酵母基因型

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酵母双杂原理

酵母双杂原理

酵母双杂原理
酵母双杂原理是指在酵母菌中同时存在两个不同的杂合体(heterozygote)基因型,这种基因型通常由一对等位基因(alleles)构成,一个来自母本,一个来自父本。

每个等位基因会对一个特定的基因座(locus)进行编码,基因型是指一个个体在所有基因座上的等位基因组合。

在酵母双杂原理中,两个不同的杂合体基因型具有不同的表型(phenotype),即表现出不同的外部特征。

酵母双杂原理是一种非常重要的遗传学实验方法,可以用来研究基因的功能、表达和调控。

通过将两个不同的杂合体基因型分别交配,得到一个新的杂合体基因型,这个新的基因型包含了来自父本和母本的两个不同等位基因的组合。

通过对这个新的基因型进行表型分析,可以确定不同基因座的遗传性状和表达模式,从而研究基因的功能和调控机制。

酵母双杂原理的应用非常广泛,包括研究基因调控机制、发现新的基因和蛋白质相互作用关系、检测基因突变和修饰等。

此外,酵母双杂原理也被用于筛选新药物和治疗方法,以及研究人类疾病的基因遗传学。

酵母实验-学生版

酵母实验-学生版

酵母系列大实验设计PCR介导的酿酒酵母基因敲除1、实验目的学习理解酿酒酵母中PCR介导的基因一步敲除法的原理,掌握酵母的转化方法,了解酵母生长及遗传学特性。

2、实验原理酵母菌作为最简单的真核生物,能以单倍体和二倍体两种形式稳定存在,其中单倍体含有两种交配型,可以自由的在单倍体和二倍体之间进行转换,在生物学研究中有着得天独厚的优势。

首先酵母菌生长速度很快。

对数期生长的单倍体菌株在YPD(富营养天然培养基)90分钟分裂一代,在合成培养基中140分钟分裂一代。

其次,酵母的基因组很小,遗传背景相对简单,是一种很容易进行遗传操作的模式生物。

酿酒酵母的基因组只有12052 Kb,其基因组序列早在1996年测序完成,已有约6000个超过100个氨基酸的ORF被报道,只有不到5%的ORF含有内含子,其中有约5700个蛋白编码基因,分散在16条染色体上。

上世纪90年代末,由数个实验室联合进行的酿酒酵母基因组敲除项目的完成是酵母遗传学研究的里程碑事件。

在这个项目中,四个基因敲除菌株库被成功构建:两种交配型的单倍体菌株库、杂合子二倍体菌株库以及非必需基因的纯合子二倍体菌株库。

这个项目几乎完成了全部ORF的敲除,为生物学研究,特别是组学研究,提供了十分强大的系统性研究工具,为后续基因功能的研究奠定了坚实的基础。

此外,酵母作为真核生物,与高等生物在很多代谢通路和蛋白表达调节等方面是高度保守的,为高等生物相关基因,例如疾病基因,功能研究具有提供了简单、易于操作的系统。

目前,酿酒酵母已经具有一套十分灵活快速的遗传操作体系。

酵母允许外源质粒以独立复制子游离于基因组之外存在,也允许其整合到基因组中。

但跟其他生物相比,酵母比较独特且强大的特点是外源序列的整合依赖于同源重组机制。

之前提到的基因组敲除项目的完成就是依赖于高效率的同源重组,如图-1所示。

人们利用PCR的方法,在筛选标记基因两侧引入待敲除基因(YFG,your favorite gene)特异性序列;随后将PCR产物通过转化传递到酵母细胞内部;在同源重组的作用下,一些细胞的对应基因位点的内源性序列被含有同源臂的外源序列直接取代,并通过选择培养基筛选出来。

