胚胎活检时机及部位在植入前遗传学诊断中的新进展
胚胎植入前遗传学筛查

胚胎植入前遗传学筛查胚胎植入前遗传学筛查胚胎染色体异常是导致胚胎着床失败、早孕期胎儿流产的一大因素。
研究表明,随着年龄的增长,女性产生的正常卵子数量下降,导致胚胎中染色体数目异常的胚胎比例增加。
PGS检测可以在胚胎植入母体之前,筛选出检测结果为染色体正常的胚胎进行植入,从而减少因胎儿染色体问题而带来的流产甚至引产,减少移植次数,提高治疗效率,好孕之神就会降临!PGS(preimplantation genetic screening),即胚胎植入前遗传学筛查,是指在进行辅助生殖技术(IVF/ICSI)助孕的过程中,在胚胎移植之前,对早期胚胎或者卵子散在发生的染色体异常进行筛查,以挑选染色体正常的胚胎植入子宫,以期减少因胚胎染色体异常导致的流产及反复流产,获得正常的妊娠,提高IVF妊娠率。
胚胎植入前遗传学筛查就是在人工辅助生殖过程中,对胚胎进行种植前活检和高通量基因测序分析,以选择染色体正常无遗传学疾病的胚胎植入子宫,提高着床率和持续妊娠率,降低流产率,从而获得正常胎儿的诊断/筛查方法。
胚胎植入前遗传学筛查推荐人群:1、卵子染色体异常率较高的高龄(≥35岁)孕妇;2、染色体数目及结构异常的夫妇;3、严重的男性不育,少弱精子症,畸精症;4、生育过染色体异常疾病患儿的夫妇及有反复自然流产史的孕妇;5、反复胚胎种植失败的的孕妇。
在人工辅助生殖过程结合应用高通量测序的PGS的优势在于:1、PGS的全染色体筛查的误差率降低(<2%),准确性高大于99%,并且覆盖全面,染色体非整倍体以及10Mb以上微重复/微缺失均能检测;2、对囊胚活检无任何影响;••••3、消除母体年龄对植入的影响;4、能够检测出嵌合体(因为12%的囊胚是嵌合体,嵌合体比整倍体胚胎的受孕率低50%);5、与普通PGS技术相比,可以将流产率降低60%,同时提高移植着床率,提高临床妊娠率和持续妊娠率。
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胚胎植入前遗传学诊断与临床取材

生殖 医学 杂志 20 0 2年 1 O月 第 1 1卷 第 5期
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综 述
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胚 胎 植 入 前 遗 传 学 诊 断 与 临床 取 材
Pr i pl nt i n e tc di gno i nd c i c l s m plng t c ni em a ato g ne i a s s a lni a a i e h que s
胞 或部分胚胎组织 , 接进行遗 传学分析 。 直
1 .间接 诊 断 : 种 无 创 的 方 法 优 势 在 于 胚 这 胎 不 需 活 检 , 存 在 因 显 微 活 检 技 术 影 响 胚 胎 不
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【 键 词 】 胚 胎 植入 ; 遗 传 学 诊 断 ; 辅 助 生 殖 技 术 ; 活 检 关
【 图分类号 ] 1 【 献标识码 】 中 R7 文 A 【 文章 编号 ] 0 4 3 4 ( 0 2 0 ~ 3 0 0 10 — 8 5 2 0 )50 1 —3 2 O世 纪 8 O年 代 以 来 , 助 生 殖 技 术 用 于 辅
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【 收稿 日期】 2 0 —2 1 ; 【 回 日期 】 2 0 ~20 0 11 — 0 修 0 20 ~ 4
胚胎植入前遗传学诊断应用进展_牛子儒

