透射电镜常规样品制备流程

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透射电镜制样流程

透射电镜制样流程

透射电镜制样流程透射电镜(Transmission Electron Microscopy,TEM)制样是指通过一系列的化学和物理方法来制取透射电镜所需的样品。

透射电镜是一种高分辨率的显微镜,可以在纳米尺度下观察材料的原子结构和微观形态。

为了获取高质量的TEM图像,制样过程非常关键。

下面将详细介绍透射电镜制样的流程。

1.样品制备:样品可以是纳米颗粒、薄膜、纤维或生物样品等。

首先,准备适宜的基底材料,如碳膜覆盖的铜网格或碳膜覆盖的铜刀片。

样品通常需要制成非常薄的切片,通常在50到100纳米的厚度范围内。

制备方法包括机械切割、电解石蠟切片、离子切割或电离蚀刻等。

2.固定和固化:对于生物样品,需要先进行固定处理,以保持样品的形态和结构。

常用的固定剂包括戊二醛、酸性醛或重金属盐。

然后,固定的样品需要进一步处理以固化,如用过氧化物、树脂或聚合物进行浸渍,以增加样品的稳定性。

3.切割和悬浮:将固化的样品切割成适当的尺寸和形状。

使用超微切割机、离子切割仪或其他切割工具进行切割。

切割后,样品通常会悬浮在水或有机溶液中,以便进一步处理。

4.脱水和对比染色:脱水是将样品从水中逐渐转移到有机溶剂中的过程。

这种处理可以控制样品的体积,以减少对比染色和观察中的伪影。

脱水通常通过渗透固定液逐渐转移,然后通过有机溶剂(如醋酸乙酯、丙酮或丙二醇)进行交换。

5.嵌入:将样品嵌入到透明的聚合物或树脂中。

嵌入过程中,通常采用逐渐增加浓度的树脂混合物,以确保样品得到完全浸透。

然后,将样品与树脂进行硬化,通常在高温下进行。

6.超薄切片:将固化的样品切割成非常薄的切片。

使用超薄切片机和钻磨刀片进行切割。

切割后的切片应尽快收集并转移到透明的铜网格或铜刀片上。

7.超薄切片处理:超薄切片通常需要进行后继处理以增强对比度和解决其他问题。

这可能包括染色、胶层增强或薄膜剥离等方法。

8.观察:将制备好的样品放入透射电镜中进行观察。

在观察前,样品需要在真空中或过氮气中去除气泡和其他杂质。

透射点镜的生物样本的制样过程

透射点镜的生物样本的制样过程

透射电镜生物样品制作过程透射电镜生物样品制作过程大致经过取材、固定、脱水、浸透、包埋、切片及染色等步骤。

一. 取材取材时要注意的要点是:快、小、冷、净、准、避免机械损伤。

取材方法:将固定液滴在冰台上的卡片上,在麻醉后的动物身上快速用剪刀剪取一块组织,用预冷的过的缓冲液将剪下的组织洗净,迅速放到卡片上的固定液中,用刀片切去被镊子夹到和剪刀剪过的组织,后按实验的目的将组织切成0.5~1mm2的立方或横截面为1mm2的长方体。

用牙签将切好的组织块转移到装有固定液的小瓶中,贴好标签并置于4℃的冰箱中。

二.固定以下操作尽可能在4℃的环境下,使用的溶液也要保存在4℃的冰箱中。

1、戊二醛固定:用镊子轻轻的将组织块从固定液中取出,放在卡片上的固定液中,利用双面刀片把组织块切成小块状,放进盛有1~1.5ml的0.1%的戊二醛的固定液的细管中,将吸管放进真空箱中,将大气压抽到760托后取出,使组织块在戊二醛溶液中固定1小时。

2、漂洗:经戊二醛固定的组织块要用1~1.5ml的0.1%PBS缓冲溶液漂洗,漂洗的次数为5次,在漂洗到第四次时可以将组织留在PBS漂洗液中过夜,放入4℃的冰箱中。

