85 细菌内毒素检查法USP37

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中国药典和美国药典的内毒素检测要求

中国药典和美国药典的内毒素检测要求

鲎试剂-LAL,中国药典和美国药典的内毒素检测要求鲎试剂是从栖生于海洋的节肢动物“鲎”的兰色血液中提取变形细胞溶解物,经低温冷冻干燥而成的生物试剂,专用于细菌内毒素检测。

鲎试验法是国际上至今为止检测内毒素最好的方法,它简单﹑快速﹑灵敏﹑准确,因而被欧美药典及我国药典定为法定内毒素检查法,并已被世界各国所采用。

目前国际上销售的鲎试剂有两种,一种称美洲鲎试剂(Limulus Amebocyte Lysate),缩写为LAL,由美国生产;另一种称东方鲎鲎试剂(Tachypleus Amebocyte Lysate),缩写为TAL。

实验证明:美洲鲎试剂-LAL比东方鲎试剂LAL更纯洁,检测效果更好。

TAL检查内毒素有很多方法,目前应用最广泛的是凝胶法,此外还有动态浊度法﹑显色基质法,比色法等。

其用途有以下几方面:1. 药检:用于注射药品﹑放射性药物﹑生物制品﹑注射器及生产工艺流程中的内毒素检测;2. 临床:用于检测病人各种体液中的内毒素含量;3. 其他:用于检测水或食品中的内毒素含量。

2005年版中国药典《细菌内毒素检查法-鲎试剂法》(鲎试剂-LAL法)本法系利用鲎试剂来检测或量化由革兰阴性菌产生的细菌内毒素,以判断供试品中细菌内毒素的限量是否符合规定的一种方法。

细菌内毒素检查包括两种方法,即凝胶法和光度测定法,后者包括浊度法和显色基质法。

供试品检测时,可使用其中任何一种方法进行试验。

当测定结果有争议时,除另有规定外,以凝胶法结果为准。

细菌内毒素的量用内毒素单位(EU)表示。

细菌内毒素国家标准品系自大肠杆菌提取精制而成,用于标定、复核、仲裁鲎试剂灵敏度和标定细菌内毒素工作标准品的效价。

细菌内毒素工作标准品系以细菌内毒素国家标准品为基准标定其效价,用于试验中鲎试剂灵敏度复核、干扰试验及设置的各种阳性对照。

凝胶法细菌内毒素检查用水系指内毒素含量小于0.015EU/ml的灭菌注射用水。

定量测定用的细菌内毒素检查用水,其内毒素的含量应小于0.005EU/ml。

四国药典细菌内毒素对比

四国药典细菌内毒素对比
λ为在凝胶法中鲎试剂的标示灵敏度(EU/ml),或是在光度测定法中所使用的标准曲线上最低的内毒素浓度。
EP(8.0)
最大有效稀释倍数(MVD)指可检测出内毒素限值的供试品溶液的最大稀释倍数。MVD按下列公式确定:
MVD = 内毒素限值×供试品溶液浓度/λ
内毒素限值:在剂量的基础上,注射药物的活性成分的内毒素限度为K/M
JP(16)
内毒素储备标准溶液的制备
以BET检查用水溶解内毒素10000对照标准品或内毒素100对照标准品,制取细菌内毒素试验(BET)的内毒素储备标准溶液。内毒素的量用内毒素单位(EU)表示。1EU相当于1个内毒素国际单位(IU)。
内毒素标准溶液的制备
充分混合内毒素储备标准溶液后,用水稀释,即得BET检查用内毒素标准溶液。得到的稀释液应尽快使用,以免因吸附而导致活性损失。
EP(8.0)
内毒素储备标准溶液的制备
用内毒素标准品制备内毒素储备标准溶液;所用的内毒素标准品必须先用国际标准品校准,如内毒素标准BRP。
内毒素以国际单位(IU)表示。IU的换算见国际卫生组织公布的国际标准。
注:一国际单位(IU)内毒素相当于一个内毒素单位(E.U.)。
根据包装说明书上的标准和内毒素储备标准溶液的标签上关于制备和贮存的说明。
EP(8.0)
干热灭菌法(250℃,30分钟以上),塑料器具应无内毒素并且对试验无干扰
USP(36)
干热灭菌法(250℃,30分钟以上),塑料器具应无内毒素并且对试验无干扰
JP(16)
干热灭菌法(250℃,30分钟以上),塑料器具应无内毒素并且对试验无干扰
溶液制备
CP(2015)
供试品溶液的制备
某些供试品需进行复溶、稀释或在水性溶液中浸提制成供试品溶液。必要时,可调节被测溶液(或其稀释液)的pH值,一般供试品溶液和鲎试剂混合后溶液的pH值在6.0-8.0的范围内为宜,可使用适宜的酸、碱溶液或缓冲液调节pH值。酸或碱溶液须用细菌内毒素检査用水在已去除内毒素的容器中配制。缓冲液必须经过验证不含内毒素和干扰因子。

