肝素钠测定数据以及标准曲线
肝素钠验证报告-圣光

关于肝素钠浓度的检测本实验依据YY/TXXXX.3-XXXX 一次性使用人体静脉血样采集容器中添加剂浓度的测定方法第3部分:肝素(草案稿)进行。
1 实验原理本部分采用亚甲蓝分光光度法测定采血管中肝素钠/肝素锂的效价试验方法,利用肝素与亚甲蓝溶液发生褪色反应,且吸光度的降低与溶液中肝素的浓度呈正比来测定肝素钠/肝素锂的含量。
2 仪器与试剂a)紫外分光光度计; 型号:uv1800 生产厂家:上海美普达b)肝素钠标准品:数量1支装量:约18 mg/支效价:每毫克相当于197国际单位(IU)生产厂家:中国药品生物制品检定所c)亚甲蓝:生物染色剂生产厂家:天津博迪化工制造有限公司浓度:0.1g/ld) 待检样品:131221批13*100 5ml 肝素钠3 实验步骤3.1 标准曲线的绘制a)称取适量的肝素钠标准品,配成浓度约为10IU/ml的肝素钠标准溶液。
b)取6个10ml容量瓶,精密加入浓度约10IU/ml的肝素钠标准溶液0ml、0.5ml、1.0ml、1.5ml、2.0ml、2.5ml,于上述6个容量瓶中分别精密加入亚甲蓝溶液(0.1g/l)0.4ml,加水稀释至刻度,摇匀,室温静置1h。
c) 以水为参比,在664nm下测定各溶液的吸光度。
以浓度C(IU/ml)为纵坐标,吸光度为横坐标绘制标准曲线,并求出回归方程。
3.2 样品溶液的制备a)取131221批肝素钠5ml样品3支,分别吸入蒸馏水支公称容量,室温放置10min,收集至一适宜的容来那个瓶中,再反复吸入公称容量的蒸馏水数次,将溶出溶液收集至同一容量瓶中,加水稀释至刻度,摇匀,制成每1ml约含1-2IU/ml的样品溶液。
(试验时取3支产品,反复吸入公称容量的蒸馏水3次,将溶出溶液收集至一支50ml容量瓶中,加水稀释至刻度,摇匀。
)b)另取3支10ml的容量瓶,精密加入样品液各1.0ml,于上述3个容量瓶中分别精密加入亚甲蓝溶液(0.1g/l)0.4ml,加水稀释至刻度,摇匀,室温静置1h。
肝素钠(15版中国药典公示稿)

肝素钠GansunaHeparin Sodium■本品系自猪或牛的肠黏膜中提取的硫酸氨基葡聚糖的钠盐,属黏多糖类物质,是由不同分子量的糖链组成的混合物,由α-D-氨基葡萄糖(N-硫酸化,O-硫酸化,或N-乙酰化)和O-硫酸化糖醛酸(α-L-艾杜糖醛酸或β-D葡萄糖醛酸)交替连接形成聚合物,具有延长血凝时间的作用。
按干燥品计算,每1mg中抗Ⅱa因子效价不得少于180 IU,抗Xa因子效价与抗IIa因子效价比为0.9~1.1。
■[修订]■核酸取本品,加水溶解并稀释制成每1ml中含4mg的溶液,照紫外-可见分光光度法(附录ⅣA)测定,在260nm的波长处,吸光度不得大于0.10。
■[增订]■蛋白质取本品适量,精密称定,加水溶解并稀释制成每1ml中约含30mg的溶液,作为供试品溶液;另取牛血清白蛋白对照品适量,分别加水制成每1ml中各含0、10μg、20μg、30μg、40μg与50μg的溶液,作为对照品溶液,照蛋白质含量测定法(附录ⅦM 第二法)测定。
按干燥品计,含蛋白质不得过0.5%。
■[增订]■有关物质取本品适量,精密称定,加水溶解并定量稀释制成每1ml中约含100mg的溶液,涡旋混合至完全溶解,取0.5ml,加入1 mol/L盐酸溶液0.25ml和25%亚硝酸钠溶液0.05ml,振摇混匀,反应40分钟,加入1mol/L氢氧化钠溶液0.2ml终止反应,作为供试品溶液;取肝素对照品250mg,加水2ml,涡旋混匀至完全溶解,作为对照品溶液(1);取对照品溶液(1)1.2ml,加2%硫酸皮肤素对照品0.15ml与2%多硫酸软骨素对照品0.15ml,作为对照品溶液(2);取对照品溶液(2)0.1ml,加水稀释至1ml,作为对照品溶液(3);取对照品溶液(1)0.4ml,加水0.1ml,混匀,加1 mol/L盐酸溶液0.25ml和25%亚硝酸钠溶液0.05ml,振摇混匀,反应40分钟,加1mol/L氢氧化钠溶液0.2ml终止反应,作为对照品溶液(4);取对照品溶液(2)0.5ml,加1 mol/L盐酸溶液0.25ml和25%亚硝酸钠溶液0.05ml,振摇混匀,反应40分钟,加1mol/L氢氧化钠溶液0.2ml终止反应,作为对照品溶液(5)。
肝素检验细则

肝素钠检验项目附细则一、效价测定操作步骤:1. 标准品制备:精密称量肝素钠标准品数量(mg)×197u/mg=总单位数×0.93=美国羊血浆法总单位数(uspu )÷8 uspu/ml=需要实际加入的蒸馏水毫升数。
精确加入蒸馏水。