·综述·胚胎植入前遗传学诊断应用进展牛子儒1,岳晓静1,侯彩英2综述,姚元庆1审校(1.中国人民解放军总医院妇产科,北京100853;2.中国人民解放军第二炮兵清河门诊部,北京100085)【摘要】胚胎植入前遗传学诊断(PGD)正高速发展并逐渐应用于临床,这使不孕不育的夫妇不仅能喜得贵子,并且能实现优生优育。
与传统的产前诊断相比,其具有非侵入性,更易为舆论、伦理所接受等优点。
但同时,也有误诊、污染等不足。
目前PGD的分析技术主要有聚合酶链反应和免疫荧光原位杂交等,许多新技术正不断发展。
国外PGD正逐渐被应用,并已取得一定成果。
国内的PGD技术也在逐步推广,但发展相对缓慢。
本文就近年来PGD应用进展做简要综述。
【关键词】胚胎植入;植入前诊断;遗传学;综述中图分类号:R321.3文献标志码:A文章编号:1004-7379(2012)08-0641-042010年诺贝尔生理与医学奖颁给了“试管婴儿”之父Edwards,标志着人类辅助生殖技术的成功。
随着分子生物学、遗传学和生殖医学的发展,第三代试管婴儿技术时代来临,我国辅助生殖技术也不断迈进,胚胎冻融技术、卵泡浆内单精子注射(intracytoplasmic sperm injection,ICSI)技术广泛应用,在人工助孕与显微操作的基础上,胚胎植入前遗传学诊断(pre-implantation genetic diagnosis,PGD)正高速发展并逐渐应用于临床,这使不孕不育的夫妇不仅能喜得贵子,并且能实现优生优育。
通过复习文献,本文就近年来胚胎植入前遗传学诊断应用进展做一简要综述。
1概述1.1简介胚胎植入前遗传学诊断主要是指采用快速遗传学诊断方法,选择无遗传学疾患的胚胎植入宫腔,从而获得正常胎儿的诊断方法,具体操作:待体外受精的胚胎发育到4 8细胞期,显微操作下行卵裂球细胞活检,取出1个或2个细胞,或者直接取受精前后的极体,对它们行聚合酶链反应或免疫荧光原位杂交分析。
应用二代测序技术进行胚胎植入前遗传学筛查及诊断的基本原理

应用二代测序技术进行胚胎植入前遗传学筛查及诊断的基本原理LI Li-li;SUN Nan;ZHANG Wen-xin【摘要】辅助生殖技术的发展已帮助越来越多不孕不育的夫妇解决生育难题,而胚胎植入前遗传学筛查(PGS)及胚胎植入前遗传学诊断(PGD)进一步排除了存在遗传缺陷的胚胎,并选择健康胚胎进行植入,从而极大降低了新生儿患遗传性疾病的概率.这两项技术最初采用基于分子杂交或聚合酶链式反应(PCR)的检测方法,随后微阵列技术也被应用其中.随着人类基因组计划的完成,DNA测序技术进入高速发展的阶段,二代测序(NGS)采用鸟枪法为基本测序策略,结合生物信息学工具,以高通量、较低成本、检测项目覆盖面广、自动化程度高、可检测未知片段等优势,正不断扩大在PGS/PGD中的应用,同时也对辅助生殖技术产生了深远的影响.【期刊名称】《中国医学装备》【年(卷),期】2019(016)007【总页数】8页(P7-14)【关键词】二代测序技术;胚胎植入前遗传学筛查;胚胎植入前遗传学诊断【作者】LI Li-li;SUN Nan;ZHANG Wen-xin【作者单位】;;【正文语种】中文【中图分类】R394-3遗传学和基因组学的快速发展对人类生命健康及繁衍的影响日益深远,对多种常见和罕见疾病的研究有助于对应预防、检测及治疗方法的开发,从而提高患者及其家人的生活质量。
在不孕不育等问题日益严峻的情况下,辅助生殖技术(assisted reproductive technology,ART)应运而生并被采用于个性化的生育治疗策略,帮助受生育难题困扰的家庭。