细菌内毒素USP(清晰整齐)

细菌内毒素USP(清晰整齐)

BACTERIAL ENDOTOXINS TEST <85> USP35Portions of this general chapter have been harmonized with the corresponding texts ofthe European Pharmacopoeia and/or the Japanese Pharmacopoeia. Those portions that are not harmonized are marked with symbols () to specify this fact.这一章节已经和欧洲药典(EP)与日本药典(JP)统一。

没有统一的部分已经用标记出来。

The Bacterial Endotoxins Test (BET) is a test to detect or quantify endotoxins from Gram-negative bacteria using amoebocyte lysate from the horseshoe crab (Limulus polyphemus or Tachypleus tridentatus).细菌内毒素检查法(BET)是通过鲎的阿米巴细胞溶解产物来检测或定量来自革兰氏阴性菌的内毒素。

There are three techniques for this test: the gel-clot technique, which is based on gel formation; the turbidimetric technique, based on the development of turbidity after cleavage of an endogenous substrate; and the chromogenic technique, based on the development of color after cleavage of a synthetic peptide-chromogen complex. Proceed by any of the three techniques for the test. In the event of doubt or dispute, the final decision is made based upon the gel-clot technique unless otherwise indicated in the monograph for the product being tested. The test is carried out in a manner that avoids endotoxin contamination.细菌内毒素检查法有3种:凝胶法,基于凝胶的形成;浊度法,BACTERIAL ENDOTOXINS TEST USP32Portions of this general chapter have been harmonized with the corresponding texts of the European Pharmacopeia and/or the Japanese Pharmacopeia. Those portions that are notharmonized are marked with symbols () to specify this fact.This chapter provides a test to detect or quantify bacterial endotoxins that may be present in or on the sample of the article(s) to which the test is applied. It uses Limulus Amebocyte Lysate (LAL) obtained from the aqueous extracts of circulating amebocytes of horseshoe crab (Limulus polyphemus or Tachypleus tridentatus) which has been prepared and characterized for use as anLAL Reagent.1There are two types of techniques for this test: the gel-clot techniques, which are based on gel formation, and the photometric techniques. The latter include a turbidimetric method, which is based on the development of turbidity after cleavage of an endogenous substrate, and a chromogenic method, which is based on the development of color after cleavage of a synthetic peptide-chromogen complex. Proceed by any one of these techniques, unless otherwise indicated in the monograph. In case of dispute, the final decision is based on the gel-clot techniques, unless otherwise indicated in the monograph.In the gel-clot techniques, the reaction endpoint is determined from dilutions of the material under test in direct comparison with parallel dilutions of a reference endotoxin, and quantities of endotoxin are expressed in USP Endotoxin Units (USP-EU).[NOTE—One USP-EU is equal to one IU of endotoxin.]Because LAL Reagents have been formulated to be used also for turbidimetric or colorimetric tests, such tests may be used to comply with the requirements. These tests require the establishment of a standard regression curve; the endotoxin content of the test material is determined by interpolation from the curve. The procedures include incubation for a preselected time of reacting endotoxin and control solutions with LAL Reagent and reading of the spectrophotometric light absorbance at suitable wavelengths. In the endpoint turbidimetric procedure the reading is made immediately at the end of the incubation period. In the endpoint colorimetric procedure the reaction is arrested at the end of the preselected time by the addition of an enzyme reaction-terminating agent prior to the readings. In the turbidimetric and colorimetric kinetic assays the absorbance is measured throughout the reaction period and rate values are determined from those readings.APPARATUS AND GLASSWAREDepyrogenate all glassware and other heat-stable materials in a hot-air oven using a validatedprocess.2Commonly used minimum time and temperature settings are 30 minutes at 250. If employing plastic apparatus, such as microplates and pipet tips for automatic pipetters, useonly that which has been shown to be free of detectable endotoxin and not to interfere with the test.