《细胞生物学实验》教学大纲. - 兰州大学生命科学学院..doc

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细胞生物学实验课程教学大纲

细胞生物学实验课程教学大纲

细胞生物学实验课程教学大纲课程编号:11021750课程名称:细胞生物学实验/Cell Biology Experiment课程属性:必修实验属性:独立设课开课学期:2 学时:16适用专业:动物医学本科学分:0.5开课部门:11 考核要求:实验报告课程简介:1、课程定位:本门课程的教学的主要任务是要求学生熟悉光学显微镜的构造,并熟练掌握其使用方法及保养。

通过实验课的显微镜观察,熟练掌握细胞微细构造。

2、教学方法:通过示教、实验课学习,让学生系统地掌握细胞的正常形态结构,了解其生理功能,为后期相关课程的学习打下雄厚的理论基础和直观的形态学基础;3、知识体系:《细胞生物学》是动物医学的专业基础课,是动物医学的重要分支学科,本门课程为选修课。

一、实验项目设置及学时分配二、实验内容及教学要求实验项目1:显微镜的使用1、教学内容生物显微镜的构造和使用方法和哺乳动物血细胞绘图。

2、教学目标(1)了解生物显微镜的构造。

(2)熟悉生物显微镜各部分特点。

(3)掌握生物显微镜的使用方法并绘制哺乳动物血细胞。

实验项目2:红细胞悬液制备1、教学内容掌握鸡红细胞悬液的制备方法。

2、教学目标(1)了解鸡的不同采血方法。

(2)熟悉熟悉离心机等机器的使用和抗凝剂等药品的配置及使用方法。

(3)掌握1%鸡红细胞悬液的制备方法。

三、考核方式及要求考核方式:根据实验报告和出勤情况进行综合评定。

评分办法:实验报告占总成绩的60%,出勤情况占40%。

四、主要仪器设备及实验材料五、教材及参考书1、自编;六、教改说明及其他无。

细胞生物学试验教学大纲

细胞生物学试验教学大纲

细胞生物学实验教学大纲09 .面向专业:生物科学、生物技术10 .实验课程的教学任第要求和教学目的10.1教学任务细胞生物学是生命科学的一个重要分支,是生物学相关专业重要的基础必修课。

细胞生物学实验使学生了解和掌握本学科的主要研究方法和技术;巩固和加深基础理论知识的学习,提高学生分析问题、解决问题的能力;培养学生创新思维和动手能力,使学生养成良好的科研习惯,全面提高学生的生物学基本实验技能。

10.2教学要求要求学生在实验前参加本课程原理与技术讲授,认真预习与准备,参加基本实验技术训练;实验中要遵守操作规程,掌握细胞生物学的基本操作和基本技能(特别是细胞生物学实验石蜡切片的制作及染色技术,动物细胞培养及细胞融合,植物组织培养等基本实验操作技术等),并做好实验记录;实验后要整理好物品,及时处理实验数据,独立撰写实验报告,积极参加课后讨论。

10.3教学目的培养学生实际动手能力及观察问题和解决问题的能力,同时掌握和初步了解细胞生物学实验的基本技术和方法,如涂片、铺片、徒手切片、细胞传代等,并且进行创新实验的设计。

11.学生应掌握的实验技术及实验能力通过本实验课程,学生应熟练掌握血涂片的制备法,小鼠肠系膜铺片法;徒手切片法;细胞活体染色技术;石蜡切片的制作技术及特征性染色方法等基本原理及操作技术;掌握荧光显微镜的使用;掌握动物细胞培养及细胞融合、细胞凋亡、细胞生理性实验;植物组织培养及植物原生质体的分离、融合、体细胞杂交、细胞器的分级分离等基本原理及操作技术。

12 .开设实验项目开设实验项目一览表注:在设计性实验中,学生可自选其一。

徒手切片、石蜡切片、冷冻切片的制作技术实验。

包括徒手切片操作技巧,制作出易于观察细胞形态及细胞组成成分的切片;包括切片机的操作要领,切片的制作技巧,制作出符合HE染色、PAS染色、Feulgen染色的石蜡切片、冷冻切片。

