药物毒理学实验
药物毒理学 实验课程
药物毒理学实验课程是指通过实验手段来研究药物在体内的毒性效应和机制的课程。
这门课程旨在培养学生对药物毒理学的基本概念、技术和实践的理解和应用能力。
药物毒理学实验课程通常包括以下内容：
1.毒性分类和评估：介绍药物和化学物质的毒性分类、毒性评估方法和标准，以及了解毒性物质对人体的潜在影响。
2.实验设计和操作：学习和实践常用的药物毒性实验设计和操作技术，包括动物模型的选择、药物给药途径、毒性指标的测定方法等。
3.毒性测定方法：学习和掌握常用的毒性测定方法，如细胞毒性实验、遗传毒性实验、生殖和发育毒性实验等。
4.毒性评价和数据分析：学习如何评估药物的毒性，收集和分析实验数据，解读和报告实验结果。
5.毒理机制研究：了解药物毒理反应的机制和生物学基础，如药物代谢、细胞损伤机制、药物与受体或酶的相互作用等。
药物毒理学实验课程旨在通过实践操作和理论学习，培养学生对药物毒性的全面了解和评估能力。
学生在实验中将学习和掌握实验设计、操作技术、数据分析和结果解读的技能，并能运用这些技能进行药物毒性评价和风险评估。
在进行药物毒理学实验课程时，科学伦理和动物福利也是必须重视的方面。
学生需要遵守相关的伦理原则和法规，保护实验动物的福利权益，并采取适当的伦理和安全措施来确保实验的可靠性和可持续性。
药理毒理学实验
药理毒理学实验引言药理毒理学实验是药物研究过程中的重要环节之一。
药理毒理学实验主要通过实验手段，对药物的药理作用及有害效应进行评估，为药物的研发提供科学依据。
本文将介绍药理毒理学实验的基本概念、实验设计和实验步骤等内容。
药理毒理学实验的基本概念药理学药理学是研究药物在机体内的作用机制、效应和代谢过程的学科。
药理学实验通过对药物在体内及体外的作用机制进行研究，来评估药物的药理活性和安全性。
毒理学毒理学是研究有害物质对机体产生有害效应的学科。
毒理学实验通过对有害物质的毒性和危害性进行评估，来判断其对人体健康的影响程度。
药理毒理学实验的目的药理毒理学实验的主要目的是评估药物的药理作用和毒性，以确定药物的有效剂量范围和安全性。
通过药理毒理学实验的结果，可以为进一步的临床试验和药物注册提供科学依据。
药理毒理学实验的实验设计实验动物的选择在药理毒理学实验中，通常选择小鼠、大鼠、兔子、猪等动物作为实验对象。
实验动物的选择应根据药物的使用目的、药物在不同动物体内的代谢和反应差异等因素进行合理选择。
实验组和对照组的设置药理毒理学实验中，通常将实验对象分为实验组和对照组进行比较。
实验组接受药物处理，而对照组则不接受药物处理，用来评估药物处理后的效应。
实验参数的评估药理毒理学实验中，常用的评估参数包括药物的生物利用度、药物的作用机制、药物的药效和剂量效应关系、药物的副作用等。
通过对这些参数进行评估，可以全面了解药物的药理作用和安全性。
药理毒理学实验的实验步骤实验前准备实验前准备包括准备实验材料和设备、对实验动物进行适应性饲养、制定实验方案等。
准备工作的好坏直接影响到实验结果的准确性和可靠性。
实验操作实验操作包括给动物投药、观察实验效果、收集数据等。
在实验过程中，要保证实验操作的准确性和规范性，避免实验误差的发生。
数据处理与分析数据处理与分析是药理毒理学实验的重要环节。
通过对实验数据进行统计和分析，可以得出实验结果的可靠性和科学性。
药理毒理学实验
药理毒理学实验
药理毒理学实验是指研究药物对机体生理和病理过程的影响以及药物的毒性和安全性的实验研究。
这些实验常用于药物的开发、评价和监管。
药理学实验常包括以下方面的研究：
1. 药物在体内的吸收、分布、代谢和排泄过程；
2. 药物对生理系统和器官的作用机制和效应；
3. 药物对生理参数（如血压、心率、血糖等）的影响；
4. 药物的药效学研究，如测定最小有效剂量、最大耐受剂量等。
毒理学实验主要研究药物对机体引起的毒性反应，包括急性毒性、慢性毒性和亚慢性毒性等。
常用的毒理学实验包括：
