茶树芽叶花色苷含量测定方法的研究

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ph示差法测花色苷原理

ph示差法测花色苷原理

ph示差法测花色苷原理花色苷,听名字就感觉高大上,是吧?它们就是植物中的一种天然色素,通常藏在水果和花朵里,给我们带来那些迷人的色彩。

说到测量这些花色苷,大家听过“pH示差法”吗?这可是一种挺有意思的方法,像个小魔法一样,能让我们了解这些色素的秘密。

今天就来聊聊这个方法,轻松点,咱们不用专业术语,像聊天一样。

先来点背景知识。

花色苷其实是种有趣的东西,主要存在于植物中,负责色彩的传递。

你看到那些鲜艳的蓝莓、红葡萄,这些颜色可都是它们的功劳。

好吧,别光想着吃的,咱们得说说怎么测它们。

pH示差法可真是个神奇的工具,简单又有效。

它依靠植物色素对酸碱环境的反应,来判断花色苷的含量。

听起来像在做化学实验,但其实就像是在调饮料一样,酸酸甜甜的。

这个方法怎么操作呢?想象一下,你拿着一杯饮料,慢慢加入柠檬汁,颜色会变化,对吧?花色苷也是一样,pH值不同,它们的颜色就会出现大变脸。

比如在酸性环境下,颜色可能偏红;而在碱性环境下,颜色可能变成蓝色,甚至绿色。

是不是很神奇?就像小丑变魔术,令人目不暇接。

科学家们就利用这个变化来测量花色苷的含量,简单又直接。

使用这个方法,咱们需要一些仪器和试剂,像酸碱指示剂这些小家伙。

没啥复杂的,只要把样品调和后加点指示剂,就能看到颜色变化。

然后,再用比较的方法,把结果和标准样本对比,便能得出结果。

其实整个过程就像在玩颜色游戏,轻松又有趣。

只不过,这个游戏可以帮助我们了解植物的营养成分,对农业、药学都有很大的帮助。

很多人会问,为什么选择pH示差法呢?嘿,答案简单。

这个方法不需要高深的仪器,普通的实验室就能搞定。

结果精准,误差小。

它能快速出结果,像快餐一样,省时省力。

想想看,咱们做实验时,等个几天的感觉,真是让人抓狂。

用pH示差法,立马就能看到颜色变化,心里乐开了花。

大家可能想问,这个方法有没有局限性呢?当然有!就像一把双刃剑,既有优点,也有不足。

比如,对于某些复杂的植物样品,可能会出现干扰,导致结果不那么准确。

花青苷(花色苷)种类、提取及检测

花青苷(花色苷)种类、提取及检测

花青苷种类、提取及检测一.种类花色素均具有类黄酮的基本结构,由两个苯环和一个含氧杂环组成的(C6-C3-C6)C15化合物(如图),根据B环羟基化和甲基化位置和数目的不同而将花色素主要分为六类:天竺葵色素((Pelargonidin)、矢车菊色素((cyanidin)、芍药色素(peonidin)(3'-甲基矢车菊色素)、飞燕草色素(delphinidin)、矮牵牛色素(petunidin)(3',5'-甲基飞燕草色素)和锦葵色素(malvidin)( 3',5'-二甲基飞燕草色素)。

不同植物中花色素发生糖苷化的位点(C3、C5和C7位等)和数目的差异,及酞化程度的不同使植物中存在着不同的花色素普,其结构复杂,但都以这六种花色素为基本结构(Grotewold,2006)。

