实验六 酵母菌细胞总数的测定
实验五实验六酵母菌形态观察显微计数法
每毫升菌液中的菌数 = A ——×25（16）×10×1000×B 5
A：5个中方格中的酵母菌数 B：稀释倍数
三、实验材料
1.菌种：啤酒酵母 2.染色液：0.1%吕氏碱性美蓝 3.器材：载玻片，显微镜、血球计数 板、盖玻片 、吸水纸、计数器、滴 管、擦镜纸。
四、内容及方法
（一）.酵母菌个体形态观察
（二）、显微镜直接计数法
1.镜检计数室，熟悉计数器的使用方法 2.对稀释5倍的啤酒酵母悬液进行计数
3.注意：
（1）血球计数板必须洗干净，勿刷
（2）注意勿损坏计数器
计数原则： 1、 稀释浓度要合适，每个小方格5-10个 酵母菌 2、压线的酵母菌，一般计上和右 3、对于出芽的菌体，如果芽体超过母体的 一半，算2个菌
实验五 实验六
酵母菌的形态观察及死活 细胞鉴定 微生物显微镜直接计数法
一、目的要求
1.学习自制水浸片法观察酵母菌的方法 2.观察酵母菌形态和出芽生殖方式 3.学习并掌握区分酵母菌死活细胞的染色方法 4.了解血球计数板的构造、计数原理和计数方 法，掌握显微镜下直接计数的技能
二、实验原理
1.酵母菌可以用单纯的水制成水浸片观察， 也可以用染色液制成水浸片观察。 2.美兰是一种无毒性染液，有两种形态 还原型：无色 氧化性：蓝色 活细胞因新陈代谢而有强还原力使美兰从氧 化型变为还原型；死细胞无此能力，而被美 兰染成蓝色。以此可以区分死活细胞。 3.测定微生物细胞数量的方法很多，通常采用 的有显微直接计数法和平板计数法。
五、实验结果
1.酵母个体形态，芽体（绘图） 2.计算死活细胞的比率，说明吕氏碱性美 蓝染液浓度和作用时间对死活细胞数的 影响
3.计数结果
酵 母 个 体 形 态
酵母菌数的测定（直接计数）[经验]
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实验直接计数法及酵母菌数的测定一、目的要求1、了解血球计数板测定微生物数量的原理。
2、了解血球计数板的结构，学习并掌握利用血球计数板进行酵母菌记数的方法，包括样品的点样、菌数计数的方法与计算。
二、实验原理微生物常用的计数方法有两种，即直接计数法和间接计数法。
前者利用血球计数板在显微镜下直接计数，能立即得到数值。
后者是在平板上长成菌落后再计数，反应较真实，但费时太长。
三、实验器材菌种：酵母菌液仪器：显微镜，血球计数板、盖玻片（22mm×22mm）、吸水纸、计数器、滴管、擦镜纸等四、操作方法酵母细胞数的测定操作方法1、血球计数板的构造血球计数板是由一块比普通载玻片厚的特制玻片制成的。
玻片中有四条下凹的槽，构成三个平台。
中间的平台较宽，其中间又被一短横槽隔为两半，每半边上面个刻有一个方格网。
方格网上刻有9个大方格，其中只有中间的一个大方格为计数室，供微生物计数用。
计数室通常有两种规格。
一种是大方格内分为16中格，每一中格又分为25小格；另一种是大方格内分为25中格，每一中格又分为16小格。
（本实验用）2、酵母菌数量的测定(1) 取洁净的血球计数板一块，在计数室上盖上一块盖玻片。
(2) 将酵母菌液摇匀，用滴管吸取少许，从计数板中间平台两侧的沟槽内沿盖玻片的下边缘滴入一小滴(不宜过多)，使菌液沿两玻片间自行渗入计数室，勿使产生气泡，并用吸水纸吸去沟槽中流出的多余菌液。
也可以将菌液直接滴加在计数室上，然后加盖盖玻片(勿使产生气泡)。
(3) 静置约5分钟，先在低倍镜下找到计数室后，再转换高倍镜观察计数。
(4) 计数时用16中格的计数板，要按对角线方位，取左上、左下、右上、右下的4个中格(即100小格)的酵母菌数。
如果是25中格计数板。
除数上述四格外，还需数中央1中格的酵母菌数(即80小格)。