分装封口备用。
2. 效价测定:2.1 样品的制备:精确称量待测肝素粗品40~50mg 放入容量瓶中,再向其中加入1mg:1ml 比例的生理盐水,至样品全部溶解。
吸取0.5ml 上述溶液至西林瓶中,再按照公式:估效价÷16-0.5计算出生理盐水量,加入西林瓶中。
2.2 样品的测定:依据估计血浆标准凝固点±10ul 、±20ul 分别向试管中加入标准品和待测样品,再向各试管中加入1ml 血浆和0.8ml 的氯化钙生理盐水。
充分混匀后置37℃水浴锅中孵育1小时。
结果按照公式计算:实际效价=凝固点样品21V 凝固点21V 标准品 ×估效价 结果要求:所需主要仪器及价格:电子天平 单价:1000(物理)~2000(电子)rmb 水浴锅 单价:800rmb二、比旋度测定当平面偏振光通过含有某些光学活性物质(如具有不对称碳原子的化合物)的液体或溶液时,能引起旋光现象,使偏振光的振动平面向左或向右旋转。
偏振光旋转的度数称为旋光度。
旋光度有右旋、左旋之分,偏振光向右旋转(顺时针方向)称为“右旋”,用符号“+”表示;偏振光向左旋转(逆时针方向)称为“左旋”,用符号“-”表示。
偏振光透过长1dm ,且每1ml 中含有旋光性物质1g 的溶液,在一定波长与温度下,测得的旋光度称为比旋度。
比旋度是旋光物质的重要物理常数,可以用来区别药物或检查药物的纯杂程度,也可用来测定含量。
物质的旋光度不仅与其化学结构有关,而且还和测定时溶液的浓度、光路长度以及测定时的温度和偏振光的波长有关。
旋光度测定法的测定方法主要包括以下几个方面:1.仪器旋光计:《中国药典》规定,应使用读数至0.01。
肝素-化学验证报告

一次性使用人体静脉血样采集容器中添加剂浓度的测定方法第3部分:肝素验证报告单位名称:山东省医疗器械产品质量检验中心(盖章)日期:2014.9.一、概述一次性使用人体静脉血样采集容器(简称:采血管)与一次性使用无菌静脉血样采集针配套使用,采集静脉血样进行临床检验。
含有不同添加剂或附加物的采血管用途有所不同,肝素广泛在肺、肝、脾等几乎所有组织和血管周围肥大细胞和嗜碱性粒细胞的颗粒中。
肝素可加强抗凝血酶Ⅲ(AT-Ⅲ)灭活丝氨酸蛋白酶,从而阻止凝血酶形成,并有阻止血小板聚集等多种抗凝作用。
肝素是红细胞渗透性试验理想的抗凝剂。
目前测定肝素效价的方法有生物测定法和化学分光光度法,多用于测定肝素钠注射液,本标准采用亚甲蓝分光光度法测定采血管中肝素的效价,利用肝素与亚甲蓝溶液发生褪色反应,且吸光度的降低与溶液中肝素的浓度呈正比来测定肝素的效价。
二、验证方案方法学验证、肝素钠和肝素锂的等同性实验。
三、样品描述本次标准验证样品信息见表1。
表1 标准验证样品信息四、验证结果(数据、图、表)1、方法学验证1.1吸收波长的选择及亚甲蓝溶液浓度的确定配制不同浓度的亚甲蓝溶液,在200-800nm范围内进行扫描,最大吸收波长为664nm。
当溶液中亚甲蓝最终浓度为4mg/L时吸光度值约为0.8比较合适。
1.2反应时间及稳定性考察精密量取10 IU/mL 的肝素钠标准溶液,置25mL容量瓶中,加入0.1g/L 亚甲蓝溶液1mL,加水稀释至刻度,摇匀,立即置可见- 紫外分光光度计中进行时间扫描2h,记录图谱,结果表明反应在1h 后稳定,2h内基本无变化。
因而选择反应时间为1h。
1.3线性范围实验配制浓度范围0.05-0.25IU/mL的肝素钠系列标准溶液,在664nm 处,以水为参比,测定每种浓度溶液的吸光度,以浓度C(IU/mL) 为横坐标,吸光度 A 为纵坐标,计算回归方程y = -1.529 x + 0.844,相关系数r = 0.999,结果表明肝素钠浓度在0~0.25IU/mL 范围内,吸光度与浓度呈正比,且相关性良好。
肝素钠的检测方法

肝素钠的检测方法德晟肝素钠检测方法如下:一.效价F:(标准≥150IU/mg),环境温度要求20~30℃。
F=标品微升数*预估效价/样品微升数1.1试剂:1羊血浆(冷冻保存,使用时室温解冻,过滤)28IU/mg肝素钠标准品30.9%生理羊水:9g氯化钠(精确至0.01g)溶解于100ml去离子水中,并定容至1000ml,待用。
40.25%氯化钙溶液:用0.9%生理盐水配制,取1.25gCaCl2(精确至0.0001g)溶于100ml生理盐水中,溶解并定容至500ml,待用。
58%柠檬酸钠溶液:用0.9%生理盐水配制,取20g柠檬酸钠(精确至0.0001g)溶于100ml生理盐水中,溶解并定容至250ml,待用。