1. 急性毒性实验：用于确定药物对动物的一次性剂量引起的毒性反应；
2. 慢性毒性实验：用于评估长期接触药物对动物的毒性效应；
3. 亚慢性毒性实验：用于评估中长期接触药物对动物的毒性效应；
4. 各种毒性指标的测定，如致死剂量、半数致死剂量、致畸性、致癌性等。
药理毒理学实验通常在动物模型中进行，常用的动物包括小鼠、大鼠、猴等。
实验设计需要符合伦理规范，并进行必要的安全措施，以确保实验过程安全且可靠。
值得注意的是，药理毒理学实验虽然可以提供药物效果和毒性的初步评估信息，但实验结果在转化到人类临床应用方面仍需要进行更进一步的研究和验证。
药物毒理学长期毒性试验
这对于制定临床试验的剂量方案具有重
要意义
t
预测药物的生殖和发育毒性
某些药物可能对生殖和发育造成不良影
响，长期毒性试验可预测这些潜在毒性
4
方法
进行药物毒理学长期毒性试验时，需要考虑以下因素 实验动物：选择适合的实验动物，如小鼠、大鼠、狗、灵长类等 给药方案：根据药物的性质和实验目的，确定给药的剂量、频率和持续时间 观察指标：在试验期间，定期观察动物的生理指标(如体重、呼吸、体温等)、血液学 指标(如红细胞计数、白细胞计数等)、生化指标(如肝功能、肾功能等)以及其他可能 的毒性反应 病理学检查：在试验结束后，对动物进行病理学检查，以评估药物的毒性作用 数据处理与分析：对试验数据进行整理和分析，评估药物的长期安全性和毒性反应
结果评估
根据上述评估结果，药物开发商可以制定相应的临床 试验方案，确保药物在临床试验中的安全性
x
同时，这些结果也为药物的上市许可提供了重要的参 考依据
-
请各位老师批评指正!
THESIS DEFENSE POWERPOINT
XXXXXXXXXX
指导老师：XXX
答 辩 人 ：XXX
2
概念
1
药物毒理学长期毒性试验是 指通过给予实验动物一定剂 量的药物，观察和分析药物
对动物的长期毒性作用
2
长期毒性试验通常采用啮齿类动 物或非啮齿类动物作为研究对象， 连续给药一段时间(如3个月至1 年)，以评估药物的长期安全性
3
目的
药物毒理学长期 毒性试验的主要 目的是评估药物 的长期使用对动 物的毒性作用， 包括
5
结果评估
根据长期毒性试验的结果，可以进行如下评估 毒性反应类型与程度：确定药物引起的毒性反应类 型和程度，如轻度、中度或重度 安全剂量范围：根据不同剂量下的毒性反应，确定 药物的安全剂量范围 致癌性评估：根据药物的致癌性检查结果，评估药 物的致癌风险 生殖和发育毒性评估：根据药物的生殖和发育毒性 检查结果，评估药物对生殖和发育的影响2Βιβλιοθήκη XX药物毒理学长 期毒性试验
毒理学指标及试验操作汇总
.药物毒性试验指标1.急性毒性试验一、半数致死量（LD50）的测定(一)目的:观察受试物一次给予动物后，所产生的毒性反应和死亡情况。
(二)动物分组和剂量1.动物:一般用小白鼠8周龄，体重18---22g(同次试验体重相差不超过2g)大白鼠6~8周龄，体重120--150g，同次试验体重相差不超过10g。
2.受试物:溶于水的做成溶液，不溶于水的做成混悬液.(三)试验方法1.剂量:一般选用3一5个剂量，各剂量间剂距根据受试物情况和预试结果而定。
2.给药途径和容积:给药途径:应与临床试验的途径相一致。
口服药物应灌胃给药，一、二类新药应采用两种途径给药，其中一种应为推荐临床研究的给药途径。
水溶性好的药物还应测定静脉给药的急性毒性。
给药容积:小白鼠禁食(12~16小时)，不禁水，按体重计算:灌胃(ig)不超过0. 4ml/ 10g体重。
大白鼠禁食(12~16小时)，不禁水、灌胃(ig)，不超过3ml/只。
3.测定LD:将动物按体重随机分组，每组至少10只(雌雄各半)。
给受试物后立即观察50动物反应情况，每天观察一次连续观察七天。
详细逐天记录动物毒性反应情况及死亡分布，并用适当的统计学方法(申报时应说明方法名称)计算出LD值及95%可信限。
