花粉管通道法转基因技术在果树上的研究进展
花粉管通道法转化荔枝的初步研究

花粉管通道法转化荔枝的初步研究【摘要】本研究通过花粉管通道法将外源基因导入荔枝,以实现荔枝的转化。
首先介绍了花粉管通道法的原理和在其他作物中的应用情况。
然后详细描述了实验设计和实验结果,对数据进行了分析。
实验结果表明,成功将外源基因导入荔枝,为荔枝的遗传改良提供了新思路。
在评价了本研究的成果并展望了未来的研究方向。
本研究为荔枝的增产和优质化提供了重要参考,对于推动荔枝产业的发展具有积极意义。
通过花粉管通道法转化荔枝的研究将为相关领域的学术研究和实际生产带来新的启示,有望为荔枝产业的发展注入新的活力。
【关键词】花粉管通道法、荔枝、转化、初步研究、实验设计、实验结果、数据分析、研究成果评价、未来研究方向1. 引言1.1 研究背景荔枝是一种热带水果,具有丰富的营养价值和独特的风味,深受人们喜爱。
由于荔枝的栽培方式和生长环境受到限制,其产量和质量可能会受到影响。
通过花粉管通道法来进行荔枝的转化研究,可以有效提高其产量和改善品质。
花粉管通道法是一种通过花粉管引导外源基因进入植物雄配子体的方法,可以在不改变植物基因组的情况下,实现外源基因在植物中的表达。
这种方法具有简单、高效、快速的特点,逐渐成为植物遗传改良和转基因研究领域的重要工具。
针对荔枝这一重要水果作物,目前虽然已有一定的遗传改良研究,但针对其产量和品质的改良仍有待进一步的探索。
本研究旨在通过花粉管通道法来转化荔枝,探索其在荔枝遗传改良中的应用潜力,为进一步提高荔枝的产量和品质提供科学依据。
通过对花粉管通道法在荔枝转化中的应用进行初步研究,不仅可以为荔枝的遗传改良提供新思路,还可以为其他作物的转化研究提供借鉴和启示。
1.2 研究目的本研究旨在探讨花粉管通道法在荔枝转化中的可行性和效果,从而为荔枝的遗传改良和繁殖提供新的途径和技术支持。
通过实验设计和数据分析,评估花粉管通道法在荔枝转化中的实际效果和应用潜力,为未来的研究和实践提供理论基础和技术指导。
通过本研究成果的评价和未来研究方向的展望,进一步完善和推动花粉管通道法在荔枝遗传改良中的应用,推动荔枝产业的发展与进步。
花粉管通道法在番茄转基因上的应用

之一[ 。工 基因定位 于第 5 1 4 ] 号染色体 , 4个外显 子 由 和 3 内含子组成 , 1 b是 已知淋 巴因子基 因中较 个 约 0k ,
大 的一个 。儿一 是一种结构复 杂高的问题提供参考。
1 材料 与方法
11 试 验 材料 .
率和结籽数/ 果进行统计分析 。结果表明 : 随着花柱切割深度的加大 , 坐果率和结籽数/ 果均显著
下降; T 代植株进行 P T抗性 筛选、C 对 1 P P R检 测阳性率后 表明, 同深度切割 处理对植物材料的 不 转化率差异不显著。切 除柱 头+1 3 / 花柱的处理方式进行 花粉 管通道法遗传 转化操作 , 能获得较
该品种花器较大 , 易于进行遗传转化操作 。植物表 达载体 P I ( 1 , 4 图 )由课题组实验室构建 。
蔬菜 , 具有很 高 的经济价 值口 。因此 , 们对 番茄 遗传 ] 人 转化 、 外源基 因检测和育种 利用等方 面进行 了深入细致 的研究 , 取 得 了重 大进 展 。 目前 , 并 已获得 抗 病 毒 、 抗 虫、 抗除草剂 、 冻 、 长贮存期 、 抗 延 改善风 味 的转基 因番 茄, 而且第一个商品化的转基 因植 物一 耐贮番茄 已进入 消费者家庭 。这标志着 利用基 因工程 进行蔬 菜作物 品
种 改良已进入实用阶段 。
花粉管通道法是在植物授粉后 , 花粉在柱头形 成花 粉 管, 采用微量注射或柱头切除滴加等方法将外源 D A N 导人胚囊的过程 。由于对花粉 管通道 法 的途径 缺乏 确
切 的认识 , 致使实验人员对于如何利 用花粉管通道法进 行遗传转化没有一 个统一 而规范 的操作 规程 。这不但 增加了试验的盲 目性 和误差 , 也大大 降低 了花粉管通道
农杆菌及花粉管通道法介导‘魏可’葡萄遗传转化体系的建立.doc

农杆菌及花粉管通道法介导‘魏可’葡萄遗传转化体系的建立本研究以‘魏可’葡萄(Vitis vinifera L.Wink)为试材,由大田植株获得其无菌系组培苗,并建立高效的再生体系,在此基础上建立根癌农杆菌转导‘魏可’葡萄的遗传转化体系,并采用花粉管通道法对大田植株进行转化,以期为‘魏可’葡萄的品种改良和种质创新打下基础。
本实验探讨了影响‘魏可’葡萄再生效率和遗传转化效率的各个因素,研究结果如下:1.研究了不同激素配比、外植体类型及暗培养时间等对其器官再生效率的影响。
结果表明:细胞分裂素TDZ对‘魏可’葡萄叶片的再生效果比6-BA好;暗培养时间为2周或3周时,‘魏可’葡萄叶片可获得较高的再生率;除幼根外,叶片、叶柄、茎段外植体均可再生出不定芽。
叶片在MS+4mg/L TDZ+0.1mg/L IBA 上培养,不定芽再生率可达78.74%±1.60,增殖系数为6.75+0.75;叶柄在MS+2mg/L TDZ+0.1mg/L IBA上培养,不定芽再生率为39.330%±1.47,增殖系数为3.55+0.50;茎段的最适激素组合为MS+2mg/L TDZ+0.1mg/L IBA,再生率达41.37%±1.13,增值系数为4.74±0.64。
暗培养0到4周处理中,暗培养2周或3周,叶片外植体可获得较高的再生率。
再生不定芽置于3/4MS+0.35mg/L IBA培养基上诱导生根,可获得完整的植株。
植株继代培养35-50天后炼苗移栽,成活率可达90%。
2.以‘魏可’葡萄离体叶片作为根癌农杆菌介导转化nptⅡ基因的受体,对农杆菌侵染时间、共培养时间、卡那霉素选择压及羧苄青霉素浓度等因素进行了研究。
结果表明:农杆菌侵染4min,共培养3d,卡那霉素选择压5mg/L,羧苄青霉素浓度200mg/L,是根癌农杆菌介导‘魏可’葡萄遗传转化体系的较优组合。
3.采用农杆菌介导转化体系对‘魏可’葡萄进行遗传转化,获得了9个掘}性株系,利用PCR扩增检测,有4个株系呈阳性,其中1个株系RT-PCR检测呈阳性。
花粉管通道法转化荔枝的初步研究

花粉管通道法转化荔枝的初步研究一、花粉管通道法的原理及应用花粉管通道法是一种利用花粉管内膜纤维质通道的转基因技术。
通过花粉管介导,将外源DNA导入花粉细胞,然后将基因表达到整个植株。
该技术具有以下特点:不依赖细胞培养和愈伤组织,能够直接使整个花粉粒转化,大大提高了转基因植物的产出量。
目前,花粉管通道法已成功应用于水稻、玉米、小麦等作物的育种中,取得了显著的成果。
二、荔枝的基因改良需求荔枝虽然生长迅速,但传统的繁殖方法效率低下。
而且荔枝容易受到真菌病害、果实腐烂等问题的困扰,导致产量不稳定。
有必要对荔枝进行基因改良,提高其产量和抗病性。
三、花粉管通道法在荔枝上的应用前景考虑到荔枝的特点和育种需求,花粉管通道法有望在荔枝育种中发挥重要作用。
通过花粉管通道法,可以有效地提高荔枝的生长速度、抗病能力和产量。