1.2测定8%柠檬酸钠溶液用量:取3支试管分1、2、3,分别加入标准品溶液110ul,再依次加入8%柠檬酸钠溶液10ul、20ul、30ul,→分别加入0.25%氯化钙溶液0.8ml,加入过滤好的羊血浆1ml,摇匀,置于37℃水浴中10min,观察凝固情况,取半凝固管的柠檬酸钠量xul作为后续的加量标准。
2.1待测品配制:M=20/样品预估效价(g)称取Mg待测样品(精确至0.0001g),溶解于生理盐水中,并定容至100ml,取溶液2ml溶液溶解定容至50ml,取5ml样品溶液于试管中剩余样液冷藏保存。
2.2测定:标准管:取10支试管分别加标品溶液100ul、110ul、120ul、……190ul,加入8%柠檬酸钠溶液xul,0.25%氯化钙溶液0.8ml,过滤好的羊血浆1ml,37°C水浴1h,记录半凝固点。
待测管:取10支试管分别加样品溶液100ul、110ul、120ul、……190ul,加入8%柠檬酸钠溶液xul,0.25%氯化钙溶液0.8ml,过滤好的羊血浆1ml,37°C水浴1h,记录半凝固点。
二.PH值精确称取0.4g样品(精确至0.01g)溶于40ml去离子水中,测定其PH值,记录室温,湿度。
EP7.0与CP比较(肝素钠)

EP7与CP2010
检验项目及方法对比
2010年10月
目录
一、比旋度
二、鉴别
三、总氮量
四、酸碱度
五、溶液澄清度
六、溶液颜色
七、吸光度
八、有关物质
九、残留溶剂
十、干燥失重
十一、炽灼残渣十二、钠
十三、重金属
十四、细菌内毒素十五、效价
十六、微生物
十七、
一、比旋度
二、鉴别
三、总氮量
四、酸碱度
五、溶液澄清度
八、有关物质
九、残留溶剂
十、干燥失重
十一、炽灼残渣
分析方法比对:EP无此检验项目。
CP增强了对无机盐的控制。
十二、钠含量
十三、重金属
十四、细菌内毒素
十五、效价
控制方面更严格。
依诺肝素钠相对分子量的EP与USP分析方法对比研究

依诺肝素钠相对分子量的EP与USP分析方法对比研究伯小霞;崔慧斐【摘要】目的以国产依诺肝素钠和其原研药为样品,比较欧洲药典(EP)和美国药典(USP)测定依诺肝素钠相对分子质量(Mr)方法的差异,为国内该品种的药典标准制定提供参考.方法采用这两种方法分别检测了10批国产依诺肝素钠原料药和2批原研药注射液LOVENOX的Mr情况.结果 USP方法测得平均Mr均较EP方法结果偏高在200以内,Mr2 000以下组分比例EP方法偏高,而Mr2000 ~8 000组分比例USP方法偏高,但差距均在4%以内.国产依诺肝素钠Mr与原研药的基本一致.结论 EP和USP方法分析依诺肝素钠Mr结果较为接近.%Purpose To analyze the difference of the relative molecular weight (Mr) analysis method of Enoxaparin Sodium in european Pharmacopoeia ( EP) and the United States Pharmacopoeia ( USP ) through the analysis of domestic samples and the branded, and to provide some opinions for Enoxaparin Sodium domestic standard. Methods Ten batches of Enoxaparin Sodium samples and 2 batches brand Injection Lovenox Enoxaparin Sodium were analyzed in EP and USP method. Results The average Mr by EP method was higher than that by USP method with difference of less than 200. The percentage of less than 2 000 by EP method was higher,and that of 2 000 - 8 000 by USP method was higher and both differences within 4% . The Mr of domestic samples was comparable to the branded. Conclusion The results of Mr of Enoxaparin Sodium by EP method were closed to those by USP method.【期刊名称】《中国生化药物杂志》【年(卷),期】2012(033)006【总页数】4页(P818-821)【关键词】依诺肝素钠;相对分子量质量;欧洲药典;美国药典【作者】伯小霞;崔慧斐【作者单位】山东大学药学院,山东济南250012;东营天东生化工业有限公司,山东东营257067;山东大学药学院,山东济南250012;(山东大学)国家糖工程技术研究中心,山东济南250012【正文语种】中文【中图分类】R927.1依诺肝素钠是一种低分子肝素钠盐,系通过对猪肠黏膜肝素的苄基酯衍生物进行碱解聚β-消除而获得。
