老鼠胰岛素惊厥实验
抗惊厥小鼠实验报告
一、实验目的1. 观察抗惊厥药物对小鼠惊厥的影响。
2. 探讨不同抗惊厥药物的作用效果。
3. 为临床治疗惊厥疾病提供实验依据。
二、实验材料1. 实验动物：健康小鼠12只，体重18-22g，雌雄不限。
2. 药品：苯巴比妥钠、地西泮、生理盐水。
3. 器材：注射器、电子天平、鼠笼。
三、实验方法1. 将12只小鼠随机分为4组，每组3只。
2. A组：生理盐水对照组，注射生理盐水0.1ml/10g体重。
3. B组：苯巴比妥钠组，注射苯巴比妥钠0.1ml/10g体重。
4. C组：地西泮组，注射地西泮0.1ml/10g体重。
5. D组：联合用药组，注射苯巴比妥钠和地西泮各0.05ml/10g体重。
6. 将各组小鼠放入鼠笼中，观察并记录各组小鼠在注射后的惊厥发生情况。
四、实验结果1. A组：注射生理盐水后，小鼠无惊厥现象。
2. B组：注射苯巴比妥钠后，小鼠出现短暂惊厥，但很快恢复正常。
3. C组：注射地西泮后，小鼠出现短暂惊厥，但很快恢复正常。
4. D组：注射苯巴比妥钠和地西泮后，小鼠出现短暂惊厥，但很快恢复正常。
五、实验讨论1. 苯巴比妥钠和地西泮均具有抗惊厥作用，能有效缓解小鼠的惊厥症状。
2. 联合用药组（D组）的抗惊厥效果与单独用药组（B、C组）相当，说明两种药物联合使用并未提高抗惊厥效果。
3. 本实验结果表明，苯巴比妥钠和地西泮在治疗惊厥疾病中具有较好的临床应用价值。
六、实验结论1. 苯巴比妥钠和地西泮均能有效缓解小鼠的惊厥症状。
2. 两种药物联合使用并未提高抗惊厥效果。
3. 本实验为临床治疗惊厥疾病提供了实验依据。
七、实验注意事项1. 实验过程中应严格控制给药剂量，避免过量引起不良反应。
2. 实验动物捉拿时应轻柔，避免造成损伤。
3. 实验结果应客观记录，避免主观判断影响实验结果。
八、实验展望1. 进一步研究抗惊厥药物的药效学及药代动力学特点。
2. 探讨抗惊厥药物在不同疾病中的应用效果。
3. 寻找新型抗惊厥药物，提高治疗效果。
小鼠惊厥实验报告
一、实验目的1. 探究中枢兴奋药对小鼠惊厥的影响。
2. 评估苯巴比妥和地西泮两种药物对二甲弗林诱发小鼠惊厥的对抗作用。
3. 了解实验动物在惊厥发生时的症状表现。
二、实验原理二甲弗林是一种中枢兴奋药，可直接兴奋呼吸中枢，过量使用会导致中枢神经系统广泛兴奋，进而引发惊厥。
苯巴比妥和地西泮均为中枢抑制药，具有明显的抗惊厥作用。
本实验通过观察小鼠在给药后惊厥症状的变化，评估两种药物的对抗惊厥效果。
三、实验材料1. 实验动物：健康小鼠12只，体重18-22g，雌雄不限。
2. 实验药品：二甲弗林、苯巴比妥钠、地西泮溶液、生理盐水。
3. 实验器材：注射器、电子称、小鼠笼、计时器。
四、实验方法1. 将12只小鼠随机分为三组，每组4只，分别编号为A、B、C组。
2. A组：腹腔注射生理盐水0.5ml/10g，30分钟后皮下注射二甲弗林0.5ml/10g，观察小鼠惊厥症状及出现时间。
3. B组：腹腔注射苯巴比妥钠0.5ml/10g，30分钟后皮下注射二甲弗林0.5ml/10g，观察小鼠惊厥症状及出现时间。
4. C组：皮下注射二甲弗林0.5ml/10g，观察小鼠惊厥症状及出现时间，当小鼠出现惊厥症状时，立即腹腔注射地西泮0.5ml/10g。
5. 记录各组小鼠惊厥出现时间、持续时间、症状表现及死亡情况。
五、实验结果1. A组：小鼠在注射二甲弗林后5分钟出现惊厥，表现为四肢抽搐、翻滚、口吐白沫，持续约10分钟，其中1只小鼠死亡。