504.观察毒性反应:给受试物后应严密观察反应情况，并记录动物的外观、行为活动、精神状态、食欲(饲料消耗量)、大、小便及其颜色、被毛、肤色、呼吸、鼻、眼、口腔有无异常分泌物，体重变化以及死亡等情况。
死亡动物应及时进行尸检，发现病变器官应做病理组织学检查。
若发现中毒反应或死亡率一与动物的性别有明显相关时，则应选择性别敏感的动物进行复试。
(四)试验报告和结果评价应详细具体，包括试验日期、动物的规格、性别、数量、受试物来源及含量、试验方法。
LD 值及其95%可信限，以及各剂量组的死亡率，或最大耐受量的值及其相当于临床剂量的50倍数.详细报告实验过程中动物出现的中毒表现及致死症状，综合评价受试物毒性大小。
药物毒理学实验实验动物一般操作技术
二、实验内容
实验动物的健康状况的判定 实验动物的抓取、固定 实验动物的性别鉴定 实验动物的称重 实验动物的编号 生理指标的测定 生物材料的采集 血红蛋白的测定
实验动物的健康状况的判定
1)发育正常、体态丰满、外观无畸形； 2)被毛浓密、贴顺有光泽、不蓬乱； 3)胸阔宽阔、脊柱不弓不弯； 4)眼睛明亮； 5)表皮无溃疡、无结痂（注意尾巴）； 6)各天然孔干净、无分泌物； 7)行动灵活、反应敏捷。
实验动物的抓取、固定
1. 小鼠抓取和固定
固定方法 手固定法
固定时注意，过Leabharlann 用力会使 小鼠颈椎脱臼，若用力过轻头部 能反转过来咬伤实验者的手。这 种固定方法是灌胃给药和腹腔注 射给药常用的方法。
（此方法一定要在动物安静的状态下测定，不是精确的测量方法。）
生物材料的采集
血液的采集：心脏采血、断头采血、腹主动脉采血、 眼眶静脉从采血、尾静脉采血、剪尾采血（示教）
尿液的采集：通常使用代谢笼（示教）
血红蛋白的测定
用剪尾采血的方法来测血红蛋白含量。 先吸0.38ml0.1N的HCL，加入试管，用上述采血的方法 取20μl血液，快速打入装有盐酸的试管中，弹指法混匀， 10分钟后倒入比色管中比色，要用水冲洗试管， 向比色管 中加蒸馏水，直至颜色与标准色板颜色一致时，读数g/L， （读蓝色侧数值），最后将管冲洗干净。
2. 大鼠抓取固定方法 抓取
固定方法
实验动物的性别鉴定
大、小鼠 主要依肛门与生殖孔间的距离区分， 间距大者为雄性，小者为雌性。
实验动物的称重
现在称重通常使用电子称，将动物放在篮子 或饭盒中，先进行去皮调零后再将动物放入 篮子中记录体重。
药物毒理学实验-溶血实验2012-5-25
原理（二）
有些药物由于含有溶血成分或物理、化学及生物等方面的原因，在直接注 入血管后可产生溶血作用；有些药物注入血管后可产生血细胞凝聚，引起 血液循环功能障碍等不良反应。例如多种中草药(党参、桔梗、夹竹桃、
实验方法（一）
(1) 2%红细胞悬液的制备 取新鲜兔血10~20 ml →用玻璃棒搅动血液，除去纤维蛋白原，使成脱纤 血液。 →加入NS100 ml，摇匀，3000 r/min离心10分钟， 除去上清液，沉淀的红细胞再用NS按上述方法洗 涤2-3次，至上清液不显红色为止。 →将所得红细胞用NS配成2％的混悬液(红细胞2 ml， 加生理盐水至100 ml)，供试验用。
溶血试验
混匀后，立即置37℃±0.5℃的恒温水浴中进 行温育，观察记录各管的溶血情况。开始每隔15分 钟观察1次，1小时后，每隔1小时观察1次，一般 观察3小时。
溶血试验结果判断标准
当阴性对照管无溶血和凝聚发生，阳性对照管有溶血发生 时，若受试物管中的溶液在3小时内不发生溶血和凝聚，则受 试物可以注射使用；若受试物管中的溶液在3小时内发生溶血
远志、三七等)含有皂苷，皂苷是一类表面活性剂，有很强的乳化力，具
有溶血作用； 另外大量输入低渗溶液以及含有某些自体化合物的注射液也可以引起溶血。 因此，凡是注射剂和可能引起免疫性溶血或非免疫性溶血反应的其他药物 制剂均应进行溶血性试验。在溶血性试验中还可观察供试品有无红细胞凝
聚作用。
实验用品