亚甲基蓝测定微量肝素钠的研究

亚甲基蓝测定微量肝素钠的研究亓培培【摘要】The Interaction between heparin sodium and basic methylene blue and the reaction mechanism were preliminary studied.The results showed that the dye was faded dramatically in the formation of the ion association product both heparin sodium and methylene blue basic dye in the HAc-NaAc buffer solution for 4.6.The absorbance was decreased significantly at the maximum absorption wavelength of 664 nm.In addition, the decline for absorbance was of a linear relationship with the content of heparin sodium.Thus the new meth⁃od was proposed and established for the determination of trace heparin sodium based on the results.The lin⁃ear range was 0~1.6 mg/L,the coefficient correlation 0.996 4,and the relatively standard deviation 0.8%,re⁃spectively.The method with high selectivity and sensitivity was simple and rapid.At the same time ,it was ap⁃plied to the detection of heparin sodium content with satisfactory.%研究肝素钠与碱性亚甲基蓝之间的相互作用,对反应机理进行初步的探讨.结果表明,在pH 4.6的HAc-NaAc缓冲溶液中,肝素钠与亚甲基蓝碱性染料形成离子缔合物时,染料发生明显褪色,并且在最大吸收波长664 nm处的吸光度显著下降,下降程度与肝素钠的含量呈线性关系,建立了测定痕量肝素钠含量的新方法.线性范围0~1.6 mg/L,相关系数为0.9964,相对标准偏差为0.8%.该法简便、快速,对样品中肝素钠的测定令人满意.【期刊名称】《淮北师范大学学报(自然科学版)》【年(卷),期】2014(000)004【总页数】4页(P39-42)【关键词】亚甲基蓝;分光光度法;肝素钠;测定【作者】亓培培【作者单位】淮北市环保局环境检测站,安徽淮北 235000【正文语种】中文【中图分类】O657.32肝素(Hep)为葡糖胺聚糖,是蛋白多糖的一种.在人体内由肥大细胞分泌而自然存在于血液中,在体内外均有延缓或阻止血液凝固的作用[1].作为经典的抗凝血药物,肝素在临床上的应用已达60年之久,目前仍是心血管和血栓病人的首选抗凝血药[2].肝素是由葡萄糖胺磺酸、葡萄糖醛酸、艾杜糖醛酸组成的,具有不同链长的多糖链混合物.在水溶液中由于其酸性基团的离解而成为带多个负电荷的大阴离子.肝素的检测方法有多种,总的分属于生物方法[3]和化学方法两大类.生物方法是法定方法,因受生物个体的影响较大,不易掌握.化学方法有分光光度法[4-8]、HPLC 法[9]、毛细管电泳法[10]、电化学传感器[11]等.其中分光光度法因具有操作简便、快速、仪器价廉、灵敏度较高的优点而得到广泛的应用.因此进一步研究灵敏度高、选择性好的新分光光度法有重要的意义.