[NOTE—In this chapter, the term “tube” includes any other receptacle such as a micro-titer well.]PREPARATION OF THE STANDARD ENDOTOXIN STOCK SOLUTION AND STANDARD SOLUTIONS The USP Endotoxin RS has a defined potency of 10,000 USP Endotoxin Units (EU) per vial. Constitute the entire contents of 1 vial of the RSE with 5 mL of LAL Reagent Water3, mixintermittently for 30 minutes, using a vortex mixer, and use this concentrate for making appropriate serial dilutions. Preserve the concentrate in a refrigerator for making subsequent dilutions for not more than 14 days. Mix vigorously, using a vortex mixer, for not less than 3 minutes before use. Mix each dilution for not less than 30 seconds before proceeding to make the next dilution. Do not store dilutions, because of loss of activity by adsorption, in the absence of supporting data to the contrary.Preparatory TestingUse an LAL Reagent of confirmed label sensitivity.The validity of test results for bacterial endotoxins requires an adequate demonstration that specimens of the article or of solutions, washings, or extracts thereof to which the test is to be applied do not of themselves inhibit or enhance the reaction or otherwise interfere with the test. Validation is accomplished by performing the inhibition or enhancement test described under each of the three techniques indicated. Appropriate negative controls are included. Validation must be repeated if the LAL Reagent source or the method of manufacture or formulation of the article is changed.Preparation of Sample SolutionsPrepare sample solutions by dissolving or diluting drugs or extracting medical devices using LAL Reagent Water. Some substances or preparations may be more appropriately dissolved, diluted, or extracted in other aqueous solutions. If necessary, adjust the pH of the solution (or dilution thereof) to be examined so that the pH of the mixture of the LAL Reagent and sample falls within the pH range specified by the LAL Reagent manufacturer. This usually applies to a product with a pH in the range of 6.0 to 8.0. The pH may be adjusted using an acid, base, or suitable buffer as recommended by the LAL Reagent manufacturer. Acids and bases may be prepared from concentrates or solids with LAL Reagent Water in containers free of detectable endotoxin. Buffers must be validated to be free of detectable endotoxin and interfering factors.DETERMINATION OF MAXIMUM VALID DILUTION (MVD)The Maximum Valid Dilution is the maximum allowable dilution of a specimen at which the endotoxin limit can be determined. It applies to injections or to solutions for parenteral administration in the form constituted or diluted for administration, or, where applicable, to theamount of drug by weight if the volume of the dosage form for administration could be varied. The general equation to determine MVD is:MVD = (Endotoxin limit × Concentration of sample solution)/()where the concentration of sample solution and are as defined below. Where the endotoxin limit concentration is specified in the individual monograph in terms of volume (in EU per mL), divide the limit by, which is the labeled sensitivity (in EU per mL) of the LAL Reagent, to obtainthe MVD factor. Where the endotoxin limit concentration is specified in the individual monograph in terms of weight or Units of active drug (in EU per mg or in EU per Unit), multiply the limit by the concentration (in mg per mL or in Units per mL) of the drug in the solution tested or of the drug constituted according to the label instructions, whichever is applicable, and dividethe product of the multiplication by, to obtain the MVD factor. The MVD factor so obtained is the limit dilution factor for the preparation for the test to be valid.ESTABLISHMENT OF ENDOTOXIN LIMITSThe endotoxin limit for parenteral drugs, defined on the basis of dose, is equal to K/M,4where K is the threshold human pyrogenic dose of endotoxin per kg of body weight, and M isequal to the maximum recommended human dose of product per kg of body weight in a single hour period.The endotoxin limit for parenteral drugs is specified in individual monographs in units such as EU/mL, EU/mg, or EU/Unit of biological activity.GEL-CLOT TECHNIQUESThe gel-clot techniques detect or quantify endotoxins based on clotting of the LAL Reagent in the presence of endotoxin. The concentration of endotoxin required to cause the lysate to clot under standard conditions is the labeled sensitivity of the LAL Reagent. To ensure both the precision and validity of the test, tests for confirming the labeled LAL Reagent sensitivity and for interfering factors are described under Preparatory Testing for the Gel-Clot Techniques.Preparatory Testing for the Gel-Clot TechniquesTest for Confirmation of Labeled LAL Reagent Sensitivity—Confirm the labeled sensitivity using at least 1 vial of the LAL Reagent lot. Prepare a series of two-fold dilutions of the USP EndotoxinRS in LAL Reagent Water to give concentrations of 2,, 0.5, and 0.25, where is as defined above. Perform the test on the four standard concentrations in quadruplicate and。