酵母遗传学

酵母遗传学

酵母遗传学
酵母遗传学是研究酵母菌基因遗传和表达的学科。

酵母菌是单细胞真核生物,其基因组结构、遗传机制和代谢途径与人类有许多相似之处,被广泛应用于基因功能研究、药物筛选等领域。

酵母遗传学主要研究以下几个方面:
1.基因型和表型的遗传关系。

通过对不同基因型酵母菌的表型特征进行比较,探究基因在表型形成过程中的作用和调控机制。

2.基因表达调控机制。

酵母菌基因表达的调控受到许多内在和外在因素的影响,如转录因子、信号通路等。

酵母遗传学研究通过分析这些调控机制,揭示基因表达的规律和机理。

3.基因功能研究。

酵母菌基因组中有许多基因的功能仍不清楚,酵母遗传学研究通过基因敲除、基因突变等方法,揭示基因的功能和作用机制。

4.酵母菌在实践中的应用。

酵母菌作为模式生物被广泛用于基因工程、药物筛选等领域,酵母遗传学研究可以为相关应用提供理论和技术支持。

总之,酵母遗传学在现代生物学研究中起着重要的作用,为我们深入了解基因功能和表达规律提供了新的途径和思路。

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第十五章:酵母菌基因工程选编

第十五章:酵母菌基因工程选编

③易进行载体DNA的导入。DNA转化技 术的不断发展优化,多数酵母菌可 以取得较高的转化率;
④培养条件简单,容易进行高密度 发酵;
⑤能将外源基因表达产物分泌到培 养基中;
⑥有类似高等真核生物的蛋白质翻 译后的修饰功能。
2.缺陷在于:
①表达效率相对低; ②酵母常有密码子偏爱性,真核基
因在其中表达时需要人工修正。
2.含有ARS的YRp和YEp质粒及其构建
①ARS为酵母菌中的自主复制序列,大 小在0.8-1.5Kb,染色体上每30-40bp 就有一个ARS元件。
②由染色体ARS构成的质粒称为YRp,而 由2μ质粒构建的杂合质粒为YEp。
③上述两类质粒在酿酒酵母中的拷贝数 最高可达200个,但是经过几代培养 后,质粒丢失率达50%-70%,主要由 于分配不均匀所致。
三.抑制超糖基化作用的突变宿主菌
许多真核生物的蛋白质在其天门冬 酰胺侧链上接有寡糖基团,常常影 响蛋白质的生物活性。整个糖单位 由糖基核心和外侧糖链两部分组成。
酵母菌普遍拥有完整的糖基化系统,酿 酒酵母细胞内的天门冬酰胺侧链糖基修 饰和加工系统对来自高等动物和人的异 源蛋白活性表达是极为有利的,但野生 型酿酒酵母对异源蛋白的糖基化反应很 难控制,呈超糖基化倾向,因此超糖基 化缺陷菌株非常重要。
②YAC载体的装载量建
①YIP 载体由大肠杆菌质粒和酵母的 DNA 片段组成,可与受体或宿主的染色体 DNA 同源重组,整合进入宿主染色体中,酵母 片段只提供选择性标志,没有复制起点。
②转化率低(只有1-10转化子/微克DNA), 但转化子遗传性稳定,多用于遗传分析。
一.广泛用于外源基因表达的酵母宿主菌
目前已广泛用于外源基因表达的研究的酵母菌包括:

酵母菌的增殖方式

酵母菌的增殖方式

酵母菌的增殖方式
酵母菌是一种单细胞真菌,其增殖方式主要有三种:无性生殖、有性生殖和分裂增殖。

1. 无性生殖
无性生殖是指酵母菌通过自我分裂或芽出来繁殖后代的过程。

这种方式下,酵母菌的细胞核会经过有丝分裂,然后将子细胞分离出去。

在芽出的情况下,母细胞会在表面产生一个小芽,随着时间的推移,芽会逐渐成长并最终独立成为一个新的酵母菌个体。

这种方式下,新个体与原个体之间没有遗传信息的交流。

2. 有性生殖
有性生殖是指两个不同基因型的酵母菌通过配子体相互结合并融合形成一个新的基因型不同于父代的后代。

这个过程中需要进行减数分裂和配子形成,并且配子需要在一定条件下才能结合和融合。

这种方式下,新个体与原个体之间会发生遗传信息交流。

3. 分裂增殖
分裂增殖是指酵母菌在特定条件下进行快速的无性繁殖,通常会形成大量的酵母菌群体。

这种方式下,酵母菌通过快速分裂产生大量的子细胞,从而形成一个完整的群体。

这种方式下,新个体与原个体之间
没有遗传信息交流。

总结来说,酵母菌的增殖方式有三种:无性生殖、有性生殖和分裂增殖。

这些增殖方式都是为了让酵母菌适应不同环境下的生存需要,并且在不同条件下选择不同的繁殖方式。

酵母双杂杂交回复验证实验

酵母双杂杂交回复验证实验

酵母双杂杂交回复验证实验一、引言酵母双杂杂交回复验证实验是一项常用于研究酵母菌遗传性状的实验方法。

通过将两个不同株系的酵母菌互相杂交,观察其后代的表型,可以确定不同基因型对于特定性状的影响,以及基因之间的相互作用关系。

这项实验提供了一种有效的手段来研究酵母菌的遗传特性,并为从酵母菌到其他生物的研究提供了重要参考。

二、实验设计1. 实验目的确认酵母菌的遗传性状以及基因型之间的相互作用关系。

2. 实验步骤1.选取两个不同基因型的酵母菌株进行杂交。

2.将两个酵母菌株分别培养在适宜的培养基上,以获得足够数量的酵母菌细胞。

3.将两个酵母菌株的细胞混合在一起,使其进行杂交。

4.将混合后的酵母菌细胞培养在选择性培养基上,以筛选出杂交后的酵母菌子代。

5.观察酵母菌子代的表型特征,并将其形态记录下来。

3. 实验材料•两个不同基因型的酵母菌株•培养基及培养仪器•选择性培养基4. 实验结果通过观察酵母菌子代的表型特征,可以得到各个基因型对于特定性状的影响情况。

如果两个酵母菌株的基因型在某一性状上有不同表现,那么杂交后的子代在该性状上可能表现出两种不同的表型。

这种表型的分离现象可以帮助确定酵母菌的遗传性状。

5. 实验分析通过对大量的酵母菌子代进行观察和统计,可以得到不同基因型对于特定性状的影响程度,以及基因之间的相互作用关系。

这些数据可以用来构建酵母菌的遗传模型,推测特定基因在遗传性状中的作用机制。

三、实验应用酵母双杂杂交回复验证实验在酵母研究领域具有广泛的应用价值。

以下是一些应用示例:1. 基因功能研究通过观察不同基因型的酵母菌子代的表型,可以推测特定基因在酵母菌生命周期、代谢途径等方面的作用。

这对于全面理解基因功能具有重要意义。

2. 病原机制研究酵母双杂杂交回复验证实验可以帮助研究人员解析酵母菌导致疾病的机制。

通过分析酵母菌的基因型与特定疾病的发生关系,可以发现关键基因及其表达调控途径,为疾病治疗和预防提供新思路。

常用酿酒酵母菌株基因型

常用酿酒酵母菌株基因型

Commonly used strains▪▪van Dijken et al. (2000) Enzyme Microb Technol 26:706-714 - compares various characteristics of commonly used lab strains▪Winzeler et al. (2003) Genetics 163:79-89 - uses SFP (single-feature polymorphisms) analysis to study genetic identity between common lab strainsS288CGenotype:MATαSUC2 gal2 mal mel flo1 flo8-1 hap1 ho bio1 bio6Notes: Strain used in the systematic sequencing project, the sequence stored in SGD. S288C does not form pseudohyphae. In addition, since it has a mutated copy of HAP1, it is not a good strain for mitochondrial studies. It has an allelic variant of MIP1 which increases petite frequency. S288C strains are gal2- and they do not use galactose anaerobically.The S288C genome was recently resequenced at the Sanger Institute.References:Mortimer and Johnston (1986) Genetics 113:35-43.BY4743Genotype:MAT a/αhis3Δ1/his3Δ1 leu2Δ0/leu2Δ0 LYS2/lys2Δ0 met15Δ0/MET15 ura3Δ0/ura3Δ0Notes: Strain used in the systematic deletion project, generated from a cross between BY4741 and BY4742, which are derived from S288C. As S288c, these strains have an allelic variant of MIP1 which increases petite frequency. See Brachmann et al. reference for details.References:Brachmann et al. (1998) Yeast 14:115-32.FY4Genotype:MAT aNotes: Derived from S288C.References:Winston et al. (1995) Yeast 11:53-55.FY1679Genotype:MAT a/αura3-52/ura3-52 trp1Δ63/TRP1 leu2Δ1/LEU2 his3Δ200/HIS3 GAL2/GALNotes: Isogenic to S288C; used in the systematic sequencing project, the sequence stored in SGD.References:Winston et al. (1995) Yeast 11:53-55.AB972Genotype:MATα X2180-1B trp10 [rho 0]Notes: Isogenic to S288C; used in the systematic sequencing project, the sequence stored in SGD. AB972 is an ethidium bromide-induced rho- derivative of the strain X2180-1B-trp1.References:Olson MV et al. (1986) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 83:7826-7830.A364AGenotype:MAT a ade1 ade2 ura1 his7 lys2 tyr1 gal1 SUC mal cup BIONotes: Used in the systematic sequencing project, the sequence stored in SGD.References:Hartwell (1967) J. Bacteriol. 