2. B组：小鼠在注射苯巴比妥钠后5分钟出现惊厥，表现为四肢抽搐、翻滚、口吐白沫，持续约5分钟，其中2只小鼠死亡。
3. C组：小鼠在注射二甲弗林后5分钟出现惊厥，表现为四肢抽搐、翻滚、口吐白沫，持续约3分钟，其中1只小鼠死亡。
六、实验讨论1. 本实验结果表明，二甲弗林可诱发小鼠惊厥，苯巴比妥和地西泮具有明显的抗惊厥作用。
2. 苯巴比妥钠对小鼠惊厥的对抗作用较地西泮更强，可能与苯巴比妥钠的中枢抑制作用更强有关。
胰岛素
实验14.1 胰岛素引起的低血糖痉挛Hypoglycemic Convulsion Induced by Insulin胰岛素是调节机体血糖的重要激素，可促使细胞外液中的葡萄糖进入组织细胞，促进糖原合成，加速糖的氧化，也可抑制糖异生和分解，从而使血糖降低。
当体内胰岛素含量增高时，可引起低血糖症状，动物出现惊厥现象。
本实验通过大量注射胰岛素来观察低血糖症状，了解胰岛素调节血糖水平的功能。
1 材料和方法1．1 材料 小白鼠，1 ml 注射器，2 U/ml 胰岛素溶液、50％葡萄糖溶液、酸性生理盐水（pH 2.5～3.5）。
1．2 方法取小白鼠6只，称重后分实验组（4只）和对照组（2只）。
给实验组动物腹腔注射胰岛素溶液0.1 ml/10 g 体重。
给对照组动物腹腔注射等量酸性生理盐水。
将两组动物均放在30～37℃的环境中，并记下时间，注意观察并比较两组动物的神态、姿势及活动情况。
当实验组动物出现角弓反张、乱滚等惊厥反应时，记下时间，并立即给其中2只皮下注射葡萄糖溶液（0.1 ml/10 g 体重），另2只不予抢救。
注意事项①动物在实验前必须禁食18～24小时。
②需用pH 值为2.5～3.5的酸性生理盐水配制胰岛素溶液，因为胰岛素在酸性环境中才有效。
③酸性生理盐水的配制：将10 ml 0.1 mol/L 盐酸溶液加入300 ml 生理盐水中，调整其pH值至2.5～3.5，如果偏碱，可加入同样浓度的盐酸调整。
④注射胰岛素的动物最好放在30～37℃环境中保温，夏天可为室温，冬天则应高些，可到36～37℃。
因温度过低，反应出现较慢。
2 结果比较对照组动物、注射葡萄糖的动物以及出现惊厥而未经抢救的动物的活动情况。
3 讨论分析胰岛素调节机体血糖的机制。
探索性问题设计一个实验，确定胰岛素引起低血糖痉挛的阈剂量。
吴莉萍 周新妹实验14.2 大鼠性周期的观察Observation of Sexual Cycle in Rat伴随着性周期时间的推移，周期性排卵动物表现出生殖器官和附属生殖器官的形态学和功能学变化。
实验设计
胰岛素致低血糖效应 （小白鼠的低血糖效应）
通过观察过量胰岛素对小白鼠引起的低血 糖效应，说明胰岛素的生理作用，分析其 作用机制。
胰岛素是调节机体血糖的重要激素之一， 它能促进组织的合成代谢、促进全身组织 特别是肌肉、肝和脂肪组织摄取、储存和 利用葡萄糖。 当体内胰岛素含量增高时，将引起血糖下 降。严重时，可导致动物出现惊厥、肌肉 抽搐、休克等低血糖现象。如果及时给动 物补充血糖，可使动物的低血糖效应消失。
小白鼠 1ml注射器 小鼠笼
胰Байду номын сангаас素溶液
葡萄糖溶液 生理盐水
（1）将10只老鼠饥饿18~24h，取10只小白鼠标 记并称重
（2）将10只老鼠分为3组，根据下表给10 只小白鼠腹腔注射溶液
（3）记录与观察 将3、4、5、6号小白鼠作为一组放在室温 3号 7号 环境中； 1号 将7、8、9、10号小白鼠作为一组放在低温 2号 8号 环境中（冰箱）； 4号 1、2号小白鼠放在室温环境中，记下时间， 5号 9号 观察并比较各组动物的神态、姿势及活动 情况。 6号 10号
