鱼类生理学实验指导
【鱼类学实验指导】肌肉系统
实验123456789101112131415实验四肌肉系统一、目的要求通过鱼类骨骼肌几个主要部分的观察，了解鱼类肌肉系统的一般结构与生活方式的关系。
二、材料与工具1．实验材料尖头斜齿鲨、鲤。
2．工具解剖刀，解剖剪，尖头镊子。
三、解剖方法与观察内容(一)解剖方法用解剖刀沿头部后方身体背正中线的皮肤划开一刀口，注意勿伤及肌肉，用镊子小心将头部后方的左侧皮肤从前向后逐渐提起，同时用解剖刀将皮肤与肌肉割离，背、臀鳍基部的一些小肌束一端附于皮肤下方的腱膜上，因此在剥离皮肤时，不能用力过猛，否则会使此处的肌肉束与皮肤一起撕去。
(二)观察内容观察浅层肌肉为主，注意每块肌肉的起止点及肌纤维方向与作用。
尖头斜齿鲨：1．头部背侧面肌肉(1)瞬膜肌：位喷水孔前方一小束斜行肌肉，起点附于耳囊侧面，止点在瞬膜后方，收缩时可使瞬膜斜移向背上方，遮盖部分眼球。
（2)颅颌肌：位眼球与喷水孔之间一片肌肉，起点附于眼上方脑颅的侧壁，肌纤维斜向后方，以粗短肌腱附于腭方软骨后端，收缩时提举上颌。
（3)背缩肌：这是围绕鳃孔周围的一大片肌肉，每侧五个鳃裂，将肌肉分隔为六节，各节在鳃裂的背腹两端连成一片。
此肌收缩时可压缩咽腔进行排水，并关闭鳃孔。
(4)下颌收肌：位第二背缩肌前面，起点在上颌侧面，止点在下颌的米克尔氏软骨上，向后延伸达下颌后半部，收缩时将口关闭。
(5)斜方肌：被背缩肌所遮盖，需翻开肩带前方的背缩肌，才能暴露斜方肌全貌。
此肌起点在背面腱膜上，止点在肩带前缘，收缩时使肩带上举。
2．头部腹面肌肉(1)颌间肌，位于下颌中央前方的一片肌肉，起点在中央腱膜上，收缩时使口底上升压水出鳃孔。
(2)腹缩肌：共有6节，1—2节肌肉前部起点在中央腱膜上，止点在角舌软骨的腹缘，后部肌纤维起点在2—3腹缩肌之间的腱膜上，止点在舌弓与第一鳃孔之间的腱膜上，3—6节腹缩肌起点在前面腹缩肌之间的腱膜上，止点在后面腱膜上，收缩时关闭鳃孔，压缩咽喉。
(3)喙颌肌：去掉颌间肌及部分腹缩肌，可见腹面中央一块纵长带状肌肉，起点位于肩带乌喙部，止点在左右下颌连合处，收缩时可使口张开，甲状腺位于此肌前方背面中央处。
鱼类营养生理实验
鱼类蛋白质利用率的测定
（三）克氏定氮法 采用克氏（Kjeldahl）定氮法测定样品含氮量。其方法如下： １．原理 ２H２SO４ C＋O２ CO２ ２SO２＋２H２O＋O２ ２H２＋O２ ２H２O
NH２-CH２-COOH＋３H２SO４ ２NH３＋H２SO４ ２H２SO４＋Se２ （NH４）２SO４＋H２SeO３ ３（NH４）２SeO３ （NH４）２SO４＋２NaOH NH３＋H２BO３
（５）计算。 样品含氮量（％）＝（样品滴定值－空白滴定值）×c×n １ ０００×ＶD Ｖ×１００ m 样品粗蛋白含量（％）＝样品含氮量×６２５ 式中，c为标准酸液的物质的量浓度（moｌ／Ｌ）； n为氮原子的摩尔质量（１４）； ＶD为样品消化后定容体积（ｍＬ）； Ｖ为用于测定的消化液体积（ｍＬ）； m为样品质量（g）。