二.提取国内外学者对花青苷的提取做了大量研究,提取目的及目标花青苷不同,提取方法略有差异。

花青苷易溶于水、甲醇、乙醇等极性溶液,花青苷的稳定性受酶、温度、氧气、光、pH值、金属离子等理化性质的影响,在中性和碱性条件下不稳定。

提取过程常采用酸性溶液,酸能够破坏植物细胞膜并溶解水溶性色素,甲醇溶液提取效率高于乙醇及水溶液。

花青苷一般用于食品着色,考虑到甲醇的不安全因素,一般选用体积分数为1%的乙醇溶液。

采用盐酸酸化可保持提取液pH值较低,阻止无酰基花青苷的降解。

随着盐酸被浓缩,pH 值升高,导致花青苷的降解。

为获得更接近于天然状态的花青苷,采用弱有机酸或中性溶剂做初步提取,弱有机酸多用甲酸、乙酸、丙酸、柠檬酸和酒石酸,中性溶剂一般采用丙酮作提取剂。

粗提后的花青苷提取液浓度很低,浓缩时一般不超过40℃,时间也不宜太长。

1.2.花青苷含量的测定:用0.1%的盐酸甲醇浸提叶片2 h后,测657nm、530nm处的吸光度。

3.4.5.6.7.8.9.三.检测紫外—可见光谱是花青苷结构鉴定的经典方法,其鉴定方法为:①花青苷有2个最大吸收波长,500~540nm附近及27nm附近,据此可判定是否为花青苷色素;②若B环有邻位酚羟基,则向体积分数0.01%盐酸-甲醇溶液中滴加3~5 滴AlCl3,甲醇或乙醇溶液时会出现蓝移;③糖苷位置可据花青苷吸光度比值A440/A max判定;④在波长300~330nm间有吸收峰,表明存在酰基;⑤若在波长440n处有肩峰,则5号位羟基没被取代;⑥若在紫外光下有荧光,表明在5号位有取代基。

食品中花色苷物质的提取与评价分析方法研究

食品中花色苷物质的提取与评价分析方法研究

食品中花色苷物质的提取与评价分析方法研究食品是人类生活中不可或缺的重要组成部分,而食品的质量与营养价值与我们的健康息息相关。

其中,花色苷作为一类重要的生物活性物质,在食品中的含量和质量评价上具有重要意义。

本文将探讨食品中花色苷物质的提取与评价分析方法的研究进展。

首先,花色苷是一类在植物中广泛存在的化合物,其具有抗氧化、抗炎、抗癌等多种生物活性。

因此,研究食品中花色苷的含量和活性对于评估食品的营养价值和功能性具有重要意义。

目前,常用的花色苷提取方法主要包括传统浸提法、超声波浸提法、微波辅助浸提法等。

这些方法均能有效提取食品中的花色苷物质,但其提取效率和稳定性仍然是需要改进的方面。

其次,针对花色苷物质的评价分析方法也日益多样化。

最常见的评价方法是高效液相色谱法(HPLC),该方法通过对待测样品进行分离和检测,能够准确测定花色苷的含量,并且具有灵敏度高、分辨率好等优点。

此外,近年来还涌现出一些新的评价方法,如基于荧光、红外光谱等技术的分析方法。

这些新方法能够提高测定效率,减少样品前处理步骤,并且能够对多个成分进行同时测定,从而更好地满足食品分析的需求。

另外,花色苷的评价分析方法也面临一些挑战和问题。

首先,不同食品样品中花色苷的组成和含量可能存在较大差异,因此,开发适用于不同食品的标准分析方法是亟待解决的问题。

其次,一些食品中的花色苷物质含量较低,对于灵敏度要求较高的分析方法仍然有待改进。

此外,花色苷物质的结构多样化,导致不同花色苷物质之间的相互转化和互相影响,使得分析方法的选择和分析结果的解释变得更加复杂。

综上所述,食品中花色苷物质的提取与评价分析方法的研究是一个具有挑战性和重要意义的课题。

当前,虽然已经有许多方法被提出和应用于花色苷的提取和评价,但仍然需要进一步完善和改进。

相信随着科学技术的不断发展和进步,我们能够找到更加高效、灵敏和准确的方法,为评估食品的营养价值和功能性提供更有力的支持。

食品科学领域的专家和研究者们将继续努力,推动食品分析方法的创新和改进,为人类提供更加健康和有益的食品。

植物花色苷检测

植物花色苷检测

迪信泰检测平台
植物花色苷检测
花色苷(Anthocyanin)是广泛存在于植物根、茎、叶、果实等器官的细胞液中的黄酮类化合物,由花色素与糖以糖苷键结合而成的,可使植物呈现由红、紫红到兰等不同颜色。