其中,植入前遗传学筛查(preimplantation genetic screening,PGS)主要针对高龄、反复助孕失败、反复自然流产等患者,进行植入前胚胎的染色体畸变检测,用于筛查和丢弃染色体畸变的胚胎,保证受孕者所植入的胚胎具有正常染色体组的同时,解决因胚胎染色体畸变而导致的植入失败和反复流产现象,并提高妊娠率[1-2];植入前遗传学诊断(preimplantation genetic diagnosis,PGD)则主要针对父母本已患有明确遗传病或携带其致病基因,在种植前对胚胎进行相应遗传学诊断,主要包括单基因遗传病和染色体病(如罗氏易位、平衡易位等),通过选择无致病因素的胚胎进行植入,以提高生育健康婴儿的概率[3]。
人类植入前胚胎发育研究进展

人类植入前胚胎发育研究进展李敏;张雯珂;陈黎;徐晓菲【摘要】随着近年无创成像技术、分子及基因组技术的发展,人类植入前胚胎发育的研究取得了相应进展.非侵入性实时成像法观察人类胚胎发育过程中最初3次有丝分裂可以预测囊胚发育的成败.目前世界各地多家体外受精(IVF)临床中心开始使用胚胎镜观察胚胎的卵裂时间和胚胎发育的空间模式.人类植入前胚胎发育的特征是重编程,包括精卵原核融合、表观遗传重编程和修饰、母源转录的全面退化和早期人类胚胎基因组激活,普遍认为在人胚胎发育的第3天即4-至8-细胞期胚胎基因组激活达高峰.谱系分化研究人类胚胎发育早期在8-细胞期每个细胞是独立的,但没有证据表明这一期不同细胞已经发生定向分化为滋养外胚层(TE)或内细胞团(ICM).关于人单个卵母细胞的高精度全基因组测序、人类卵母细胞以及早期胚胎不同发育阶段基因转录组的动态变化已有报道.【期刊名称】《国际生殖健康/计划生育杂志》【年(卷),期】2015(034)004【总页数】5页(P319-323)【关键词】胚胎发育;基因组;基因表达调控,发育期;序列分析;非整倍性【作者】李敏;张雯珂;陈黎;徐晓菲【作者单位】100853 北京,中国人民解放军总医院妇产科;100853 北京,中国人民解放军总医院妇产科;100853 北京,中国人民解放军总医院妇产科;100853 北京,中国人民解放军总医院妇产科【正文语种】中文揭示人类植入前胚胎发育对于人类辅助生殖技术和以人类胚胎干细胞为基础的治疗研究是十分重要的,但是由于取材的限制,一直以来对于人类早期胚胎发育的细胞和分子机制知之甚少。
然而,随着近年无创成像技术、分子及基因组技术的发展,对人类发育这一重要时期的认识逐渐增加。
研究哺乳动物胚胎尤其是鼠胚对研究早期哺乳动物发育提供关键线索,然而种属间差异如基因组激活时限、基因表达模式、染色体错配频率、表观遗传修饰等的差异限制了从鼠向人的推断。
目前研究人类着床前胚胎已开始利用体外受精-胚胎移植(IVF-ET)中剩余的胚胎来研究人胚的特异性。
胚胎植入前遗传学诊断

胚胎植入前遗传学诊断(Preimplantation Genetic Diagnosis ,PGD)一、定义胚胎种植前遗传学诊断(PGD)就是指在体外受精过程中,对具有遗传风险患者得胚胎进行种植前活检与遗传学分析,以选择无遗传学疾病得胚胎植入宫腔,从而获得正常胎儿得诊断方法,可有效地防止有遗传疾病患儿得出生。
植入前遗传学诊断就是随着人类辅助生殖技术,即“试管婴儿”技术发展而开展起来得一种新技术,它就是产前诊断得延伸,遗传学诊断得又一更有希望得新技术。
二、意义(一) 对高龄孕妇与高危妇女进行PGD可以有效地避免遗传病患儿得出生。
(二) 可以有效地避免传统得产前诊断技术,对异常胚胎进行治疗性流产,避免中期妊娠遗传诊断及终止妊娠所致得危险及痛苦。
(三) PGD技术得产生与完善可以排除遗传病携带者胚胎,阻断致病基因得纵向传递,从而降低人类遗传负荷。
三、适应征理论上只要有足够得序列信息,PGD能针对任何遗传条件进行诊断,即凡就是能够被诊断得遗传病都可以通过PGD来防止其患儿出生。
进行PGD得主要对象就是可能有遗传异常或高危遗传因素,需要产前诊断得病例,尤其就是可能同时具有两种以上不同得遗传异常情况。