第二天早晨再进行第五次漂洗。

3、四氧化锇固定:向漂洗过的组织中加入0.5ml的0.1%四氧化锇固定液,固定时间为2个小时。

由于四氧化锇具有毒性,因此操作在通风橱里进行。

4、漂洗四氧化锇:用0.1%PBS缓冲溶液漂洗剩余的四氧化锇,然后再漂洗两次,其时间间隔为10min。

三.脱水为了保证包埋介质完全渗入组织内部,必须事先将组织内的水分驱除干净,即用一种和水及包埋剂均能相混溶的液体来取代水,常用的脱水剂是乙醇和丙酮。

1、酒精脱水:用浓度梯度依次为30%、50%、70%、90%的酒精,依次浸泡组织,其浸泡的时间一般为10min。

当在70%梯度的酒精时,样品可以放置过夜。

2、丙酮脱水:用浓度梯度为90%、100%的丙酮浸泡组织,在纯丙酮中浸泡三次。

透射电镜样品制备

透射电镜样品制备
包埋剂:环氧树脂(不易与乙醇相溶) 固化剂:十二烷基琥珀酸酐(DDSA)和六甲酸酐(MNA) 增塑剂:邻苯二甲酸二丁酯(DBP) 加速剂:2、4、6-三(二甲氨基甲基)苯酚。(DMP—30)
(2)浸透、包埋具体步骤:
① 浸透: a、包埋液与环氧丙烷1:1,37℃或常温1小时。 b、包埋液与环氧丙烷3:1,37℃或常温5小时或过夜。 c、纯包埋液37℃5小时,摆床或振荡器上浸透。
② 包埋与固化: 组织块用牙签挑入包埋管中,注满包埋液,置温箱
中 固 化 。 37℃ 、 12 小 时 后 , 移 入 45℃ , 24 小 时 , 60℃,24小时。
5.超薄切片
(1)制备超薄切片的准 备
1)金属载网:
耐高温,无磁性;平整; 网孔大小合适,孔间距小, 价格便宜。 (一般直径3mm, 内有网孔200~300个)
50%→70%→80%→90%→无水乙醇(或丙酮)(2~3次) 每步10~20分钟(培养细胞时间可短些,致密组织时间长些), 除无水乙醇(或丙酮)在室温下进行外,其余均应在4℃下进行。
可在70%乙醇中加2%铀盐块染:电子染色。
4.浸透与包埋:
是将组织块制成能进行超薄切片的硬块。
(1)包埋液的组成:
捞片——染色
6.超薄切片染色(正染)
染色的目的: 利用重金属盐与组织细胞的不同成份呈不同程
度的结合或吸附,从而造成这些成份对电子散射 能力的差异,散射电子多的结构在荧光屏上的图 像深暗,称电子密度高;反之即为浅亮,电子密度 低,从而起到增强图像反差的作用。
6.超薄切片染色(正染)
重金属盐有铀盐(如醋酸双氧铀)和铅盐(枸 椽酸铅)等。
【2】常用固定剂的特点
(1)戊二醛(Glutraldehyde) 1)2.5%戊二醛固定液的配制(见书) 2)固定原理及优缺点