作为一种天然色素,具有抗氧化、抗衰老、抗癌、抑菌、抗病毒及预防心脑血管疾病等多种生物学功能,因此在食品、化妆品、医药领域具有重要的开发利用价值和应用前景。

迪信泰检测平台采用生化法,可高效、精准的检测植物花色苷的含量。

此外,我们还提供其他氧化应激类检测服务,以满足您的不同需求。

生化法测定植物花色苷样本要求:
1. 请确保样本量大于0.2g或者0.2mL。

周期:2~3周。

项目结束后迪信泰检测平台将会提供详细中英文双语技术报告,报告包括:
1. 实验步骤(中英文)。

2. 相关参数(中英文)。

3. 图片。

4. 原始数据。

5. 植物花色苷含量/活性信息。

迪信泰检测平台可根据需求定制其他物质测定方案,具体可免费咨询技术支持。

茶树花的化学成分及开发利用研究进展

茶树花的化学成分及开发利用研究进展

黑龙江农业科学2012(1):139~143Heilongjiang Agricultural Sciences茶树花的化学成分及开发利用研究进展崔晓明1,喻云春1,张广成2,葛 衡2(1.贵州省茶叶研究所,贵州贵阳550006;2.信阳市浉河区茶叶办公室,河南信阳464000)摘要:很多研究表明,茶树花含有和茶叶相似的丰富的内含物质,是一种附加价值很高的茶资源。

现就近年来对茶树花在化学成分及开发利用等方面的研究进展进行了较为全面的综述,并对其研究和开发前景进行了展望,以期为今后茶树花资源的研究和开发提供理论参考。

关键词:茶树花;化学成分;开发利用中图分类号:S571.1 文献标识码:A 文章编号:1002-2767(2012)01-0139-05收稿日期:2011-07-22基金项目:贵州省农业科学院专项资金资助项目[院2X(2007)022]第一作者简介:崔晓明(1962-),男,贵州省湄潭县人,学士,农艺师,从事茶叶栽培及茶资源研究。

E-mail:qiangs81@ya-hoo.cn。

茶树[Camellia sinensis(L.)O.Kuntze]花属完全花,两性,虫媒花,一般由5~9片花瓣组成,花瓣中有200~300个雄蕊,雌蕊位于雄蕊群的中央[1]。

茶树花具有增强免疫力、延缓衰老、抗氧化、抗肿瘤、降血糖、降血脂、抑菌和防癌抗癌等功效[2-7]。

我国茶树花资源丰富,茶区每年可产茶树鲜花200万~300万t[8]。

但长期以来,关于茶的研究多局限于芽叶,对花关注较少[9-10]。

近年来,随着对茶树花的不断研究,发现茶树花与鲜叶的化学成分相似[11];而且茶树花粉蛋白质、氨基酸、维生素B2的含量均较高,脂肪含量低,是一种优质的蛋白质营养源[12];充分利用茶树花资源对提高茶树附加价值、促进茶产业的发展具有重要的现实意义。

为此,该文就近年来对茶树花的化学成分及开发利用等方面的研究进展进行了较为全面的综述,以期为今后茶树花资源的研究和开发提供一定的理论参考。

植物花色苷的提取和鉴定研究

植物花色苷的提取和鉴定研究

1 花 色 苷 的种 类
花 色苷 是 由花色 素 与糖类 以糖 苷键 结合 而成 的糖 苷化 合物 , 是 各类 花色 素不 同颜色 的核 心组分 , 构 成
了植物 中绝 大多 数 品种 的蓝色 、 红色、 紫 色 和黄色 等 . 自然 界 中 已知 的花 色素 有 2 2大类 _ 2 ] , 在食 品 中常 用
目( 2 01 0 R5 0 O 2 4 — 6) .
通信作者 : 沈
波( 1 9 6 5 ) , 男, 教授 , 博士 , 主 要 从 事 水 稻 生 理 与 遗 传研 究 . E — ma i l : b s h e n 6 5 @h o t ma i l . c o m
3 9 2
的主要 有天 竺葵 色素 ( p e l a r g o n i d i n , P g ) 、 芍药色素( p e o n i d i n , P n ) 、 矢 车 菊色 素 ( c y a n i n d i n , C y ) 、 飞 燕 草 色
素( d e l p h i n i d i n , D p ) 、 锦 葵色 素 ( ma l v i d i n , Mv ) 和牵 牛色 素 ( p e t u n i d i n , P t ) 等 6类 , 在植 物 可 食 用部 分 的 分 布 比例依 次 为 5 o %、 1 2 、 1 2 、 1 2 、 7 和 7 , 尤 以天竺 葵色 素最 高 . 花色苷 的种类 因植 物 的不 同而有 差异 , 且不 同植 物 花色 苷 含量 也 不 同. 如黑 莓 仅 含有 几 种 花色 苷 , 主 要 花 色苷 为矢 车菊 素一 3 一 葡萄糖 苷 , 其次 为矢 车菊 素一 3 一 芸香苷, 而 葡萄 则含 几 十种 花色 苷 , 葡 萄 中花色 苷