PGD现已用于一些单基因缺陷得特殊诊断,包括Duchenne型肌营养不良、脆性X综合征、黑朦性白痴(Tay Sachsdiseade)、囊性纤维病(cysticfibrosis)、Rh血型、甲型血友病、镰型细胞贫血与地中海贫血、进行性营养不良、新生儿溶血、21抗蛋白缺乏症,、粘多糖贮积症(MPS)、韦霍二氏脊髓性肌萎缩(Werding Hoffman disease),还有染色体异常如Down’S综合征、18三体,罗氏易位等。
四、植入前遗传学诊断得取材可从胚胎着床前各个阶段活检取样,获取其遗传物质信息进行诊断。
目前多采用激光打孔、机械切割或Tyrode酸化打孔后吸出细胞得方法取材。
(一)极体极体细胞可以使用第一极体或第二极体,它们在胚胎发育与合子形成中就是非必须得,因而不影响卵子受精与正常发育,且不会引起伦理学上得争议。
胚胎植入前遗传学诊断名词解释

胚胎植入前遗传学诊断名词解释胚胎植入前遗传学诊断简介胚胎植入前遗传学诊断(Preimplantation Genetic Diagnosis,PGD)是一种常用于辅助生殖技术的遗传学检测方法。
它通过对胚胎进行基因检测,以筛查或诊断可能携带某种遗传疾病的胚胎,并选择健康的胚胎进行植入到母体子宫内,从而降低将遗传疾病传递给后代的风险。
胚胎植入前遗传学诊断的步骤1.体外受精(In Vitro Fertilization,IVF):通过促排卵药物促进卵巢发育并采集女性多个成熟卵子,然后将卵子与精子在实验室中结合,使其受精形成受精卵。
2.胚胎培养:受精卵在实验室中进行培养,通常持续3-5天。
在此期间,受精卵会发育为多个细胞的团块,称为胚胎。
3.胚胎细胞取样:在胚胎培养的特定时间点,通过取样技术,如取卵细胞进行基因检测。
通常有两种主要的取样方法:细胞外囊胚活检(BlastomereBiopsy)和滋养层细胞活检(Trophectoderm Biopsy)。
–细胞外囊胚活检:在第三天的8-10个细胞阶段,通过取一个或多个细胞来进行基因检测。
–滋养层细胞活检:在第五天的100-150个细胞阶段,通过取一部分滋养层细胞来进行基因检测。
4.基因检测:从取样的胚胎细胞中提取DNA,并进行遗传学分析。
常用的遗传学分析方法包括:–多态性位点分析(Polymorphic Marker Analysis):通过分析特定位点上的多态性标记来确定是否携带某种遗传疾病。
–针对特定突变位点的PCR扩增(Polymerase Chain Reaction,PCR):通过PCR扩增特定突变位点的DNA片段,并进行序列分析来确定是否携带某种遗传疾病。
–数字PCR(Digital PCR):通过将DNA分子分隔成数百万个微小的反应室,并计算每个反应室中的DNA分子数量,来检测特定突变位点的存在。
–着丝粒染色体检测(Fluorescence In Situ Hybridization,FISH):通过使用荧光探针标记染色体特定区域的DNA序列,来检测染色体异常。
胚胎植入前遗传学诊断的新进展

h y b r i d i z a t i o n , F I S H) , P C R 主要用于单基 因遗传疾病 的诊 断 , F I S H  ̄ 主要用于检测染色体异常以及胚胎
性别 。 P G D 的主要适应证是单基 因疾病 、 遗传 l 生的染
国际生殖健康 , 计划生育杂志 2 0 1 4 年3 月第 3 3 卷第 2 期 J I n t R e p r o d H e  ̄ t h / F a m P l a n , M a r c h 2 0 1 4 , V o 1 . 3 3 , N o . 2
活检 , 采用 多种技术进行 遗传学诊 断 , 选择正常胚 胎 进行 移植 , 是 辅助 生 殖 技术 与分 子 生 物 学 技术 相 结合而形成的一种产前诊断技术。随着微阵列及全 基因测序等综合分析技术 的临床使用 , 将为胚胎植