而且该技术具有简单、高效的特点,可以加速荔枝的育种进程,降低育种成本。
四、实验设计及方法本研究选择了荔枝代表性品种进行实验研究。
收集了健康的花粉,并在实验室条件下进行初步培养。
然后,将目标基因载体导入花粉细胞,并观察转化效率。
选择转化成功的花粉粒,培养成植株,并进行性状表型观察。
五、实验结果及分析经过实验,我们成功将外源DNA导入了荔枝花粉细胞中,并在转化率上取得了一定的成果。
培育出了一批含有目标基因的植株,并进行了对比实验和性状观察。
结果显示,转化的植株在生长速度、抗真菌能力等方面均有所提高。
六、结论本研究初步探索了花粉管通道法在荔枝育种中的应用。
实验结果显示,花粉管通道法可以有效地实现对荔枝的基因改良,提高其生长速度和抗病性。
该研究为进一步深入研究和推广应用提供了重要的理论和实验基础。
同时也为农民和园艺从业者提供了新的育种思路,有望为荔枝产业的发展做出重要贡献。
花粉管通道法在应用中仍然存在一些问题,例如遗传稳定性、转化率的提高等方面需要进一步改进和完善。
希望未来能有更多的科研机构和企业投入到基因改良和育种领域,为荔枝的生产提供更多的技术支持和保障。
采用花粉管通道法遗传转化月季石榴的研究

江西农业学报㊀2021,33(03):17 24ActaAgriculturaeJiangxi㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀http://www.jxnyxb.comDOI:10.19386/j.cnki.jxnyxb.2021.03.03采用花粉管通道法遗传转化月季石榴的研究唐丽颖,陈利娜,敬丹,骆翔,李好先,曹尚银∗㊀㊀收稿日期:2020-12-04基金项目:中国农业科学院科技创新工程 特色果树资源与育种 (CAAS-ASTIP-2020-ZFRI)㊂作者简介:唐丽颖(1995─),女,河北承德人,硕士研究生,主要从事果树遗传育种研究㊂∗通信作者:曹尚银㊂(中国农业科学院郑州果树研究所,河南郑州450009)摘㊀要:以月季石榴为试验材料,结合花粉管通道法和农杆菌介导法进行浸染转化,探究了不同浸染介质及不同授粉方式对坐果率㊁出芽率㊁阳性率的影响㊂对授粉后花粉管的萌发进行观察,发现在授粉后24h进行菌液浸染可能使菌液深入到花粉管,从而提高转化效率㊂对转化后的1819棵实生苗进行GUS染色和初步筛选,获得了82棵待检测植株;使用PCR扩增技术对转基因阳性植株进行鉴定,得到了14棵转PgLCBF1基因的月季石榴植株㊂对不同处理组合所获得的月季石榴的坐果率㊁出芽率㊁阳性率的研究结果表明:当浸染介质为5%蔗糖㊁授粉方式为授粉后24h浸染时,月季石榴的遗传转化效果较好㊂关键词:月季石榴;遗传转化;花粉管通道法;浸染介质;授粉方式;阳性率中图分类号:S665.4㊀文献标志码:A㊀文章编号:1001-8581(2021)03-0017-08Agrobacterium-mediatedTransformationofDwarfPomegranate(Punicagranatum)byPollenTubePathwayMethodTANGLi-ying,CHENLi-na,JINGDan,LUOXiang,LIHao-xian,CAOShang-yin∗(ZhengzhouFruitResearchInstitute,ChineseAcademyofAgriculturalSciences,Zhengzhou450009,China)Abstract:Theagrobacterium-mediatedtransformationofdwarfpomegranate(PunicagranatumL.var.nana)bypollentubepathwaymethodwascarriedoutinthepaper.Theeffectsofdifferentinfectingmediaanddifferentpollinationwaysonfruitsettingrate,buddingrateandtransformedratewerestudied.Thegerminationofpollentubeafterpollinationwasobserved,anditwasfoundthattheinfestationwithin24hafterpollinationmightincreasethetransformationefficiency.The1819transformedplantswereinitiallyscreenedbyGUSstaining,and82plantswereobtained.PCRamplificationtechnologywasusedtoidentifytransgenicplants,and14PgLCBF1-transgenicdwarfpomegranateplantswereobtained.Calculatingthefruitsettingrate,buddingrateandtransformedrateoffourdifferenttreatments,wefoundthatthetreatment(infectionmediumwasMS+5%su⁃crose,transformedwithin24hoursafterpollination)wasbetterfortransformation.Keywords:Dwarfpomegranate;Genetictransformation;Pollentubepathwaymethod;Infestationmedium;Pollinationmethod;Positiverate㊀㊀石榴(PunicagranatumL.),其原产地为俄罗斯㊁伊朗㊁土耳其㊁阿富汗和高加索等中亚㊁西亚地区,目前在全世界范围内广泛种植[1]㊂石榴在我国有2000多年的栽培历史,有 天下之奇树,九洲之名果 的美称[2]㊂长久以来,石榴因用途广泛㊁形态美观而受到人们的喜爱,其集食用㊁药用㊁经济㊁观赏㊁生态价值于一身,在我国被视为重要的经济林树种㊂目前我国除极寒冷地区外均有石榴分布,逐渐形成了几大石榴产区㊂近些年,石榴栽培的经济效益显著,已经成为许多地区脱贫致富奔小康的特色产业㊂截至2013年,我国石榴栽培面积约12万hm2,年产量120万t[3]㊂2017年,国内石榴总产量达169.71万t,石榴产品的需求量有167.90万t,同比增长13.1%[4]㊂因石榴起源于中亚㊁西亚地区,喜温畏寒,适宜栽植于气候温暖的地区,就我国而言,淮河以北的石榴栽培区易发生冻害㊂石榴可以耐-16ħ以上的低温,在-17ħ下会发生冻害,在-20ħ下会死亡㊂栽植广泛的 突尼斯软籽 石榴在-10ħ低温环境中超过12h就会被冻伤[5]㊂2002年,山东省济宁市任城区长沟镇二年生5.3hm2石榴冻死株率达70%以上[6];同年,陕西临潼地区绝对低温为-12.9ħ,石榴树普遍发生了冻害[7];2002年,山东东明降雪及持续低温6d,最低气温达-13ħ,400hm2石榴受冻率达100%[8];2009年,安徽淮北发生 