（二）１４C标记粗纤维的提取 称取２０ g １４C标记的凤眼莲干粉置于３ ０００ ｍＬ大烧杯中，加入２ ０００ ｍＬ １２５ ｍＬ／Ｌ H２SO４，加热煮沸，同时加入数滴辛醇溶液，以防止气泡过多，并 注意水分蒸发。不断用滴管加入沸水，使烧杯内溶液保持在２ ０００ ｍＬ左右。持续沸 腾３０ min后趁热倒入布氏漏斗中抽滤。抽滤毕，用沸水洗２～３次，每次用水约４０ ０～８００ ｍＬ。洗至滤渣不呈酸性为止。再用２ ０００ ｍＬ １２５ g／Ｌ NaOH 溶液把漏斗内的滤渣洗回原大烧杯中，并依法进行碱处理。碱处理后，滤渣用沸水洗至不 呈碱性；用煮沸的１２５ ｍＬ／Ｌ H２SO４ ４００ ｍＬ分为２～３次洗滤渣，以除 去溶于酸中的某些金属沉淀，接着用沸水分数次洗去残余硫酸直至不呈酸性为止。最后， 用１００ ｍＬ ９５０ ｍＬ／Ｌ乙醇洗滤渣，再用２００ ｍＬ乙醚分两次滤洗，所得的滤 渣就是粗纤维，将它置于１０５ ℃烘箱中烘干备用。 提取的粗纤维的抽样用常规生化分析方法试验，证实与粗纤维共存于凤眼莲植物体中的蛋 白质、脂肪、糖类等物质均已清除。
鱼类学实验指导（水产养殖、生物科学）
鱼类学实验指导（⽔产养殖、⽣物科学）“鱼类学”实验指导课程编号：12414220 专业：⽔产养殖、⽣物科学学时：33学时指导教师：龚⼩玲第⼀部分鱼类形态实验⼀鳞⽚、⾊素细胞鳍条的观察（3学时）实验⽬的：掌握鱼类不同的鳞⽚形式、鳞⽚的分区、鳞⽚上年轮的识别，⾊素细胞的分布、种类、形状，鱼类不同类型鳍条的形态，为鱼类学的进⼀步学习打下基础。
实验原理：鱼类的年轮的形成是有⼀定的规律，年轮有识别的标识，鳍条的硬棘、软条、假棘的形态结构是完全不同的。
实验对象：路⽒双髻鲨、鲫鱼、鲈鱼、鲥鱼、鳕鱼的鳞⽚；⾦鱼的⾊素细胞，鲫鱼的软条、假棘，⼩黄鱼的硬棘实验药品与器材⽢油溶液、NaOH溶液、解剖盘、解剖⼑、剪⼑、镊⼦、玻⽚、透明胶、解剖镜、显微镜、烧杯、培养⽫观察的主要内容：⼀鳞⽚1.盾鳞: 由表⽪真⽪发⽣(路⽒双髻鲨)鳞棘(露在⽪肤外的部分): 棘突棱突髓腔通孔基板(插⼊⽪肤部分)2.硬鳞: 由真⽪发⽣(软⾻硬鳞类硬⾻硬鳞类)3.⾻鳞: 由真⽪发⽣基本结构: 基区(前区) 顶区(后区) 上侧区下侧区鳞焦鳞嵴鳞沟年轮分类: 按栉刺的有⽆分圆鳞: 鲫(鳞焦偏顶区) 鳞嵴⼏呈同⼼圆排列鳞沟放射状(初级次级)鲥(鳞焦偏顶区) 鳞焦偏顶区鳞沟与鳞嵴波状(⼏乎平⾏)鳕(鳞焦偏顶区) 鳞焦偏基区鳞嵴呈⼩枕状鳞沟放射状(初级次级) 栉鳞: 鲈鱼顶区有栉刺其它同鲫鱼⼆⾊素细胞取活体⾦鱼彩⾊鳞⽚，放在载波⽚上，盖上盖玻⽚，在显微镜下观察⾊素细胞的种类、形状等。
⿊⾊素细胞(活体放射状可变形死后颗粒状)黄⾊素细胞(连成细胞)反光体三鳍条硬棘: 不分⽀不分节假棘: 不分⽀分节软条: 分⽀分节注意：显微镜观察盾鳞、栉鳞的栉刺、鳕鱼鳞⽚、⾊素细胞，其它使⽤解剖镜作业：1.画出鲫鱼、鲈鱼、路⽒双髻鲨鳞⽚的⽰意图（注意各部分的⽐例），并标出各结构的名称2.画出硬棘、软条、假棘的⽰意图实验⼆~四鲫鱼、⼩黄鱼、鲳鱼的形态⽐较解剖（9学时）实验⽬的鲫鱼、⼩黄鱼、鲳鱼⽣活环境、⽣活⽅式、分类地位存在差异，对三者形态结构进⾏⽐较解剖，从⽽掌握它们形态结构的差异性及形态结构与功能的统⼀性。
鱼类动物实验实习报告