透射电镜样品制备步骤

透射电镜样品制备步骤

透射电镜样品制备步骤透射电镜是一种重要的材料表征技术,它利用电子的波动性和微粒性来观察材料的结构和性质。

为了能够使用透射电镜观察样品,首先需要对样品进行制备。

透射电镜样品制备步骤如下:1.选择合适的样品:透射电镜样品可以是固体、液体、薄膜或纳米颗粒等。

根据研究目的和样品性质选择合适的样品。

2.样品预处理:根据样品性质的不同,进行必要的预处理。

例如,对于固体样品,可以选择切割、抛光或电解抛光等方法来得到平滑的表面。

3.样品固定:将样品固定到透射电镜样品架上。

不同的样品有不同的固定方法。

例如,对于固体样品,可以使用导电胶将其固定在样品架上。

4.薄层制备:对于厚度过大的样品,需要将其制备成透明的薄层以便透射电镜观察。

常用的方法有机械研磨、电子束刻蚀或离子束刻蚀等。

5.样品清洁:将样品放入超声波清洗机中进行清洗,以去除可能附着在样品表面的杂质或污染物。

6.特殊处理:如果需要对样品进行特殊处理,例如加热、冷冻处理或受到特定环境气氛的影响等,根据需要进行相应的处理。

7.样品干燥:将样品放入真空或氮气环境中,以确保样品干燥。

避免样品受到水汽的污染。

8.获得薄片:使用切片机将固态样品切割成适当厚度的薄片。

为了获得高质量的薄片,可以选择特殊的切片工具和技术,例如离子束切片或低速钻磨切片。

9.薄片形状整理:使用不同的研磨和抛光方法,将薄片的形状和表面进行调整,以确保样品的平滑度和一致性。

10.网格制备:将薄片粘贴在透射电镜网格上。

网格可以增强样品的稳定性和保护,同时提供用于定位和标识的标记。

11.后续处理:根据研究目的和透射电镜分析的要求,可以对样品进行进一步处理。

例如,可以进行染色、脱膜、溅射或腐蚀等处理。

以上是透射电镜样品制备的一般步骤。

不同样品和研究目的可能会有所不同。

因此,根据具体的研究需求和样品特点,制备过程可以做相应的调整和优化。

透射电镜样品制备流程

透射电镜样品制备流程
在样品制备过程中,应注意保持清洁,避免污染样品。同时,样品制备的过 程中需要使用一些有毒的化学试剂,应当注意防护。
样品制备是射电镜观察的关键环节,如果样品不足够细腻或有杂质,就无法 得到清晰的观察结果。因此,在制备样品时需要注意以下几点:
样品必须保证足够薄:射电镜的观察效果与样品的薄度成会使用不同的设备和工具。例如,生物样品制备可能 需要使用切片机、真空干燥炉等设备;材料样品制备可能需要使用打磨机、拉丝 机等设备。
在进行射电镜样品制备时,应根据所要观察的样品的性质和结构选择合适的 流程和设备,以便获得清晰的观察结果。
在进行射电镜样品制备时,应注意避免样品污染。样品污染可能会导致观察 结果不准确或无法观察。
射电镜样品制备是在进行射电镜观察前必须进行的一项工作,样品制备的流 程包括以下几个步骤:
采集样品:样品可以是植物、动物或矿物等,需要使用特殊的工具或方法进 行采集。
切割样品:根据所要观察的部位,使用刀具将样品切成较薄的片状。 脱水:将切割好的样品浸泡在溶液中,使其脱去水分。 透明化:将脱水后的样品浸泡在透明化剂中,使其变得透明。 加粘合剂:在样品的表面涂上粘合剂,使其固定在玻片上。 贴装:将样品贴装在射电镜的样品台上,准备进行观察。
样品污染的主要原因有:
样品采集过程中的污染:如果样品采集过程中不注意清洁,可能会导致样品 污染。
样品制备过程中的污染:如果样品制备过程中使用的设备或工具不清洁,也 可能导致样品污染。
周围环境的污染:如果周围环境不清洁,也可能导致样品污染。
为了避免样品污染,应注意保持清洁,使用清洁的设备和工具,并在清洁的 环境中进行样品制备。
样品必须透明:样品必须透明,才能够清晰地观察其内部的结构。 样品必须稳定:在观察过程中,样品必须保持稳定,否则就无法得到清晰的 观察结果。 样品必须无杂质:样品必须保证无杂质,否则就会干扰观察效果。