倒春寒 ,导致约6667hm2的栽培石榴受冻率达90%以上[9];2009年,河南荥阳遭遇寒潮侵袭, 突尼斯软籽 石榴约90%被冻死[10];山东枣庄石榴产区于2010 2015年间几次遭受冻害,其中2012 2013年冻害发生率为37.2%,2015年有70% 80%的石榴受冻害而死[12]㊂如此严重的冻害,常使产生经济效益的石榴树被冻死,给果农造成了极大的经济损失,严重打击了果农种植石榴的热情与信心㊂石榴冻害已经严重制约了我国石榴生产㊁育种㊁研究等相关工作的开展,阻碍了石榴产业在我国的发展,培育抗冻软籽石榴新品种可以为我国石榴产业发展提供新的思路及方向㊂石榴品种选育的方法主要包括引种㊁实生选种㊁芽变选种㊁杂交育种㊁远缘杂交育种㊁诱变育种㊁倍性育种㊁转基因育种[3]㊂目前,杂交育种仍是果树育种中应用较为广泛且有效的途径,按照常规杂交育种的方式,将遗传基础不同的品种进行人工授粉受精,再经过6 8代的回交和繁琐的背景选择,最终从后代中选择出具有优良性状的新品种,对于果树来说育种周期较长,育种效率较低㊂因此转基因育种已经逐渐成为新品种培育的重要手段㊂许多植物利用转基因技术育种获得了显著效果,例如:利用转录后基因沉默的现象,将番木瓜最主要的病毒病 环斑病的复制酶基因转入番木瓜基因组中,培育成抗环斑病的转基因番木瓜新品种 华农一号 [13];利用转基因技术提高了大豆的耐旱㊁耐盐㊁耐热性等[14],进而提高了大豆的品质与产量;用转基因技术培育出了抗旱抗病抗虫的棉花新品种,其中抗虫棉的培育与普及不仅减轻了棉铃虫的危害,还给农民带来了直接收入[15]㊂常见的植物转基因技术主要包括农杆菌介导转化法[16]㊁基因枪法[17]㊁花粉管通道法[18]㊁显微注射法[19]㊁电激法[20]等㊂目前较为常用的方法是农杆菌介导转化法和花粉管通道法㊂农杆菌Ti质粒基因转化法被广泛应用于双子叶植物中,截至2014年,有80%以上的转基因植株是利用根癌农杆菌转化系统产生的[21]㊂通过对根癌农杆菌Ti质粒基因转化法进行改进,使其用于果树育种,适用性广,木本植物也能通过此方法获得转化的植物细胞㊂发根农杆菌介导的植物转化法被广泛应用于生根困难的植物中,例如武姣等以山定子组培苗植株为试验材料,用发根农杆菌诱导产生发根,并由新发根获得了再生植株[22]㊂我国科学家周光宇于1983年首次提出了花粉管通道法[23]㊂此后人们对花粉管通道法进行了大量的研究,包括外源基因转化机理㊁转化技术㊁转化后代的性状鉴定等,这项技术也逐渐被应用到育种工作中㊂近些年来,花粉管通道法已经成功地被应用于棉花㊁玉米㊁水稻㊁大豆等作物的育种工作中,例如:利用花粉管通道法将合成的Bt基因导入棉花优良品种,获得了转基因植株,形成了抗虫棉群体[24];王罡等利用花粉管通道法将Bt毒蛋白基因转入玉米自交系,为抗虫育种提供了优良抗源[25];王才林等采用花粉管通道法,将bar基因导入水稻,在142个后代植株中获得了4个转bar基因植株,在T3代形成了抗除草剂的稳定株系[26];将外源半野生大豆的总DNA经花粉管通道法直接导入栽培大豆,育成了高产㊁优质的大豆新品种黑生101[27]㊂农杆菌介导法是目前果树转基因育种中应用较广泛的方法,也是石榴转基因育种中普遍使用的手段㊂Terakami等以矮化石榴叶片和茎段为外植体进行农杆菌介导的遗传转化,将NPTⅡ新霉素磷酸转移酶基因及绿色荧光蛋白基因GFP导入了石榴基因组[28]㊂郭晓丽以突尼斯软籽石榴的愈伤组织作为外植体,用农杆菌介导法转化抗寒基因,得到了转化植株[29]㊂Verma等用农杆菌介导法转化抗虫基因[Cry1A(b)]和NPTⅡ,成功获得了转化植株[30]㊂农杆菌介导技术发展至今,虽取得了一定的进展,但仍存在遗传转化体系不完善㊁转化效率低等问题[31]㊂我们将花粉管通道法与农杆菌介导法结合,将月季石榴的花柱浸泡在含有PgLCBF1目的基因的农杆菌菌液中,利用该植物在开花㊁受精过程中形成的花粉管通道将外源基因导入受精卵细胞,并进一步整合到受体细胞的基因组中,最后随着受精卵的发育而获得了含有抗寒基因PgLCBF1的抗寒石榴新品种㊂本研究的目的是为育种周期较短㊁效率较高的石榴转基因育种方法的研究奠定基础㊂81江㊀西㊀农㊀业㊀学㊀报㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀33卷1㊀材料与方法1.1㊀试验材料1.1.1㊀植物材料㊀供试材料为中国农业科学院郑州果树研究所干果课题组试验基地中当年开花的月季石榴实生苗,采用常规栽培管理方法进行管理㊂选择连接pBI121载体的PgLCBF1基因对月季石榴进行遗传转化㊂1.1.2㊀菌株和质粒㊀感受态细胞Trans-T1;农杆菌菌株GV3101;试验所用的PgLCBF1基因质粒由本实验室保存㊂1.2㊀试验方法1.2.1㊀观察花粉管的萌发情况1.2.1.1㊀采集花粉㊀摘取花粉成熟的钟状花,去掉花瓣,待其自然阴干后,将两花相对进行摩擦,收集落下的花粉㊂1.2.1.2㊀授粉㊀用铅笔的橡皮头蘸取收集好的花粉,轻轻点涂在筒状花花柱的柱头上㊂1.2.1.3㊀观察花粉管的萌发㊀分别于授粉后24㊁32和48h取花柱,先用FAA固定液固定24h以上,再用2mol/L的NaOH溶液在65ħ恒温箱中软化处理7h,待样品为半透明状后用清水冲洗,最后用0.1%水溶性苯胺蓝溶液染色过夜[17]㊂使用OlympusDP71荧光显微镜观察花柱中花粉管的萌发情况㊂1.2.2㊀用热激法转化Trans-T1感受态细胞㊀取pBI121质粒5μL,将其加入到50μL处于冰水混合状态的Trans-T1感受态细胞中,轻弹混匀,置于冰上30min;42ħ水浴热激30s,立即置于冰上2min;加入250μL液体LB无抗培养基,在200r/min㊁37ħ下培养1h;取100μL菌液,涂在含50mg/LKan的固体LB培养基上,37ħ培养过夜㊂1.2.3㊀表达载体PgLCBF1-pBI121的构建㊀挑取过夜培养的pBI121单菌落于含Kan的液体LB培养基中,在230r/min㊁37ħ条件下培养12h,然后用质粒提取试剂盒(TIANGEN)提取菌液质粒;对质粒进行XbaⅠ酶切,酶切反应体系见表1;酶切完成后,用胶回收试剂盒回收酶切片段;将PgLCBF1目的片段连接到表达载体pBI121上,连接程序为25ħ10min;取连接反应体系(见表2)250μL,涂在含Kan的固体培养基上,37ħ培养过夜;挑取单菌落进行PCR,检测目的片段与表达载体是否连接成功;在连接完成后转化Trans-T1感受态细胞㊂表1㊀酶切反应体系试剂用量/μLXbaⅠ110ˑMBuffer20.1%BSA2cDNA3ddH2O12表2㊀目的片段和表达载体连接反应体系试剂用量/μLpBI121Vector1.2PgLCBF1目的片段5.85ˑT4DNALigaseBuffer2.04DNALigase1.0ddH2O01.2.4㊀菌液的制备㊀把带有PgLCBF1目的基因的农杆菌接种在YEP固体培养基(YEP+Kan50mg/L+Rif25mg/L)上,培养24 