一、实验目的1. 熟悉鱼类动物实验的基本原理和方法；2. 掌握鱼类生理、生态和形态等方面的知识；3. 培养实验操作技能，提高观察和分析问题的能力；4. 了解鱼类实验在生物学研究中的应用。
二、实验内容1. 鱼类生理实验（1）实验目的：了解鱼类生理特性，掌握鱼类生理实验的基本方法。
（2）实验内容：观察鱼类呼吸、消化、循环、排泄等生理现象，测定鱼类体温、血液pH值等生理指标。
（3）实验步骤：①观察鱼类呼吸、消化、循环、排泄等生理现象；②使用生理学仪器测定鱼类体温、血液pH值等生理指标；③记录实验数据，分析实验结果。
2. 鱼类形态实验（1）实验目的：了解鱼类形态结构，掌握鱼类形态学实验的基本方法。
（2）实验内容：观察鱼类外部形态、内部器官结构，学习鱼类分类学知识。
（3）实验步骤：①观察鱼类外部形态，如体型、鳍、鳔等；②解剖鱼类，观察内部器官结构，如消化系统、呼吸系统、循环系统等；③学习鱼类分类学知识，了解不同鱼类的形态特点。
3. 鱼类生态实验（1）实验目的：了解鱼类生态特性，掌握鱼类生态学实验的基本方法。
（2）实验内容：观察鱼类生活习性、繁殖方式、食物链等生态现象。
（3）实验步骤：①观察鱼类生活习性，如栖息地、活动规律、繁殖方式等；②研究鱼类食物链，了解食物链的组成和能量流动；③分析实验结果，探讨鱼类生态学问题。
三、实验结果与分析1. 鱼类生理实验结果与分析（1）实验结果显示，鱼类在正常生活条件下，具有稳定的呼吸、消化、循环和排泄功能；（2）鱼类体温、血液pH值等生理指标均在正常范围内，表明鱼类生理功能正常；（3）通过分析实验数据，进一步了解鱼类生理特性。
2. 鱼类形态实验结果与分析（1）实验结果显示，鱼类具有独特的形态结构，如体型、鳍、鳔等；（2）通过解剖观察，了解鱼类内部器官结构，如消化系统、呼吸系统、循环系统等；（3）学习鱼类分类学知识，认识不同鱼类的形态特点。
3. 鱼类生态实验结果与分析（1）实验结果显示，鱼类具有特定的生活习性和繁殖方式；（2）研究鱼类食物链，了解食物链的组成和能量流动；（3）分析实验结果，探讨鱼类生态学问题。
鱼类生理学实验内容
实验一坐骨神经—腓肠肌标本制备 (1)实验3刺激强度对骨骼肌收缩的影响（选修） (3)实验二骨骼肌单收缩复合收缩和强直收缩 (4)实验三蛙心起搏点 (6)实验四蛙心灌流 (7)实验五脊髓反射 (9)实验六红细胞与白细胞的计数 (11)实验七血涂片制作和白细胞分类计数 (13)实验八红细胞渗透脆性的测定——浓度梯度法 (16)实验八鱼类血液指标的综合分析与差异比较 (17)实验一坐骨神经—腓肠肌标本制备（必修）[目的与原理]掌握机能学实验的基本组织分离技术；掌握蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本制备的基本操作方法。
蟾蜍等两栖类动物的某些基本生命活动和生理功能与温血动物相似，其离体组织的实验条件较简单且易于控制，在机能实验中常用蛙或蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本观察神经、肌肉兴奋性、刺激与反应的关系及肌肉收缩等某些基本特性或活动规律。
[实验对象]蟾蜍或蛙。