实验结果发现,在pH为1.4~5.8的缓冲溶液中肝素钠能与亚甲基蓝发生缔合,使溶液出现明显的褪色,溶液吸光度的减少与肝素钠浓度成正比,建立了测定肝素钠浓度的分光光度法.该方法稳定性好,而且反应的pH值范围宽.用于注射用肝素钠浓度的测定结果满意.1 实验部分1.1 试剂和仪器TU-1901双光束紫外可见分光光度计(北京普析通用仪器有限责任公司);pHs-3型酸度计(上海第二分析仪器厂).肝素钠标准溶液:准确称取1.000 g肝素钠固体(中国医药集团上海化学试剂公司),用去离子水溶解稀释,定容于1 000 mL容量瓶中,其质量浓度为1.00 mg/ mL,备用.再准确量取5.00 mL 上述标准溶液,用去离子水稀释,定容于1 000 mL 容量瓶中,制得5.00 mg/L 的标准溶液.亚甲基蓝溶液:浓度为5.0×10-4 mol/L作为储备液,再稀释成2.0×10-5 mol/L使用.乙酸-乙酸钠缓冲溶液:准确称取2.736 g乙酸钠,量取3 mL 36.5%的乙酸溶液用去离子水稀释定容于100 mL容量瓶中,备用.根据体积比配成pH 4.6的缓冲溶液或用酸度计调制成pH 4.6的缓冲溶液.上述所需试剂均为分析纯或优级纯,配制溶液用去离子水.1.2 实验方法在25 mL的比色管中依次加入pH为4.6的乙酸-乙酸钠缓冲溶液2.0 mL,亚甲基蓝溶液1.0 mL和肝素钠标准溶液10.0 mL,稀释至刻度,摇匀,放置10 min 后,以水为参比,测定664 nm 处样品溶液吸光度A;同时做试剂空白,吸光度值为A0,并计算吸光度差值ΔA=A0-A.2 结果和讨论2.1 吸收光谱分别对未加肝素钠的1.0 mL 亚甲基蓝标准溶液和加入20 μg、40 μg、60 μg、80 μg 肝素钠的亚甲基蓝标准溶液在200~800 nm的波长范围内进行扫描所得的吸收光谱如图1所示.亚甲基蓝溶液在664 nm处的吸收峰出现最大值,加入肝素钠后,肝素钠与亚甲基蓝作用使溶液褪色,不加肝素钠和加入肝素钠所测得的吸光度之差ΔA在一定范围内与肝素钠含量呈线性关系.图1 吸收光谱(1-5肝钠素浓度)2.2 缓冲溶液pH对体系的影响按实验方法改变缓冲溶液的pH 进行实验,结果见表1.由表1可知,在缓冲溶液的pH维持在4.6时肝素钠和亚甲基蓝的吸收强度下降显著,所以本实验选用pH 为4.6的缓冲溶液.表1 缓冲溶液pH对体系的影响pH ΔA 3.6 0.22 4.0 0.26 4.6 0.31 5.0 0.27 5.6 0.212.3 缓冲溶液用量对体系的影响按实验方法改变缓冲溶液的用量进行实验,结果如图2所示.由图2可知,在缓冲溶液用量为2.0 mL时肝素钠和亚甲基蓝的吸收强度下降显著,所以本实验选用pH值为4.6的缓冲溶液最佳用量为2.0 mL.图2 缓冲溶液的用量/(V/mL)图3 亚甲基蓝的用量/(V/mL)2.4 亚甲基兰用量对体系的影响按实验方法改变亚甲基蓝的用量进行实验,结果如图3.由图3可知,在2×10-5 mol/L亚甲基蓝用量为0.80 mL时的吸收强度下降最大,因此亚甲基蓝最佳用量可以选择为0.80 mL.2.5 试剂加入顺序的影响实验过程中,考察了3 种试剂加入顺序对体系的影响.实验结果表明,试剂加入顺序对体系没有影响.2.6 反应时间的影响在最佳实验条件下反应时间的影响结果如图4所示.由图4可知,亚甲基蓝与肝素钠反应瞬间完成,且吸收强度在1 h内保持稳定;而空白溶液吸收强度基本保持稳定不变,5 min以后吸收强度逐渐减小,但减小程度变化缓慢,对实验产生的影响不大,选择放置5 min.2.7 干扰实验对多种可能共存物的干扰进行了实验.实验可知,当DNA的浓度大于11 μg/ mL 时对肝素钠的测定产生干扰.RNA对肝素钠产生干扰的最大浓度为5 μg/ mL.2.8 工作曲线按照实验步骤在最佳条件下测吸光度绘制工作曲线(见图5),由图5可知,0~1.6 mg/L范围内有良好的线性关系.线性方程:ΔA=0.191 2 c-0.002 9,相关系数r=0.996 4.检出限是10 μg/25 mL,对于0.8 mg/L的肝素钠5次测定的相对标准偏差为0.8%,说明本法准确可行.尽管本法灵敏度不是太高,但有使用仪器较简单、药品易得且廉价,实验方法简便、快速、选择性较好等优点.图4 时间扫描图图5 标准曲线2.9 合成样品的分析配制了3个合成试样进行测定,结果见表2.表2 合成样品的分析注:合成样品成分:0.9%氯化钠生理盐水(称取0.9 g氯化钠,溶解在少量蒸馏水中,稀释到100 mL)+肝素钠固体(中国医药集团上海化学试剂公司).