电镜检测流程

电镜检测流程

电镜检测流程引言:电子显微镜(electron microscope,简称EM)是一种利用电子束代替光束进行成像的显微镜。

相比光学显微镜,电子显微镜具有更高的放大倍数和更高的分辨率,因此在各个领域都有广泛的应用。

本文将介绍电镜检测的基本流程,以及常见的几种电子显微镜的类型。

一、样品制备在进行电镜检测之前,首先需要对待检样品进行制备。

样品制备的目的是使样品具备透射电镜或扫描电镜观察的条件。

1. 透射电镜样品制备:透射电镜需要制备非常薄的样品,通常要求样品厚度在100纳米以下。

常用的样品制备方法包括切片、薄膜法、冷冻法等。

切片法是将样品切成薄片,然后使用特殊的工具将薄片转移到铜网或碳膜上。

薄膜法是通过蒸发或溅射等方法在网格或碳膜上制备一层薄膜,然后将样品放置在薄膜上。

冷冻法是将样品冷冻至极低温,然后通过切片机将样品切成薄片。

2. 扫描电镜样品制备:扫描电镜对样品的制备要求相对较低,通常只需要将样品固定在导电底座上,并进行金属镀膜以增加导电性。

常用的固定方法包括化学固定、冻干法和浸渍法。

金属镀膜通常使用金或金-铂合金进行镀膜。

二、电镜操作步骤电镜检测的操作步骤包括样品安装、对焦调节、电子束参数设置、图像获取等。

1. 样品安装:将样品安装在电镜样品台上,并确保样品与电子束的路径对齐。

透射电镜需要将样品安装在透明的网格或碳膜上,而扫描电镜则将样品安装在导电底座上。

2. 对焦调节:通过调节透射电镜的对焦环,或者调节扫描电镜的工作距离,使样品处于最佳对焦状态。

对焦时需要根据样品的特点和检测要求进行调节。

3. 电子束参数设置:根据样品的性质和检测要求,设置透射电镜或扫描电镜的电子束参数。

透射电镜的参数包括透射电镜的加速电压、聚焦电流和透射电镜的模式等;扫描电镜的参数包括扫描电镜的加速电压、孔径和扫描速度等。

4. 图像获取:根据样品的特点和检测要求,选择合适的检测模式,并进行图像获取。

透射电镜可以通过透射模式获取样品的内部结构信息,而扫描电镜可以通过扫描模式获取样品表面的形貌信息。

透射电镜制样流程

透射电镜制样流程

透射电镜样品制备过程
组织取材(60s内),体积<1mm3,之后进行如下步骤
1)前固定:3%戊二醛2h或过夜。

2)漂洗:磷酸缓冲液,3次,10min/次。

3)后固定:1%锇酸固定液,2h。

4)漂洗:(同上)。

5)梯度脱水:50%丙酮,70%丙酮,80%丙酮,90%丙酮两次,各10min 。

100%丙酮两次,各15min。

6)渗透:丙酮/包埋剂(1:1,1:2),室温各1h。

丙酮/包埋剂1:3, 4度过夜。

纯包埋剂,4度过夜。

7)包埋:纯包埋剂(37度,45度,60度各24h)。

取出包埋块,进行超薄切片,片厚70nm。

分别采用醋酸双氧铀对切片进行染色30min,双蒸水漂洗3-5次,之后用柠檬酸铅
染色10min,双蒸水漂洗3-5次。

待切片干燥后,透射电镜观
察。

切片机型号:Leica UC7 超薄切片机,速度1mm/s.
透射电镜型号:日立高新HT7700,电压80kv 电流10μa.。

tem透射电镜的样品制备方法

tem透射电镜的样品制备方法

tem透射电镜的样品制备方法TEM(透射电子显微镜)是一种常用的高分辨率显微镜,可以观察到物质的结构和组成。

样品制备对于TEM观测至关重要,良好的样品制备可以提供高质量的显微图像。

以下是TEM透射电镜的样品制备方法的详细讨论。