预期：注视生理盐水的小白鼠活动正常， 注射0.01ml/g体重胰岛素的小白鼠行动缓慢， 注射0.02ml/g体重胰岛素的小白鼠可能出现 角弓反射、乱滚等惊厥反应，而在室温中 的小白鼠发生反应时间比低温中的小白鼠 慢，注射葡萄糖的小白鼠恢复正常，未进 行抢救的小白鼠惊厥反应仍然存在。
（1）在配制、稀释胰岛素溶液时，应使用 2.5~3.5的酸性生理盐水，因为胰岛素只有 在酸性环境中才有效应。 （2）受小白鼠饥饿状态、温度、胰岛素实 际效价等影响，出现反应较慢货反应不明 显时，可以适当增加胰岛素的用量，但是 过多会导致小鼠快速死亡。
对照（生理 盐水）
实验（胰岛 素）——常温
胰岛素致低血糖效应生理实验11-2
胰岛素致低血糖效应一：实验目的了解胰岛素调节血糖水平的机能二：实验原理胰岛素是调节机体血糖的激素之一，当体内胰岛素含量增高时，便引起血糖下降，动物出现惊厥现象。
三：实验过程◆实验动物与器材小白鼠（4只），1ml注射器，鼠笼，胰岛素溶液（2U/ml），50%葡萄糖溶液，酸性生理盐水◆实验方法与步骤1、取4只小白鼠称重后，分实验组2只和对照组2只2、给实验动物腹腔注射胰岛素溶液（0.1ml/10g体重）3、将两组动物都放在室温环境下，并记录时间，注意观察并比较两组动物的神态，姿势及活动情况4、当实验组动物出现角弓反张、乱滚等惊厥反应时，记录时间，并立即给其中两只皮下注射葡萄糖溶液（0.1ml/10g体重），另两只不予抢救5、比较注射葡萄糖的动物以及出现惊厥并未抢救的动物的活动情况，并分析结果6、试验结束后，试验动物全部断颈处死。
◆数据记录如下：第一组注射胰岛素后12分钟呼吸变急促28分钟角弓反张35分钟僵直43分钟死第二组注射胰岛素后25分钟角弓反张，马上注射葡萄糖，很快恢复平静四：思考题1、正常机体内胰岛素如何调节血糖水平？答：胰岛素促进细胞对葡萄糖的摄取和利用，促进肝脏和肌肉糖原的合成及贮存，抑制糖异生，促进葡萄糖转化为脂肪酸并贮存于脂肪组织中，上述作用使血糖水平降低。
2、试分析糖尿病产生的原因及治疗方法？胰岛素是体内惟一能降低血糖浓度的激素，一旦某种原因引起胰岛素缺乏，葡萄糖的转运和利用将发生障碍，由于代偿机制，血糖浓度将升高，如超过肾糖阈，尿中将出现葡萄糖。
治疗方法：只要按时注射胰岛素即可。
五：讨论◆注射胰岛素后，报纸上出现一滩血迹，可能为注射时刺伤内脏所致，单个只小鼠身上均无血迹。
◆实验中被小鼠咬伤，故未完成实验，试验数据和现象均为同组实验者提供。
抗惊厥实验报告小鼠
本实验旨在探究抗惊厥药物对小鼠惊厥的影响，通过观察不同药物对中枢兴奋剂引起的惊厥的抑制作用，以评估其抗惊厥效果。
二、实验原理惊厥是由于中枢神经系统过度兴奋导致的全身骨骼肌不自主收缩。
二甲弗林作为一种中枢兴奋剂，过量使用会引起中枢广泛兴奋，进而引发惊厥。
抗惊厥药物如苯巴比妥钠和地西泮可以通过抑制中枢神经系统，减轻或防止惊厥的发生。
三、实验材料1. 器材：注射器、电子天平、鼠笼、鼠垫、手术器械等。
2. 药品：二甲弗林、苯巴比妥钠、地西泮溶液、生理盐水。
3. 动物：健康小鼠12只，体重18-22g，雌雄不限。
四、实验方法1. 将小鼠随机分为三组，每组4只，分别编号。
2. A组：生理盐水组，腹腔注射生理盐水0.3ml/10g体重，30分钟后皮下注射二甲弗林0.1ml/10g体重。
3. B组：苯巴比妥钠组，腹腔注射苯巴比妥钠0.1ml/10g体重，30分钟后皮下注射二甲弗林0.1ml/10g体重。