由于菌体在计数室中处于不同的空间位置，要在不同的焦距下才能看到，因而观察时必须不断调节微调螺旋，方能数到全部菌体，防止遗漏。
酵母细胞计数与大小测量【精选】
酵母细胞计数与大小测量一、目的与要求1. 了解血球计数板的构造和使用方法，并掌握使用血球计数板进行微生物计数的方法。
2. 学习用显微测微尺测量酵母细胞的大小，使大家对微生物大小有一种直观的认识。
3. 观察酵母细胞形态特征,出芽繁殖。
二、实验原理血球计数板是一块比普通载玻片厚得多的玻璃片，其上由四条平行槽构成的三个平台，中间的平台较宽，其中间又被一短槽隔成两半，每边平台上面各刻有一个方格网，即为此计数板的计数室。
计数室的长宽各为1 mm ，中间平台下陷0.1mm ，故盖上盖玻片后计数室的容积为0.1mm 3。
计数室有两种规格。
一种是16X25型，共有16个大格，每个大格又分为25个小格。
另一种是25X16型，共有25个大格，每个大格又分成16个小格。
应用血球计数板在显微镜下直接计数微生物细胞的数量，就是先测定若干个方格中的微生物细胞的数量。
再换算成每ml 菌液中微生物细胞数量。
显微镜直接计数法是将小量待测样品的悬浮液置于一种特别的具有确定面积和容积的载玻片上（又称计菌器），于显微镜下直接计数的一种简便、快速、直观的方法。
目前国内外常用的计菌器有：血球计数板、Peteroff-Hauser 计菌器等。
显微计数法适用于各种含单细胞菌体的纯培养悬浮液，如酵母、细菌、霉菌孢子等。
菌体较大的酵母菌或霉菌孢子可采用血球计数板。
血球计数板计数板是一块特制的载玻片，其上有四条槽构成三个平台；中间较宽的平台又被一短横槽隔成两半，每一边的平台上各刻有一个方格网，每个方格网共分为九个大方格，中间的大方格即为计数室。
计数室规格：①25（中格）×16（小格）；②16（中格） ×25 （小格）。
每种规格计数室中的小方格都是400个。
计数室大小：每一个大方格边长为1mm，盖上盖玻片后，盖玻片与载玻片之间的高度0.1mm，所以计数室的容积为0.1mm3。
本次使用的25个中方格：1mL菌悬液中含有细胞数=五个中格总菌数(A)/5×25×104×稀释倍数(B)微生物细胞的大小是微生物基本的形态特征，也是分类鉴定的依据之一。
实验六酵母菌细胞总数的测定
实验六酵母菌细胞总数的测定酵母菌是一类微生物，它们广泛存在于自然界的土壤、水体、植物和动物食品中。
酵母菌在工业和科学研究中具有广泛的应用，例如在制酒、制药、发酵面包、化妆品、生物污水处理等方面。
因此，酵母菌细胞总数的测定对于酵母菌应用研究和品质控制具有重要意义。
实验目的通过酵母菌细胞总数的测定，了解酵母菌数量的变化和生长规律，掌握测定方法和技巧，为酵母菌的应用研究和品质控制提供实验数据和参考。
实验原理通过显微镜观察菌落计数法和板层法两种方法来测定酵母菌细胞总数。
一、菌落计数法方法：取不同体积的发酵液，经稀释后均匀涂布于琼脂平板上，在适宜温度下培养一定时间后，计算生长菌落数。
计算公式：细胞总数=平均菌落数× 菌群系数× 稀释倍数其中：平均菌落数：每平板上的平均菌落数菌群系数：每1个菌落所包含的菌体数稀释倍数：制成平板时的涂布稀释倍数二、板层法方法：亚硫酸氢钠和碘化钾混合后加入琼脂，使其形成带有抑菌区的琼脂层，经过金属条温度下降至约40℃后加入酵母悬浮液，均匀涂布于琼脂平板上，在适宜温度下培养一定时间后，计算生长菌落数。
计算公式：细胞总数=（下限+上限）/2× 1/涂布量下限：最小生长菌落数涂布量：菌液在琼脂平板上均匀涂布的数量实验步骤1. 酵母菌培养将酵母菌培养在适宜的培养基上，70摄氏度处理，然后加入液体培养基中，继续孵育，并记录生长周期。