花色苷研究——精选推荐

花⾊苷研究花⾊苷的研究状况引⾔花⾊苷⼜称花青素,属酚类化合物中的类黄酮,是构成花瓣、果实等颜⾊的主要⽔溶性⾊素,⾃然界中已知的花⾊素有22⼤类。

⾷品中重要的花⾊素有⽮车菊⾊素、天竺葵⾊素、飞燕草⾊素、芍药⾊素、牵⽜⾊素和锦葵⾊素等6类[1]。

花⾊苷作为⼀种天然⾷⽤⾊素,安全、⽆毒、资源丰富,⽽且具有⼀定的营养和药理作⽤,在⾷品、化妆品和医药领域有着巨⼤应⽤潜⼒[2]。

花⾊苷对⼈体具有许多保健功能如清除体内⾃由基、抗肿瘤、抗癌、抗炎、抑制脂质过氧化和⾎⼩板凝集、预防糖尿病、减肥、保护视⼒等。

⽬前花⾊苷作为⼀种天然⾊素,安全、⽆毒,且对⼈体具有许多保健功能,已被应⽤于⾷品、保健品、化妆品、医药等⾏业,随着⼈们崇尚⾃然消费观念的转变,花⾊苷必将得到更加⼴泛的应⽤。

摘要本⽂对花⾊苷的资源分布、结构性质、稳定性研究、提取、定性定量分析⽅法以及发展前景进⾏了综述。

1.花⾊苷的资源分布花⾊苷⼴泛存在于被⼦植物的花、果实、茎、叶、根器官的细胞液中,分布于27 个科,72 个属的植物中。

⼴泛存在于紫⽢薯、葡萄、⾎橙、红球⽢蓝、蓝莓、茄⼦⽪、樱桃、红橙、红莓、草莓、桑葚、⼭楂⽪、紫苏、⿊(红)⽶、牵⽜花等植物的组织中。

2.花⾊苷的结构及性质花⾊苷的结构如右图所⽰,不同的R1、R2代表不同的花⾊苷类型。

⾷品中重要的6中花⾊苷如表1。

表1花⾊苷溶于⽔和⼄醇,不溶于⼄醚、氯仿等有机溶剂,花⾊苷在酸性溶液中存在4种平衡转换如图1:⾃然界中的游离态花⾊苷极其少见,通常常与 1 个或多个葡萄糖(glucose)、⿏李糖(rhamnose)、半乳糖(galactose)、⽊糖(xylose)、阿拉伯糖(arabinose)等通过糖苷键连接形成花⾊苷,3-单糖苷、3-双糖苷、3,5-⼆糖苷和3,7-⼆糖苷是4类最常见的花⾊素配糖形式,其中⽮车菊素-3-葡萄糖苷在⾃然界中分布最⼴[3]。