【器材】 烧杯、玻璃棒(去纤维蛋白用)、10 ml 试管、试管架、滴管、吸管、离心机、恒温水浴 锅。 【药品】 受试药物、生理盐水、蒸馏水。 【动物】 家兔1只，体重2.5~3.0 kg，雌雄不限 (供采血之用)。
药物毒理学的研究方法
药物毒理学的研究方法药物毒理学是研究药物对生物体的毒性作用和剂量-反应关系的科学。
它是保证药物安全性和有效性的重要环节。
本文将介绍药物毒理学的研究方法。
一、急性毒性实验急性毒性实验是评价某种化合物对动物的急性毒性作用的一种方法。
这种实验通常使用小鼠或大鼠，通过口服、皮肤接触或注射等方式给予化合物，然后观察动物在一定时间内是否死亡，并计算LD50值（半数致死剂量）。
二、亚急性和慢性毒性实验亚急性和慢性毒性实验是评价某种化合物对动物长期暴露下的毒性作用的一种方法。
这种实验通常使用小鼠或大鼠，通过口服或注射等方式给予化合物，然后观察动物在数周或数月内是否出现任何不良反应。
此外还可以进行血液、生化和组织学检查等。
三、遗传毒理学实验遗传毒理学实验是评价某种化合物对生殖细胞和基因的影响的一种方法。
这种实验通常使用小鼠或大鼠，通过口服或注射等方式给予化合物，然后观察动物的生殖细胞是否出现异常，并进行染色体畸变和突变等检查。
四、生殖毒性实验生殖毒性实验是评价某种化合物对动物生殖能力和后代发育的影响的一种方法。
这种实验通常使用小鼠或大鼠，通过口服或注射等方式给予化合物，然后观察动物的生育能力是否下降，并观察其后代是否出现任何不良反应。
五、致癌性实验致癌性实验是评价某种化合物对动物致癌作用的一种方法。
这种实验通常使用小鼠或大鼠，通过口服或注射等方式给予化合物，然后观察动物是否出现肿瘤，并进行组织学检查。
六、免疫毒理学实验免疫毒理学实验是评价某种化合物对动物免疫系统的影响的一种方法。
这种实验通常使用小鼠或大鼠，通过口服或注射等方式给予化合物，然后观察动物免疫系统是否受到影响，并进行免疫学检查。
七、神经毒理学实验神经毒理学实验是评价某种化合物对动物神经系统的影响的一种方法。
这种实验通常使用小鼠或大鼠，通过口服或注射等方式给予化合物，然后观察动物是否出现神经系统异常，并进行行为学和生理学检查。
八、药代动力学和药效学实验药代动力学和药效学实验是评价某种化合物在体内的代谢和作用机制的一种方法。
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重程度，中毒死亡的情况等，根据各组动物死亡数计
算半数致死量（LD50）。据此分析受试动物毒性反应 与剂量的关系，并根据LD50值对药物进行毒性分级。
三.实验材料
（1）器材
（2）药品
1ml注射器、电子天平、记号笔、镊子、剪刀等。
盐酸赛拉嗪注射液。
（3）动物
实验一
急性毒性试验
•
（一） 药物LD50的测定
一、实验目的
（1）理念——是药三分毒;
（2）了解一些常规药物毒理学的试验方法， 及评价指标; （3）掌握药物急性毒性试验的试验设计方 法、LD50的测定及计算方法。
二. 实验原理
选择健康的实验动物，根据体重按随机分组方法，
根据LD50计算的设计原则将动物分成数个染毒组。一
死试验。
（2） 致癌实验： 短期致癌实验和长期致癌实验。
（3） 致畸胎试验：于孕鼠或孕兔胚胎的器官形成期给药，观察对子代的影响。
最大耐受剂量(MTD)
指在外来化合物急性毒性实验中,化学物质不引起
受试对象(实验动物)出现死亡的最高剂量,故可缩写为LD0。一般不用最大耐 受剂量来比较两种外来化合物的毒性。 治疗指数 为药物的安全性指标。通常将半数中毒量（TD50）/半数有
察受试区皮肤的变化，有无红斑、水肿等现象。
如为多次给受试物实验则一般每日涂抹一次，连续一周， 其余均与一次给受试物的方法和要求一致。
2、结果判断与评价
每只动物实验结果按表1进行刺激反应评分，
计算出平均分值按表2进行刺激强度评价：
表1 皮肤刺激反应评分
红斑形成