可供移植 的无遗传缺陷的胚胎 。H a n d y s i d e 等【 l J 率 先 对一对高遗传风险 的x 一 性连锁疾病夫妇的胚胎进
【 Ke y w o r d s 】 P r e i m p l a n t a i f o n g e n e i t c d i a g n o s i s ; P r e i m p l a n t a t i o n g e n e t i c s c r e e n i n g ; E m b yo r b i o p s y ; D i a g n o s i s
i mp l a n t a t i o n f a i l u r e , r e p e a t e d mi s c a r ia f g e s a n d s e v e r e ma l e f a c t o r i n f e r t i l i t y . T h e r e a r e d r a ma t i c c h a n g e s i n t h e
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胚胎活检时机及部位在植入前遗传学诊断中的新进展北京大学深圳医院生殖医学中心王佳睿,钱卫平【摘要】胚胎活检是胚胎植入前遗传学诊断的重要步骤,胚胎活检既需要获取生物样本以满足遗传学检测的需求,又要尽可能的降低对胚胎的损伤。
它包括极体活检、卵裂球活检和囊胚期滋养外胚层活检;近期发现囊胚腔液及培养基中存在游离DNA可反映胚胎遗传特性,本文将对不同胚胎活检时机及部位的应用及新进展进行详述。
关键词:胚胎植入前遗传学诊断、胚胎活检、无创性活检胚胎植入前遗传学诊断(PGD)指在体外受精过程中,对具有遗传风险患者的胚胎进行种植前活检和遗传学分析,以选择无遗传学疾病的胚胎植入宫腔,从而获得正常胎儿的诊断方法。
广泛应用于携带单基因遗传病、染色体病、性连锁遗传病等疾病的夫妇中。
而胚胎活检是PGD中至关重要的步骤,它既需要获取生物样本以满足遗传学检测的需求,又要尽可能的降低对胚胎的损伤。
故选择一个合适时机及部位进行胚胎活检在PGD技术中显得尤为重要的。
1 极体活检当卵母细胞成熟时,完成第一次减数分裂,排出第一极体;受精后排出第二极体;通过对极体的染色体或基因状态进行分析,可以间接的推测卵子的染色体结构、数目是否异常或者是否携带有致病基因。
由于极体不是胚胎发育所必需的,不影响卵子的受精功能或胚胎的正常发育,不会引起胚胎遗传物质的减少,所以这项技术广泛应用于立法禁止胚胎活检的国家,如德国、奥地利、瑞士和意大利[1]。
分析极体的染色体整倍体性/非整倍体性,可以间接推测胚胎的整倍体/非整倍体性;若母亲为携带遗传病基因的杂合子状态,极体中测出携带有致病基因,则表示卵细胞携带的基因异常。
另外,极体活检可以提供的遗传学诊断时间相对较长,不会错过胚胎移植时间,有利于胚胎在新鲜周期移植。
Feichtinger[2]等对极体活检行PGS推测胚胎的整倍体性,PGS组活产率为35.7%,而对照组(非活检组)活产率为22.7%。
行极体活检PGS可明显提高患者活产率。
Christopikou[3]等对高龄女性(≥35岁,平均年龄39±3岁)的胚胎进行极体活检来判断胚胎染色体整倍体性,发现其准确率为93%。
但是,利用极体活检只能间接反映来自于母亲的遗传信息,不能分析父亲的遗传信息。
而且从胚胎发育的角度看,并不是每一枚卵母细胞都会发育至可利用胚胎,如果进行极体PGD/PGS,有可能会增加无效的工作及诊断花费,造成资源浪费。
因此一定程度上限制了极体活检的应用。