样品标准值/检出值/相对标准偏差加标量/测定量/回收率/(μg/25mL)(N=5,μg/25mL)RSD(/%,N=5)(μg/25mL)(μg/25mL)%1 2019.791.05109.898 2 2019.870.651010.2102 32019.830.85109.696参考文献:[1]周自永.新编常用药手册[M].北京:金盾出版社,1987.[2]姬胜利,张天民.肝素与低分子肝素的研究进展[J].中国生化药物杂志,1996,17(5):216-218.[3]中华人民共和国卫生部药典委员会.中华人民共和国药典(第二部)[M].北京:化学工业出版社,1995:307.[4]BAND P,LUKTON A.The specific assey of heparin by its chemical properties[J].Anal Biochem,1982,120(1):19-21.[5]王云志,黄喜茹,侯海妮,等.用次甲基蓝测定肝素钠注射液的效价[J].河北医学院学报,1992,13(2):65-67.[6]JIAO Q C,LIU Q,SUN C,et al.Investigation on the binging site in heparin by spectrophometry[J].Talanta,1999,48:1095-1101. [7]JIAO Q C,LIU Q.Mechanism of interference and a zura response in the heparinassay[J].Analytical Letters,1998,31(8):1311-1323. [8]NMCOVA I,RYCHLOVSKY P,HAVELCOVA M,et al.Determination of heparin using flow injection analysis with spectro⁃phometric detection [J].Anal Chm Acta,1999,401:223-228.[9]毛平,黄晓兰,李翠贞,等.高效液相色谱法测定血浆肝素含量[J].中华医学检验杂志,1995,18(6):358-360.[10]AMDOFO S A,WANG H M,LINHARDT R J.Disaccharide compositional analysis of heparin sulfate using capillary zone electrophoresis[J].Anal Biochem,1991,199(2):249-255.[11]MA S H,YANG V C,MEYERHOFF M E.Heparin responsive electrochemical sensor:A preliminary study[J].Anal Chem,1992,64(6):694-697.。
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肝素钠的提取与检测摘要本实验主要是对肝素钠提取工艺的研究。
对国内外肝素钠的提取和纯化方法进行研究和分析,建立以牛内脏(肝、肺、心)为原料,采用盐解、离子交换的方式与乙醇沉淀相结合提取肝素钠。
利用天青A染色法检测肝素钠的效价,测定波长是505nm,与标准曲线对比可得到样品中肝素钠的效价。
利用浓硫酸氧化法,在波长为298nm处的吸光度来确定肝素钠的浓度。
利用双缩脲法,在波长为540nm处的吸光度来确定蛋白质的含量。
试验测得肝素钠的效价平均值为139.483U/mg,肝素钠的浓度平均值为200.8752mg/kg,去除蛋白质效果良好,均在99%以上。
关键词:肝素钠,盐解,树脂,天青A,纯化,蛋白质1.1研究背景和意义1.1.1研究背景肝素钠又称肝素,是重要的生物药品,作为天然的抗凝血物质而受到世界各国的重视。
我国是世界上肝素钠主要出口国之一,但是出口产品以低效价的粗品肝素为主。
肝素广泛分布在哺乳动物的组织中,如肝、肺、肠粘膜、心、脾、肾、胸腺、胎盘、肌肉和血液中都有存在。
肝素在体内多以与蛋白质结合以糖蛋白复合物的形式存在[1]。
这种复合物没有抗凝血活性,但在去除蛋白质后,这种活性逐渐表现出来。
肝素具有强抗凝作用,是防治深层静脉血栓形成等血栓栓塞性疾病的首选药物,随着研究的深入,人们发现肝素不但有抗凝、抗血栓形成和调整血脂的作用,还有抗炎、抗过敏、抗病毒、抗癌等多种生物学功能。
中国具有丰富的畜产品副产物资源,但我国生产的肝素产品效价低,提取率低的问题很突出,这种情况下,只有提出肝素提取纯化新工艺,才能提高畜产品加工副产物的附加值,拓宽利用领域,增加国民收入,提高中国在国际上的地位。