无红斑 勉强可见 明显红斑 中等-严重红斑
急性毒性试验
是指一次或24小时内多次染毒的试验，是毒性研究的
第一步。要求采用啮齿类或非啮齿类两种动物。通常为小鼠或大鼠采用经 口、吸入或经皮染毒途径。急性毒性试验主要测定半数致死量（浓度）， 观察急性中毒表现， 亚慢性毒性 是指实验动物连续多日接触较大剂量的外来化合物所出
现的中毒效应。所谓较大剂量，是指小于急性LD50的剂量。“多日”的确 切天数，至今尚无完全统一的认识。一般认为在环境毒理学与食品毒理学 中所要求的连续接触为3～6个月，而在工业毒理学中认为1～3月即可。
分值计算方法
角膜评分：分值×５
虹膜评分：分值×５
结膜评分：（Ａ＋Ｂ＋Ｃ）分值×２
总分：３项评分之和。 分值范围（０－５０分）
眼刺激性评价标准
━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━ 刺激程度 积 分 ━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━ 无刺激性 ０－ 5 轻度刺激性 ５－１５ 轻度刺至中度刺激性 １５－２０ 中度刺激性 ２０－３０ 中度至重度度刺激性 ３０－４０ 重度刺激性 ４０－５０ ━━━━━━━━━━━━━━━━━━━━
Σp：各组动物死亡率之总和 。
5. 评价指标
急性毒性分级 小鼠一次经口LD50 大致相当于体重 70kg人的致死剂量
极毒
剧毒 高毒
<1 mg/kg
1mg --10 mg/kg 11--100 mg/kg
< 7滴
7滴 ~ 1茶匙 1茶匙 ~ 35克
中等毒 低毒
无毒
101 - -1000 mg/kg 1001--10000 mg/kg
眼睛部分结构：模式图
眼刺激试验--角膜评分
刺激反应强度
无混浊 极轻微弥漫性混浊，虹膜清晰可见 轻度混浊（虹膜细微结构不清晰） 混浊（虹膜结构不清，瞳孔大小看不到） 极混浊（虹膜完全看不到）
评分
0 1 2 3 4
眼刺激试验—虹膜评分
刺激反应强度 评分
正常
皱褶明显加深，充血，肿胀，角膜周围
0
1
轻度充血，瞳孔对光仍有反应
出血，肉眼可见坏死，对光无反应（或源自出现其中一种反应） 2眼刺激试验—结膜评分
Ａ. 充血（指睑结膜、球结膜部位） 血管正常 血管充血呈鲜红色 血管充血呈深红色，血管不易分辨 弥漫性充血呈紫红色 Ｂ. 水肿 无水肿 轻微水肿（包括瞬膜） 明显水肿，伴有部分眼睑外翻 水肿至眼睑近半闭合 水肿至眼睑超半闭合 Ｃ. 分泌物 无分泌物 少量分泌物 分泌物使眼睑和睫毛潮湿或粘着 分泌物使整个眼区潮湿或粘着 评分 ０ １ ２ ３ ０ １ ２ ３ ４ ０ １ ２ ３
构,是染色体畸变在间期细胞中的一种表现形式。
微核是在细胞的有丝分裂后期染色体有规律地进 入子细胞形成细胞核时，仍然留在细胞质中的染色 单体或染色体的无着丝粒片断或环。最后单独形成 一个或几个规则的次核，存在于细胞质中，由于比 核小得多故称微核。 微核的产生与染色体损伤有关。
以受试物处理啮齿类动物，然后处死，取骨髓，制片、固定、
染色，于显微镜下计数PCE中的微核。如果与对照组比较，处 理组PCE微核率有统计学意义的增加，并有剂量-反应关系， 则可认为该受试物是哺乳动物体细胞的致突变物。
微 核（micronucleus, 简称MCN）
也叫卫星核,是真核类生物细胞中的一种异常结
>10000 mg/kg
35 ~ 350克 350 ~ 1050克
>1050克
6. 注意事项
6.1 正确捉拿小白鼠，防止咬伤；
6.2
注意肌肉注射方法，给药剂量力求准确；
6.3 实时注意观察小鼠中毒症状及其发生时间、死亡 时间。
7. 作业
7.1 查阅文献，与国内外相关文献报道结果作比较。
7.2 撰写试验报告
健康成年小白鼠若干只，体重18-22g。
四.实验方法
1. 预实验
各组剂量分别为Dmax、（ Dmax ）r、（ Dmax ）r2、(Dmax)r3……….
