土壤微生物的分离与平板菌落计数
实验七稀释平板计数法及土壤中真菌的分离纯化

4、涂平皿: 每个稀释度均需要涂布平皿,每皿取菌液0.1ml,
用玻璃刮铲涂布均匀。
5、28℃倒置培养3~7天
6、观察并描述真菌菌落特征
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五、实验结果及分析
稀释平皿计数法:
稀释倍数 106
107
108
菌落数
每ml原菌样品中微生物的活细胞数(菌落形成数,CFU=
(同一稀释度平板上菌落平均数×稀释倍数)/原菌样品体积
(ml)
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描述酵母菌菌落特征: 描述霉菌菌落特征
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5、37℃倒置培养2天
6、计数:
每ml原菌样品中微生物的活细胞数(菌落形成数,CFU=
(同一稀释度平板上菌落平均数×稀释倍数)/原菌样品体积
(ml)
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菌落计数规则: (一)选择平均菌落数在30~300间的平板
1、只有一个稀释度符合,以该稀释度的平均菌落数乘以稀释倍数报告; 2、有两个稀释度符合,取决于二者比值(高稀释度的菌落数除以低稀释 度的菌落数的值):
2、若所有稀释度的菌落平均数均小于30,则按稀释倍数最低的平均菌落
数乘以稀释倍数报告;
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四、实验步骤---从土壤里分离真菌
1、熔化培养基 2、倒平皿 3、捻碎土样,将土样溶解在90ml无菌水三角瓶中 4、梯度稀释法稀释土样
10g 10-1
90ml
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10-2
10-3
10-4
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实验七 稀释平板计数法及土壤中真菌的 分离纯化
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一、实验目的
掌握活菌计数的基本原理及方法 掌握从样品中分离目的微生物的原理及方法
【实验】测定土壤中微生物的数量

[三]微生物的培养与观察
不同菌落的鉴定指标:菌落的形状、大小、 隆起程度、颜色等。
(二)统计菌落数目
每克样品中的菌株数致 C:某一稀释度下平板上生长的平均菌落数 V:涂布平板时所用的稀释液的体积(ml) M:稀释倍数
为了测定微生物的数量,接种时应采用_稀__释__涂__布__平__板___ 法,某同学在4个培养基上分别接种稀释倍数为106的土 壤样液0.1 mL,培养后菌落数分别为180、155、176、 129个,则原土壤样液中上述微生物的含量为 __1_.6_×__1_0_9_个__/m__L_______,测定的活菌数比实际活菌数 ____低____(填“低”“高”“基本一致”)。
(1)从土壤中分离出能够分解尿素的细菌; (2)统计每克土壤样品中究竟含有多少这样的细菌。
尿素分子的立体结构
(一)筛选菌株
美国微生物学科布鲁克1966 年发现耐热细菌,从水生耐 热细菌Taq得到耐高温的Taq DNA聚合酶。
一、研究思路
(一)筛选菌种
1 实例:耐高温的DNA聚合酶
PCR技术:要求使用耐高温(930C) 的DNA聚合酶。
稀释度(倍)
106
107
108
平板
1 2 3 12 3 1 2 3
平板菌落数(个) 432 421 445 78 67 74 9 6 8
涂布时应当在酒精灯火焰旁 附近操作,为了保证结果准确,应选 择上述稀释度为 107 倍的平板菌落数作为统计结果,原因是 计数平板的菌落数 ,计算出样品中每毫升乳酸菌数为7.3×。109 量范围为30~300
(1)样品稀释:先将样品稀释10倍,可用无菌移液管吸取25mL 酸奶样品加入盛有 225 mL无菌水的三角瓶中,使样品与水充分混 匀。然后进行系列稀释操作,得到稀释至106、107、108倍的样品。 (2)培养与统计:吸取不同稀释度的样品各1mL,分别置于不同
微生物学 实验7 土壤中细菌的分离纯化及计数

2、首先选择平均菌落数在30~300之间的,当只 有一个稀释度的平均菌落数符合此范围时,则以 该平均菌落数乘其稀释倍数即为该样品的细菌总 数(见下表,例1)。 3、若有两个稀释度的平均菌落数均在30~300之 间,则按两者菌落总数之比值来决定。若其比值 小于2,应采取两者的平均数;若大于2,则取其 中稀释度(倍数)较小的计算菌落总数(见下表, 例2及例3)。
10-4 稀释度 细 菌 cfu数/平板 每g土壤的CFU数 10-5 10-6
1
2
3
平均 1
2
3
平均 1
2
3
平均
平均菌落数(个) 相应释倍数 CFU/g 100mL 0.2mL 10 g
2、培养时为什么要将培养皿倒置培养?