3.花⾊苷的稳定性研究影响花⾊苷稳定性的因素有很多,pH值、氧⽓、温度、花⾊苷浓度和结构、光、⾦属离⼦、酶,以及其他辅助因素等均能使花⾊苷的颜⾊产⽣变化。

总花色苷含量测定

总花色苷含量‎测定—分光光度法1、综合国内外资‎料,主要有以下几‎种计算吸光值‎A的方法[1]:(1) 当叶绿素是该‎样品中主要存‎在的干扰色素‎时,需消除叶绿素‎吸收含量的影‎响;此时,计算公式为: A = (Amax - A620) - 0.1(A650 - A620)(2) 含有其它干扰‎物质时花色苷‎总量的测定:a) 直接法:在新鲜的植物‎提取物中,因为很少含有‎在花色苷的最‎大吸收区发生‎吸收的干扰物‎质,花色苷总量可‎以直接由可见‎区最大吸收波‎长处的吸光度‎来测定。

计算公式为: A = Amax直接法吸收光‎谱测定:用××分光光度计于‎250 - 800nm 下全波长扫描‎,得到花色苷在‎0.1 % 盐酸—80 % 乙醇中的可见‎光区最大吸收‎波长,在此最大波长‎下测定各样品‎的吸光值A 。

b) pH 示差法:在加工或储藏‎过程中,会产生褐色降‎解物,这些降解物和‎花色苷具有相‎同的能量吸收‎范围。

这类花色苷总‎量的测定,通常用pH示‎差法[8] 。

计算公式为: A = (Amax - A700) pH1.0 - (Amax - A700) pH4.5pH 示差法吸收光‎谱测定:先确定合适的‎稀释因子,使样品在λm‎a x下的吸光‎度在分光光度‎计的线性范围‎内;然后制备两个‎样品稀释液,其中一个用氯‎化钾缓冲液(0.025M,pH1.0) 稀释,另一个用醋酸‎钠缓冲液(0.4M,pH4.5) 稀释,将稀释液平衡‎15min 后,用蒸馏水做空‎白,分别测定两种‎样品稀释液在‎λm ax和7‎00nm处的‎吸光值A。

2、花色苷总含量‎的测定[2]:通过波长扫描‎,确定××花色苷在可见‎区的最大吸收‎波长为λma‎x。

利用花色苷的‎结构特性,当pH为1.0时在λma‎x处有最大吸‎收峰,而当pH 为4‎.5时,花色苷转变为‎无色查尔酮形‎式,在λmax处‎无吸收峰,用示差法计算‎溶液中总花色‎苷含量。

花色苷测定

3.3.1 花色苷含量的测定
(1)缓冲液的制备:
pH1.0缓冲液:使用电子分析天平准确称量1.86g氯化钾,加蒸馏水约980ml,用盐酸和酸度计调至pH1.0,再用蒸馏水定容至1000ml。

pH4.5缓冲液:使用电子分析天平准确称量32.81g无水醋酸钠,加蒸馏水约980ml,用盐酸和酸度计调至pH4.5,再用蒸馏水定容至1000ml。

(2)花色苷含量的测定:
采用pH示差法[33]:用pH1.0、pH4.5的缓冲液,将样液稀释到适当的倍数,放在暗处,平衡15min。

用光路直径为1cm的比色皿在可见分光光度计的510nm 和700nm处,分别测定吸光度,以蒸馏水做空白对照。

按下式计算花色苷的含量。

A=[ ( A510 - A700 ) pH1.0 - ( A510 - A700) pH4.5]
花色苷浓度C ( mg/L) = A×MW×DF×1000 /(ε×l)
两式中:
( A510 - A700 ) pH1.0—加pH1.0缓冲液的样液在510 nm和700 nm波长下的吸光值之差;
( A510 - A700) pH4.5—加pH4.5缓冲液的样液在510 nm和700 nm波长下的吸光值之差;
MW=449.2(矢车菊—3—葡萄糖苷的分子量,mg/mol);
DF=样液稀释的倍数;
ε=26900(矢车菊—3—葡萄糖苷的摩尔消光系数,mol-1);
l=比色皿的光路直径,为1cm。