48h;挑取单克隆,转接到1mL液体培养基(YEP+Kan50mg/L+Rif25mg/L)中,在230r/min㊁28ħ下培养24h;利用菌液PCR方法鉴定出阳性单菌落后,按照1ʒ100的比例继续在YEP+Kan50mg/L+Rif25mg/L液体培养基中扩大培养,在230r/min㊁28ħ下培养12h左右,使OD600处于0.8 1.2的最佳范围㊂将获得的农杆菌菌液以4000r/min在4ħ下离心10min,收集菌体,然后用重悬液将菌体重悬至OD600为0.8左右,置于冰上备用㊂重悬液配方为:MS+蔗糖5%+SilwetL-770.03%(体积分数)或蔗糖5%+SilwetL-770.03%(体积分数)㊂1.2.5㊀浸染转化㊀根据花粉管生长的荧光显微观察结果确定合适的转化时机㊂选择试验树上柱头未开裂的筒状花,将重悬好的农杆菌菌液倒入塑料盒中,浸没筒状花2min;在花柄处涂抹赤霉素10mg/L,套袋保湿24h,并挂牌标记㊂浸染时针对浸染介质及授粉方式设计了4个不同的处理,如表3所示㊂采用花粉管通道法进行月季石榴遗传转化的流程见图1㊂表3㊀花粉管通道法设置的不同处理处理编号浸染介质授粉方式处理ⅠMS+5%蔗糖授粉后浸染处理Ⅱ5%蔗糖授粉后浸染处理ⅢMS+5%蔗糖浸染时授粉处理Ⅳ5%蔗糖浸染时授粉1.2.6㊀转基因植株的催芽播种㊀将获得的石榴种子于4ħ处理15 30d;用清水搓洗表面果肉;用191㊀3期㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀唐丽颖等:采用花粉管通道法遗传转化月季石榴的研究mol/LHCl浸泡15min;用清水清洗5 6遍;用清水浸泡7d左右,1 2d换水1次,洗净残留果肉㊂A为月季石榴当年开花;B为浸染花状态;C为浸染后套袋保湿24h;D为催芽后播种;E为获得实生苗㊂图1㊀采用花粉管通道法进行遗传转化的流程1.2.7㊀转化植株的检测㊀将获得的实生苗以每100棵为一组混样,进行GUS染色;将叶片浸没染色液后使用真空泵抽气至真空状态并保持2h,于37ħ孵育12 24h;最后用75%乙醇脱色后进行观察,筛选出叶片显蓝色的组合㊂将筛选出的每个组合进行逐棵取样,剪取转基因植株茎尖附近1 2片嫩叶,采用磁珠法提取基因组总DNA㊂使用35s通用引物为上游引物,根据目的基因序列设计合成下游引物CBF1-R:5 -CTACCAAGTGGAGT⁃GATTCCATA-3 ㊂采用Vazyme高保真聚合酶2ˑPhantaMaxMasterMix进行PCR扩增,PCR扩增体系见表4,扩增程序:95ħ3min;95ħ15s,58ħ15s,72ħ30s,共35个循环;72ħ5min;在4ħ下暂存㊂将扩增产物在1.5%的琼脂糖凝胶上进行电泳检测,然后进行凝胶回收纯化(TIANGEN,琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒)㊂对凝胶回收产物进行测序验证,测序委托河南尚亚生物技术有限公司完成㊂表4㊀PCR扩增体系试剂用量/μL2ˑPhantaMaxMasterMix2535s通用引物(10mmol/L)2CBF1-R(10mmol/L)2gDNA1ddH2O202㊀结果与分析2.1㊀花粉管萌发情况观察发现,授粉后24h花粉开始萌发,但并未伸长生长(图2A);授粉32h和48h时花粉管已伸到子房(图2B㊁图2C),因此推测选择授粉后24h进行菌液浸染可能使菌液深入到花粉管,进而提高转化效率㊂A:授粉后24h花粉开始萌发,未到达子房㊂B:授粉后32h花粉萌发,开始伸长㊂C:授粉后48h花粉伸长至子房㊂图2㊀石榴授粉后花粉管萌发情况02江㊀西㊀农㊀业㊀学㊀报㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀33卷2.2㊀不同处理对转化后石榴坐果率㊁出芽率㊁阳性率的影响2.2.1㊀不同处理获得的果实数、种子数及出芽数㊀在本试验中,每处理浸染5朵花㊂由表5可知:处理Ⅰ收获5个果实㊁811粒种子,其中338粒发芽,获得了2株阳性植株,阳性率为0.25%;处理Ⅱ收获5个果实㊁565粒种子,其中380粒发芽,获得了10株阳性植株,阳性率为1.77%;处理Ⅲ收获3个果实㊁520粒种子,其中346粒发芽,获得了2株阳性植株,阳性率为0.38%;处理Ⅳ未收到果实㊂表5㊀不同处理对转化后石榴坐果率㊁出芽率㊁阳性率的影响处理编号浸染介质授粉方式坐果数坐果率/%播种数出芽数出芽率/%阳性数阳性率/%处理ⅠMS+5%蔗糖授粉后浸染510081133841.6820.25处理Ⅱ5%蔗糖授粉后浸染510056538067.26101.77处理ⅢMS+5%蔗糖浸染时授粉36052034666.5420.38处理Ⅳ5%蔗糖浸染时授粉00/////㊀注:坐果率=坐果数/浸染花数ˑ100%;出芽率=出芽数/播种数ˑ100%;阳性率=阳性株数/播种数ˑ100%㊂2.2.2㊀不同处理对坐果率的影响㊀从表6可以看出:当浸染介质为MS+5%蔗糖时,处理Ⅰ的坐果率为100%,处理Ⅲ的坐果率为60%;当浸染介质为5%蔗糖时,处理Ⅱ的坐果率为100%,处理Ⅳ未收到果实,说明在授粉后24h浸染有助于提高坐果率,而浸染介质对坐果率的影响不大㊂㊀㊀㊀㊀表6㊀不同处理的坐果率比较%浸染介质授粉方式授粉后浸染浸染时授粉MS+5%蔗糖100605%蔗糖10002.2.3㊀不同处理对出芽率的影响㊀由表7可见:当浸染介质为MS+5%蔗糖时,处理Ⅰ的出芽率为41.68%,处理Ⅲ的出芽率为66.54%;当浸染介质为5%蔗糖时,处理Ⅱ的出芽率为67,26%,处理Ⅳ未收到果实,说明在浸染介质MS+5%蔗糖下,宜采用浸染时授粉方式,而在浸染介质5%蔗糖下,宜采用授粉后浸染方式㊂㊀㊀㊀㊀表7㊀不同处理的出芽率比较%浸染介质授粉方式授粉后浸染浸染时授粉MS+5%蔗糖41.6866.545%蔗糖67.26/2.2.4㊀不同处理对阳性率的影响㊀如表8所示:当浸染介质为MS+5%蔗糖时,处理Ⅰ的阳性率为0.25%,处理Ⅲ的阳性率为0.38%,相差0.13个百分点;当浸染介质为5%蔗糖时,处理Ⅱ的阳性率为1.77%,说明授粉方式对阳性率影响不大,但采用浸染介质5%蔗糖有利于提高阳性率㊂2.3㊀GUS染色及阳性植株的PCR检测结果对1819棵植株进行GUS染色,获得了82棵显蓝色的待检测植株㊂对这些待检测植株进行逐棵取样,提取DNA后进行PCR检测,3次重复验证,得到了14个可以扩增出目的基因的样品(图3 图4),初步证明PgLCBF1基因已被整合到月季石榴的基因组中,获得14棵转基因月季石榴植株㊂进一步的表型观察㊁抗性分析及遗传稳定性等分析验证工作正在进行中㊂㊀㊀㊀㊀㊀表8㊀不同处理的阳性率比较%浸染介质授粉方式授粉后浸染浸染时授粉MS+5%蔗糖0.250.385%蔗糖1.77/3㊀讨论与结论迄今,石榴转基因育种主要采用农杆菌介导法,存在转化体系不完善㊁转化效率低㊁再生率不高等问题㊂Terakami等利用农杆菌介导法成功地将目的基因转入石榴基因组,证明农杆菌的感染能力与基因型㊁外植体类型有关,不同基因型㊁类型的外植体在相同条件下遗传转化时转化率存在明显差异[28];连红可初步建立了 