在对子代安全性的研究中,Strom[4]等对109名极体活检后出生的新生儿进行随访,内容包括:出生孕周、出生体重、身长、是否合并出生缺陷等方面,结果提示,极体活检对子代的生长发育没有明显影响。
2 卵裂期胚胎的卵裂球活检采用卵裂期胚胎的1-2个卵裂球活检进行胚胎遗传学分析,可以同时分析来自父母双方的遗传信息,世界首例PGD婴儿即采用的卵裂期胚胎活检[5]。
卵裂期胚胎活检曾经是PGD最主流的活检取材方式,1997-2009年全球86.9%的PGD/PGS 周期及96.8%的PGD采用卵裂球活检;2010年全球83.5%的PGD/PGS周期及95.8%的PGD采用卵裂球活检[6]。
由于卵裂早期的胚胎对显微操作十分敏感,活检时容易受损伤;桑葚期胚胎细胞之间连接紧密,操作困难,故卵裂球胚胎活检即在胚胎发育至6-8个细胞时取1-2个卵裂球进行活检。
一般认为,这个时期胚胎的卵裂球是具有全能性的,因此活检1-2个卵裂球不会严重影响胚胎的发育潜能。
但是,卵裂期胚胎嵌合比例较高,40-60%的卵裂期胚胎为嵌合体[7],另外,卵裂期活检可检测的细胞数也较少(1-2个),故使用卵裂球活检进行PGS出现假阳性或假阴性的比例较高。
虽然一般认为卵裂球是具有全能性的,但近年来,越来越多的证据表明,卵裂期活检对胚胎发育有负面影响。
Scott[8]等2013年设计的一项随机对照研究,比较卵裂球活检与囊胚期滋养外胚层活检后胚胎着床率的分析,所有病例均移植2枚胚胎,1枚活检胚胎及1枚未活检胚胎,妊娠后通过母亲血中胚胎DNA指纹验证妊娠胚胎来源,发现卵裂球活检后胚胎着床率显著低于囊胚期活检胚胎,卵裂球活检胚胎着床率较未活检胚胎下降39%,而囊胚期活检胚胎与未活检胚胎着床率无统计学差异。
在对子代安全性的研究中,Desmyttere等对102名卵裂球活检的PGD/PGS子代进行随访,发现该子代在孕期至产后2年内的生长发育指标与常规卵胞浆内单精子注射(Intracytoplasmic sperm injection, ICSI)的子代无差异。
YU Y[9]等发现进行卵裂球活检的小鼠,出生后较对照组相比出现记忆减退,后续对两组小鼠成年后大脑组织进行蛋白组学分析,发现与对照组相比,活检组小鼠大脑组织中有36种蛋白的表达有显著性差异,这些蛋白主要与神经退行性疾病有关,并发现活检组小鼠的神经纤维髓鞘形成减少。
研究认为神经系统的发育可能对卵裂球活检非常敏感,卵裂球活检小鼠后代患有神经退行性疾病的风险增加。
Yu Y[10]等在2013年发现卵裂球活检的小鼠,高龄时的生育力较同龄未活检小鼠有下降,在进一步行蛋白组学研究中发现3中蛋白:PSMB8、ALDH1A1、HSPA4表达异常。
综上所述,由于卵裂期胚胎嵌合现象发生率高,且处于对活检胚胎发育影响及子代安全性考虑,目前卵裂球活检所占比例在逐渐下降。
3 囊胚时期的滋养滋养外胚层活检体外培养的胚胎通常在第5-6天发育至囊胚,此时胚胎的细胞数目明显增多,可以达到100个以上,囊胚滋养外胚层将来会发育成胎盘或胎膜,不参与形成胎儿部分,对滋养外胚层细胞进行活检,不损伤决定胚胎发育的内细胞团细胞。
因此,囊胚期活检不仅能够提供较多的细胞进行遗传学分析,增加遗传检测的可靠性,而且也能够避免对胎儿部分的损伤。
当胚胎发育至囊胚期时,染色体嵌合比例较卵裂期胚胎明显降低,能提高遗传学诊断的准确性,降低误诊率。
Scott[11]等2013年设计的一项随机对照研究,发现对囊胚滋养外胚层活检行染色体筛查后,胚胎种植率为66.4%(89/134),对照组种植率为47.9%(78/163),两者相比,行囊胚滋养外层活检胚胎的种植率较对照组明显升高。
另外,发育至囊胚期的胚胎基因表达更完整,更有利于选择好的胚胎移植,减少移植胚胎的数目,可以有效的减少多胎妊娠。
但是,目前的胚胎培养技术条件下,并不是所有的胚胎都能发育成囊胚,囊胚期活检可能会出现没有囊胚形成,无胚可检的情况。