花色苷提取及纯化研究进展

花色苷是花青素在自然界状态下的天然糖基化产物,是存在于许多植物组织中的重要水溶性色素。

它们赋予植物根、茎、叶、花、果实等不同器官紫红、兰、红等色彩。

花色苷属于类黄酮化合物,由于其结构中含有多个酚羟基,因而具有良好的抗氧化功效,能够清除体内自由基、抑制脂质过氧化,同时具有预防肿瘤、抗炎杀菌、调节血糖等功效。

中国是水果生产大国,年产量达2400万吨,其中水果加工占水果产量的38%左右,产生的果渣下脚料近千万吨,果实与果渣中都有着丰富的花色苷资源,且果渣废弃物的高值化利用是当前食品加工开发的热点,因此,利用果渣提取花色苷,不仅可以提高果渣综合利用率,解决工业废料处理问题,减轻环保压力,而且可得到高附加值产品以提高经济效益。

花色苷的高效提取与纯化是实现其工业化应用的前提。

本文介绍了近年来国内外关于花色苷提取技术和纯化方法的主要研究进展,为花色苷类天然色素和功能性食品的提取、制备和工业化应用提供参考和指导。

摘要:花色苷属于黄酮类化合物,广泛存在于各种植物的器官中,它不仅是自然界重要的水溶性色素,还同时具有良好的抗氧化、抗癌、预防疾病等多种生物活性,因而被广泛应用于食品、制药、化妆品等行业。

天然植物花色苷的提取和纯化是花色苷应用的前提。

该文综述了花色苷提取与纯化的最新研究进展,分析比较了不同提取和纯化方法对产品提取率及纯度的影响,为进一步开展植物花色苷研究,实现花色苷的高效提取与高值化利用提供参考。