（1）首先制备连续稀释物，在组织均一切割后，加入纯水或盐水中，制作成一定稀释度的悬浮液。
（2）取0.1ml、0.2ml、0.5ml、1ml、2ml不同的稀释液，在常规琼脂平板表面均匀下板培养。
（3）在培养箱中适当的温度下培养，3~5天后，通过显微镜计算每个菌落的数量。
（4）根据菌落数，统计酵母菌细胞总数。
3. 板层法（1）准备带抑菌区的琼脂平板，和2-3ml的酵母悬浮液。
（2）用真空过滤器将酵母悬浮液过滤到无菌锥形瓶中，测定菌体数量，并按需稀释。
酵母计数的方法
三、实验原理 (一)酵母菌大小的测定原理 所有微生物的大小需要用刻有一定刻度的测微 尺来测量，先用绝对长度的物镜测微尺来校正不表 示绝对长度的目镜测微尺，计算后者每格所代表的 实际长度，然后放上待测的标本，用目镜测微尺测 定标本上微生物细胞占目镜测微尺的格数，就可计 算该微生物的大小。酵母菌的直径约8-10μ m。
五、思考题及实验作业 1.若更换不同放大倍数的目镜和物镜时，必须用物镜测 微尺标定目镜测微尺，这是为什么? 2.利用血球计数板时，注入的菌液为什么不能过多? 3.测定酵母细胞大小的结果。 (1)接目镜倍数是 ；低倍镜倍数 ；高倍镜倍数 。 (2)低倍镜下，接目镜测微尺 格=物镜测微尺 格。 目镜测微尺每格= μ m。 (3)高倍镜下，接目镜测微尺 格=镜台测微尺 格。 目镜测微尺每格= μ m。 (4)酵母菌测量结果填表 (5)酵母菌直接计数结果报告 每1ml样品含酵母细胞 个。
(3)将血球计数板用擦镜纸擦净，在中央的计数室上 加盖专用的厚玻片。 (4)将稀释后的酵母菌悬液，用吸管吸取一滴置于盖 玻片的边缘，使菌液缓缓渗入，多余的菌液用吸水 纸吸取，捎待片刻，使酵母菌全部沉降到血球计数 室内。 (5)计数时，如果使用16格×25格规格的计数室，要 按对角线位，取左上、右上、左下、右下4个中格 （即100个小格）的酵母菌数。如果规格为25格 ×16格的计数板，除了取其4个对角方位外，还需 再数中央的一个中格(即80个小方格)的酵母菌数。
4.酵母菌大小的测定 (1)取下物镜测微尺，换上酵母菌水浸制片。 (2)测量菌体的长度和宽度各占目镜测微尺几格， 然后换算出菌体的实际长度。
微生物生理生化和酵母细胞大小的测定
2020/10/27
二 利用血球计数板和显微镜测定酵母细胞的数量和大小
每个大方格均被分成400个小方格；每个大方格的 边长为1mm，则每一个大方格的面积为1mm2，盖 上盖玻片后，在盖玻片与载玻片之间的高度为 0.1mm，所以计数室的容积为0.1 mm3（万分之一 毫升）。
2020/10/27
加5滴V.P试剂
2020/10/273. 吲 Nhomakorabea试验：（含氮化化合物的分解利用）
（1）以液体接种的方式分别接种枯草杆菌和大肠杆菌于蛋 白 胨水培养基中。
（2）接种后恒温培养，培养2d。
（3）观察结果时，在培养液中加入乙醚约1毫升（使呈明显的 乙醚层）。充分振荡，使吲哚溶于乙醚中，静置片刻，待乙 醚浮于培养液上面时，沿管壁慢慢加入吲哚试剂10滴。如吲 哚存在，则乙醚层呈玫瑰红色
在每个计数室中取5个中方格进行计数
1ml菌液中的总菌数=A/5×25×104×B =50000(or 32000)A×1 A: 5个中方格中细胞总数 B:稀释倍数
（注意：加入吲哚试剂后，不可再摇动，否则红色不明 显）。以“+”、“—”表示有无红色的玫瑰吲哚。
2020/10/27
2020/10/27
4. 淀粉水解试验（生物大分子的分解利用）
（1）用油性笔在平板背面划成两等份。 （2）在两个区域分别点接B.S和E.C，倒置培养。 （3）观察结果时，打开皿盖，滴加少量的碘液于平板