其它微生物的分离纯化方法
(一)、稀释混合平板法
①按无菌操作要求,用胶头滴管依次吸取10-6、 10-5 、 10-4稀释液各200 uL,分别加入编号为10-6、 10-5 、 10-4的培养皿中。
正置培养过程中,培养基中水分蒸发后,会在培养皿
计算公式:
平均菌落数(个) 相应释倍数 CFU/g 100mL 0.2mL 10 g
平均菌落数——某一稀释度下三个平皿上的菌落平均数; CFU——菌落形成单位(colony-forming units,CFU); 0.2mL——每个平皿加入的菌悬液体积; 100mL——10-1菌悬液的体积; 10g——称取的土壤重量。
交叉划线法
连续划线法
4、若所有稀释度的平均菌落数均大于300,则应 按稀释度(倍数)最高的平均菌落数乘以稀释倍数 (见下表,例4)。
5、若所有稀释度的平均菌落数均小于30,则应按 稀释度(倍数)最低的平均菌落数乘以稀释倍数 (见下表,例5)。 6、若所有稀释度的平均菌落数均不在30~300之 间,则以最近300或30的平均菌落数乘以稀释倍数 (见下表,例6)。
实验四 土壤微生物的分离和计数

牛肉膏蛋白胨培养基; 高氏1号培养基; 马铃薯葡萄糖培养基(添加有抗生素);
灭菌水、移液器、吸头、接种针、涂布器、灭 菌离心管、消毒酒精、试管架、记号笔、吸水 纸、酒精灯、平皿、漩涡振荡器、天平等。
实验内容
土壤微生物的分离和纯化 系列稀释法 划线法(讲解) 分离微生物的形态观察 (3天后) 细菌 放线菌 真菌
记录系列稀释法分离土壤微生物的结果:
真菌菌落的种类和数量,菌落特征描述; 细菌菌落的种类和数量,菌落特征描述; 放线菌菌落的种类和数量,菌落特征描述;
通过试验和查阅资料,独立完成思考题。 实验中出现问题的分析和讨论。
3天后观察记录分离试验结果,上交实验报告。
思考题:
在分离真菌时,有哪些方法可以避免或减少 细菌的污染?
称取土壤样品0.5~1.0 g加入含30ml灭菌水的塑料离心管 中振荡3~5分钟(旋涡振荡器),形成土壤悬浊液; 取0.1ml加入装有0.9ml灭菌水试管中,振荡均匀。依次稀 释,共5次。 细菌的分离:取第3,4,5 ,6四个稀释水平的样品分别 取0.1ml,均匀涂布在牛肉膏蛋白胨培养平板上; 放线菌的分离:取第1,2,3 ,4四个稀释水平的样品分 别取0.1ml,均匀涂布在高氏1号培养基; 真菌的分离:取第2,3,4 ,5四个稀释水平的样品分别 取0.1ml,均匀涂布在含抗生素的PDA平板上; 菌液被培养基吸收后,反转放置,做好标记,28℃培养。
细菌菌落的共同特征
湿润 粘稠 质地均匀 较透明 易挑取(与培养基结合不紧密) 菌落正、反面、边缘、中心颜色一致
注意事项:
土壤中微生物的分离纯化(电子版实验报告)

微生物实验报告土壤中微生物的分离与纯化指导教师:李海花周四晚第四组实验成员: 杜玉琪180112010009董天涵180112010008蒋怡菲180112010018逄颖180112010035【摘要】利用分离纯化微生物的基本操作技术对土壤中的微生物进行分离和纯化,通过观察微生物的菌落形态特征判断菌的类型并通过平板划线进行分离纯化【关键词】土壤、微生物、菌落观察、分离纯化1.实验目的(1)通过对几种培养基的配制,掌握配制培养基的一般方法和步骤。
(2)掌握倒平板的方法、接种和无菌操作技术。
(3)初步观察来自土壤中的几类微生物的菌落形态特征,并能判断菌的类型。
(4)学习平板菌落计数的基本原理和方法,并掌握其基本技能。
2.实验原理(1)培养基的配制与灭菌培养基是人工配制的适合微生物生长繁殖或积累代谢产物的营养基质,用以培养、分离、鉴别、保存各种微生物或积累代谢产物。
一般的培养基应包含适合微生物生长的6大营养素即水分、碳源、氮源、能源、无机盐和生长因子。
不同微生物对pH要求不一样,霉菌和酵母菌的培养基的pH一般是偏酸的,而细菌和放线菌培养基的pH一般为中性或微碱性。