[试剂与器材]任氏液、蛙板、玻璃板、粗剪刀、手术剪、镊子、金属探针、玻璃钩针、蛙钉、滴管、培养皿、锌铜弓、烧杯。
[实验步骤]1、破坏脑脊髓：（1）取蟾蜍一只，用自来水冲洗干净。
左手握住蟾蜍，用食指按其头部使之略向前屈，拇指按住其背部，其余三指则握住蟾蜍的四肢和腹部，其手法如图1-7-1A。
（2）用右手持金属探针，在头颅后缘，自枕骨大孔与脊椎管之间刺入椎管，先左右摆动，离断脊髓；再向前插入颅腔，向左右摆动数次，捣毁全部脑组织，如探针确已插入颅腔，则向各方向摆动时，即有触及颅骨的感觉。
（3）将探针撤回至枕骨大孔，但不拔出皮肤，直接向后插入脊椎管，直达骶部，轻轻转动探针，以破坏脊髓。
如探针确已在脊椎管中，则不能左右摆动，探针不得穿透脊椎管，以免损伤内脏。
最后拔出探针，用小棉球堵塞创口以止血。
脑脊髓破坏完全后，蟾蜍将失去一切反射活动，全身肌肉软瘫。
如动物仍有反射动作，表示破坏不彻底，必须重新破坏。
2、去皮和制作下肢标本：图1-7-1破坏蟾蜍脑脊髓及剥去皮肤（1）左手握住蟾蜍的脊柱，用粗剪刀在前肢腋窝处，将脊柱横断，并沿脊柱两侧避开坐骨神经剪开腹壁，此时头、躯干上部及内脏全部下垂，剪除头、全部躯干及内脏组织，剪去肛周皮肤，留下脊柱和后肢（图1-7-1B、C）。
鱼类学实验指导
武汉工业学院实验指导实验一：鱼体外部形态测量一、实验目的:熟悉鱼类的体形和身体外部器官的位置和形态；掌握鱼类外部器官的名称、位置、形态和特点；掌握外形的测量方法。
二、实验材料和工具：鲫、解剖盘、解剖刀、直尺、镊子三、实验内容:凡10m以下标本均以mm，10m以上者以cm为计量单位1. 观察性状：头部，躯干部，尾部，吻部，颊部，眼后头部，下颌联合，颐部，峡部，喉部，眼间隔2. 测量鲫的头尾轴，背腹轴和左右轴的长度并说明其体形3. 可测量性状：全长，体长，体高，头长，吻长，尾柄长，尾柄高，眼径，眼间距，眼后头长。
四、作业1.绘出鲫鱼体轴，并用表格列出体轴的测量值。
2.画出鲫鱼的外观图，在图上标出鲫鱼的全长，体长，体高，头长，吻长，尾柄长，尾柄高，眼径，眼间距，眼后头长的位置，并用表格列出上述测量的数据。
附鱼类各部分名称1吻部：头部最前缘到眼前缘。
2眼后头部：眼的后缘到鳃盖骨后缘或最后一鳃裂。
3眼间隔：两眼间最短距离。
4颊部：眼的后下方到前鳃盖骨后缘。
5喉部：两鳃盖间的腹面部分。
6下颌联合：下颌左右两齿骨在前方汇合处。
7颏部（颐部）：紧接下颌联合的后方。
8峡部：颏部后方、喉部前方的部位。
9鳃盖膜：鳃盖后缘的皮褶。
10头部：吻端到鳃盖骨的后缘之间的部分。
11躯干部：鳃盖骨的后缘到肛门之间的部分。
12尾部：肛门到尾鳍末端之间的部分。
常用的测量部位：1全长：吻端到尾鳍末端的直线长度。
2体长（标准长）：吻端到尾鳍基部或最后一椎骨后缘的长度。
3体高：身体的最大高度。
4头长：吻端到鳃盖骨或最后一鳃孔后缘的长度。
5吻长：眼前缘到吻端的直线长度。
6眼径：沿体纵轴方向眼的直径。
7眼间距：两眼间的最短距离。
8眼后头长：头在眼以后的长度。
9尾柄高：尾柄部分最低的高度。
10尾柄长：臀鳍基部后缘到尾鳍基部或最后一椎骨后缘的长度。
实验二：骨骼系统的解剖观察一、目的要求通过鱼类内骨骼的观察，以了解、熟悉、掌握骨骼的一般结构和演化关系，同时为学习鱼类的肌肉系统等及鱼类分类学奠定基础。