细胞培养无菌操作技术实验。

包括无菌操作台、臭氧发生器、二氧化碳培养箱的使用及维护保养技术;培养基的配制及灭菌的方法;细胞室处理及检测技术。

《6细胞生物学实验》教学大纲

《6细胞生物学实验》教学大纲

《细胞生物学实验》教学大纲
实验总的目的要求:通过实验课的学习,掌握细胞生物学基本的实验操作的基本技能,提高实验的水平和质量;了解细胞生物学的发展方向和前沿水平,
说明;
1.所开实验中:技能训练性7;演示观察性0个;验证性2个;综合性3个;设计性2个;
研究创新性2个。

2.主要教学参考书目:
(1)杨汉民,细胞生物学实验(第二版),北京,高等教育出版社,1997;
(2)徐承水,现代细胞生物学技术,北京,北京农业大学出版社,1992;
(3)章静波,细胞生物学实用方法与技术,北京,北京医科大学、中国协和医科大学出版社,1990;
(4)郑国锠,细胞生物学,北京,高等教育出版社,1992;
(5)翟中和,细胞生物学,北京,高等教育出版社,2000。

细胞生物学教学大纲

细胞生物学教学大纲

细胞⽣物学教学⼤纲《细胞⽣物学实验》教学⼤纲课程名称:细胞⽣物学实验课程类别:专业必修课学时:18学时学分:1学分考核⽅式:考查适⽤专业:⽣物科学、⽣物技术开课学期:第4学期(⽣物科学)、第3学期(⽣物技术)⼀、课程性质、⽬的任务培养学⽣创新性思维与实践动⼿能⼒是细胞⽣物学实验课教学的主要宗旨之⼀。

细胞⽣物学实验课教学不仅有助于帮助学⽣了解和掌握实验技能,培养学⽣科学的⼯作态度,也有利于加强学⽣道德修养,培养学⽣的合作精神。

期望通过细胞⽣物学实验课教学,帮助学⽣树⽴相关的科学研究的基本理念:如何批判性地读书与阅读⽂献;如何设计实验,特别是对照实验;如何进⾏实验的风险评估并采取相应的对策;如何在实验过程中发现问题、解决问题;如何做好实验记录、分析结果;如何写实验报告等。

⼆、课程基本要求通过对细胞⽣物学实验课程的学习,使得学⽣掌握细胞⽣物学实验的基本技能;掌握细胞⽣物学实验涉及的相关仪器的操作⽅法;掌握细胞⽣物学实验的设计⽅案;掌握细胞⽣物学实验结果中的图⽚及数据处理分析;明确实验风险评估及对策等。