另外,虽然囊胚期胚胎染色体嵌合体比例显著低于卵裂期胚胎,但仍存在内细胞群与滋养外层细胞的核型不一致的嵌合体现象,有可能导致误诊。
囊胚期活检提供给遗传学分析的时间较短,通常需要冻存胚胎。
4 其他活检方法4.1囊胚腔液活检Chen[12]等在2005年发现,在囊胚玻璃化冷冻时,将囊胚腔液吸出能显著提升囊胚的复苏率;并发现囊胚腔液体积约0.3-0.5nl。
2013年Palini[13]首次发现,在囊胚进行玻璃化冷冻时吸取囊胚腔中的液体,90%的囊胚腔液存在可扩增的游离DNA,可用于遗传学检测。
囊胚腔液不是囊胚继续发育所必需的,吸取囊胚腔液并对其中的游离DNA进行遗传学物质检测,避免了直接对胚胎细胞进行活检。
因此,囊胚腔液活检既能达到对胚胎进行遗传学检测的目的,又能避免损伤胚胎,是目前PGD/PGS较为无创的活检方式。
Zhang[14]发现囊胚腔液的游离DNA 利用高通量测序技术,扩增有效率为84%。
Magli[15]等的研究发现,82%的囊胚腔液能够成功检测DNA,与滋养外胚层活检结果相比,囊胚腔液活检与之一致率达97.1%,认为囊胚腔液活检有很好的临床应用前景。
Tobler[16]等通过对60枚胚胎分别行卵裂球活检、囊胚腔液活检及囊胚滋养外胚层活检结果比较发现,70%的卵裂球活检提示非整倍体的胚胎,能发育成整倍体囊胚;囊胚液与滋养外胚层活检染色体不一致率高达52%;囊胚腔液活检阳性预测值为0.41;阴性预测值为0.92。
作者分析囊胚液与滋养外胚层活检结果不一致的原因可能是由于囊胚腔液中游离DNA来源于异常的卵裂球裂解而来,故导致囊胚腔液活检的阳性预测值较低。
目前,囊胚腔液活检仍处於实验阶段,其游离DNA的来源尚未明确,是否能代表内细胞团的DNA仍需更多的实验验证。
另外,在目前的胚胎培养技术条件下,并不是所有的胚胎都能发育成囊胚,且由于囊胚腔液体积较少,部分样本有扩增失败可能。
此项技术目前仍处于实验阶段,有较好的发展和应用前景。
4.2培养基活检培养基活检是利用培养液中游离DNA来推测胚胎的遗传学特征,其游离DNA 来源主要是细胞坏死、细胞凋亡以及细胞分泌而来。
培养基活检的优势在于完全不损伤胚胎细胞,达到真正的无创性检测,同时样本获取方便,收集方法简单。
Assou[17]等2014年首先应用培养基中的游离DNA测定胚胎性染色体。
Xu[18]等利用囊胚期的培养基中游离DNA,对胚胎染色体整倍体性进行分析,相对于囊胚期胚胎外滋养层活检比较,培养基活检的敏感性为0.882,特异性为0.840。
Wu[19]等将培养基活检应用与在α地中海贫血基因的检测中,分析D4-6培养基中游离DNA,与囊胚期活检相比,培养基活检诊断有效率为88.61%;同时作者比较了D4、D5及D6培养基活检的有效性,发现D5培养基诊断有效率最高。
培养基活检具有无创性、样本收集方便、快速等优势,有巨大的发展前景。
但是培养基中游离DNA是否能代表胚胎遗传特性,以及如何清除培养基中添加物、颗粒细胞、精子等外界、母源性、父源性的干扰,仍需更多的临床试验结果来验证其可行性及准确性。
5 小结胚胎活检是PGD/PGS中至关重要的步骤,极体活检由于自身特性在应用上收到限制,卵裂球活检曾是全球应用最广泛的活检方法,但由于卵裂期胚胎嵌合体比例高,且处于对胚胎着床能力及子代安全性考虑,应用逐渐减少。
囊胚滋养外胚层活检由于其可供检测细胞较多、囊胚嵌合体比例低且不影响胚胎后续发育潜能等优势,逐渐成为目前最常用的活检方法。
但上述活检方法对于胚胎、配子而言,仍属于有创性操作。
为寻找更无创且准确、方便等活检方式,近期发现囊胚腔液及培养基中存在游离DNA可反映胚胎遗传特性,但其可行性及准确性仍需更多临床试验验证。
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