动物生理学实验鱼类渗透压调节实验注意事项
动物生理学实验鱼类渗透压调节实验注意事项在进行动物生理学实验时，鱼类渗透压调节实验是非常重要的一个环节。
这个实验可以帮助我们更好地了解鱼类的生理特性，为后续的研究提供有力的支持。
在进行这个实验的过程中，我们需要注意一些细节问题，以确保实验的顺利进行。
下面我将从三个方面来介绍鱼类渗透压调节实验的注意事项。
我们需要准备好实验所需的器材和材料。
在这个实验中，我们需要使用到一些特殊的器材，比如鱼缸、水泵、过滤器等等。
我们还需要准备一些鱼类和鱼食。
在选择鱼类时，我们应该选择那些生长迅速、健康状况良好的品种，以便更好地观察它们在不同环境下的生理反应。
我们还需要注意鱼食的质量和数量，以免对鱼类造成不良影响。
我们需要掌握正确的操作方法。
在进行鱼类渗透压调节实验时，我们需要注意以下几个方面：一是控制好水温和水质。
鱼类对水温的要求比较高，一般要求在20°C~30°C 之间。
水质也非常重要，我们需要定期更换水并加入适量的盐分和矿物质。
二是控制好鱼缸内的水量。
在实验过程中，我们需要不断地向鱼缸中加水或抽水，以保持鱼缸内的水量稳定。
三是控制好实验时间和频率。
一般来说，我们每次实验的时间不宜过长，每周进行一次即可。
我们需要做好实验数据的记录和分析工作。
在进行鱼类渗透压调节实验时，我们需要注意以下几个方面：一是准确记录每条鱼的数量、体重、活动情况等基本信息。
二是定期测量每条鱼的血压、心率等生理指标。
三是观察每条鱼的行为变化和反应情况。
通过这些数据的综合分析，我们可以得出一些有价值的结论，为后续的研究提供有力的支持。
鱼类渗透压调节实验是一项非常关键的研究工作。
只有通过认真细致的操作和精确的数据记录，才能得到准确可靠的实验结果。
希望以上的建议能够对大家有所帮助！。
动物生理学实验鱼类渗透压调节实验注意事项
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鱼类生理学实验指导实验一、坐骨神经-腓肠肌标本制备目的学习生理学实验基本的组织分离技术；学习和掌握制备蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的方法；了解刺激的种类。
原理蛙类的一些基本生命活动和生理功能与恒温动物相似，若将蛙的神经-肌肉标本放在任氏液中，其兴奋性在几个小时内可保持不变。
若给神经或肌肉一次适宜刺激，可在神经和肌肉上产生一个动作电位，肉眼可看到肌肉收缩和舒张一次，表明神经和肌肉产生了一次兴奋。
在生理学实验中常利用蛙的坐骨神经-腓肠肌标本研究神经、肌肉的兴奋、兴奋性；刺激与反应的规律和肌肉收缩的特征等，制备坐骨神经腓肠肌标本是生理学实验的一项基本操作技术。
实验动物与用品蟾蜍或蛙、任氏液、食盐、1% H2SO4滤纸、普通剪刀、手术剪、眼科镊（或尖头无齿镊）、金属探针（解剖针）、玻璃分针、蛙板（或玻璃板）、蛙钉、细线、培养皿、滴管、锌铜弓（或电子刺激器）、酒精灯。
实验步骤与项目破坏脑、脊髓取蟾蜍一只，用自来水冲洗干净（勿用手搓）。