药典分析方法验证(USP37)

药典分析方法验证(USP37)

标准操作程序STANDARD OPERATING PROCEDURE1、目的:建立药典分析方法验证(USP>标准操作规程。

2、范围:药典分析方法验证(USP>。

3、责任者:质量研究部、QC化验员。

4、程序:[标准来源]USP37<1225>药典分析方法验证用于评价药物质量的检验方法应符合一定要求。

根据联邦食品、药品、化妆品第501条的规定,在美国药典<USP)和国家处方集(NF>的正文检验方法和规定为法定标准。

按照现行药品生产管理规范有关条文[21 CFR 211.194(a>]要求,用于评价药品是否符合既定标准规定的分析方法应具有一定准确性和可靠性。

按照该要求[21 CFR 211.194(a>(2>],USP和NF分析方法使用者不必验证方法的准确性和可靠性,但要确认在实际使用条件下的适用性。

考虑到USP 和NF标准法定地位这一基本情况,所以,药典品种新方法或修订方法得建议,应由充分实验室数据支持,以说明方法有效。

本指导通则内容尽可能与三方国际协调会<ICH)关于在欧盟、日本和美国注册申报资料要求中与分析方法部分有关的分析方法验证和方法学文本一致。

药典申报新的或修订的分析方法得药典申报,应报送充分的资料,以便美国药典委员会专家理事会及其专家委员会对建议的方法进行审评。

多数情况下,审评内容一般为评价叙述的分析方法是否清晰完整,需要建立该方法的结论,以及方法验证文本。

方法类型不同,申报要求可能不同,一般包括下列内容:理由写明需要本方法的理由、用途以及与其他方法比较的优点。

修订的方法应写明现行药典方法的局限性以及建议方法得优点。

建议的分析方法应完整详细地写明建议的分析方法,以便他人依法操作。

文字应包括全部重要的操作参数和有关事项以及明确的实验结果计算公式。

数据元素本部分要求提供详细、完整的分析方法验证文件,文件应包括实验数据及各适用的分析方法运行特性计算结果。

细菌内毒素检测方法

细菌内毒素检测方法

(85)细菌内毒素检查法✹本章内容已与《欧洲药典》和/或《日本药局方》相应的内容统一,不一致的部分用符号(✹✹)标记。

✹细菌内毒素检查法(BET)系利用鲎试剂(美洲鲎或中国益)检测或量化革兰阴性菌产生的细菌内毒素。

可采用三种技术进行细菌内毒素检查:基于凝胶形成的凝胶法;基于内源性底物裂解后浊度变化的比浊法;基于合成胁显色基质复合物裂解后发生颜色变化的显色法。

可采用上述任意一种方法进行检测。

当对测定结果有怀疑或争议时,除另有规定外,以凝胶法测定结果为准。

本法操作过程中应防止内毒素的污染。

器具应按照经过验证的程序将所有玻璃器皿和其他热稳定材料置于干热烤箱中去除热原。

✹①✹通常使用的最低温度和最短时间为250℃加热30分钟。

如果使用多孔板和微量加样器吸头等塑料器具时,只有证明其不含有可检出的内毒素并对试验无干扰方可使用。

(注:本章中的“管”包括微孔板中的孔等所有反应容器。

)试剂和试液试剂是由鲎(美洲鲎或中国鲎)的阿米巴细胞(白细胞)溶解产物制得的冻干品。

这种试剂必须是按照权威机构认定的规程生产的产品。

(注:除内毒素外,鲎试剂也与P葡聚糖反应。

通过消除G因子或抑制G因子反应系统,能够制得不与葡聚糖反应的鲎试剂,此种鲎试剂可用于葡聚糖存在情况下的内毒素检查。