三、学时分配四、教学⽅法与考核1.教学⽅法:讲授及实验2.课程考核⽅法:考查平时成绩(30%);期末考试(70%)。

五、⼤纲正⽂实验⼀相差、暗视野、倒置显微镜的基本使⽤⽅法(3学时)【⽬的要求】1. 掌握相差显微镜的原理、⽤途和使⽤⽅法2. 掌握暗视野显微镜的原理、⽤途和使⽤⽅法3. 掌握倒置显微镜的原理、⽤途和使⽤⽅法【教学重点】相差、暗视野、倒置显微镜的使⽤⽅法【教学难点】相差、暗视野、倒置显微镜的原理【教学内容】1. 相差显微镜的原理、⽤途和使⽤⽅法2. 暗视野显微镜的原理、⽤途和使⽤⽅法3. 倒置显微镜的原理、⽤途和使⽤⽅法实验⼆荧光显微镜的基本使⽤⽅法(3学时)【⽬的要求】1. 了解荧光显微镜的基本原理2. 掌握荧光显微镜的基本结构和使⽤注意事项3. 掌握⽣物材料荧光染⾊的⽅法【教学重点】1. 掌握荧光显微镜使⽤注意事项2. 掌握荧光染料特点【教学难点】荧光显微镜的原理【教学内容】1. 荧光显微镜基本结构2. 荧光显微镜使⽤⽅法及注意事项3. ⼝腔上⽪细胞装⽚制作及吖啶橙染⾊实验三福尔根染⾊(3学时)【⽬的要求】1. 以福尔根染⾊法为例学习细胞化学⽅法检测细胞核DNA的原理和⽅法2. 观察DNA在细胞内的分布【教学重点】福尔根染⾊原理及步骤【教学难点】福尔根染⾊步骤的解释【教学内容】1. 福尔根染⾊原理及步骤2. 洋葱内⽪细胞装⽚制作实验四密度梯度离⼼法分离叶绿体(3学时)【⽬的要求】1. 掌握细胞组分的密度梯度离⼼分离技术2. 观察叶绿体的⾃发荧光和次⽣荧光,熟悉荧光显微镜的使⽤⽅法【教学重点】1. 密度梯度离⼼技术原理2. 叶绿体的制备过程【教学难点】密度梯度离⼼技术原理【教学内容】1. 密度梯度离⼼技术的原理2. 菠菜叶⽚叶绿体的分离技术3. 荧光显微镜使⽤⽅法及注意事项实验五植物原⽣质体制备(3学时)【⽬的要求】1. 掌握植物原⽣质体制备⽅法2. 观察了解原⽣质体形态【教学重点】1. 消化组织的原理及⽅法2. 植物原⽣质体的制备过程【教学难点】植物组织消化的原理【教学内容】1. 植物组织消化液配⽅2. 植物组织消化原理3. 菠菜叶⽚组织消化步骤实验六植物细胞程序性死亡的诱导与形态观察(3学时)【⽬的要求】1. 了解植物细胞程序性死亡的概念及其与动物细胞程序性死亡的差别2. 掌握植物细胞程序性死亡的诱导和观察的基本⽅法【教学重点】1. 植物细胞程序性死亡的概念2. 植物细胞程序性死亡的诱导⽅法3. 植物细胞程序性死亡的鉴定标准【教学难点】植物细胞程序性死亡的诱导⽅式【教学内容】1. CaCl2诱导植物细胞程序性死亡的原理2. CaCl2诱导植物细胞程序性死亡的⽅法3. 植物细胞程序性死亡的观察。

《细胞生物学》实验教学大纲

《细胞生物学》实验教学大纲

《细胞生物学》实验教学大纲(Cell Biology)课程编号:1922011(1923011)课程名称:细胞生物学实验学分:1实验学时:32适用专业:生物技术、生物科学、生物科学(师范)、生物工程实验名称与学时安排实验一、细胞化学技术与显微切片技术实验性质:综合性实验实验内容:①装片、涂片、压片、徒手切片等显微制片技术;②石蜡切片技术;③冰冻切片技术;④鉴定DNA的细胞化学方法;⑤显示多糖的PAS反应;⑥细胞中过氧化物酶的显示方法;⑦显示碱性蛋白与总体蛋白的细胞化学定位。

实验目标与要求:掌握细胞生物学常规的生物制片方法,以及在制片基础上进行细胞化学染色,使细胞内的各种组成结构和化学成分定性、定量地得以显示。

了解常用的原位显示细胞内某些化学成分的一般原理和方法。

掌握细胞内DNA、多糖、蛋白质、酶等在细胞内的分布状况。

注意要点:注意有机溶剂和染料对人体的伤害和污渍;双面刀片的正确使用;切片机的使用。

实验二、细胞凝集反应实验性质:验证性实验实验内容:红细胞的凝集反应。

实验目标与要求:了解及学习细胞凝集反应的过程及操作方法,通过实验加深对细胞表面结构的理解。

注意要点:注意显微镜的正确使用。

实验三、细胞膜的渗透性实验性质:验证性实验实验内容:红细胞的渗透性。

实验目标与要求:了解细胞膜的渗透性及各类物质进入细胞的速度。

注意要点:对试管轻拿轻放。

实验四、线粒体和液泡系的超活染色与观察实验性质:验证性实验实验内容:人口腔粘膜上皮细胞线粒体的超活染色观察;洋葱鳞茎表皮细胞线粒体的超活染色观察;小麦胚根液泡系的超活染色。