左手握住蟾蜍，使其背部向上，用大拇指或食指使头前俯(以头颅后缘稍稍拱起为宜)。
右手持探针由头颅后缘的枕骨大孔处垂直刺入椎管（图）。
然后将探针改向前刺入颅腔内，左右搅动探针2～3次，捣毁脑组织。
如果探针在颅腔内，应有碰及颅底骨的感觉。
再将探针退回至枕骨大孔，使针尖转向尾端，捻动探针使其刺入椎管，捣毁脊髓。
此时应注意将脊柱保持平直。
针进入椎管的感觉是，进针时有一定的阻力，而且随着进针蟾蜍出现下肢僵直或尿失禁现象。
若脑和脊髓破坏完全，蟾蜍下颌呼吸运动消失,四肢完全松软，失去一切反射活动。
此时可将探针反向捻动，退出椎管。
如蟾蜍仍有反射活动，表示脑和脊髓破坏不彻底，应重新破坏。
2.剪除躯干上部、皮肤及内脏用左手捏住蟾蜍的脊柱，右手持粗剪刀在前肢腋窝处连同皮肤、腹肌、脊柱一并剪断，然后左手握住蟾蜍的后肢，紧靠脊柱两侧将腹壁及内脏剪去(注意避开坐骨神经),并剪去肛门周围的皮肤，留下脊柱和后肢。
3.剥皮一只手捏住脊柱的断端（注意不要捏住脊柱两侧的神经），另一只手捏住其皮肤的边缘,向下剥去全部后肢的皮肤（图5.1-2）。
将标本放在干净的任氏液中。
将手及使用过的探针、剪刀全部冲洗干净。
4.分离两腿用鑷子取出标本,左手捏住脊柱断端,使标本背面朝上，右手用粗剪刀剪去突出的骶骨（也可不进行此步）。
然后将脊柱腹侧向上，左手的两个手指捏住脊柱断端的横突，另一手指将两后肢担起，形成一个平面。
此时用粗剪刀沿正中线将脊柱盆骨分为两半 (注意，勿伤坐骨神经)。
将一半后肢标本置于盛有任氏液中备用,另一半放在蛙板上进行下列操作。
5. 辩认蛙后肢的主要肌肉，蛙类的坐骨神经是由第7、8、9对脊神经从相对应的椎间孔穿出汇合而成，行走于脊柱的两侧，到尾端（肛门处）绕过坐骨联合，到达后肢背侧，行走于梨状肌下的股二头肌和半膜肌之间的坐骨神经沟内，到达膝关节腘窝处有分支进入腓肠肌（图 5.1-3）。
6.游离坐骨神经和腓肠肌用蛙钉或左手的两个手指将标本绷直、固定。
先在腹腔面用玻璃分针沿脊柱游离坐骨神经,然后在标本的背侧于股二头肌与半膜肌的肌肉缝内将坐骨神经与周边的结缔组织分离直到腘窝，但不要伤及神经，其分支待以后用手术剪剪断。
同样用玻璃分针将腓肠肌与其下的结缔组织分离并在其跟腱处穿线、结扎。
7.剪去其它不用的组织操作从脊柱向小腿方向进行。
（1）剪去多余的脊柱和肌肉将后肢标本腹面向上，将坐骨神经连同 2～3节脊椎用粗剪刀从脊柱上剪下来。
再将标本背面向上，用镊子轻轻提起脊椎，自上而下剪去支配腓肠肌以外的神经分支，直至腘窝（图5.1-4(A)），并搭放在腓肠肌上。
沿膝关节剪去股骨周围的肌肉，并将股骨刮净，用粗剪刀剪去股骨上端的1/3（保留2/3），制成坐骨神经-小腿的标本。
（2）完成坐骨神经腓肠肌标本将脊椎和坐骨神经从腓肠肌上取下，提起腓肠肌的结扎线剪断跟腱。
用粗剪剪去膝关节以下部位，便制成了坐骨神经-腓肠肌标本（图5.1-4(B)）。
8.检验标本用鑷子夹持坐骨神经中枢端,如腓肠肌发生迅速而明显的收缩，说明标本的兴奋性良好。
标本浸入盛有任氏液的培养皿中备用。