所以配制培养基时还要根据不同微生物的要求将培养基的pH调到合适的范围。
已配制好的培养基必须立即灭菌,如来不及灭菌,应暂存冰箱,以防止其中微生物生长繁殖而消耗养分和改变培养基酸碱度所带来不利影响。
(2)微生物的培养及鉴定接种:将微生物的培养物或含有微生物的样品移植到培养基上的操作技术称之为接种。
接种是微生物实验及科学研究中的一项最基本的操作技术。
接种的关键是要严格的进行无菌操作。
鉴定:常见与常用的微生物中,根据它们的主要形态可分为细菌、放线菌、酵母菌和霉菌四大类。
细菌菌落光滑,易于基质脱离;放线菌菌落质地致密,菌落较小,广泛延伸;酵母菌菌落较细菌菌落大而厚;霉菌形成的菌落较稀松,多成绒毛状,絮状。
(3)平板分离与活菌计数倒平板:按稀释涂布平板法倒平板,并用记号笔标明培养基名称、土样编号和实验日期等。
环境中微生物的检测和分离纯化实验报告

环境中微生物的检测和分离纯化一.实验原理1.微生物的分离与纯化土壤中含有丰富的微生物,可以从中分离纯化得到很多有价值的菌株。
微生物常用的分离方法是平板分离法,根据某种微生物对生长条件的不同要求供给它适宜的培养环境,再用稀释涂布平板法或稀释后平板划线分离,纯化该微生物,直到得到纯菌株。
2.平板菌落计数法将待测样品经适当稀释后,其中微生物充分分散成单个细胞,取一定量的稀释样液接种到平板上,经过培养,由每个单细胞生长繁殖而形成肉眼可见的菌落。
统计菌落数,根据其稀释倍数和取样接种量即可换算出样品中含的菌落数。
二.实验材料与试剂1.土壤稀释溶液2.取液器(1000ml 1支),培养箱,培养皿(12个),无菌有帽试管,三角瓶,无菌涂棒,接种环,1000ml无菌吸头若干,记号笔,酒精灯,火柴,试管架。
三.实验步骤(一).无菌平板制备1.采用叠皿法把牛肉冻蛋白膏培养基倒入灭好菌的培养皿中,制作无菌平板(二).周围环境中微生物的检测2.取一平板,分成6个区,做好标记。
同一个人同一根手指头按如下要求用力一致进行操作:分别用未洗过的手指头,自来水打湿的手指头,自来水认真洗过的手指头,洗手液洗过一遍的手指头,洗过两遍的,洗手液洗过又用酒精棉球消毒后的手指头在六个区上涂抹。
(平板1)3.取一平板,分区,分别用使用过的纸巾,硬币,旧纸币,餐卡在不同区拖动。
(平板2)4.在培养基上方抖动头发数次。
(平板3)5.取一平板,分区,用无菌接种环分别蘸一滴自来水,河水,豆浆在不同区划线。
(平板4)6.用无菌牙签取一点牙垢在培养基上划线。
(平板5)7.取两个平板,一个打开在实验台上放置30分钟,另一个在酒精灯火焰边打开皿盖1分钟。
(平板6)8.取一平板,打开盖,咳几下。
(平板7)(三).从土壤中分离微生物1.采土样2.制备土壤稀溶液3.涂布吸取100ml稀释好的土壤稀溶液,较均匀地滴在平板上,再用无菌涂棒涂布均匀,涂1—2分钟4.培养将培养基平板倒置于37℃下培养24小时5.菌落计数四.实验结果1.平板1:从未洗到用酒精消毒总体趋势是菌落数越来越少,用自来水洗过和用洗手液洗过一遍的菌落数差不多;平板2:旧纸币和硬币的菌落数要多;平板3:抖头发的地方附近长出许多菌落;平板4:自来水菌落最多,其次是河水,河水的菌落分布成“牛”字形,和当时划线的形状一样,再其次是豆浆;平板5:划线的地方长出许多菌落;平板6:放在试验台上的平板长出各种形状的菌斑菌块,在酒精灯旁的基本没有菌落;平板7:咳几下的基本没有菌落。
土壤微生物数量测定方法

土壤微生物数量测定方法土壤微生物是指生活在土壤中的微小生物,包括细菌、真菌、放线菌、古菌等。
土壤微生物在土壤的生物地球化学循环、有机质分解、养分转换和植物健康等过程中起着重要的作用。
因此,对土壤微生物数量的准确测定具有重要意义。
本文将介绍一些常用的土壤微生物数量测定方法。
1.瓶培法:将适量的土壤样品与适量的培养基混合,在37°C下培养约24小时,然后通过平板计数法或最凼稀释法进行测定。