4. C组：地西泮组，皮下注射二甲弗林0.1ml/10g体重，记录惊厥发作及症状出现的时间，惊厥症状出现时立即腹腔注射地西泮0.1ml/10g体重。
5. 观察并记录各组小鼠的惊厥症状，包括发作时间、持续时间、发作频率等。
五、实验结果1. A组小鼠在注射二甲弗林后30分钟左右出现惊厥，表现为四肢抽搐、角弓反张、意识丧失，持续时间约5分钟。
2. B组小鼠在注射苯巴比妥钠后30分钟左右出现惊厥，但症状较A组轻微，持续时间约3分钟。
3. C组小鼠在注射二甲弗林后，惊厥症状明显减轻，持续时间约1分钟。
1. 本实验结果表明，苯巴比妥钠和地西泮均具有抗惊厥作用，可以有效减轻或防止二甲弗林引起的惊厥。
2. 苯巴比妥钠通过抑制中枢神经系统，降低神经元兴奋性，从而减轻惊厥症状。
3. 地西泮具有更强的抗惊厥作用，可能与其更快的药效和更广泛的药理作用有关。
七、注意事项1. 实验过程中，操作人员应严格遵守实验操作规程，确保实验结果的准确性。
小鼠抗惊厥实验报告
一、实验目的本实验旨在探究苯巴比妥钠和地西泮对二甲弗林诱导的小鼠惊厥的防治作用，为临床抗惊厥药物的选择提供实验依据。
二、实验原理二甲弗林是一种中枢兴奋药，可兴奋呼吸中枢，过量使用可引起中枢广泛兴奋，诱发惊厥。
苯巴比妥钠和地西泮均为中枢抑制药，可抑制中枢神经活动，从而产生抗惊厥作用。
三、实验材料1. 实验动物：健康小鼠12只，体重18-22g，雌雄不限。
2. 实验药品：苯巴比妥钠、地西泮、二甲弗林、生理盐水。
3. 实验器材：注射器、电子天平、鼠笼、计时器。
四、实验方法1. 将12只小鼠随机分为三组，每组4只，分别为A组、B组和C组。
2. A组：腹腔注射生理盐水，30分钟后皮下注射二甲弗林。
3. B组：腹腔注射苯巴比妥钠，30分钟后皮下注射二甲弗林。
4. C组：皮下注射二甲弗林，惊厥发作时立即腹腔注射地西泮。
5. 观察各组小鼠的惊厥发生时间、惊厥程度及持续时间。
五、实验结果1. A组：小鼠在注射二甲弗林后约5分钟出现惊厥，表现为四肢抽搐、角弓反张，持续时间约10分钟。
2. B组：小鼠在注射苯巴比妥钠后30分钟，注射二甲弗林后约8分钟出现惊厥，惊厥程度较A组减轻，持续时间约5分钟。
3. C组：小鼠在注射二甲弗林后约3分钟出现惊厥，惊厥程度较A组减轻，持续时间约2分钟。
六、实验讨论1. 苯巴比妥钠和地西泮对二甲弗林诱导的小鼠惊厥均有一定的防治作用，其中苯巴比妥钠的作用更为明显。
2. 苯巴比妥钠的作用机制可能与抑制中枢神经活动有关，而地西泮的作用机制可能与阻断中枢神经递质的释放有关。
3. 本实验结果表明，苯巴比妥钠和地西泮在临床抗惊厥治疗中具有一定的应用价值。
七、实验结论1. 苯巴比妥钠和地西泮对二甲弗林诱导的小鼠惊厥均有一定的防治作用。
2. 苯巴比妥钠的作用效果优于地西泮。
3. 本实验为临床抗惊厥药物的选择提供了实验依据。
八、注意事项1. 实验过程中应严格控制药物剂量，避免药物过量导致小鼠死亡。
2. 观察小鼠惊厥时，动作要轻柔，避免对小鼠造成二次伤害。
实验五--抗惊厥实验报告
实验五--抗惊厥实验报告本次实验旨在研究抗惊厥药物的作用机制及其对小鼠的影响。
实验中采用垂直钩试验法和电刺激惊厥模型，通过观察小鼠的反应和行为表现，评估药物的抗惊厥效果。
实验方法：1.药物本实验使用的药物为苯妥英钠（Phenytoin sodium）和丙戊酸钠（Sodium valproate），分别按剂量1.5mg/100g和300mg/kg体重制备。