)内毒素检查(BET)用水在检测限内不与鲎试剂产生凝集反应的注射用水或用其他方法制备的水。

鲎测试液将鲎试剂溶解于内毒素检查用水或鲎试剂生产企业推荐的缓冲液中,轻轻混匀。

复溶的鲎试剂须按照生产企业的规定冷藏或冷冻保存。

溶液的制备内毒素标准品贮备液使用经现行WHO国际内毒素标准品标定过的美国药典内毒素标准品配制内毒素标准品贮备液。

按照包装说明书和标签上的规定制备、贮存贮备液。

内毒素的单位用EU表示。

[注:1个美国药典内毒素单位(EU)等于1个国际内毒素单位(IU)]内毒素标准品溶液将内毒素标准品贮备液充分混匀后,用内毒素检查用水进行连续稀释。

为避免因内毒素的吸附而导致失活,配制后的稀释液应尽快使用。

药典三部(2015版)-通则-细菌内毒素检查法

药典三部(2015版)-通则-细菌内毒素检查法

1143 细菌内毒素检查法本法系利用鲎试剂来检测或量化由革兰阴性菌产生的细菌内毒素,以判断供试品中细菌内毒素的限量是否符合规定的一种方法。

细菌内毒素检查包括两种方法,即凝胶法和光度测定法,后者包括浊度法和显色基质法。

供试品检测时,可使用其中任何一种方法进行试验。

当测定结果有争议时,除另有规定外,以凝胶限度试验结果为准。

本试验操作过程应防止内毒素的污染。

细菌内毒素的量用内毒素单位(EU)表示,1EU与1个内毒素国际单位(IU)相当。

细菌内毒素国家标准品系自大肠埃希菌提取精制而成,用于标定、复核、仲裁鲎试剂灵敏度、标定细菌内毒素工作标准品的效价,干扰试验及检查法中编号B和C溶液的制备、凝胶法中鲎试剂灵敏度复核试验、光度测定法中标准曲线可靠性试验。

细菌内毒素工作标准品系以细菌内毒素国家标准品为基准标定其效价,用于干扰试验及检查法中编号B和C溶液的制备、凝胶法中鲎试剂灵敏度复核试验、光度测定法中标准曲线可靠性试验。

细菌内毒素检查用水应符合灭菌注射用水标准,其内毒素含量小于0.015EU/ml(用于凝胶法)或0.005EU/ml(用于光度测定法),且对内毒素试验无干扰作用。

试验所用的器皿需经处理,以去除可能存在的外源性内毒素。

耐热器皿常用干热灭菌法(250℃、30分钟以上)去除,也可采用其他确证不干扰细菌内毒素检查的适宜方法。

若使用塑料器皿,如微孔板和与微量加样器配套的吸头等,应选用标明无内毒素并且对试验无干扰的器具。

供试品溶液的制备某些供试品需进行复溶、稀释或在水性溶液中浸提制成供试品溶液。

必要时,可调节被测溶液(或其稀释液)的pH值,一般供试品溶液和鲎试剂混合后溶液的pH值在6.0~8.0的范围内为宜,可使用适宜的酸、碱溶液或缓冲溶液调节pH值。

酸或碱溶液须用细菌内毒素检查用水在已去除内毒素的容器中配制。

缓冲液必须经过验证不含内毒素和干扰因子。

内毒素限值的确定药品、生物制品的细菌内毒素限值(L)一般按以下公L=K/M式中L为供试品的细菌内毒素限值,一般以EU/ml、EU/mg或EU/U(活性单位)表示;K为人每千克体重每小时最大可接受的内毒素剂量,以EU/(kg·h)表示,注射剂K=5 EU/(kg·h),放射性药品注射剂K=2.5 EU/(kg·h),鞘内用注射剂K=0.2 EU/(kg·h);M为人用每千克体重每小时的最大供试品剂量,以ml/(kg·h)、mg/(kg·h)或U/(kg·h)表示,人均体重按60kg计算,人体表面积按1.62㎡计算。