然后再依次用热玻棒、食盐（或1% H2SO4滤纸）刺激坐骨神经中枢端（或肌肉），观察肌肉收缩有何变化? 如果放上食盐肌肉无动静,用任氏液将盐冲洗掉,再观察冲洗过程中肌肉收缩有何变化?注意事项避免蟾蜍体表毒液和血液污染标本，压挤、损伤和用力牵拉标本，不可用金属器械触碰神经干。
在操作过程中，应给神经和肌肉滴加任氏液，防止表面干燥，以免影响标本的兴奋性。
标本制成后须放在任氏液中浸泡数分钟,使标本兴奋性稳定,再开始实验效果会较好。
热玻棒的温度防止过高,以免烫伤标本。
思考题用各种刺激检验标本兴奋性时，为什么要从中枢端开始？刺激有几种形式?如何解释对食盐的不同处理对肌肉收缩的影响?实验二、反射弧的分析目的分析反射弧的组成并证明反射活动的完成有赖于反射弧的完整存在。
原理反射活动是依靠反射弧实现的。
反射弧包括感受器、传入神经、神经中枢、传出神经和效应器五部分。
反射弧的结构和功能的完整是实现反射活动的必要条件。
反射弧的任何一部分受到破坏，反射活动将不能实现。
反射弧示意图实验动物与用品蛙（或蟾蜍），蛙类手术器械，支架，玻棒，烧杯，玻璃皿，纱布，线，滤纸，棉花，0.5%、1%硫酸，1%可卡因。
实验步骤与项目取一只蛙，破坏大脑，但保留脊髓，即做成脊蛙标本。
然后用肌夹夹住蛙的下颌（或用大头针钩住下颌），并将脊蛙悬挂在支架上。
待其安静后进行下列实验项目。
1、用烧杯盛0.5%硫酸，分别刺激蛙两后肢趾端，观察有无反应？为什么？待出现反应后，立即用清水洗净脚趾，并用纱布擦干。
2、在蛙左后肢踝关节上方，将皮肤作一环形切口，剥取切口以下皮肤（注意除净趾尖皮肤），再用0.5%硫酸刺激该肢趾端，有无反应？为什么？3、剪开右侧大腿背侧的皮肤，再股二头肌和半膜肌之间分离出坐骨神经干，在坐骨神经干放一浸过1%可卡因的小棉球，然后每隔数秒钟用0.5%的硫酸刺激该后肢脚趾，直到不引起反应为止，为什么？4、当右后肢不再出现收缩反应时，立即将浸过1%硫酸的滤纸片贴在该后肢躯干部皮肤上，该后肢是否仍然出现反应？为什么？每隔数秒同样刺激一次，直到不能引起右后肢反应为止。
为什么？5、用蛙针破坏脊髓，再刺激蛙身体的任何部位，有无反应？为什么？注意事项•毁脑时不可伤及脊髓，以免破坏脊髓反射中枢。
•分离坐骨神经应尽量向上，并尽量剪断与其相连的分支。
•每次酸刺激后应立即用清水洗净脚趾，并用纱布揩干。
•剥脱脚趾皮肤要完全，若剩留少量皮肤会影响实验结果。
注坐骨神经干中包括传入神经纤维和传出神经纤维。
由于传出神经纤维较粗，故其麻醉所需时间较传出神经纤维为长。
实验三、凝血时间的测定目的学习凝血时间的测定方法。
原理血液流出血管后，受到刺激的血小板就会释放出一系列凝血因子，使血中的纤维蛋白原转化成网状的纤维蛋白，血液发生凝固。
测定凝血时间可反映血液本身出凝血因子是否缺乏或减少。
本实验用鱼作为实验材料比常规的家兔和鼠所用仪器要少，费用低，实验控制更易。
实验动物与用品150 g重的鲤鱼，注射器，玻片，尖针，秒表。
实验步骤与项目将鱼用湿布包住，侧卧于木板上，在鱼尾部（腹鳍和尾鳍之间）侧线下方用手去除少许鳞片，将注射器在侧线下方1～2 mm处垂直插入肌肉，碰到脊椎骨后，稍往下方移动，插入尾静脉内，轻轻抽取注射器，让血在负压作用自然流入注射器内。
2、凝血时间观察：将注射器内的血小心注在事先准血好的玻片上，记下时间，每隔30 s用针尖挑血一次，直至挑起细纤维血丝为止。