实验六 微生物生理生化实验 和酵母细胞数量与大小测定
实验六酵母菌细胞总数的测定
实验六酵母菌细胞总数的测定一、目的要求1.学习并掌握血球计数板计数的原理；2.掌握利用血球计数板进行微生物计数的方法。
二、实验材料1.菌种：酿酒酵母（Saccharomyces cerevisiae）麦芽汁培养液2.其它：显微镜、血球计数板、手动计数器、擦镜纸、吸水纸等三、基本原理利用血球计数板在显微镜下直接计数，是一种常用的微生物计数方法。
该方法是将菌悬液放在血球计数板与盖玻片之间容积一定的计数室中，在显微镜下进行计数，然后根据计数结果计算单位体积内的微生物总数目。
血球计数板是一块特制的载玻片，其上由4条槽构成3个平台。
中间较宽的平台又被一短横槽隔成两半，每一边的平台上各刻有一个方格网，每个方格网共分为9个大方格，中间的大方格即为计数室。
计数室的边长为1mm，中间平台下陷0.1mm，故盖上盖玻片后计数室的容积为0.1mm3。
血球计数板的构造如下。
图6-1 血球计数板构造常见血球计数板的计数室有两种规格：一种是16×25型，即计数室共分为16个中方格，每个中方格又分为25个小方格；另一种是25×16型，即计数室先被分成25个中方格，每个中方格又分为16个小方格。
但无论是哪一种规格的血球计数板，其计数室的小方格都是400个。
我们采用的是25×16型。
计数时，通常数5个中方格的总菌数，再换算成1ml菌液中的总菌数。
计算公式如下：1ml菌液中总菌数＝5×104 A·BA为5个中方格中的总菌数，B为稀释倍数。
四、操作步骤1.菌悬液的制备：以无菌生理盐水将酿酒酵母培养物制成浓度适当的菌悬液。
2.加样品：将清洁干燥的血球计数板盖上盖玻片，再用无菌的毛细滴管将摇匀的酵母菌悬液由盖玻片边缘滴一小滴，让菌液沿缝隙靠毛细作用自动进入计数室（注意取样前要摇匀菌液；加样时计数室不可有气泡产生）。
3.找计数室：加样后静止5min，然后将血球计数板置于显微镜载物台上，先用低倍镜找到计数室所在位置，然后换成高倍镜进行计数（注意调节显微镜光线强弱，使菌体和计数室线条清晰）。
酵母菌细胞数和发芽率的测定、微生物细胞大小的测定实验报告
酵母菌细胞数和发芽率的测定、微生物细胞大小的测定实验报告实验报告一、实验目的1.了解酵母菌的基本结构和特点，能够通过显微镜观察和测量微生物的大小。
2.了解酵母菌的生长规律和判断细胞数量的方法。
3.学习正确使用显微镜、计数盘等工具的方法和技能。
二、实验原理1.酵母菌细胞数量的测定酵母菌生长的过程中，细胞数量会不断增加。
在进行数量的测定时，可以使用计数盘的方法，将酵母菌培养液进行稀释后，挑取一定数量的细胞在计数盘中进行计数，从而得出总细胞数。
计算公式：N=Nv/(Vs某d)其中，N为总细胞数，Nv为计数盘中可数的细胞数，Vs为取自培养液的样品体积，d为稀释倍数。
2.酵母菌发芽率的测定酵母菌发芽率是指在特定条件下发芽的酵母菌占总酵母菌数量的百分比。
测定方法为：将稀释后的培养液分别在不同的温度和时间条件下进行培养，待观察到发芽的细胞数后再进行计算。
计算公式：G=Nf/Nt某100%其中，G为发芽率，Nf为观察到发芽的细胞数，Nt为总细胞数。
三、实验步骤1.酵母菌细胞数量的测定（1）将酵母菌液稀释至合适浓度，取出10μl滴于计数盘的盆2中。
（2）低倍镜下计数，计算得到总细胞数。
2.酵母菌发芽率的测定（1）将酵母菌液稀释至合适浓度，分别放置于不同的温度和时间条件下培养。
（2）观察不同条件下的发芽情况，计算得到发芽率。
四、实验结果与分析1.酵母菌细胞数量的测定（1）计算盘的小方格数为16，每个小方格的面积为0.010mm²。
（2）经过计数后得到的样品的平均值为32个/小方格，计算得到总细胞数为32某16/(0.01某10)=5120个/mL。