93:1662-1670.XJ24-24aGenotype:MAT a ho HMa HMα ade6 arg4-17 trp1-1 tyr7-1 MAL2Notes: Derived from, but not isogenic to, S288CReferences:Strathern et al. (1979) Cell 18:309-319DC5Genotype:MAT a leu2-3,112 his3-11,15 can1-11Notes: Isogenic to S288C; used in the systematic sequencing project, the sequence stored in SGD.References:Broach et al. (1979) Gene 8:121-133X2180-1AGenotype:MAT a SUC2 mal mel gal2 CUP1Notes:S288c spontaneously diploidized to give rise to X2180. The haploid segregants X2180-1a and X2180-1b were obtained from sporulated X2180YNN216Genotype:MAT a/αura3-52/ura3-52 lys2-801amber/lys2-801amber ade2-101ochre/ade2-101ochreNotes: Congenic to S288C (see Sikorski and Hieter). Used to derive YSS and CY strains (see Sobel and Wolin).YPH499Genotype:MAT a ura3-52 lys2-801_amber ade2-101_ochre trp1-Δ63 his3-Δ200 leu2-Δ1Notes: Contains nonrevertible (deletion) auxotrophic mutations that can be used for selection of vectors. Notethat trp1-Δ63, unlike trp1-Δ1, does not delete adjacent GAL3 UAS sequence and retains homology to TRP1 selectable marker.gal2-, does not use galactose anaerobically. Derived from the diploid strain YNN216 (Johnston and Davis 1984; original source: M. Carlson, Columbia University), which is congenic with S288C.YPH500Genotype:MATαura3-52 lys2-801_amber ade2-101_ochre trp1-Δ63 his3-Δ200 leu2-Δ1Notes:MATα strain isogenic to YPH499 except at mating type locus. Derived from the diploid strain YNN216 (Johnston and Davis 1984; original source: M. Carlson, Columbia University), which is congenic with S288C.YPH501Genotype:MAT a/MATαura3-52/ura3-52 lys2-801_amber/lys2-801_amber ade2-101_ochre/ade2-101_ochretrp1-Δ63/trp1-Δ63 his3-Δ200/his3-Δ200 leu2-Δ1/leu2-Δ1Notes:a/α diploid isogenic to YPH499 and YPH500. Derived from the diploid strain YNN216 (Johnston and Davis 1984; original source: M. Carlson, Columbia University), which is congenic with S288C.Sigma 1278BNotes: Used in pseudohyphal growth studies. Detailed notes about the sigma strains have been kindly provided by Cora Styles.Granek and Magwene, PLoS Genet. 2010 Jan 22;6(1):e1000823, established that certain lineages of theSigma1278B background contain a nonsense mutation in RIM15, a G-to-T transversion at position 1216 that converts a Gly codon to an opal stop codon. This rim15 mutation interacts epistatically with mutations in certain other genes to affect colony morphology.Annotation of the Sigma1278b genome and information about the systematic deletion collection can be found here. SK1Genotype:MAT a/α HO gal2 cup S can1R BIONotes: Commonly used for studying sporulation or meiosis. Canavanine-resistant derivative.The SK1 genome was sequenced at the Sanger Institute.References:Kane SM and Roth J. (1974) Bacteriol. 118: 8-14CEN.PK (aka CEN.PK2)Genotype:MAT a/α ura3-52/ura3-52 trp1-289/trp1-289 leu2-3_112/leu2-3_112 his3 Δ1/his3 Δ1 MAL2-8C/MAL2-8C SUC2/SUC2Notes: CEN.PK possesses a mutation in CYR1 (A5627T corresponding to a K1876M substitution near the end of the catalytic domain in adenylate cyclase which eliminates glucose- and acidification-induced cAMP signalling and delays glucose-induced loss of stress resistance (Vanhalewyn et al., 1999; Dumortier et al., 2000).References:van Dijken et al. (2000) Enzyme Microb Technol 26:706-714W303Genotype:MAT a/MATα {leu2-3,112 trp1-1 can1-100 ura3-1 ade2-1 his3-11,15} [phi+]Notes: W303 also contains a bud4 mutation that causes haploids to bud with a mixture of axial and bipolar budding patterns. In addition, the original W303 strain contains the rad5-535 allele. As S288c, W303 has an allelic variantof MIP1 which increases petite frequency.The W303 genome was sequenced at the Sanger Institute.References: W303 constructed by Rodney Rothstein (see detailed notes from RR and Stephan Bartsch).bud4 info: Voth et al. (2005) Eukaryotic Cell, 4:1018-28.rad5-535 info: Fan et al. (1996) Genetics 142:749W303-1AGenotype:MAT a {leu2-3,112 trp1-1 can1-100 ura3-1 ade2-1 his3-11,15}Notes: W303-1A possesses a ybp1-1 mutation (I7L, F328V, K343E, N571D) which abolishes Ybp1p function, increasing sensitivity to oxidative stress.References: W303 constructed by Rodney Rothstein (see detailed notes from RR and Stephan Bartsch).ybp1-1 info: Veal et al. (2003) J. Biol. Chem. 278:30896-904.W303-1BGenotype:MATα {leu2-3,112 trp1-1 can1-100 ura3-1 ade2-1 his3-11,15}References: W303 constructed by Rodney Rothstein (see detailed notes from RR and Stephan Bartsch).W303-K6001Genotype:MAT a; {ade2-1, trp1-1, can1-100, leu2-3,112, his3-11,15, GAL, psi+, ho::HO::CDC6 (at HO), cdc6::hisG, ura3::URA3 GAL-ubiR-CDC6 (at URA3)}References: K6001 was developed by Bobola et al in Kim Nasmyth's lab (PMID: 8625408), and has become a common model in yeast aging research (PMID: 15489200). Its genome has been sequenced by Timmermann et al (PMID: 20729566)D273-10BGenotype:MATαmalNotes: Normal cytochrome content and respiration; low frequency of rho-. This strain and its auxotrophic derivatives were used in numerious laboratories for mitochondrial and related studies and for mutant screens. Good respirer that's relatively resistant to glucose repression.References:Sherman, F. (1963) Genetics 48:375-385.FL100Genotype:MAT aReferences:Lacroute, F. (1968) J. Bacteriol. 95:824-832.Sources: ATCC: 28383SEY6210/SEY6211Genotype:MAT a/MATαleu2-3,112/leu2-3,112 ura3-52/ura3-52 his3-Δ200/his3-Δ200 trp1-Δ901/trp1-Δ901ade2/ADE2 suc2-Δ9/suc2-Δ9 GAL/GAL LYS2/lys2-801Notes: SEY6210/SEY6211, also known as SEY6210.5, was constructed by Scott Emr and has been used in studies of autophagy, protein sorting etc. It is the product of crossing with strains from 5 different labs (Gerry Fink, Ron Davis, David Botstein, Fred Sherman, Randy Schekman). It has several selectable markers, good growth properties and good sporulation.References:Robinson et al. (1988) Mol Cell Biol 8(11):4936-48SEY6210Genotype:MATαleu2-3,112 ura3-52 his3-Δ200 trp1-Δ901 suc2-Δ9 lys2-801; GALNotes: SEY6210 is a MATalpha haploid constructed by Scott Emr and has been used in studies of autophagy, protein sorting etc. It is the product of crossing with strains from 5 different labs (Gerry Fink, Ron Davis, David Botstein, Fred Sherman, Randy Schekman). It has several selectable markers and good growth properties.References:Robinson et al. (1988) Mol Cell Biol 8(11):4936-48SEY6211Genotype:MAT a leu2-3,112 ura3-52 his3-Δ200 trp1-Δ901 ade2-101 suc2-Δ9; GALNotes: SEY6211 is a MATa haploid constructed by Scott Emr and has been used in studies of autophagy, protein sorting etc. It is the product of crossing with strains from 5 different labs (Gerry Fink, Ron Davis, David Botstein, Fred Sherman, Randy Schekman). It has several selectable markers and good growth properties.References:Robinson et al. (1988) Mol Cell Biol 8(11):4936-48JK9-3dThere are a, alpha and a/alpha diploids of JK9-3d with the following genotypes:Genotypes: JK9-3da MAT a leu2-3,112 ura3-52 rme1 trp1 his4JK9-3dα has the same genotype as JK9-3da with the exception of the MAT locusJK9-3da/α is homozygous for all markers except mating typeNotes: JK9-3d was constructed by Jeanette Kunz while in Mike Hall's lab. She made the original strain while Joe Heitman isolated isogenic strains of opposite mating type and derived the a/alpha isogenic diploid by mating type switching. It has in its background S288c, a strain from the Oshima lab, and a strain from the Herskowitz lab. It was chosen because of its robust growth and sporulation, as well as good growth on galactose (GAL+) (so that genes under control of the galactose promoter could be induced). It may also have a SUP mutation that allows translation through premature STOP codons and therefore produces functional alleles with many point mutations. References:Heitman et al. (1991a) Science 253(5022):905-9 and Heitman et al. (1991b) Proc Natl Acad Sci U S A 88(5):1948-52RM11-1aGenotype:MAT a leu2Δ ura3Δ ho::KanNotes: RM11-1a is a haploid derivative of Bb32(3), a natural isolate collected by Robert Mortimer from a California vineyard, as in Mortimer et al., 1994. It has high spore viability (80–90%) and has been extensively characterized phenotypically under a wide range of conditions. It has a significantly longer life span than typical lab yeast strains and accumulates age-associated abnormalities at a lower rate. It displays approximately 0.5–1% sequence divergence relative to S288c. More information is available at the Broad Institute website.References:Brem et al. (2002) Science 296(5568):752-5Y55Genotype:MAT a /MAT alpha HO/HO。