2.正式试验
2.1试验步骤 小白鼠禁 食6-10h 60min
随机分成5组
各组按试验设 计方案给药 计算LD50
记录小鼠死亡 只数
得出结论
将小白鼠随机分成5组，每 组4只(随机单位 组设计方法)。
三、实验材料
1、动物：成年健康家兔。家兔休重2kg左右，与给受试物24
小时将动物背部脊柱两侧毛脱掉，脱毛面积约为体表面积1０
％（家兔每侧各约50cm2）。 2、受试物：膏剂、液体或粉末。粉末需用适宜赋形剂（如 羊毛脂、凡士林等）混匀，本实验采用10%双氧水溶液。
四、实验方法
1、实验操作：在家兔背部受试物区和对照区（脱毛后），一 次将受试物1ml均匀涂布受试物区，将生理盐水涂布于空白对 照区，再以医用纱布及胶布进行包扎固定，开始计时。在给 药后30分钟取下包扎，用温水洗净皮肤上的残留受试物，观
（二） 刺激性试验
1. 皮肤刺激实验
2. 眼部刺激实验
1.皮肤刺激性实验
一.实验目的
通过比较染毒动物与正常动物皮肤的变化，学
习评价外源性化学物急性皮肤刺激的 基本方法。
二、实验原理
皮肤刺激试验是指皮肤接触药物是否产生可逆性炎性症状的 试验，它又分急性皮肤刺激试验（一次皮肤涂抹实验）和多次皮 肤刺激试验。
520
4. 计算LD50
4.1计算方法：目测机率单位法、加权机率单 位法(Bliss 法)、寇氏法、序贯法。 4.2 Bliss 法是目前推荐使用的方法。此法对 剂量分组无严格要求，不需要剂量组有0%和 100%死亡率，是目前公认最准确的测定方法。 4.3 我国卫生部规定，Bliss法是作为新药 LD50测定评定必须采用的方法。
（1）小白鼠编号（从1-20号）用两种颜色记 号笔进行标记： 黑色代表个位（蓝色记号笔）； 红色代表十位（红色记号笔）。 （2）小鼠称重并按体重大小依次排序。 ① ④ ② ⑤ ③ ⑥ ⑦ ⑧ ⑨
2.2 试验设计
组别 1 2 3 4 5
小鼠编号 5 18 20 7 13 6 9 1 19 15 2 12 3 16 17 11 10 8 4 14
积分
0 1 2 3
紫红色红斑并有焦痂形成
4
0
水肿形成
无水肿
勉强可见
皮肤隆起轮廓清楚 水肿隆起约1mm 水肿隆起超过1mm，范围扩大 总分
1
2 3 4 8
表2 皮肤刺激强度评价
刺激反应 无刺激 轻度刺激 中度刺激 强刺激 分值 0-0.4 0.5-2.9 3-5.9 6.0-8.0
2. 眼刺激试验
一.试验目的 1.眼刺激试验目的； 2.眼刺激试验方法； 3.眼刺激试验结果的评价方法。
二、实验材料
1.动物：家兔；
2.受试物：10%双氧水溶液；
3.剂量：滴入1滴； 4. 方法：滴入一侧眼结膜囊内，另一侧作为空白对照（滴 入等量生理盐水）。给药后使眼睛被动闭合 1min 。记录给 药后5min、10min、15min、20min时眼的局部反应情况（1h、 12h、24h、48h、72h）。
效量（ED50)或半数致死量（LD50）/半数有效量（ED50）称为治疗指数。
治疗指数大的药物相对治疗指数小的药物安全，但以治疗指数来评价药物的 安全性，并不完全可靠。
安全范围
是指药物的最小有效量与最小中毒量之间的范围，它表示药
物的安全性，一般安全范围越大，用药越安全。药理学用上95%有效剂量 （ED95）到5%中毒剂量（LD5）的距离来表示。
计算方法1：加权机率单位法(Bliss 法)-软件辅助计算
计算方法2： 2. 改良寇氏法公式计算： LD50=log-1[Xm-i(Σp-0.5)] Xm：为最大剂量组剂量对数值； i：为相邻两组剂量比值的对数（相邻两组对数剂量的差值， log2）； P：为各组动物死亡率（用小数表示，如果死亡率为20%应写成 0.20）；
药物毒理学实验
指导老师： 刘 娟 罗艺晨
• 毒性试验
•
给实验动物进行不同途径、不同期限的染毒、检测各
种毒性终点的实验。其目的是确定无害作用水平、毒性类