实验目标与要求:观察动、植物活细胞内线粒体、液泡系的形态、数量与分布,学习一些细胞器的超活染色技术。

注意要点:注意染料的使用。

实验五、植物细胞骨架的光学显微镜观察实验性质:验证性实验实验内容:洋葱鳞茎表皮细胞骨架的分布。

实验目标与要求:了解细胞骨架的相关知识,掌握细胞骨架的简单制备方法。

注意要点:注意戊二醛、考马斯亮兰的使用。

细胞生物学实验课程教学大纲

细胞生物学实验课程教学大纲

细胞生物学实验课程教学大纲课程名称:细胞生物学Cell Biology课程编号:1313016215课程类别:专业课总学时数:68 实验时数:24学分:3.5开课单位:生命科学学院生物综合教研室适用专业:生物科学适用对象:本科(四年)一、课程的性质、类型、目的和任务细胞生物学是生物科学专业的一门专业课,它从细胞水平、亚细胞水平和分子水平三个不同层次上研究细胞的结构功能和生命活动的基本规律,位于分子生物学与个体生物学之间,同他们互相衔接,互相渗透。

因此,细胞生物学又是一门承上启下的学科。

细胞生物学实验课程教学以理论课教学为基础,理论与实践相结合,加深对所学知识的理解,对实验仪器要求较高,因此开设本课程的目的是使学生掌握细胞生物学实验设备的操作方法,使学生更加牢固地掌握基础知识,更重要的是培养学生的动手能力和科学研究能力,为学生学习生命科学中的其他相关课程作好基础准备。

同时也使学生具备观察和研究细胞结构与功能的基本方法,学会发现问题和解决问题的基本技能,为毕业后从事生物学相关的科研和教学工作奠定基础。

本课程的任务是通过实验教学,使学生初步掌握暗视野、相差、荧光显微镜使用;掌握细细胞膜渗透现象的原理、观察及影响因素;掌握荧光显微镜的使用方法;叶绿体分离、制片和观察;初步掌握利用细胞化学方法显示细胞内特定化学物质分布与定位的方法;掌握动、植细胞中高尔基体和线粒体的形态结构特征及分布规律;掌握光镜下观察细胞骨架的基本形态结构操作方法;掌握活体染色法的实验原理;液泡和线粒体的活体染色方法;掌握过碘酸雪夫反应显示细胞内糖原;细胞内过氧化物酶的显示方法和原理。

二、本课程与其它课程的联系与分工本课程宜从三年级第一学期开始,以确保学生学习本课程具有所需要的生物化学、微生物生物学、有机化学等基础。

三、课程内容及教学基本要求[1]表示“了解”;[2]表示“理解”或“熟悉”;[3]表示“掌握”;实验一、暗视野、相差、荧光显微镜使用三种特殊光学显微镜的原理和结构特点[2];三种特殊光镜的使用方法[3];实验二、细胞膜的渗透性实验细胞膜渗透性原理[1];渗透现象的观察[2];各种设置因素对细胞膜通透性的影响[2];实验三、叶绿体的分离和荧光观察叶绿体分离的一般原理和方法[1];自发荧光和次生荧光产生的原理[2];荧光显微镜的使用方法[2];叶绿体分离、制片和观察[3];实验四、细胞内特定化学物质的显示细胞内特定化学物质的显示的基本原理[1];利用细胞化学方法显示细胞内特定化学物质分布与定位的方法[2];实验五、高尔基体和线粒体的观察动、植细胞中高尔基体和线粒体的形态结构特征[2];高尔基体和线粒体不同类型细胞中的分布规律[2];实验六、植物细胞骨架的光学显微镜观察光镜下细胞骨架的基本形态结构[1];光镜下观察细胞骨架的基本形态结构操作方法[2] ;光镜的使用[2];实验七、活体染色法显示细胞器活体染色法的实验原理[2];液泡和线粒体(植物细胞还包括质体)的活体染色方法 [3];实验八、细胞中多糖和过氧化物酶的定位过碘酸雪夫反应(PAS)—显示细胞内糖原(参照照片和示教片) [2];细胞内过氧化物酶的显示[2];实验九、细胞的原代和继代培养原代细胞培养与继代细胞培养基本原理[1];原代培养与继代培养的基本操作过程[2];器材及液体的准备和无菌操作[3];实验十、培养细胞的形态观察和计数培养细胞的形态观察[1];培养细胞的计数及活细胞的鉴定[2];实验十一、细胞同步化阻断细胞于G1/S期交界处的TdR双阻断法[2]:机械振荡法收集M期同步化细胞[2]:四、实验方式与要求1.实验前,要求学生预习实验内容,掌握实验目的及设计思路,了解实验步骤。