结论影响浆果及果渣中花色苷提取的因素主要为样品基质特征(如样品的水分活度、植物细胞壁刚性等)以及提取工艺参数(如pH、溶剂、温度、时间等)。

目前,提取方法已经从传统溶剂法发展到了低共熔溶剂提取、超声辅助提取、微波辅助提取、超临界流体提取等新兴技术。

与传统溶剂提取相比,新技术在提取率、能耗、提取时间、保护环境等方面均具有非常明显的优势,但也存在一些不足,比如设备要求高、工艺优化标准高等。

从工业化角度出发,微波与超声辅助提取已有工业应用;超临界流体萃取、高压脉冲电场辅助提取法等因设备成本问题工业化较为困难。

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摘 要 : 树 芽叶 中的花 色苷含 量 测 定 尚无 国 家标 准 , 茶 目前 仍 沿用 单一 p 法进 行 测 定.比较 了单 H 一 p 法和 p 示 差 法对花 色苷 含 量测 定 的结 果.单 一 p 法所测 花 色苷含 量 高于 p 示差 法 , H H H H 两者
存 在 良好 的 线 性 关 系 ( = . 9 ) H 示 差 法 能 较 好 地 消 除 干 扰 物 质 对 测 定 结 果 的 影 响 , 茶 R 0 9 27 .p 为
第 2 9卷 第 2期 2 1 年 3月 01
北 京 工 商 大 学 学 报 (自然 科 学 版 ) Jun l f e igT cnlg n uiesU i rt( aua Si c dt n o ra o in eh ooyadB s s nv s y N trl ce eE io ) Bj n ei n i
外文 献 中一 般 用 p 示 差 法 分 析 花 色苷 含 量 H . 对于 茶树 芽 叶 中花 色苷 的含 量 测 定 , 目前 没 有 国 家
H0
OH
标 准 , 沿 用 单 一 p 法 进 行 测 定 .本 研 究 采 用 而 H 单 一 p 法 、H示 差法 来 测定 茶 树 紫 色芽 叶 的花 色 H p 苷含量 , 比较茶 树 芽 叶花 色苷含 量 测定 的方 法 , 为 可
到关 注 .
植 物 中花色 苷单 体 的准确 定量 受 到花 色苷 分离 纯度 的 限制 , 并需 要单 体标 准 品作 为对 照 , 目前 的研 究多 将花 色苷 作 为一个 整 体测 定 其 总含 量 .定量 方
植 物 体 内发 现 的 花 青 素 有 2 2种 , 品 中 主 要 有 6 食 种, 自然 条件 下 游 离 状 态 的 花 青 素 极 少 见 , A 环 其
呈 现 五彩缤 纷 颜 色 的 主 要 水 溶 性 色 素 , 及 2 涉 7个 科 ,3个 属 的 数 万 种 植 物 , 布 极 为 广 泛 .花 青 素 7 分 的 结 构 以 c 一3 c 6c 一 6为 基 本 骨 架 , 图 1 . 目前 在 见
而 , 着多 种 富含 花 色苷 的天 然 植 物 的研 究 揭示 了 随 花 色苷 具有 抗氧 化 、 炎 、 肿 瘤 、 抗 胰 岛 素调 节 抗 抗 抵 等 的特 殊功 能 活性 后 , 叶紫 色 芽 叶的 研究 开始 受 茶
收 稿 日期 : 0 0—1 ~2 21 2 4
n m.单一 p H值 法测 定花 色苷 含 量 需要 在 一 个 恒定 的 p 介质 中进 行 , 于花 色苷 单 体 之 问差 别 很 小 H 由
基 金 项 目 : 东 省 中 医 药 局 科 研 基 金 资 助 项 目 (0 0 0 3 99) 广 东 食 品 药 品 职 业 学 院 自然 科 学 青 年 基 金 资 助 项 目 (0 9 0 4 广 3 1 1 10 1 ; 2 0 YZ0 ) 作 者 简 介 :陈 琼 , , 师 , 士 , 要 从 事 食 品 科 学 方 面 的教 学 与科 研 工作 . 女 讲 硕 主
在 自然 界 的茶 树 中 , 见 有部 分 红 紫 色 芽 叶 的 常 茶 树 品种 或单 株 , 高 海拔 、 光 照 、 秋 季茶 园 中 , 在 强 夏 茶 树紫 芽 的发 生率较 高.花 色苷 是 茶树 紫 色 芽 叶 的
主 要 特 征 内 含 成 分 , 量 远 高 于 绿 色 芽 叶 .在 传 含
V0 . 9 NO 2 12 .
Ma.2 1 r 01
41
文 章 编 号 :6 11 1 ( 0 1 0 —0 10 17 —5 3 2 1 ) 20 4 — 4
茶 树 芽 叶 花 色 苷 含 量 测 定 方 法 的研 究
陈 琼 陆瑞 琼 ,
( . 东食 品 药 品 职 业 学 院 食 品 科 学 系 ,广 东 广 州 5 0 2 : 1广 1 5 0 2 华 南农 业 大 学 食 品 学 院 ,广 东 广 州 5 0 4 ) . 1 6 2
O H
茶树 紫 色芽 叶的 开发研 究 提供 基础 .
图 1 花 色 苷 母 核 结 构
Fi .1 M o he uc e s s r c ur f a t c ni g t r n l u t u t e o n ho ya ns
1 方 法 原 理
1 1 ( 自然 科 学 版 )
植 物 花 色 苷 的 最 大 吸 收 波 长 一 般 在 5 0~5 0 0 4
n 而 茶 树 芽 叶 花 色 苷 的 最 大 吸 收 波 长 在 5 0~5 0 m, 2 4
统 的绿 、 等茶 叶加 工 过程 中 , 红 紫色 芽 叶 由于其 滋 味
苦 涩 、 泽 深 暗 、 杂 等 不 良 品 质 特 征 而 被 剔 除 .然 色 花
3 ,一7碳 位 上 的 羟基 以糖 苷 键 与 糖结 合 形 成 花 色 一5 , 一
苷, 与花 青素 结合 的糖 种 类 、 量 、 合位 置不 同 , 数 结 花
色 苷 的种 类 则 不 相 同 J .
法根 据其 光学 特 性 , 紫 外一 见分 光光 度法 进行 分 用 可
析 , 单一 p 有 H法 、 H示差 法 、 p 差减 法等 .近年来 , 国
叶 的 花 色苷 定 量 分 析 提 供 了依 据 .
关键 词 : 茶树 紫 芽 ; 色苷 ;p 示差 法 花 H
中 图 分 类 号 :T 2 7 3 S0. 文 献 标 志 码 :A
花青 素 ( nh ca ii) 其 糖苷 ( nh ca is a toyndn 及 atoynn ) 是 植物 中一 大类 次 级代 谢产 物 , 是使 植 物花 朵 、 果实
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