2.膜过滤法:将土壤提取液通过特定孔径的膜过滤器滤过,然后将膜放置在培养基上进行细菌的生长,最后进行计数。
3.间接法:通过测定土壤样品的可培养细菌指标,如氧化还原酶、脱氢酶等的活性,从而推算出土壤中的细菌数量。
4.分子生物学方法:通过PCR扩增土壤DNA中的细菌基因,如16SrRNA基因,再通过测定PCR产物进行细菌数量的测定。
1.直接镜检法:直接在显微镜下观察土壤样品中的真菌,通过计数来估算真菌的数量。
2.平板计数法:将土壤样品均匀撒在培养基上,通过培养方法使真菌生长形成菌落,最后进行计数。
3.膜过滤法:与细菌数量测定相似,将土壤提取液通过膜过滤器滤过,然后将膜放置在适当的培养基上进行真菌的生长,最后进行计数。
4.分子生物学方法:通过PCR扩增土壤DNA中的真菌基因,如18SrRNA基因,再通过测定PCR产物进行真菌数量的测定。
1.直接镜检法:直接在显微镜下观察土壤样品中的放线菌,通过计数来估算放线菌的数量。
2.平板计数法:将土壤样品均匀撒在培养基上,通过培养方法使放线菌生长形成菌落,最后进行计数。
3.膜过滤法:与细菌和真菌数量测定类似,将土壤提取液通过膜过滤器滤过,然后将膜放置在适当的培养基上进行放线菌的生长,最后进行计数。
4.分子生物学方法:通过PCR扩增土壤DNA中的放线菌基因,如16SrRNA基因,再通过测定PCR产物进行放线菌数量的测定。
通过上述方法测定土壤中微生物的数量,可以了解土壤微生物对土壤生态系统功能的影响,并为土壤质量评价和科学合理利用提供依据。
平板分离技术与活菌计数实验报告

平板分离技术与活菌计数实验报告篇一:微生物学大实验实验报告微生物学大实验实验题目:土壤微生物的分离纯化与鉴定一.实验目的:1.巩固本学期所学的所有微生物实验操作技能。
2.再次强调无菌操作概念。
3.初步学习微生物鉴定纯化的方法和思路。
4.学会应用相关手册对微生物进行分类。
二.实验原理:1. 培养基的制备、消毒与灭菌:培养基是人工配制的适合微生物生长繁殖或积累代谢产物的营养基质,用以培养、分离、鉴定、保存各种微生物或积累代谢产物。
在自然界中,微生物种类繁多,营养类型多样,加之实验和研究的目的不同,所以培养基的种类很多。
但是,不同种类的培养基中,一般应含有水分、碳源、氮源、能源、无机盐、生长因素等。
不同微生物对 pH 要求不一样,霉菌和酵母的培养基的 pH 一般是偏酸性的,而细菌和放线菌的培养基的 pH 一般为中性或微碱性的 ( 嗜碱细菌和嗜酸细菌例外 ) 。
所以配制培养基时,都要根据不同微生物的要求将培养基的 pH 调到合适的范围。
此外,由于配制培养的各类营养物质和容器等含有各种微生物,因此,已配制好的培养基必须立即灭菌,如果来不及灭菌,应暂存冰箱内,以防止其中的微生物生长繁殖而消耗养分和改变培养的酸碱度所带来不利的影响。
2. 微生物的分离与纯化:自然界中各种微生物混杂生活在一起,要研究某种微生物的特性,首先须使该微生物处于纯培养状态。
从混杂的微生物群体中获得只含有某一株微生物的过程称为微生物的分离与纯化。
土壤是微生物生活的大本营,所含微生物无论是数量还是种类都是及其丰富的。
因此,土壤是微生物多样性的重要场所,是发掘微生物资源的重要基地,人们可以从中分离到很多有价值的菌株。
本实验将采用平板划线分离法。
3. 平板分离技术与活菌计数:值得指出的是从微生物群体中经分离、生长在平板上的单个菌落并不一定保证是纯培养。
因此,纯培养的确定除观察其菌落特征外,还要结合显微镜检测个体形态特征等综合考虑。
有些微生物的纯培养要经过一系列的分离与纯化过程和多种特征鉴定方能得到。
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土壤微生物的分离与平板菌落计数实验二土壤微生物的分离与平板菌落计数
一、实验目的
(1)几种常用分离纯化微生物的基本操作技术
(2)掌握倒平板