《细胞生物学实验》教学大纲

《细胞生物学实验》教学大纲

《细胞生物学实验》教学大纲课程名称:细胞生物学实验英文名称:Cellular biological experiment课程编号:14070101 实验课性质:非独立设课课程负责人:张尚立开放实验项目数:25大纲主撰人:杨晓梅曹慧仁大纲审核人:张尚立时永香石梅一、学时、学分课程总学时:54 实验学时:54 课程总学分:1.5 实验学分:1.5二、适用专业及年级生物科学、生物技术、生态学、生物工程和生命基地三年级三、实验教学目的与基本要求细胞生物学实验是为生命科学学院1~3年级各专业学生开设的实验课程,本实验课程的教学目标是:培养学生的基本实验技能,专业基础类实验能力及创新思维能力;训练学生依据实验方案能够自主完成实验项目。

通过实验训练,使学生能够具有观察、比较、分析、专业基础类,实验动手,数据处理和书写实验报告、生物绘图、制表等方面的能力。

四、主要仪器设备普通光学显微镜、倒置显微镜、荧光显微镜、复式光学显微镜及其摄影装置、电子显微镜、超薄切片机、冷冻切片机、石蜡切片机、制刀机、离心机、恒温箱、冰箱、培养箱、二氧化碳培养箱、恒温蜡箱、恒温水浴锅、解剖器械、超净工作台、组织捣碎机、分析天平、放大机、电热板、流式细胞仪、电泳仪、湿盒、细胞电泳仪、计算机、酶联免疫仪。

六、考核方式根据细胞生物学理论及实验教学的要求,结合细胞生物学实验课程教学的特点,制定以下考核办法:实验课考核的最终成绩,由平时成绩和期末考评组成,平时成绩占40%,考试成绩占60%。

记分办法:1.实验课课堂表现:包括实验态度、操作技能,实验记录及实验结果。

(10分)2.实验报告:要求实验报告书写规范,简明扼要,结果真实,对出现的问题、现象能以科学态度分析,进行结果讨论。

(20分)3.纪律卫生:不迟到、不旷课,不在实验室打闹、不大声喧哗。

实验结束,认真整理实验室台面,值日生负责清扫实验室卫生,离开实验室前检查实验室水电安全情况。

(10分)期末考试:实验动手能力,实验设计能力和实验创造性能力检验,老师设计各种命题让学生抽签选择,学生根据命题要求回答、操作,给出考查成绩(60分)。

《细胞生物学实验》课程教学大纲

《细胞生物学实验》课程教学大纲

《细胞生物学实验》课程教学大纲课程名称(中文) 细胞生物学实验课程名称(英文) Experiment of Cell Biology课程编号022410353课程性质独立设课课程属性基础课必修教材及实验指导书名称王金发编著细胞生物学科学出版社 2003王金发何炎明主编细胞生物学实验教程科学出版社 2004学时学分:学时 54实验学分 2开出时间:三年级五学期适用专业生物科学、生物技术、生物技术应用、生态学先修课程生物学基础、生物化学、细胞生物学一、课程简介及基本要求细胞生物学实验课程是生命科学学院本科各专业一门重要的必修基础课程,在生命学科的本科教学中有着十分重要的地位。

课程内容包括基础验证和基本技能性实验;综合性实验和开放式、研究型、创新性实验三大类。

基础验证和基本技能性实验主要是配合理论课的教学,使学生加深理解和掌握有关的知识,同时能够规范地掌握细胞生物学研究的基本操作与基本的实验技能。

综合性实验和开放式、研究型、创新性实验,目的旨在培养和提高学生实验设计和应用各种实验技术的能力,培养和训练学生的创新意识和创新能力,培养严谨的科学态度和实事求是的作风,提高发现问题、分析问题和解决问题的能力,为今后独立从事科学研究打下坚实的基础。