酵母表达系统

酵母表达系统

酵母表达系统基因表达是分子生物学领域的重要内容之一,人们利用基因表达技术制备各种目的基因的重组蛋白质,在分析基因的表达与调控、基因的结构与功能、基因治疗以及生物制药等领域均取得了令人振奋的成果。

其中,酵母表达系统拥有转录后加工修饰功能,操作简便,成本低廉,适合于稳定表达有功能的外源蛋白质,而且可大规模发酵,是最理想的重组真核蛋白质生产制备用工具。

1、酵母表达系统的特点酵母是一种单细胞低等真核生物,培养条件普通,生长繁殖速度迅速,能够耐受较高的流体静压,用于表达基因工程产品时,可以大规模生产,有效降低了生产成本。

酵母表达外源基因具有一定的翻译后加工能力,收获的外源蛋白质具有一定程度上的折叠加工和糖基化修饰,性质较原核表达的蛋白质更加稳定,特别适合于表达真核生物基因和制备有功能的表达蛋白质。

某些酵母表达系统具有外分泌信号序列,能够将所表达的外源蛋白质分泌到细胞外,因此很容易纯化。

应用酵母表达系统生产外源基因的蛋白质产物时也有不足之处,如产物蛋白质的不均一、信号肽加工不完全、内部降解、多聚体形成等,造成表达蛋白质在结构上的不一致。

解决内部降解的方法有三:一是在培养基中加入富含氨基酸和多肽的蛋白胨或酪蛋白水解物,通过增加酶作用底物来缓解蛋白水解作用;二是将培养基的pH值调成酸性(酵母可在pH3.0~8.0的范围内生长),以抑制中性蛋白酶的活性;三是利用蛋白酶缺失酵母突变体进行外源基因的表达。

另外,还时常遇到表达产物的过度糖基化情况。

因此,表达系统应根据具体情况作适当的改进。

2、常用酵母表达系统(宿主-载体系统)(1)酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)表达系统酿酒酵母难于高密度培养,分泌效率低,几乎不分泌分子量大于30 kD的外源蛋白质,也不能使所表达的外源蛋白质正确糖基化,而且表达蛋白质的C端往往被截短。

