如何进行小鼠肿瘤模型的建立及鉴定教程文件

如何进行小鼠肿瘤模型的建立及鉴定
实验肿瘤学的需要导致肿瘤动物模型的产生,借以研究人类肿瘤的病因、发生、发展以及治疗和预防。

肿瘤动物模型可来自于动物的自发肿瘤、诱发肿瘤和移植性肿瘤。

一前两者由于对动物品系要求严格、实验周期较长或缺少实验一致性而较少使用。

移植性肿瘤动物模型具有特性明确、生长一致性好、实验周期短、瘤株分布广泛、可反复复制等优点,在肿瘤研究中占有重要地位。

可移植性肿瘤,是把动物或人的肿瘤移植到同系、同种或异种动物,经传代后,组织类型和生长特性已趋稳定,并能在受体动物中继续传代,又称为可移植性肿瘤细胞。

二可移植性肿瘤移植于同系或同种动物,称为同种移植,是国内外最常用的肿瘤动物模型复制方法之一。

同种移植的优点是,可供选择使用的细胞系或细胞株多,许多细胞系在世界范围分布广泛,并且这些细胞的生物学特性已经比较明确,一般都有明确的背景资料,使一群动物同时接种同样量的瘤细胞,生长速度一致、个体差异较小,成活率高,易于对照观察,这些都是便于科研成果相互比较和交流的有利因素
三在接种过程中，应把握注射深度，否则易造成内脏损伤。

接种后三天即开始观察有无肿瘤形成。

本实验具有周期短、制作方便、成功率比较高、较好重复性和稳定性的明显优势，是一种较为理想的肿瘤实验动物模型，值得推广。

肝癌肿瘤模型建立：
抗肿瘤药物及制剂的药效学评价，可通过建立小鼠荷瘤数据模型，探索肿瘤生长的本质及其发生发展的规律，探究其抗肿瘤效果。

方法：小鼠右腋下注射H22肿瘤细胞，注射部位发生癌变，小鼠肿瘤生长明显，切片结果证明实验成功，模型构建完成，使小鼠荷瘤，观察肿瘤生长，记录体重数据并建立动物模型。

1材料与方法
1.1实验材料
1.1.1动物及分组：取20只昆明鼠随机分成A组（10只），B组（5只），C组对照组（5只），编号饲养。

1.1.2试剂：无菌水，生理盐水，台酚蓝，2%冰醋酸，甲醛，乙醇，二甲苯，石蜡等。

1.1.3仪器：离心机，显微镜，计数板，电子称，超净工作台，温箱，切片机等。

1.2实验方法
1.2.1模型建立：取H22肿瘤细胞，3000转离心分钟，再用无菌生理盐水洗涤肿瘤细胞3次，并做适当稀释，取40微升细胞悬液加入10微升0.4%台酚蓝染色并镜检计数，制成浓
度为3*106个/ml的肿瘤细胞悬液，每只小鼠右腋皮下接种肿瘤细胞悬液0.2毫升。

1.2.2：细胞计数：细胞计数液2%冰醋酸溶液。

取50微升细胞悬液加入450微升的细胞计数液中计数。

1.3记录：
接种完成后,逐日观察接种部位有无感染,肿瘤生长后有无自然消退,用游标卡尺，每周测量肿瘤长径a和短径b ,并计算平均直径,即r = (a + b) /2，每天称量小鼠体重和肿瘤并记录，绘制曲线。

1.4制备组织切片：
a处死小鼠，将肿瘤组织切成1*1*0.4cm的小块。

b将切块的组织置于螺口瓶中，加入40%甲醛固定，过夜。

c固定完成后，倒出固定液，立即换上新鲜的70%乙醇，洗脱两次，室温放置20分钟，继而以75%，80%，85%，90%，95%，100%乙醇脱水各两次，每次20分钟。

d从新鲜二甲苯除去乙醇，放置2次，每次10分钟。

e将样品置于60℃温箱中融化石蜡4次，每次1.5小时。

f将准备好的包埋工具，用一热玻璃吸管加入融化的石蜡，再用热镊子快速将样品移至充满石蜡的模具中，置于室温，使起完全凝结。

g从包埋模具中取出石蜡块，放于室温干燥处，切片。