ampholyte)在电场中展开成PH梯度, 蛋白质在电场位置:PH> PI, 带正; PH< PI, 带负; PH= PI,不带电 。
(二)分类:
分类1:全能干细胞、多能干细胞、单能干细胞。 分类2:胚胎干细胞、成体干细胞 。
胚胎发育过程简介
精子与卵细胞结合→受精卵→桑椹胚(8-16细胞团)
→囊胚(32-64中空细胞团)
囊胚外层为滋养层细胞→胎盘 囊胚腔→羊膜腔
内细胞团→原肠胚(两胚层)→
囊胚→原肠胚(两胚层)→中胚层形成
优缺:射线灵敏度很高,? 定位检测法:放射性自显影法。
放射性自显影法:
步骤:
细胞脉冲标记→清洗未标记的同位素→制片→涂核子乳胶 →感光→显影→定影→根据银颗粒位置和数量推出细胞中标记 分子的分布和数量。
四、检测活细胞内部分子状态的方法
分类:微电极法、膜片钳记录法 微电极法:是尖端直径<1um的玻璃电极,刺入
1975年英国学者Milstein和Kohler发明。
方法:小鼠骨髓瘤细胞与小鼠B淋巴细胞(脾细胞免疫
过)用聚乙二醇融合。
融合后的杂交瘤细胞具有双亲特性:
一方面可分泌抗绵羊红细胞的抗体, 另一方面像瘤细胞一样,
无限增殖、分泌大量抗体。
四、干细胞培养
(一)干细胞定义:能长期的自我更新并能产生至
少一种高度分化的子代细胞的细胞。
10代内培养危机 细胞系的诞生
细胞系特点:遗传物质不变,有接触抑制现象,细胞特点 不变:如成纤维细胞仍分泌胶原。
40~50内的培养危机 连续细胞系(细胞株)的诞生, 或直接从肿瘤组织中培养出
细胞株特点:遗传物质改变 (染色体有亚二倍体等畸变), 无接触抑制现象,细胞特点改变:细胞已经转化 ★细胞克隆
一代细胞生长过程:贴壁期、潜伏期、指数增长期、平台期
类型:悬浮细胞,贴壁型。 形态:梭型、上皮型、球型、游走型。
生长状况:贴壁现象? 接触抑制现象? 形态:梭型、上皮型、球型、游走型?
生长状况:贴壁现象? 接触抑制现象? 形态:梭型、上皮型、球型、游走型?
(二)传代培养:
例:传代培养贴壁细胞和悬浮细胞传代的操作步骤
☆该法是唯一能即时研究膜单一蛋白分子功能的方法。
六、向细胞内导入分子的方法
分类:显微注射法、 电穿孔法、 脂质体 DEAE葡聚糖转染法、磷酸钙转染法。
①显微注射法:如:将DNA等注入ES细胞
①显微注射法 ②电穿孔法 ③脂质体
④电流
第五节 细胞内功能基因组学研究技术
引言:分子生物学技术越来越重要。主要对DNA的技术 方法分类:
内切酶切口分类:粘性末端或平头末端
①粘性末端切口产生5’端:EcoR Ⅰ ②粘性末端切口产生3’端:Kpn I ③平头末端切口:EcoR V
二、DNA电泳分离法
①琼脂糖凝胶电泳:操作简单,分辨率低,分离片断 大;琼脂糖浓度从0.6%~2.0%,分离DNA片段从0.1kb~ 20kb。 ②丙烯酰胺凝胶电泳:操作复杂,分辨率高,可分离 仅相差一个碱基的DNA片段,丙烯酰胺浓度5%~20%, 分离DNA500~10bp。
速和长时间离心→氯化铯溶液形成密度梯 度→细胞器向等密度移动形成区带→分离
优缺点:分离纯度,但仪器和费用贵。
比较差速离心法、速度沉降法、平衡沉降法的优缺点?
二、层析法分离蛋白质
原理:由于不同的组分在两种液面中的分配不同,而随着
液体的流动彼此分离的现象。
类型:以支持物的类型分
纸层析:(滤纸) 薄层层析:(纤维素或硅胶) 例:糖类、氨基酸分离等小分子物质 柱层析:(玻璃、塑料、不锈钢颗粒) 例: 分离蛋白质、糖类、核酸等大分子物质。
2.反应过程:
①模板DNA变性,95℃, 1’。 ②模板与引物复性,30~60 ℃ ③DNA合成 延伸、72℃ ④循环①②③步骤。35循环 ⑤反应总延ry)的定义:将一个基因组或表达基因组 的全部基因分散后插入载体中形成的克隆群称该基因 组的DNA或cDNA。第二节 细胞的分离和培养
一、细胞分选(cell sorting )
步骤:组织取材→细胞总分离→细胞类型分离
①组织取材:年龄小容易,肾、肌肉、肿瘤等。 ②细胞总分离: 剪碎组织→酶的消化(胰蛋白酶、胶原酶、EDTA)→过 滤→离心→悬浮→细胞悬液。
③细胞类型分离法:
分类:离心法、吸附法、流式细胞仪法、 激光捕捉显微切割技术。的作用:已知或未知基因的获得 、染色体
步移法作图、物种基因的档案等。
分子生物学名词:
酶切、连接、载体、宿主、克隆、转化、转染、cDNA cDNA(complementary DNA):在逆转录酶作用下以mRND为模板转
录的DNA。
宿主:能使重组DNA复制繁殖的生命体。
如细菌(大肠杆菌、DH5α)、酵母、昆虫细胞、哺育类细胞 (成纤维细胞)。
d.激光捕捉显微切割技术
原理:显微镜操作下,透明薄塑膜覆盖组织片→激光 精确切割→激光捕捉→溶膜获细胞。 优缺点:精密定位细胞,粗步、量少。
二、细胞培养(cell culture)
细胞培养≈组织培养 优点: ①细胞处理条件能严格控制,体内难。 ②细胞可大量、长期提供。 缺点:
离体后细胞失去与体液和神经体液的调节环境, 细胞间的相互作用消失。细胞的形态、活动和基因会 改变。
(三)干细胞培养实验方法:
①干细胞分离: ②干细胞培养: 培养液:DMEM、TCM-199、F-12等。 附加因子: 促生长因子 如FGF;抑制分化因子 如:LIF 补充方法: a.用滋养层细胞提供:有成纤维细胞,射线处理。 b.用滋养层细胞提取液。