因此,一般不用酿酒酵母做重组蛋白质表达的宿主菌。

酿酒酵母本身含有质粒,其表达载体可以有自主复制型和整合型两种。

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酵母及大肠杆菌基因型及遗传符号说明前言:实验室的一般大肠杆菌拥有4288条基因,每条基因的长度约为950bp,基因间的平均间隔为118bp(基因Ⅷ)。

E.coli 基因组中还包含有许多插入序列,如λ-噬菌体片段和一些其他特殊组份的片段,这些插入的片段都是由基因的水平转移和基因重组而形成的,由此表明了基因组具有它的可塑造性。

利用大肠杆菌基因组的这种特性对其进行改造,使其中的某些基因发生突变或缺失,从而给大肠杆菌带来可以观察到的变化,这种能观察到的特征叫做大肠杆菌的表现型(Phenotype),把引起这种变化的基因构成叫做大肠杆菌的基因型(Genotype)。

具有不同基因型的菌株表现出不同的特性。

分子克隆中常用的大肠杆菌及其遗传标记按Demerec等1966年提出的命名原则,采用的菌株所有的基因都假定处于野生型状态,除非在基因型上另外注明。

大肠杆菌基因型的表示方法(Demerec, et, al. 1966):一、一般规则:1、根据基因产物或其作用产物的英文名称的第一个字母缩写成3 个小写斜体字母来表示。

例如:DNA Adenine Methylase→dam。

2、不同的基因座,其中任何一个突变所产生的表型变化可能相同,其表示方法是在3 个小写斜体字母后加上一个斜体大写字母来表示区别。

例如:Recombination→recA、recB、recC。

3、突变位点应通过在突变基因符号后加不同数字表示。

如supE44(sup基因座E的44位突变)。

如果不知道几个等位基因中哪一/几个发生了功能性突变,则用连字符“-”代替大写字母,如trp-31。

4、细菌的基因型中应该包含关于其携带的质粒或附加体的的信息。

这些符号包括菌株携带的质粒或附加体、质粒或附加体上的突变基因座和突变位点。

其基因符号应与基因座的表示符号明显区别,符号的第一个字母大写、不斜体并位于括号内;质粒或附加体上的突变基因座和突变位点的基因符号的表示方法与染色体上突变基因座、突变位点的符号相同。

5、对于携带附加体的菌株的完整基因型描述应包括附加体的状态(游离或整合)。

以 F 因子为例,F-:F 因子缺失;F+:自主性 F 因子,不携带任何遗传可识别染色体片段;F’:携带有遗传可识别细菌染色体片段的自主性F因子;Hfr:整合到染色体上的F因子(high frequency of recombination)。

当这些质粒或噬菌体片段变异或缺失时,用()”或“/” 等以区别。

例如:/F' [traD36、proAB、lacI q、lacZ M15] 6、某个基因或某个领域缺失时,在其基因型前面加上“”表示。

例如:lac-proAB基因缺失时它的基因型表示为(lac-proAB)。

7、由于某种基因的变异导致大肠杆菌可以明显观察到特征变化,有时也用其表现型代替基因型进行表示。

例如:某些抗药性的获得或丧失,用如下方式表示:Streptomycin 抗性→Str+或Str r,Ampicillin敏感性→Amp-。

(第一个字母要大写,“+”或“r”表示有抗性,“-”表示无抗性或敏感)。

8、根据某些特异性蛋白的变异及其导致的结果变化进行表示。

例如:TH2 菌株上有一种基因型表示如下:hsdS20 (rB-、mB-),其中S20 代表特异性识别蛋白发生变异,()中的rB-、mB-表示由于S20 的变异而导致B 株来源的hsdR 和hsdM的功能缺失。

9、蛋白质的名称与对应的基因或等位基因相同,但不用斜体,且首字母大写,如,UvrA、UvrB。

二、基因符号和意义(见表1)部分基因符号和意义三、主要的基因型说明1、基因重组相关的基因型recA(Recombination)功能:recA基因表达ATP依赖型DNA重组酶,它在λ-噬菌体与基因组DNA的溶原重组时起作用,同时具有对DNA 放射性损伤的修复功能。