二、课程实验目的要求1. 配合理论课教学,加深和巩固所学的知识。

2. 掌握细胞生物学研究有关的基本技术,学习先进的研究方法和技能。

3. 通过开放式、研究型、创新性实验训练,培养和提高学生的实验设计能力,实验动手能力以及文献查阅、论文写作的能力。

4. 通过开放式、研究型、创新性实验训练,培养学生的科学思维方法,提高发现问题、分析问题和解决问题的能力。

在实验教学过程中,要求学生除了掌握基本的操作技能外,实验室还做到全开放,为学生提供进行开放式、研究型、创新性研究的场所,学生可以个人或小组的形式根据自己所学知识、兴趣设计研究课题进行实验,期末要提交研究论文,并做成ppt进行课堂交流。

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课程编号:课程名称: 选修类型: 实验学时: 总学分:1考核方式:开课时间:适合专业:《细胞生物学实验》教学大纲细胞生物学小实验 必修课 36实验操作+实验报告+考试第四学期生命学院全部专业细胞生物学实验(第三版),王崇英、高清祥主编,2011,高等教育出版社一、 本课程的性质和任务本课程为生物学各专业的必修基础课之-一,主要从整体、显微、分子水平观察细 胞的基本形态结构,将课堂讲授的细胞生物学的基础知识、基本概念和基本理论与 实际相结合,同时进行一些相对简单的实验技术的操作,培养学生的相关实验操 作技能和初步独立进行科学研究的能力。

总体来说包含三个部分:光学显微镜的使用、细胞器的定位与观察及动植物细胞 染色体行为。

二、 教学要求与教学方法1. 学生动手观察为主,老师讲解注释为辅。

2. 实验从第二周开始,每次3学时,部分实舱整合在-•起完成。

3. 要求1人1组,独立完成。

4. 要求分期实验报告,并入最终成绩。

三、教学学时分配和安排周次 实验内容学时第1周 普通光学显微镜与高尔基体、中心体的观察 3 第2周液泡及线粒体的活体染色与观察3第3周相差显微镜与细胞核的活体观察3第4周荧光显微镜与叶绿体的活体观察3第5周细胞骨架一微管、微幺幺的荧光定位3第6周细胞的生死状态鉴定与细胞凋亡3第7周小鼠腹腔巨噬细胞吞噬功能检测3第8周小鼠睾丸染色体标本的制备3第9周植物根尖的压片及有税分裂过程观察3第10周植物花为的压片及减数分裂过程观察[3第11周植物花药的压片及减数分裂过程观察II3第12周报告基因的细胞水平观察,考试3实验一普通光学显微镜的原理与使用U|>教学内容和要求[目的要求]理解普通光学显微镜的机械系统和光学系统的结构组成及其工作原理;熟练掌握普通光学显微镜的使用方法并进行实际操作;了解高尔基体、中心体的形态结构和分布特点。

[实验原理]普通正置显微镜的构造:机械部分、照明部分和光学放大。

[教学内容]了解普通光学显微镜的构造,掌握显微镜的使用方法和保养措施;观察和了解高尔基体、111心体的形态结构和分布特点。

[实验材料和用品]显微镜,玻片标本,香柏油,混合液,棉花。

实验二液泡及线粒体的活体染色与观察[目的要求]观察和了解活细胞内液泡和线粒体的形态结构与分布特点。

[实验原理]詹纳斯绿B (Janus green B)可专,性地对线粒体进行活染,这是由于线粒体内细胞色素氧化酶系的作用,使染料始终保持氧化状态(即有色状态),呈蓝绿色。