细菌内毒素检查方法

细菌内毒素检查方法

细菌内毒素检查方法综述【关键词】细菌内毒素检查法;,,,机理;,,,预实验;,,,特殊值细菌内毒素检查是静脉、鞘内给药药物以及放射性药物等质量检查的一个重要方面。

以前,细菌内毒素检查用家兔热原法进行,自从1980年《美国药典》第20版收载了细菌内毒素实验以来,《英国药典》《欧洲药典》《日本药局方》《中国药典》等相继收载了该方法。

1995年《美国药典》第23版已收载了471种药品进行细菌内毒素检查,而《中国药典》1995年版也收载了12种药品进行细菌内毒素检查[1],2000版更收载有47种药品利用此方法进行热原检查。

细菌内毒素检查法已逐渐代替家兔热原检查法,显示出其在检查热原方面的重要性。

本文对细菌内毒素检查法作一综述。

1 方法、机理及影响因素1.1 应用的方法目前,美国药品食品管理局(FDA)承认3种鲎试剂检测细菌内毒素含量的方法,即凝胶(gelclot)法、生色(chromogenic)法和动态浊度(keniticturbidimetry)法[2]。

近年来较新的方法有水箭电泳免疫法(测残余蛋白)、酶联免疫吸附法(测残余酶)。

后者所需鲎试剂仅相当于凝胶法的1/100,且灵敏度更高,抗干扰能力更好。

《中国药典》1995年版只采用凝胶法。

凝胶法是将等体积的供试品溶液和新配制的鲎试剂(TAL)溶液在试管中混匀,一般各0.1 ml,(37±1)℃反应(60±2)min。

如果被检测的溶液不含干扰凝集反应的因素,且其含有内素素浓度等于或大于所用鲎试剂的灵敏度(λ)时,就会在试管中显示阳性反应,即形成凝胶;否则呈阴性反应,即呈澄明溶液或轻度混浊,视内毒素的浓度而定[1]。

该反应极其灵敏,凝胶形成速率与内毒素浓度成正比,并受温度、反应物中Ca2 /Mg2 离子浓度和pH等因素的影响[3]。

同样,《中国药典》2000年版也只采用凝胶法。

淘金者1.2 凝胶法鲎试剂与内毒素反应的机理见图1。

图1 凝胶法鲎试剂与内毒素反应的机理(略)2 影响细菌内毒素检查的因素2.1 检品的干扰pH值、离子浓度以及某些干扰成分,都会影响到检查结果的准确性,得到所谓“假阳性”或“假阴性”结果。

细菌内毒素检测方法

细菌内毒素检测方法

细菌内毒素检测方法(译自英国药典版,等同欧洲药典版。

见原文之附录BP2004EP5XIV A方法)2.6.14.本文所描述的五种方法用于检测产品中是否存在细菌内毒素,而这些方法适用于药典中的细菌内毒素的检查法限度试验方法的制定者希望弄清楚,如在--.生产中能否降低其产品中的内毒素的含量,本篇幅中有关使用这些测试的相关方法将在补充的附录被提供。

细菌内毒素的检测原理是利用鲎变形细胞的溶解物来进行的(,,,试验)。

将含内毒素的溶液加入鲎变形细胞的溶解物可产生浑浊、沉淀或混合物的凝胶化反应。

反应速度依赖于溶液中的内毒素的浓度、和温度;反应要求有一定量pH 的二价阳离子、一个原凝酶系和可溶性蛋白的创造,而这些都哪由鲎变形细胞的溶解物提供。

采用从染色基因肽中释放的染料浓度来进行测定样品的内毒素浓度。

下面五种方法将在后面文章中介绍;方法:凝胶法;限度试验A方法:半定量凝胶法B方法:动力学浑浊法C方法:动力学发色肽方法D方法:发色肽终点法E当一篇专门文献中介绍内毒素的测定而没有指明某一种方法时,那么测试的方法就是按照方法。

次种方法已经得到证实,否则,产品的有效检测将会在A 专门文献中特别提到。

很多专著以“细菌内毒素限定浓度”的概念给出了细菌内毒素指标,也即某种产品所含细菌内毒素浓度不能超过限定浓度,要想证明产品符合要求,就必须表明产品所含内毒素的含量是少于内毒素限定浓度的。