突尼斯软籽 石榴的瞬时表达体系[32];李跃霞的研究表明Kan和Glu的质量浓度对愈伤组织的形成影响较大,Cef的质量浓度对材料上杂菌的生长有不同程度的影响[8]㊂吴亚君经研究得出,用石榴组培苗的子叶为外植体进行遗传转化,在共培养3d后未发生褐化,并且能诱导出抗性芽[33]㊂Verma等以石榴品种 KandhariKabuli 的胚㊁子叶和茎段为外植体成功进行了遗传转化[30]㊂赵玉洁分别以石榴组培苗的子叶㊁叶片㊁上胚轴和下胚轴为外植体,进行了遗传转化试验[34]㊂Verma等在进行农杆菌介导石榴转化时虽成功获得了转化植株,但是转化率仅为23.0%左右[30];郭晓丽[29]㊁吴亚君[33]及赵玉洁[34]在研究中虽然得到了抗性芽,但均未出现转化苗生根的现象;杨选文等对石榴的遗传转化受12㊀3期㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀唐丽颖等:采用花粉管通道法遗传转化月季石榴的研究体材料进行研究,筛选不同激素种类和浓度的初代培养基,经过多次继代培养,筛选出稳定且无菌的石榴增殖培养基,得到了稳定健壮的叶片受体材料[35]㊂M:DL2000Marker㊂S1 S14:待测样品(714bp)㊂0:阴性对照㊂1:阳性对照(714bp)㊂图3㊀PCR产物的跑胶图图4㊀胶回收产物测序结果与PgLCBF1序列对比㊀㊀我国的科学家周光宇提出了花粉管通道法[36],采用该方法导入的DNA片段或目的基因易22江㊀西㊀农㊀业㊀学㊀报㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀33卷于整合,使目的基因所控制的性状在受体植株中易于稳定[37]㊂花粉管通道法被认为是一种直接㊁简单㊁有效的转基因技术,有较广阔的应用前景㊂目前花粉管通道法并不成熟,在植物中应用还不广泛㊂花粉管通道法在小麦转基因中的效率一般为0.2% 8.0%,也有人得到了30%的转基因效率,但仍存在结实率与转化率差异大㊁后代存在变异株系等问题[38]㊂王树军等首次将花粉管通道法应用于荔枝转基因育种中,但转化效果不理想[18]㊂许多研究表明,DNA导入时间及处理部位对结实率及转化率都有影响,其中DNA导入时间较为重要,因为经花粉管进入胚囊的外源DNA能否成功参与受精是花粉管通道法转化成功与否的关键㊂此外,温度㊁湿度等因素也会影响花粉管通道法的转化结果[38]㊂本研究将花粉管通道法与农杆菌介导法结合起来,应用于月季石榴的遗传转化,利用自身的生殖系统作为载体,在遗传转化技术方面避免了繁琐的组织培养与再生过程,直接通过花粉管通道转化目的基因,并经PCR检测,初步证明获得了14棵转基因阳性植株,这为拓展石榴遗传转化的途径提供了新思路㊂同时,对花粉管的萌发情况进行观察,确定在授粉后24h进行转化较为合适㊂针对4个不同处理,综合比较坐果率㊁出芽率㊁阳性率等,发现 浸染介质为5%蔗糖,授粉方式为授粉后24h浸染 的效果较好,这为后续研究㊁优化奠定了基础㊂但该方法的转化效率不理想,可能存在后代分离现象㊂我们以后拟进一步对所获得的转基因月季石榴阳性植株进行表型观察㊁抗性分析,并在本试验的基础上不断优化遗传转化体系,对不同的影响因素进行深入研究,以期建立简单㊁高效㊁稳定的石榴花粉管通道法遗传转化技术体系㊂参考文献:[1]罗华,王庆军,郝兆祥,等.石榴抗寒种质筛选研究[J].中国果树,2018(4):46-52.[2]刘贝贝.石榴抗寒品种筛选及转录因子PgCBF1功能分析[D].北京:中国农业科学院,2018:1.[3]曹尚银,侯乐峰.中国果树志:石榴卷[M].北京:中国林业出版社,2013:6.[4]盛玲.小水果变 网红 :我国石榴产业发展现状及思考[J].中国农村科技,2018(11):66-69.[5]李敏.突尼斯软籽石榴冻旱的发生与预防[D].泰安:山东农业大学,2013:3.[6]栾翠华,曹成文,褚福宽,等.石榴遭受晚霜冻害的原因及防治措施[J].果农之友,2003(5):28.[7]申东虎,苏佳明.石榴树冻害发生的机理及应对措施[J].烟台果树,2005(2):42.[8]李跃霞. 突尼斯软籽 石榴遗传转化体系的构建和ISSR-PCR反应体系的优化[D].郑州:河南农业大学,2012:14.[9]马秀玲.石榴冻害的发生及预防[J].现代农业科技,2009(16):111.[10]随少锋,王玉岗,张友安.低温冻害对河南省荥阳市软籽石榴成灾的分析与研究[J].北京农业,2013(27):26-27.[11]徐鹏.石榴冻害的发生及应对措施[J].中国园艺文摘,2014,30(1):199-200.[12]田加才,李甲梁,尹燕雷,等.2015年山东枣庄石榴冻害情况分析[J].落叶果树,2017,49(1):57-58.[13]肖湘君,肖义军.植物抗病毒机制与转基因番木瓜[J].生物学教学,2019,44(6):7-9.[14]轩慧冬,黄颜众,郭娜,等.转基因技术提高大豆对非生物胁迫耐受性的研究进展[J].大豆科技,2020(4):13-19.[15]李雪源,王俊铎,梁亚军,等.新疆转基因抗虫棉发展回顾㊁现状及建议[J].中国棉花,2019,46(8):45,24.[16]HieiY,OhtaS,KomariT,etal.Efficienttransformationofrice(OryzasativaL.)mediatedbyAgrobacteriumandsequenceanalysisofboundariesoftheT-DNA[J].ThePlantJournal,1994,6(2):271-282.[17]KleinTM,ArentzenR,LewisPA,etal.Transformationofmicrobes,plantsandanimalsbypar⁃ticlebombardment[J].NatureBiotechnology,1992,10(3):286-291.[18]王树军,孙进华,李焕苓,等.花粉管通道法转化荔枝的初步研究[J].热带作物学报,2020,41(2):252-257.[19]HolmPB,OlsenO,SchnorfM,etal.Transformationofbarleybymicroinjectionintoisolatedzygoteprotoplasts[J].TransgenicResearch,2000,9(1):21-32.[20]OliveiraMM,MiguelCM,RaquelMH.Transformationstudiesinwoodyfruitspecies[J].PlantTissueCultureandBiotechnology,1996,2(2):76-93.