(3)学习平板菌落计数的基本原理和方法
二.实验原理
微生物的分离与纯化是指从混杂的微生物群体中获得只含有某一种或某一株微生物的过程。
分离纯化微生物的常用方法有平板表面画线法、平板表面涂布法和琼脂培养基浇注法等,因为其方法简单、设备简单、分离效果好,所以一直被实验室普遍选用。
活菌计数的基本方法是将待测样品经适当稀释之后,其中的微生物充分分散成单个细胞,取一定量的稀释样液接种到平板上,经过培养,由每个单细胞生长繁殖而形成肉眼可见的菌落。
统计菌落数,根据其稀释倍数和取样接种量即可换算出样品中的含菌数。
三.实验器材
1.材料:土壤
2.培养基:牛肉膏蛋白胨培养基
3.仪器或其他用具:无菌培养皿,盛有9ml无菌水的试管,1ml移液器,玻璃涂布器,恒温培养箱
四.实验步骤
(一)采样
取表层以下5-10cm处的土样,放入灭菌的袋中备用,或放在4 ?冰箱中暂存。
(二)倒平板(无菌操作)
培养基加热溶化,待冷至55-60? ,然后在无菌操作条件下倒入培养基于无菌培养皿中,并在各培养皿上作好标记。
(三)制备土壤稀释液(无菌操作)
1.制备土壤悬液
用电子天平称取 5g土于装有45ml无菌水的三角瓶中,振摇约20min,使土壤与水充分混匀
2.梯度稀释
取1ml土壤悬液加入装有9ml无菌水的试管,以此类推制成10-1 、10-2、10-3等不同稀释度的土壤溶液。
(四)平板分离单菌落(无菌操作)
选用平整、圆滑的接种环,按无菌操作法挑取少量含菌的土壤悬液,在酒精灯旁进行划线操作,用左手控制培养皿,右手捏接种环,在标记处划3-4条连续的平行线作当作初步稀释的菌源。
烧去接种环上的残余菌样。
将烧去残余菌样后的接种环在平板培养基边缘冷却以下,然后将培养基另一区转至划线位置,将接种环通过菌源区而移至现在的划线区,依次类推划上几次。
然后烧去接种环上的残菌。
最后平板倒置,恒温培养:细菌培养37?,1-2d;放线菌培养28?,5-7d;霉菌培养28?,3-5d。
(五)活菌计数
从10-2、10-3、10-4、10-5、10-6各管中,分别吸出1ml菌液加至相应编号的平板表面上。
用左手控制培养皿,并将皿盖开启一缝,右手拿涂布玻璃棒把培养皿上的一滴菌液轻轻涂开、均匀铺满整个平板,并防止平板培养基破损。
最后平板倒置,恒温培养:细菌培养37?,1-2d;放线菌培养28?,5-7d;霉菌培养28?,3-
5d。
经培养后,选出菌落数在30-300个/皿范围内的各培养皿,计算每皿的菌落数,并记录结果。
五、实验结果
(1)涂布平板法
在10-4浓度时,经培养得到椭圆或圆形的无色单菌落,目测输出的结果是26个单菌落。
10-6 10-5 10-4 10-3
第一组 2 2 26 70
第二组 3 1 7 150
第三组 0 1 14 110
平均数 1.7 1.3 15.7 110 涂布平板法得到的结果如上表所示,随着浓度的降低,单菌落数也呈降低趋势,
-5,10-6时出现增加趋势,可能是由于实验误差造成的(计数误差;吸但在10 取土壤菌液不准确;外界污染带入菌)
(2)平板划线伐
平板划线法得到一个单菌落,并且此单菌落长在所划线上,结果较理想。
六、实验作业
1.用平板划线法进行纯种分离的原理是什么,有何优点,
答:平板划线法进行纯种分离的原理是:在固体培养基表面将含菌培养物做规则划线,含菌样品经多次划线逐步被稀释,最后在接种针划过的线上得到一个被分离的单独存在的细胞,经过培养后形成彼此独立的由单个细胞发育的菌落。
其优点是:操作简单,而且在分离微生物的同时,还可以同时测定待分离的微生物的数量。
2 .试比较浇注平板法和涂布平板法的优点和应用范围
浇注平板法涂布平板法
优点培养基的表面和内层均能可防止一些严格好氧菌因被固定在琼脂中生长菌落间缺氧而影响其生长
使培养基能被充分利用
缺点使某些好氧菌因缺氧死亡未充分利用培养基
应用范适合兼性厌氧的细菌和酵适用于好氧性或有气生菌丝的放线菌和细围母菌的分离菌的分离。