中性红(neutral red)对液泡和溶酶体的染色具有专•性,将活细胞中的液泡和溶酶体染成红色。

[教学内容]用詹纳斯绿B对口腔细胞线粒体进行活染并观察;用中性红对植物根尖液泡活染并观察。

[实验材料和用品]植物根尖,显微镜,詹纳斯绿B,中性红染液。

实验三相差显微镜与细胞核的活体观察[目的要求]了解相差显微镜的成像原理,熟练掌握相差显微镜的操作,对同一视野下的活细胞进行普通及相差显微镜下的观察比较。

[实验原理]相差显微镜能观察到透明样品的细节,适用于对活体细胞生活状态下的生长、运动、增殖情况及细微结构的观察。

[教学内容]熟悉和差显微镜的结构和使用方法;用和差显微镜观察未染色的洋葱表皮细胞的细胞壁和细胞核特征。

[实验材料和用品]洋葱,相差显微镜。

实验四荧光显微镜与叶绿体的活体观察[目的要求]了解荧光显微镜的成像原理,熟练掌握荧光显微镜的操作。

在荧光显微镜下观察植物叶绿体的自发荧光。

[实验原理]荧光显微镜利用物质发出的荧光来成像。

细胞的有些物质成分不经过染色就能发出荧光,称为IH发荧光,如植物细胞的叶绿素。

[教学内容]熟悉荧光显微镜的结构和使用方法;用荧光显微镜观察绿色植物叶片的叶绿体分布和特征。

[实验材料和用品]植物叶片,荧光显微镜。

实验五细胞骨架一微管、微丝的荧光定位[目的要求]掌握微管的间接免疫荧光显微技术和微幺幺直接荧光标记定位的原理和方法;观察微管和微幼•在培养细胞中的形态及分布方式。

[实验原理]本实验采用人的微管蛋白单克隆抗体作为第一抗体与细胞内的微管蛋白结合,再使用FITC标记的山羊抗小鼠二抗与一抗结合,最终在荧光显微镜下即可观察到微管的存在状态。

鬼笔环肽(phalloidin) 与聚合的微幺幺具有强亲和力,可抑制微•丝的解聚,使微丝•保持稳定状态。

因此用荧光标记物标记的鬼笔环肽染色在荧光显微镜下可以清晰的显示细胞内微冬•的分布。

[教学内容]用抗体标记培养细胞的微管、用鬼笔环肽对微税进行染色,荧光显微镜下观察细胞骨架。

[实验材料和用品]细胞爬片,COa培养箱,倒置显微镜,荧光显微镜,微量加样器, 小鼠抗人tubulin的单克隆抗体,FITC标记的山羊抗小鼠的荧光二抗,鬼笔环肽。

实验六细胞的生死状态鉴定与细胞凋亡[目的要求]掌握鉴定细胞生活状态的不同染色方法及细胞的状态特征,了解凋亡细胞的形态学特征。

[实验原理]台盼蓝是一种阴离子型染料,不能透过完整的细胞膜,所以经台盼蓝染色后只能使死细胞着色,而活细胞不被着色。

叶嚏橙/漠化乙锭(AO/EB)双染法也可鉴别死活细胞。

A0能透过质膜完整的细胞,嵌入细胞核DNA,使之发出明亮的绿色荧光;EB仅能透过质膜受损的细胞, 嵌入核DNA,发橘红色荧光。

细胞凋亡时发生独特的形态变化,主要表现在:细胞体积缩小,染色质凝集并边缘化,细胞膜完整,但出现发泡现象,凋亡晚期可见膜泡从细胞表面脱落形成凋亡小体。

[教学内容]用不同染料对培养细胞进行染色,观察活细胞和死细胞的染色区别。

用经药物诱导发生凋亡的培养细胞进行形态学观察。

[实验材料和用品]HL-60细胞,普通显微镜,荧光显微镜,离心机,微量移液器, 台盼蓝、旷很橙、浪化乙锭染液。

实验七小鼠腹腔巨噬细胞吞噬功能检测[目的要求]掌握小鼠腹腔巨噬细胞体外吞噬异物能力的测定方法;观察机体的非特异性免疫现象;掌握小白鼠腹腔注射给药和小白鼠腹腔巨噬细胞分离方法。

[实验原理]侵入机体的病原微生物或其它异物能招引组织中的巨噬细胞,后者细胞膜凹陷伸出伪足包围异物,并发生胞吞作用形成吞噬泡,继而巨噬细胞质中的溶酶体与吞噬泡融合,消化分解异物。