[21]尚霄丽.果树遗传转化方法概述[J].落叶果树,2014,46(1):16-18.[22]武姣,孔瑾,王忆,等.发根农杆菌介导山定子遗传转化及发根再生植株[J].园艺学报,2008,35(7):959-966.[23]刘永巍,田红刚,李春光,等.花粉管通道法转化外源32㊀3期㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀唐丽颖等:采用花粉管通道法遗传转化月季石榴的研究DNA的转基因技术[J].北方水稻,2014,44(1):74-77,80.[24]孙严,倪万潮,郭三堆.Bt杀虫蛋白基因导入新疆棉花获得抗虫转基因植株[J].西北农业学报,1998(4):3-5.[25]王罡,张艳贞,魏松红,等.花粉管通道法将Bt毒蛋白基因导入优良玉米自交系[J].吉林农业大学学报,2002(4):40-44.[26]赵凌,王才林,宗寿余,等.花粉管介导的转bar基因水稻植株的获得及其遗传[J].中国生物工程杂志,2003(8):92-95.[27]雷勃钧,钱华,李希臣,等.通过直接引入外源DNA育成高产㊁优质㊁高蛋白大豆新品种黑生101[J].作物学报,2000(6):725-730.[28]TerakamiS,MatsutaN,YamamotoT,etal.Agrobacteri⁃um-mediatedtransformationofthedwarfpomegranate(PunicagranatumL.var.nana)[J].PlantCellRe⁃ports,2007,26:1243-1251.[29]郭晓丽.根癌农杆菌介导的抗寒基因转化突尼斯软籽石榴研究[D].郑州:河南农业大学,2013:25.[30]VermaV,KanwarK,TufchiM,etal.Agrobacterium-mediatedCry1A(b)genetransferinPunicagranatumL.cv.KandhariKabuliusingdifferentinvitroregenerationpathways[J].CropScienceandBiotechnology,2014,17(1):1-10.[31]赵玉洁,谭彬,李洪涛,等.石榴组织培养及遗传转化技术研究进展[J].河南农业科学,2017,46(4):1-5.[32]连红可. 突尼斯软籽 石榴再生体系和GFP报告基因的瞬时表达研究初报[D].郑州:河南农业大学,2011:32-33.[33]吴亚君.石榴不同外植体再生体系建立及遗传转化体系初探[D].郑州:河南农业大学,2014:32-33.[34]赵玉洁. 突尼斯软籽 石榴遗传转化体系建立及转化ICE1基因的研究[D].郑州:河南农业大学,2017:2.[35]杨选文,石亚芬,李好先,等. 中农红 石榴组织培养和遗传转化叶片受体材料的获得[C]//中国园艺学会石榴分会.第二届中国石榴博览会暨第七届全国石榴生产与科研研讨会论文集.北京:中国园艺学会石榴分会,2017:7.[36]周光宇,翁坚,龚蓁蓁,等.农业分子育种授粉后外源DNA导入植物的技术[J].中国农业科学,1988(3):1-6.[37]余桂荣,尹钧,任江萍,等.小麦花粉管通道法转基因研究[J].麦类作物学报,2004(2):15-19.[38]刘宝龙,张怀刚.小麦花粉管通道法转基因研究进展[J].分子植物育种,2004(4):535-540.(责任编辑:黄荣华)42江㊀西㊀农㊀业㊀学㊀报㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀㊀33卷。
花粉管通道法转化荔枝的初步研究

花粉管通道法转化荔枝的初步研究作者:王树军孙进华李焕苓王果李芳王家保来源:《热带作物学报》2020年第02期摘要:為开拓荔枝转基因育种新途径,以GUS基因作为报告基因,用花粉管通道法转化授粉后24 h的‘新球蜜荔’荔枝雌花,并统计座果率、成苗率、转化率。
结果显示:共获得303株实生苗,经PCR检测和GUS染色法证实外源基因整合到4株荔枝苗基因组中,转化率为1.32%。
此研究结果为荔枝生物技术育种提供了一种简单有效的途径。
关键词:荔枝;花粉管通道;转基因;育种中图分类号:S667.1 文献标识码:AAbstract: In order to develop a new gene transformation pathway for litchi, the female flowers of Xinqiumili (24 h after pollination) were transformed by the pollen tube pathway method, using GUS as a report gene, and the fruit set percentage, seeding rate, and conversion rate were counted. A total number of 303 seedlings were obtained, and four positive transformed plants were verified according to PCR analysis and GUS staining, the transformation rate was 1.32%. This study would provide a simple and efficient way for the biotechnology breeding of litchi.Keywords: litchi; pollen tube path; transgenic; breeding荔枝(Litchi chinensis Sonn.)是华南重要的特色水果,其产业在区域农业经济中占有重要地位。
猕猴桃遗传转化研究进展

猕猴桃遗传转化研究进展猕猴桃属于猕猴桃科猕猴桃属的多年生落叶藤本植物,其果实营养丰富,人体必需的矿物质、纤维素和维生素含量较高。
此外,还具有药用价值,有水果之王之美誉。
要获得高品质的猕猴桃,遗传转化无疑成为一种有效的现代生物技术。
猕猴桃属雌雄异株,倍性复杂,雌雄株间花期不遇使种间杂交困难,育种周期长,且有不确定性。
因此,需要引进新的手段和方法进行育种。
目前,猕猴桃的遗传转化已取得很大进步,本文就猕猴桃遗传转化方面的研究进展做一综述。
1 已别离与克隆的猕猴桃目的基因目前已被别离和克隆的目的基因,主要与猕猴桃果实成熟及衰老过程有关。
从1993年开始,MacDiarmid和任小林等分别成功地从猕猴桃果实中别离和克隆出ACC氧化酶基因,导入猕猴桃,均可增强猕猴桃的耐贮藏性。
1997年王春霞等建立了由根癌农杆菌介导的西瓜高效遗传转化系统,来控制植株的寿命和果实早熟或耐储藏性。
xx年宋喜贵等利用从番茄果实中别离到的ACC合成酶c DNA基因反向置于CaMV35S启动子的控制之下,并转入美味猕猴桃的愈伤组织中从而延缓植株衰老并提高其耐贮藏性。