1.1.2研究意义肝素主要分布于哺乳动物的肺、肝、小肠粘膜细胞内。
目前,国内外制取肝素的原料多以猪小肠粘膜、牛肺、猪肺为主,在提取工艺中都必须经过肝素蛋白质复合物的提取、肝素蛋白质复合物的分解和粗品肝素的精制三个过程。
国内每年猪牛屠宰量极大,副产物产量极高,但是目前利用率却很低。
其主要原因是加工技术和装备水平落后,产品提纯方面的产业化技术还没有真正突破。
1.1.3肝素效价显色原理肝素是一种粘多糖,在多糖链上带有很多阴离子基团,如磺酸基、羧基等。
因而肝素具有很强的负电性,能与阳离子或带正电荷的分子结合,生成复合物。
天青A染料是一种碱性染料,即正电荷部分能与肝素的阴离子结合,生成肝素天青复合物,并能表现因光异色现象,即产生一种较原来染料颜色不同的反应,这一反应程度与肝素结合量有一定关系。
1976年,杰奎斯等在贝克曼DK-2分光光度计上利用天青A作肝素定量测定,发现低浓度肝素在波长505nm,pH=8.6的条件下,肝素浓度与吸光值之间符合朗白---比尔定律。
该法可用于测定肝素效价和生产过程的控制。
2实验材料与方法2.1实验材料2.1.1试剂和材料牛内脏秦宝肝素标准品中国药物生物检定所(北京)氯化钠上海恒远生物科技有限公司乙醇(95%)分析纯天津市凯通化学试剂有限公司巴比妥分析纯西安化学试剂厂天青A染料生物染色剂天津市天新精细化工开发中心氢氧化钠分析纯天津市大茂化学试剂厂硫酸分析纯白银化学试剂厂硼砂分析纯上海易利生物科技有限公司陶氏AMBERLITE TM FPA98CL食品级特种聚合物(树脂)上海唯高实业有限公司2.1.2实验设备JJ—2B组织捣碎匀浆机金坛市医疗仪器厂PH-3C计上海佑科仪器仪表有限公司85-2恒温磁力搅拌器常州国华电器有限公司电热恒温热水槽HH-S8型北京科伟永兴仪器有限公司旋转蒸发仪上海亚荣生化仪器厂100目筛浙江上虞市水仙纱筛厂电磁炉广东美的生活用品制造厂真空干燥箱上海一恒科学仪器有限公司真空抽滤机郑州长城科工贸有限公司756P紫外—可见分光光度计上海光谱仪器有限公司电子天平慈溪市天东衡器厂填充柱2.2实验方法原料——提取——吸附——洗涤——洗脱——沉淀——脱水干燥——肝素钠粗品——提纯——肝素钠。
2.2.1具体操作控制(1)提取[2,3]取牛肺样品100g,加入5倍量的蒸馏水,在组织捣碎机中充分破碎至肉糜状,用NaOH溶液调ph至8.5,加入5%NaCL在60℃下不时搅拌2h,立即升温至100℃10min沉淀蛋白质,用100目的筛过滤,滤液备用。
(2)吸附滤液冷却至50℃左右,用氢氧化钠调节ph至8.5,加入8%的已处理好的树脂,在恒温磁力搅拌器上维持温度在50℃左右,连续吸附8h,过滤,树脂备用。
(3)洗涤将树脂装入填充柱,先用蒸馏水冲至无色,虑干。
用 1.2mol/L的氯化钠浸泡洗涤30min。
滤液弃掉。
(4)洗脱在树脂填充柱中加入5mol/L的NaCL浸泡3h,再用3.5mol/L的NaCL浸泡2h,将两次的滤液收集在一起备用。
(5)沉淀蛋白质将滤液调pH至3.5处理30min,沉淀酸蛋白,过滤;将滤液调pH至10,处理3h沉淀碱蛋白,过滤。
(6)乙醇沉淀取滤液用1.5倍95%酒精处理2h,真空抽滤,保留固体,滤液收集进行乙醇回收。
(7)干燥把抽滤固体在60℃下真空干燥。
得到肝素粗品。
2.2.2肝素效价检测采用天青A染色法检测肝素效价[4,5],即先用肝素标准品作光密度标准曲线,然后测定样品的光密度值,对照标准曲线查出样品的效价。
具体的检测方法如下:将1.0 gNaOH 用蒸馏水定容于50 mL 容量瓶中,即得到0.5 mol/L 的NaOH 溶液。
称取巴比妥5.52 g,溶于上述NaOH 溶液中,待完全溶解后,冷却,用蒸馏水稀释至500 mL,用pH 计校正。
称取天青0.5 g,先用少量蒸馏水将其完全溶解,再稀释至500 mL,过滤,将滤液(储存液)冰箱保存。
临用时,吸取储存液5mL,加蒸馏水25 mL,混合均匀即得。
精确称取10~15 mg 的待测样品,先用蒸馏水溶解成1 mg/mL,再取250 mL容量瓶2个,各吸取上述溶液2.5 mL。
加水稀释至刻度,即配成0.01 mg/mL 的测定液。
吸取测定液1~5 mL 加蒸馏水补足到5 mL,充分摇匀后在505 nm 下测定吸光值,测3 个平行样,取其平均值[6]。