2.酵母菌发芽率的测定（1）在不同的温度条件下，观察到的发芽率分别为：30℃1h（90%）、35℃1h（75%）、40℃1h（60%）。
（2）在不同的时间条件下，观察到的发芽率分别为：30℃1h（90%）、30℃2h（80%）、30℃3h（70%）。
五、实验思考通过本次实验，我们了解到了酵母菌的基本结构和特点，学会了正确使用显微镜、计数盘等工具的方法和技能，并且能够通过显微镜观察和测量微生物的大小。
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实验六酵母菌细胞总数的测定
一、目的要求
1.学习并掌握血球计数板计数的原理；
2.掌握利用血球计数板进行微生物计数的方法。
二、实验材料
1.菌种：
酿酒酵母（Saccharomyces cerevisiae）麦芽汁培养液
2.其它：
显微镜、血球计数板、手动计数器、擦镜纸、吸水纸等
三、基本原理
利用血球计数板在显微镜下直接计数，是一种常用的微生物计数方法。
该方法是将菌悬液放在血球计数板与盖玻片之间容积一定的计数室中，在显微镜下进行计数，然后根据计数结果计算单位体积内的微生物总数目。
血球计数板是一块特制的载玻片，其上由4条槽构成3个平台。
中间较宽的平台又被一短横槽隔成两半，每一边的平台上各刻有一个方格网，每个方格网共分为9个大方格，中间的大方格即为计数室。
计数室的边长为1mm，中间平台下陷
0.1mm，故盖上盖玻片后计数室的容积为
0.1mm3。
血球计数板的构造如下。
图6-1血球计数板构造
常见血球计数板的计数室有两种规格：
一种是16×25型，即计数室共分为16个中方格，每个中方格又分为25个小方格；另一种是25×16型，即计数室先被分成25个中方格，每个中方格又分
为16个小方格。
但无论是哪一种规格的血球计数板，其计数室的小方格都是400个。
我们采用的是25×16型。
计数时，通常数5个中方格的总菌数，再换算成1ml菌液中的总菌数。
计算公式如下：1ml菌液中总菌数＝5×104A·B
A为5个中方格中的总菌数，B为稀释倍数
四、操作步骤
1.菌悬液的制备：
以无菌生理盐水将酿酒酵母培养物制成浓度适当的菌悬液。
2.加样品：
将清洁干燥的血球计数板盖上盖玻片，再用无菌的毛细滴管将摇匀的酵母菌悬液由盖玻片边缘滴一小滴，让菌液沿缝隙靠毛细作用自动进入计数室（注意取样前要摇匀菌液；加样时计数室不可有气泡产生）。
3.找计数室：
加样后静止5min，然后将血球计数板置于显微镜载物台上，先用低倍镜找到计数室所在位置，然后换成高倍镜进行计数（注意调节显微镜光线强弱，使菌体和计数室线条清晰）。
4.xx计数：
取左上、右上、左下、右下和中央5个中方格进行计数。
位于中方格边线上的菌体一般只计上边和右边线上的（或只计左边和下边线上的）。
如遇到酵母出芽，芽体大小达到母细胞一半以上时，即作为两个菌体计数。
计数一个样品要从上下两个计数室中得到的平均数值来计算样品的含菌量。
5.清洗血球计数板：
使用完毕后，将血球计数板在水龙头上用水冲洗干净，切勿用硬物洗刷，洗完后自行晾干或用吹风机吹干。
镜检，观察计数室内是否有残留菌体或其它沉淀物。
若不干净，则必须重复洗涤至干净为止。
五、实验内容
按上述方法及步骤测定所给酿酒酵母培养液的细胞浓度。
六、实验报告
1.将结果记录于下表中。
A表示5个中方格中总菌数；B表示稀释倍数。
第一室
第二室各中方格菌数
12345AB二室平均值菌数
/ml
2.根据你的体会，说说用血球计数板计数的误差主要来自哪些方面？应如何尽量减少误差，力求准确？
3.能否用血球计数板在油镜下对细菌进行计数？为什么？。