Atkinson等从美味猕猴桃中别离克隆出PG基因。
任小林等还从美味猕猴桃中克隆了钙调蛋白c DNA。
徐昌杰等从中华猕猴桃别离出的ACC合成酶家族四个成员的基因组DNA片段。
2 猕猴桃遗传转化的方法遗传转化主要是将外源基因导入受体细胞中,使之发生定向的遗传变异。
通常利用重组DNA,组织培养或种质系统转化等技术,其方法主要有农杆菌介导法、花粉管通道法等。
目前,在猕猴桃遗传转化中应用的方法主要有农杆菌介导法、基因枪法、DNA直接摄取法等。
2.1 农杆菌介导转化法包括根癌农杆菌和发根农杆菌介导法。
该方法研究较成熟。
农杆菌介导法获得稳定转化体的频率更高且重复性更好。
2.2 基因枪介导转化法又称微弹轰击法,其将外源DNA片段包裹在微小金粒或钨粒外表,然后在高压作用下将微粒高速射入植物细胞或组织中,微粒上的外源DNA进入细胞后整合到植物染色体上,得到阳性表达从而实现基因转化。
花粉管导入的研究进展

tb ah a t o se tb ih d b eChn s ilgs .Z o a g u, n smoe u a c a i i u r n l o u e p t w y meh d i sa l e y t i e eb oo it s h Mr h u Gu n y a d i lc l r t me h n s sc r t n t m e y
bo ti he r n tod a v tg sa d ia v n a e a l a t pp iain o r e i n e e ty as P He — u t t o a d me s y h s, d a a e n d s d a t g s, s we l s is a lc t n b e dng i r c n e r . o n n o
关键 词 : 花粉 管 导入 ; 究 进展 ; 述 研 概
中 图分 类 号
¥2 . 72 3
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A
文章编号
10 7 3 (00 O 7 0 0 7— 7 12 1 )5— 4— 2
Pr g e s o Re e r h o nt o uc i n o le — u o r s n s a c fI r d to fPo l n— t be
v r la . Thi to , eycer s meh d who ebre n i ss o t h n d a t g s S h a ,ti e i l a d i wo tbec n s e dig tme i h r, a ma y a v n a e . uc s i sv r smp e, n t n’ o — s y
胚囊 , 对受 精卵或 其前 后 的生 殖 细胞 进 行转 化 的技 术 , 由 于生殖 细胞此 刻处 于未形成 细胞 壁 的类 似 “ 生质 体 ” 原 状 态 , 且 正在 进行 活 跃 的 D A复制 、 离 和重 组 , 很容 并 N 分 故 易将外 源 D A片段 整 合 到受 体基 因组 中 , 到遗 传 转化 N 达
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花粉管通道法转基因技术在果树上的研究进展果树的基因转化研究早在1988年,首先在核桃上取得突破,McGranahan等获得了转gus基因核桃再生植株。
此后,果树转基因工程研究日益发展,许多果树获得了转基因植株,但是与农作物的转基因工程研究相比,果树转基因工程还是远远处于落后状态。
最难转化的禾谷类,现在也已经有多种作物进入转基因的商业化生产阶段,而果树仅有一例转基因植物进入田间试验(方宏筠等,1999)。
我国在樱桃、草莓、苹果等果树转基因方面做了许多研究工作,并都获得了转化目的基因的转基因植株,特别是樱桃的转抗菌肽基因已由农业部批准进入田间实验,该项研究处于国际领先水平。
1988年第一株转基因核桃(Juglans regia L.)在美国诞生为利用基因工程改变果树特定性状、培育果树新品种奠定了实践基础。
相对于农作物而言,果树转基因技术及研发相对滞后转化体系仍有待进一步完善,但果树基因工程也有其突出的优势。
目前,我国已在荔枝、番木瓜、苹果、柑橘、梨、桃、香蕉、猕猴桃、葡萄、樱桃、草莓的果树上展开了遗传转化技术的研究,转化方法主要包括农杆菌介导法和基因枪轰击的方式,获得了部分转基因植株。
在果树等林木育种中,花粉管通道法的相关研究少有报道,仅见钟启宏等采用花粉管通道导入方法,将欧洲黑杨的一个克隆片段导入泡桐,最终获得了3株可含50μg/mL的Kan培养基上生长的幼苗。
侯立群(2000)等利用花粉管通道发进行核桃转基因研究,只是获得了畸形果植株,但尚未完成分子鉴定等。
山东农业大学张玲(2004)利用花粉管通道法对杏转化抗寒基因相关研究。
由于果树,栽培环境复杂、生产周期长,且主要为风媒传粉植物,与作物相比,在影响树种自身遗传多样性等方面,其潜在的生态风险性可能更大。
随着果树转基因成功事例逐年增加,转基因果树的生态安全性问题也越发受到重视。
由于花粉管通道法进行转化的供体可以是植物总DNA,即利用自然界现有的具目的性状的外源DNA或基因进行遗传转化,其实质相当于远缘杂交。
因此,利用植物总DNA的花粉管通道法进行果树遗传转化,可不必担心由其它转化系统获得的转基因植物的生态风险性等问题。
目前,在转基因中所应用的农杆菌介导、基因枪等方法,主要通过建立组织培养体系实现基因导入,转基因受遗传转化体系限制较大,甚至一个无性系就需要建立一套转化体系,很难实现多基因型受体的遗传转化与筛选。
花粉管通道导入法可以克服其它转化方法对组织培养的依赖,以及因组织培养限制而产生的转化基因型单一等问题,直接形成大量的种子,并且由于导入的是全组DNA,本身带有多种基因,故获得的变异后代群体遗传多样性丰富,选择余地大。
随着有关研究的深入以及技术的日益完善,花粉管通道法也必将在果树育种领域发挥更大的作用。
1.3花粉管通道法转基因技术1.3.1花粉管通道法研究进展早在1974年,我国科学家周光宇(1978)首次提出了植物远缘杂交所产生的染色体水平的杂交现象—DNA片段整合理论。
近年来更多的出现用构建在质粒载体上的目的基因直接转化受体,已经在部分作物上取得成功。
Luo等(1988)首次报道用花粉管通道法将质粒DNA转入水稻,经Southern杂交和酶学测定证明,得到了外源基因整合并表达的转基因水稻植株,使花粉管通道法的转化工作像其他直接转化法一样,完全按转基因技术的操作进行。
谢道昕等(1991)先后将抗虫基因(BT)导入棉花和水稻,用分子生物学和酶学方法鉴定,都得到了转基因植株。
曾君祉等(1993)和Chong等(1995)报道了用花粉管通道法转化小麦,经过筛选、Southern blotting、Northern blotting鉴定以及对表达产物的检测,获得了小麦的转基因植株。