从开始出血到挑出细纤维血丝的时间即为凝血时间。
注意事项湿布包鱼时仅将身体部位包住，不要包到鳃，以免影响鱼呼吸；如一时抽不出血可轻轻转动注射器，直至血被抽出为止；针尖挑血应向一个方向直挑，不可多个方向挑动或挑动次数过多，以免造成破坏纤维蛋白网状结构，造成不凝血的假象。
实验结果报告该实验动物的凝血时间。
并对全班的结果加以统计，用平均值±标准差表示。
讨论血液凝固对机体的生理意义。
实验四、影响血液凝固的因素目的以血液凝固时间作为指标，了解对血液凝固影响的因素，加深对生理止血过程的理解。
原理血液凝固是一个酶的有限水解激活过程，在此过程中有多种凝血因子参与。
根据凝血过程起动时激活因子来源不同，可将血液凝固分为内源性激活途径和外源性激活途径。
内源性激活途径是指参与血液凝固的所有凝血因子在血浆中，外源性激活途径是指受损的组织中的组织因子进入血管后，与血管内的凝血因子共同作用而启动的激活过程。
实验动物与用品鸡、2%草酸钾溶液、EDTA-Na，生理盐水，液状石蜡、注射器，试管6支、小烧杯2个、试管架,竹签1束(或细试管刷)实验步骤与项目将鸡保定，侧卧于木板上，打开翅膀，找到翼静脉，酒精棉球消毒，从静脉的下部倾斜进针，插入静脉内，回血后，轻轻抽取注射器，让血在负压作用自然流入注射器内。
2、试管准备好试管1 不加任何处理（对照管）试管2 用液状石蜡润滑整个试管内表面试管3 放少许棉花试管4 置于有冰块的小烧杯中试管5 EDTA 1滴试管6 加草酸钾1～2 ml每管加入血液2 ml。
将多余的血盛于小烧杯中，并不断用竹签搅动直至纤维蛋白形成。
记录凝血时间每个试管加血2 ml后，即刻开始计时，每隔壁15 s 倾斜一次，观察血液是否凝固，至血液成为凝胶状不再流动为止，记录所经历的时间。
5、6、7号试管加入血液后，用拇指盖住试管口将试管颠倒两次，使血液与药物混合。
5.如果加EDTA和草酸钾的试管不出现血凝,可再向两管内分别加入0.025 mol•L-1的CaCl溶容液2～3滴,观察血液是否发生凝固?2注意事项采血的过程尽量要快，以减少计时的误差。
对比实验的采血时间要紧接着进行。
判断凝血的标准要力求一致。
一般以倾斜试管达45o时，试管内血液不见流动为准。
每支试管口径大小及采血量要相对一致，不可相差太大。
实验结果将实验结果及各种条件下的凝血时间按表填写,并进行比较、分析解释产生差异的原因。
实验五、胃肠运动的直接观察目的观察动物在麻醉情况下的胃肠活动及其影响因素，原理胃肠平滑肌具有自动节律性活动。
胃的运动有蠕动和紧张性收缩；肠的运动有蠕动、分节运动和摆动等。
在正常机体内，胃肠运动受神经的体液因素的调节。
实验动物与用品喂饱的兔，手术台，麻醉药，常用手术器械，电刺激器，台氏液，脸盆。
0.01%乙酰胆碱，0.1%肾上腺素，0.1%阿托品。
实验步骤与项目1、将兔麻醉仰卧固定于手术台上，剪去颈部及腹部背毛。
切开颈部皮肤，分离一侧迷走神经，于其下穿一线备用。
剖开腹腔，在肾上腺附近找出左侧内脏大神经，亦于其下穿一线备用。
将兔体浸入盛有37℃台氏液的脸盆内，用止血钳扯开腹腔，以便观察。
2、观察正常胃肠运动的形式和频率。