1.样品选择:选择适合TEM观察的样品,典型的样品包括纳米材料、生物细胞、材料薄膜等。

根据需要选择合适的样品尺寸和形状。

2.样品固定:根据样品的特性和需要,采取合适的方法将样品固定在支撑物上。

常用的方法包括离心沉淀、滴定、蒸发浓缩等。

对于生物样品,可以使用化学固定剂(如戊二醛)进行化学固定。

3.样品切片:对于大尺寸或不透明的样品,需要将其切割成薄片,一般要求切片尺寸在100 nm以下。

常用的切片工具有超声切割仪、离子切割仪等。

切割样品时要注意样品的定位和定向,以确保观察到感兴趣的区域。

4.样品脱水:对于生物样品,需要将其进行脱水处理。

脱水可以使用乙醇和丙酮等有机溶剂,逐渐将样品中的水分替换为有机溶剂。

脱水过程中要避免剧烈振荡,以防止样品的破坏。

5.样品浸渍:将脱水后的样品浸渍在透明介质中,如环氧树脂或聚合物。

浸渍过程中需要避免气泡和异物的进入,以保持样品的质量。

6.样品调平:将浸渍后的样品放在平板上,用研磨纸将其调平。

调平过程中要注意避免样品的损坏。

7.样品切割:将调平后的样品切成适当尺寸的小块,便于后续的操作。

切割时要使用锋利的刀具,以保证切面的平整度。

8.样品研磨:使用研磨纸或研磨腰带对样品进行研磨,以使其表面更加平整。

研磨过程中要注意研磨力度的控制,以免样品的破损。

9.样品薄化:使用电子束或离子束对样品进行薄化处理,将其厚度控制在适当的范围内。

薄化过程中要注意能量和时间的控制,以避免样品的损坏。

10.样品清洁:最后,使用有机溶剂或气流将样品上的杂质去除,使样品表面干净。

以上就是TEM透射电镜的样品制备方法的详细讨论。

不同的样品可能需要不同的制备方法,需要根据实际情况进行调整。

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透射电镜样品制备流程
由于透射电镜能观察的样品必须很薄(60~70nm),所以透射电镜的样品准备要求很严格,方法也很单一,仅有一下两种方法:
一.负染色技术
负染色技术简单快速,可以显示生物大分子、细菌、分离的细胞器以及蛋白晶体等样品的形态、结构、大小以及表面结构的特征。

尤其在病毒学中,负染色技术有着广泛的应用。

样品要求:①样品悬液的纯度不要求很纯,但是如果杂质太多,如大量的细胞碎片,培养基残渣,糖类以及各种盐类结晶的存在都会干扰染色反应和电镜的观察。

尤其是不能有过多的糖类,因为在电子束的轰击下,糖类容易碳化而有碍观察,因此样品要适当提纯。

②样品悬液的浓度要适中,太稀在电镜下很难找到样品,太浓样品堆积影响观察。

操作流程:吸取样品悬液滴到有膜的铜网上,静置数分钟,然后用滤纸吸去多余的液体,滴上负染色液,染色1~2min后滤纸吸去负染色液,待干后用于电镜观察。

二、超薄切片技术
超薄切片技术是为透射电镜观察提供薄样品的专门技术,是生物学中研究细胞超微结构最常用的技术。

广泛应用于生物体的各种细胞的超微结构观察。

一般厚度在10~100nm的切片称为超薄切片,制作这种切片的技术叫做超薄切片技术。

超薄切片制作的过程包括取材、固定、脱水、渗透、包埋、聚合、切片和染色等几个环节,和一般光学显微镜的石蜡切片过程相似。

但是,超薄切片切片过程更为细致与复杂,要求更严格,而且所用的试剂比较昂贵、配制复杂、强致癌。

具体操作步骤、注意事项如下:
1.取材和前固定:快速的切取大小为0.5~1.0mm3的样品块,一分钟内把组织(样品)块浸入2.5%戊二醛(进口品质)溶液(取样前来平台领取),每个离心管内装20个以上的样品块,作为一个样送到平台。