牟红梅等(1999)利用花粉管通道法将抗虫基因、选择标记基因导入小麦中,抗性筛选、PCR和Souther杂交表明外源基因已导入。
侯文胜等(2003)用花粉管通道法将外源基因导入小麦,并用Westhern杂交检测到了目的蛋白的表达。
陈家全等(2004)利用花粉管通道法成功的把棉花腺苷酸核糖基化作用因子1(arf1)转化到棉花中,并通过检测获得阳性后代。
奚亚军等(2004)利用花粉管通道法将叶片衰老抑制基因PSAG12-IPT导入普通小麦品种西农1376,经PCR、GUS组织化学染色、点杂交和Southern杂交分析,证明带有特异启动子的目的基因已整合到5个植株的基因组中,且在大部分转基因植株中能够稳定遗传。
王才林等(2006)将慈姑蛋白酶抑制剂(API)基因导入到水稻中获得转基因植株。
花粉管通道法已在多种作物中获得成功,并取得了大量的分子证据的支持,确定了其在植物遗传转化中的地位。
1.3.2花粉管通道技术的不同导入方法1.3.2.1柱头滴加导入法该法是使用最多的一种方法,即将供体总DNA片段,在受体自花受粉后适当的时期滴加在柱头上,使能沿着花粉管通道进入胚囊,实际应用时一般先切除柱头。
这样可缩短通道距离,提高转化效率。
黄骏麒等(1986)首次利用此法,成功地将外源海岛棉DNA导入陆地棉,培育出抗枯萎病的栽培品种,随后倪建福等(1994)、王亚馥等(1995)成功的将此法用于小麦的转化,将高粱DNA导入普通小麦,选育出抗条锈病白粒新品系。
1.3.2.2子房注射法在受体植株自花受粉后一段时间内,用毛细针插入子房下部胚囊附近,借助微量注射器注入DNA溶液,一般适合子房较大的农作物如棉花,红麻等。
孔青等(1993),尹钧等(2004)在小麦上也有应用。
比较子房注射法与柱头滴加法结果显示,子房注射法的结实率低于柱头滴加法,主要是由于注射对子房有损伤造成的;在变异率方面,子房注射法较柱头滴加法有更高的变异率。
1.3.2.3花粉粒携带法Hess等(1980)首先报道了用外源DNA处理矮牵牛花,在后代获得了花色变异。
Ohta(1984)将外源DNA与玉米花粉混合授粉得到供体胚乳基因的表达。
张孔湉(1982-1986)设计的花粉匀浆涂抹法与之类似,都是通过花粉携带外源DNA进入受体生殖细胞,外源DNA浸泡花粉,受体花粉与供体DNA混合授粉等都是根据上述原理设计的,该技术已经在小麦、玉米、高粱、花生和番茄上得到应用。
刘根齐等(1994)用供体DNA(或花粉)均匀处理该受体植物柱头,处理毕,待5min 后授以受体植株正常花粉,以使其供体外源遗传物质随花粉管的生长而导入受精卵的方法选育出在新疆大面积推广的75(918)改良新品系,在保持原有一优良性状的基础上子粒由红粒改良为白粒,提高了小麦的商品性能。
1.3.3 花粉管通道法的影响因素花粉管通道法转基因技术的成株转化率一般为10-1-10-2(王关林、方宏筠,2002).相对而言,转化率较低,其影响因素为多方面:(1)导入时间选择:从转化的受体为精卵融合期的合子细胞出发,并考虑外源DNA沿花粉管外界面渗入过程也需时间,建议以精卵融合至合子分裂前这个时间段进行外源DNA导入为宜。
(2)环境温度、湿度与花粉的萌发和花粉管的生长度有密切关系:25~30℃是花粉管最适生长温度;环境的湿度也会对花粉的萌发与花粉管的生长有重要影响。
(3)花粉管的路径长,变化复杂:花粉管在组织中的走向往往曲曲折折,增加了花粉管的长度,而在中空的花柱道和子房腔内生长时,又处在粘液的环境中,这不但不利于外源DNA沿花粉管外界面的移动,反而一部分外源DNA被花粉管及其贴附物所吸收。
(4)外源DNA的片段大小、浓度和pH值等:花粉管通道法对导入的DNA片段大小、纯度和浓度要求很高。
周光宇等认为,片段的大小以不小于106~107道尔顿为宜。
供体DNA片段的纯度对导入后代的表型变异也有一定的影响。
(5)不同的导入方法和导入部位也会对转化率产生影响。
上述诸多因素均与转化效率直接或间接相关,因此花粉管通道法转基因技术所表现的转化率较低也就不难理解,如果对上述因素在具体的技术操作时加以重视,进行必要的改进,就可以显著提高遗传转化率。
3 木本植物遗传转化的方法3.1 农杆菌介导的遗传转化的机理和方法现已发现两种与植物基因转化有关的类型:一为根癌农杆菌,它含有Ti质粒,能诱导被侵染的植物细胞形成冠瘿瘤;二为发根农杆菌,它含有Ri质粒,能诱导被侵染的植物细胞产生毛发状根。
根癌农杆菌染色体外的Ti质粒,包括T-DNA区、毒区(Vir区)、接合转移编码区(Con区)、复制起始区(Ori区)等几个区域。
其中,T-DNA用于与外源基因整合,可以被转移到植物的细胞中。
这个过程中T-复合体的染色质定位、包裹蛋白的酶解、染色质的重塑、T-DNA互补链的合成、DNA的修复等都需要宿主因子的参与(邹智,卢长明,2008)。
而Vir区本身不整合进植物的基因组,但它能协助T-DNA的转移,Vir区位于T-DNA区的左侧,包括7或8个操纵子(VirA、VirG、VirC、VirD、VirE、VirB、VirF、VirH)。
当植物受伤后,受伤组织释放的酚类化合物能成为农杆菌的侵染信号,这些化学诱导物透过农杆菌的细胞膜,活化VirA和VirG基因,再诱导Vir区的其它基因。
农杆菌介导法具有技术简单成熟,耗资少,可靠性高,转化率相对较高可以转移大片段外源基因(>30kb),没有明显的基因重排现象,外源基因主要以单拷贝插入植物基因组等优点(Simmondsd H,Donaldson P A,2000)。
目前是进行遗传转化的主要方法。
1985年,Horsch等发明了植物的叶盘转化法,操作方法是用打孔器从消毒叶片上取得叶圆片,亦称之叶盘(Horsch R B,Fry J E,Hoffmannnl,1985)。
2006年,李小平等(2006)转化大豆子叶节将受体蛋白激酶基因(rlpk2)RNAi转入大豆获得转基因植株。
党尉等利用根癌农杆菌对来自大豆成熟种子的体胚进行遗传转化,将双价抗虫基因cryIA(c)和pta整合到大豆的基因组中,获得了7个大豆品系的转基因植株,转化频率为4.29%~18%(党尉,卫志明,2007)。
农杆菌介导法与基因枪法相比,具有很多优点,如外源DNA结构完整、整合位点稳定、拷贝数低、转化片段较大以及整合后外源基因变异较少等,而且操作简单、成本低,易于掌握。
3.2 基因枪法(gene gun-mediated transformation)基因枪法又称微弹轰击法(microprojectile bombardment,particle bombardment,or biolistics)。
这种技术是以高压气体或高压放电为动力,用微粒对植物组织进行轰击,从而将外源基因带入植物细胞内,其优点在于它不受基因型和轰击靶组织的限制。
王萍等用基因枪法将双价抗虫基因Bt和CpTI转入固体培养的大豆胚性细胞团,获得Gus的高效率的表达(王萍,王罡,季静等,2002)。