2.2.3肝素浓度的测定采用浓硫酸氧化法来检测溶液中肝素的含量,使用猪小肠肝素标准品来制作标准曲线,准确称取肝素标准品,配成482μg/mL肝素水溶液,再按0.1、0.3、0.5、0.7、0.9、1.1 mL的浓度梯度,分别吸取不同体积的肝素水溶液,用蒸馏水定容到1mL,向每份溶液中分别加入3mL含0. 025M硼砂的90 %(v/v)的硫酸溶液,充分摇匀,置于90℃水浴中,经常搅动,10min后取出,冷至室温,半小时后采用紫外-可见分光光度计测定298nm光密度(另做不加肝素,以水代之的空白试验作对照),重复3次(n=3),取平均值。
按照各组试验数据可绘制出标准曲线,根据标准曲线方程计算溶液中的肝素含量[7]。
2.2.4蛋白质的测定蛋白质在强碱性溶液中与稀硫酸铜溶液作用产生颜色反应,生成紫红色化合物,称为双缩脲反应。
具有两个或两个以上肽键的化合物皆有双缩脲反应,蛋白质在碱性溶液中,能与Cu2+形成紫红色络合物,颜色深浅与蛋白质浓度成正比,故可以用来测定蛋白质的浓度。
在一定的浓度范围内,颜色的深浅与蛋白质含量呈线性关系。
因此可用比色法测定蛋白质浓度。
3结果分析3.1标准曲线的绘制3.1.1肝素效价标准曲线的绘制用肝素标准品绘制肝素效价标准曲线,其测定方法和检测结果如表 3.1 所示。
根据检测结果绘制出的肝素效价标准曲线如图 3.1 所示。
表3.1 肝素效价标准曲线测定数据Table 3.1 Dctection data of heparin potency standard curve试管号0 1 2 3 4 5肝素标准溶液(ml)0 1 2 3 4 5 蒸馏水(ml) 5 4 3 2 1 0巴比妥缓冲液(ml) 1 1 1 1 1 1天青A染料(ml) 1 1 1 1 1 1 OD505(nm) 0 0.056 0.104 0148 0.230 0.248肝素效价(U/mg)0 1.003 2.006 3.01 4.01 5.017图3.1 肝素效价标准曲线Fig.3.1 Standard curve of heparin potency以肝素效价为横坐标X,肝素在505nm 的吸光度为纵坐标Y,根据测定结果绘制标准工作曲线,试验结果表明其线性回归方程为:Y=0.0421X+0.001,回归方程的决定系数R2=0.9982,说明方程拟合较好。
3.1.2肝素浓度标准曲线用肝素标准品进行浓度测定,其测定数据结果如表 2.2 所示,根据测定数据做出肝素浓度标准曲线如图 2.2 所示。
表3.2 肝素浓度标准曲线测定数据Table 3.2 Data of heparin concentration standard curve肝素浓度(ug/ml) OD298(nm)14.46 0.10628.92 0.22357.84 0.48186.76 0.717115.68 0.930图3.2 肝素浓度标准曲线Fig.3.2 Standard curve of heparin concentration以肝素浓度为横坐标X,肝素在298 nm 的吸光度为纵坐标Y,根据测定结果绘制标准工作曲线,试验结果表明其线性回归方程为:Y=0.0039X+0.052,回归方程的决定系数R2=0.9994,说明方程拟合较好。
3.1.3蛋白质浓度标准曲线由血浆蛋白质标品得到蛋白质含量的标准曲线如图3.3所示。
图3.3 蛋白质含量标准曲线Fig.3.3 Standard curve of protein contents蛋白质含量的线性回归方程为:Y=0.0414X+0.0026,方程中Y 为吸光度,X 为测定液中蛋白质含量(mg/mL),线性回归方程的决定系数R2=0.9993。
说明标准曲线相关性好,可用该标准曲线计算肝素提取液中的蛋白质含量。
3.1.4牛内脏肝素钠效价测定牛内脏(肝脏、肺脏、心脏)肝素钠效价测定,其测定数据如表3.3所示。
肝脏肺脏心脏普通育肥牛27.91 197.15 169.83秦宝雪花牛33.05 254.16 154.39由表可知,各个部位肝素钠的含量差别巨大,表明肝素的含量与脏器的部位以及功能有一定的关系。
秦宝雪花牛的肝素的效价除心脏外均超过普通育肥牛。
宋大巍的肝素的高效提取和分离纯化技术研究中测得肝素粗品的效价为115U/mg,任红媛,何泼,李红心的猪小肠粘膜中肝素钠提取与精制工艺研究中以猪小肠为原料测得粗品肝素钠的效价为73.19U/mg。
周先琬[8]研究采用酶水解法精制肝素,其得到的粗肝素效价为50~120 U/mg。
差异源SS df MS F P-value F crit组间148.9871 1 148.9871 12.64067 0.001772 4.300949组内259.2992 22 11.78633由上表可知普通育肥牛和秦宝雪花牛肝素钠效价差异显著。