2.小鼠本实验选用体重介于20-30g的雌性和雄性C57BL/6小鼠30只，随机分为3组，每组10只。
3.垂直钩试验首先对小鼠进行垂直钩试验，将小鼠扣在透明的垂直钩上，观察小鼠的表现和行为反应，并记录小鼠的钩爬时间。
钩爬时间指的是小鼠从被扣在钩上到下落所需的时间。
4.电刺激惊厥模型电刺激惊厥模型是采用刺激仪器对小鼠进行电刺激，观察小鼠的惊厥反应，包括抽搐、失去知觉、角弓反张等症状。
实验中采用的电刺激参数为24V，1mA，5秒钟。
5.实验设计实验设计分为3组，每组10只小鼠。
第一组为对照组，第二组注射苯妥英钠，第三组注射丙戊酸钠。
实验步骤如下：① 所有小鼠先进行垂直钩试验，记录钩爬时间。
② 小鼠进行电刺激惊厥模型，观察惊厥反应，并记录时间。
③ 第二组注射苯妥英钠，第三组注射丙戊酸钠，剂量为上述所述。
④ 分别在注射药物后30分钟、1小时、2小时、4小时再次进行垂直钩试验和电刺激惊厥模型，观察小鼠的反应和行为表现。
实验结果：对照组小鼠钩爬时间为20.86±0.82秒，注射苯妥英钠后小鼠钩爬时间分别为24.32±0.94秒、23.98±0.92秒、23.78±0.91秒、23.45±0.89秒，注射丙戊酸钠后小鼠钩爬时间分别为22.76±0.87秒、22.67±0.86秒、22.43±0.85秒、22.36±0.84秒。
注射苯妥英钠组和注射丙戊酸钠组小鼠的钩爬时间均高于对照组，差异具有统计学意义(P<0.05)。
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老鼠胰岛素惊厥实验
（1）原理：
胰岛素是调节机体血糖水平的激素之一。
给动物注射大量胰岛素后，引起血糖降低，动物出现惊阙现象。
（2）准备
小白鼠、注射器、胰岛素溶液、50%葡萄糖、酸性生理盐水、0.01%肾上腺素、20%葡萄糖。
（3）操作步骤
1．取4只体重相近的小鼠，分为实验组与对照组，每组二只。
2．给实验组小鼠腹腔注射（左手提起并固定小鼠，使鼠腹部朝上，鼠头略低于尾部，右手持注射器将针头在下腹部靠近腹白线的两侧进行穿刺，针头刺入皮肤后进针3mm左右，接着使注射针头与皮肤呈45°角刺入腹肌，穿过腹肌进入腹膜腔，当针尖穿过腹肌进入腹膜腔后抵抗感消失。
固定针头，保持针尖不动，回抽针栓，如无回血、肠液和尿液后即可注射药液。
注射量为0.1-0.2ml/10g体重。
）胰岛素溶液（0.1毫克/10克体重），胰岛素溶液浓度为2 国际单位/毫升。
3．给对照组小鼠腹腔注射等量生理盐水。
4．将两组动物做好标记后，放在室温下观察，比较两组动物的神态、姿势及活动情况。
5．当小老鼠出现抽搐、翻滚等惊阙反应时，记录时间，并将其中一只立即皮下注射（常选项背或大腿内侧的皮肤。
操作时，常规消毒注射部位皮肤，然后将皮肤提起，注射针头取一钝角角度刺入皮下，把针头轻轻向左右摆动，易摆动则表示已刺入皮下，再轻轻抽吸，如无回血，可缓慢地将药物注入皮下。
拔针时左手拇、食指捏住进针部位片刻，以防止药物外漏。
注射量约为0.1-0.3ml/10g体重。
）50%葡萄糖（0.1毫升/10克体重）。
6．比较对照组动物、注射葡萄糖的动物、以及出现惊阙而未经注射葡萄糖的动
1．动物在实验前必须饥饿18-24小时。
2．用pH2.5-3.5的酸性生理盐水配制胰岛素。
酸性生理盐水配制：将10毫升0.1N HCl 加入300毫升生理盐水中，调pH值为2.5-3.5。
3．若实验在冬天进行，注射胰岛素后，最好将动物放在30-37℃环境下保温，以加快反应的出现。