[教学内容]首先给小鼠腹腔提前注射含有台盼蓝染料的淀粉肉汤,隔天再腹腔注射鸡红细胞作为异物颗粒,断椎脱臼处死小鼠并剪开腹腔吸取腹腔液进行吞噬观察。

[实验材料和用品]小鼠,1%鸡红细胞,6%淀粉肉汤,4%台盼蓝(Trypan blue),: 显微镜、注射器、滴管、剪刀、镶子。

实验八小鼠睾丸染色体标本的制备[目的要求]掌握动物生殖细胞减数分裂过程及各个时期形态特点,掌握小鼠睾丸减数分裂标本的制备过程。

[实验原理]睾丸是雄性生殖细胞发育和成熟的部位,是产生精子的器官。

睾丸内的曲细精管从外到内分布有精原细胞、初级精母细胞、次级精母细胞、精子细胞以及成熟的精子。

取睾丸将曲细精管内的细胞冲出后固定,然后制片染色,可以观察到动物生殖细胞减数分裂的不同时相。

[教学内容]断椎脱臼处死小鼠并剪开腹腔取睾丸,破碎离心制细胞悬液,滴片Giemsa染色后进行不同类型生殖细胞的观察,包括精原细胞、初级精母细胞、次级精母细胞、精细胞和精子。

[实验材料和用品]雄性小鼠,Giemsa染液,显微镜,离心机,水浴锅,酒精灯。

实验九植物根尖的压片及有丝分裂过程观察[目的要求]学习并掌握常规压片法制备植物染色体标本的基本原理和方法;观察植物细胞有丝分裂过程,11染色体的形态特征及染色体动态行为变化。

[实验原理]有丝•分裂(mitosis)是高等真核生物细胞分裂的主要方式。

其特点是细胞通过有丝•分裂装置或纺锤体将遗传物质精确地等分到两个子细胞中去,以保证细胞在增殖的过程中保持遗传稳定。

传统上,人们将有丝分裂过程划分为前期、前中期、中期、后期、末期和胞质分裂6 个时期。

前5个时期是一个先后连续的核分裂过程,胞质分裂则相对独立。

[教学内容]取植物生长旺盛的分生组织,如根尖、茎尖、愈伤组织等,经过水解软化细胞壁后进行压片、或经过酶解和低渗处理制成细胞悬液进行滴片,在普通光学显微镜下观察细胞内的有丝分裂图像。

[实验材料和用品]青株根尖,混合酶液,卡宝品红染色液,显微镜。

实验十植物花药的压片及减数分裂过程观察[目的要求]掌握制备植物细胞减数分裂标本的压片技术;了解高等植物细胞减数分裂过程,观察染色体的动态变化;学会区分植物细胞减数分裂的各个不同时期。

[实验原理]减数分裂(meiosis)在遗传上具有重要意义,在分裂过程中包含有同源染色体的配对、交换、分离和非同源染色体的由组合,是生物遗传和变异的细胞学基础。

在适半的时候采集植物的花蕾,挤出花粉母细胞后直接染色并压片后制成减数分裂标本,在显微镜下观察可以看到花粉母细胞减数分裂的各个时期,研究染色体在形态和数量上的动态变化特点。

[教学内容]用百合花药切片.对减数分裂各个时期的形态特点进行讲解;采集不同植物的花蕾,挤出花粉母细胞进行固定和染色,显微镜下进行减数分裂各个时期的观察,掌握时期观察。

[实验材料和用品]百合花药切片,开花植物花蕾,卡宝品红颜色液,显微镜。

实验十一报告基因的细胞水平检测[目的要求]熟悉GUS报告基因的技术原理,了解其在细胞水平上的原位检测方法。

[实验原理]GUS基因存在于E cQ.等-些细菌的基因组内,编码昨葡糖醛酸酶, 以B-葡萄糖昔酸酯类物质作底物,其反应产物可用分光光度,荧光和组织化学的方法检测。

其中组织化学法催化的底物是X-gluc,产物为蓝色化合物,该方法可观察到外源基因在特定器官,组织,甚至单个细胞内的表达情况。

[教学内容]对GUS染色的技术原理进行讲解,对转基因材料进行GUS检测。

[实验材料和用品]转GUS基因材料,GUS染色液,显微镜。

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