试验是利用一种能避免微生物污染的方式进行的。

检测前的准备工作中,必须证实如下内容:1——所以的设备器皿不吸附内毒素。

——溶解物的灵敏度λ,λ是被定义为标记的溶解物敏感度或者最低内毒素浓度被用于制作标准曲线的(定量法)。

——干扰素的排除;如有必要时,需对设备和器具进行处理,以减少其本身所带内毒素。

除非特别指明外,否则在文献中从方法A到E中均采用相同标准。

在本篇附录中,术语说明中包括任何其他的容器,诸如一个微滴定率的极板等。

本试验包括如下试剂和标准溶液制备:标准细菌内毒素BRP;与国际标准相比较,对标准内毒素BRP进行效准,并以国际标准单位来表示。

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&lt;85&gt;细菌内毒素试验USP37
装置
将用于验证过程的所有玻璃器皿和热稳定性材料置于干热灭菌箱中以除去热原。

最小灭菌时间和温度一般为30min,250°。

若需使用塑料器皿,例如微孔板或自动加样器配套的吸头等,应选用标明无内毒素且对试验无干扰的器械。

【注:在本章中,“管”的意思包括其他任何反应容器,如微量滴定管】试剂及试液
阿米巴溶解产物(鲎试剂)——鲎试剂是一种由寄生于鲎(中国鲎或美洲鲎)中的阿米巴虫的溶解产物(白血细胞)获得的冻干产品。

该试剂符合有关法规要求。

【注:鲎试剂会对一些除内毒素外的β-葡葡聚糖起反应。

可利用鲎试剂不与葡聚糖反应,通过移除阿米巴溶解产物中会与葡聚糖反应的G因子或抑制阿米巴溶解产物的G因子反应系统和用于存在葡聚糖的内毒素试验。


细菌内毒素检查用水(BET)——用注射用水或其他不与鲎试剂反应的在灵敏限度内的水。

溶菌液供试液——在缓慢搅拌下,阿米巴溶解产物(鲎试剂)溶于BET检查用水或鲎试剂生产商建议的缓冲液中,根据生产需要贮存重组的鲎试剂,冷藏或冷冻。

溶液的制备:
标准内毒素储备液——标准内毒素储备液是根据包装上的说明书,制剂标签上标准内毒素储备液的储存和制备,用现行的WHO国际标准校准过的USP内毒素标准品制备的。

内毒素用EU 表示。

【注:1EU=1IU】
内毒素标准液——将内毒素储备液混合均匀,再用细菌内毒素检查用水对其作适当的系列稀释。

尽快使用稀释液,以避免因吸附而失去活性。

供试液——供试溶液是通过用细菌内毒素检查用水溶解、稀释药物制备。

某些物质或制剂可能在其他水溶液中被更适当地溶解、稀释。

如有必要,调节待测溶液的pH值,使鲎试剂和样品的混合物pH在由鲎试剂生产者定的pH范围内。

通常使用于pH范围在6.0-8.0的产品。

pH 的调节可以用鲎试剂生产者推荐的酸、碱或适当的缓冲液。

酸和碱可以在已去除内毒素的容器中用浓缩液或固体和细菌内毒素检查用水制备。

缓冲剂必须进行验证无内毒素和干扰因子。

最大有效稀释液(MVD)测定
最大有效稀释液是指内毒素限度待测样品的允许的最大范围的稀释液。

用下列公式测定MVD:MVD = (内毒素限度×供试液浓度)/(λ)
内毒素限度——注射药品的内毒素限度取决于剂量,等于K/M2,其中K是每千克体重内毒素的阈值热剂量;M是每千克体重产品的最大推荐剂量。

当进行间隔频繁注射和连续输液时,M 是指每小时给药的最大总剂量。

在药典中,注射药品的内毒素限度规定为EU/mL, EU/mg, EU/单位生物活性,等。

供试液浓溶液——
mg/mL内毒素规定为重量(EU/mg)的情况下;Units/mL内毒素规定为重量(EU/单位生物活性)的情况下;mL/mL内毒素规定为重量(EU/mL)的情况下。

λ凝胶法(EU/mL)或者用于浊度法和显色法标准曲线的最低浓度的标示灵敏度。

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