要求:①取材前一定要和工作人员取得电话联系!②取材选择部位要准确可靠,确保每块材料都是要观察的部位。

③所有植物样品一定要抽真空,能够沉底的样品也抽真空15mins,不能沉底的样品一定要抽真空致沉底!④细菌、散在细胞等不能成块的样品,加戊二醛固定液,离心沉淀后送到平台,由平台工作人员处理。

⑤泡在前固定液的材料最多可以放2周。

2.漂洗:用1M PBS Buffer Ph 7.2冲洗3次,每次15mins。

3.后固定:加入1%锇酸处理到样品变黑。

植物样品一般处理2.5hours,真菌、细菌一般处理2hours,动物样品处理1hours。

注意事项:①锇酸剧毒物质,易挥发,操作时要在毒品柜中谨慎使用。

②锇酸比较昂贵,需特别节约使用。

4.漂洗:用1M PBS Buffer Ph 7.2冲洗3次,每次15mins。

5.脱水:室温下,丙酮30%-50%-70%-80%-90%每级作用30mins,纯丙酮在作用3次,每次作用30mins。

6.渗透:其目的是使包埋剂逐步渗入组织细胞内。

植物样品需要的渗透梯度多、渗透时间长。

其他样品可以适当减少或缩短渗透梯度和时间。

以二叶龄水稻叶片为例,其渗透流程如下:无水丙酮/包埋剂=5:1作用12hours→无水丙酮/包埋剂=3:1作用12hours→无水丙酮/包埋剂=1:1作用12hours→无水丙酮/包埋剂=1:3作用12hours→无水丙酮/包埋剂=1:5作用12hours→纯包埋剂作用45℃作用12hours。

注意事项:包埋剂为强致癌剂,特别要注意规范操作!
7.包埋:用牙签将渗透好的样品挑到包埋板中,45℃聚合12hours,60℃聚合36~48hours。

8.超薄切片:超薄切片的切片面积最大不能超过0.5mm×0.3mm,比较难切的植物样品要求切片面积更小。

超薄切片是在超薄切片机上进行,但是切出比较理想的超薄切片,却是一件不容易的工作。

做好需要有渗透、包埋好的包埋块,还要有好的切刀以及操作者的熟练技术等。

超薄切片前期需要准备载网和支持膜、修块、制刀等,前期准备工作至少需要半天时间。

超薄切片是极其精细、耗费眼力的工作,需要静下心来慢慢操作,切好一个样品至少需要1小时。

9.正染色:由于生物样品主要由碳、氢、氧、氮等轻元素组成。

这些元素原子对电子的散射能力很弱,相互之间的差别也很小。

尤其生物超薄切片被树脂所包埋,这些包埋树脂对电子的散射能力与样品本身差别很小。

因此生物样品超薄切片观察时像的反差极弱。

为了提高图像的反差,要对超薄切片进行电子染色。

这里所谓电子染色是根本不同于光学显微镜的染色,它是利用重金属盐(如铅盐、铀盐等)与细胞的某些成分或结构结合,由于重金属对电子散射能力很强,使那些与其结合的结构或成份对电子散射能力增强,从而达到提高样品本身反差的。

目前最常用的染色剂是醋酸铀和柠檬酸铅染色液。

操作流程是:超薄切片先柠檬酸铅染色10分钟,去二氧化碳的双蒸水清洗3次,再用醋酸铀染色30分钟,双蒸水清洗3次,等超薄切片干燥后,即可上透射电镜观察。

注意事项:①醋酸铀具有放射性,使用时要特别注意。

②柠檬酸铅染液极易和空气中的二氧化碳反应形成不溶解的黑色颗粒,污染切片。

柠檬酸铅染液一定要现用相配,所用的双蒸水一定要煮沸除去二氧化碳。

③由于染色不可控制因素较多,产生污染的几率有40%,所以每个样品的切片一定要留出铜网作备份。

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