由recA 基因的变异所产生的基因型使同源或异源DNA的重组不能进行,保持插入DNA的稳定性,对DNA的转化有利。

一个菌株的基因型如果是recA,则说明此菌株的表现型是重组缺陷的。

recB(Recombination)功能:recB基因表达ATP 依赖型DNase和核酸外切酶V的一个亚基,对recA 的DNA重组酶起辅助和促进作用。

DNase催化双链DNA的解旋和解链,核酸外切酶V催化单链DNA 的裂解,在DNA的重组和损伤修复中发挥重要作用。

recB基因的变异导致其DNA重组和修复功能丧失,保证了外源DNA的稳定,有利于DNA转化。

recC(Recombination)功能:recC基因表达四种酶,即核酸外切酶V,ATP依赖型的核酸内切酶,解旋酶及ATP 酶,它们和recA,recB所表达的酶相互协调作用,在DNA的重组及放射性损伤的修复中发挥作用。

recC基因的变异导致DNA重组功能缺失,保证外源DNA的稳定性。

2、甲基化相关的基因型dam (DNA adeninemethylase)功能:dam基因表达DNA腺嘌呤甲基化酶,它能催化特异序列GATC中A的甲基化,保证DNA免受限制性核酸内切酶Mbo I 的切断,同时在DNA复制时也起一定的辅助作用。

dam 基因的变异导致腺嘌呤(A)甲基化酶活性的缺失,使腺嘌呤(A) 不被甲基化,易于获得非甲基化质粒。

dcm (DNA cytosinemethylase)功能:dcm基因表达DNA胞嘧啶甲基化酶,它能特异性识别DNA双链上的CCWGG序列,并使第二个C甲基化,即CmCWGG,避免DNA受到相关限制酶的切断。

dcm基因的变异导致胞嘧啶甲基化酶活性缺失,使外源DNA上的C不被甲基化,易于获得非甲基化质粒。

mcrA (Modified cytosine restriction proteina)功能:mcrA 基因表达大肠杆菌防御体系中起重要作用的mcrA 酶,这种酶能特异性地作用于外来DNA上的被甲基化的胞嘧啶序列,即C5mCGG特异序列,使之分解,对大肠杆菌本身起保护作用。

mcr A 基因的变异,导致上述功能缺失,对外来DNA 中被甲基化的胞嘧啶特异序列(C5mCGG)失去作用,有利于限制酶及甲基化酶的克隆体的稳定。

mcrB, C (Methyl cytosine-specificrestriction)功能:mcrB,C基因表达两种特异性蛋白,即mcrB蛋白和mcrC蛋白,它们在大肠杆菌的防御系统中起重要作用。

一般情况下,只有这两种蛋白同时存在时才表现出活性,mcrC 具有识别和调节功能,它能特异性的结合到外源DNA上被甲基化的胞嘧啶(C)的特异序列G5mC上,然后由mcrB蛋白切断(mcrB蛋白是特异性切断外来DNA中G5mC序列的限制性核酸内切酶),防御外来DNA 的侵入。

mcrB, C 基因的变异,使上述的对外来DNA 的防御作用缺失,对质粒的转化有利。

mrr (Methylation requiringrestriction)功能:mrr基因是大肠杆菌细胞防御系统中重要的基因之一,它能严格限制被甲基化的外源DNA的介入。

另外,它对限制酶Acc I,Cvi R I,Hin f I(Hha II),Nla II,Pst I以及N6-腺嘌呤甲基化酶和C5-胞嘧啶甲基化酶活性有明显的抑制作用。

mrr 欠损株(基因型)可用于含有N6-mA和C5-mC的DNA的转化。

另外,含有此基因型的菌株也可用于限制酶和甲基化酶的克隆体。

hsdM (Host specificitivedefective)Map position: 99min功能:hsdM基因所表达的DNA甲基化酶是I型限制酶复合体(具有对DNA切断和修补的双重功能)的一部分,它能使DNA双链上的AA(双腺嘌呤)甲基化,保护宿主DNA不被分解。

hsdM的变异使细胞内的DNA 不被甲基化,易于获得非甲基化质粒。

3、点突变相关的基因型mutS(Mutator)功能:mutS基因表达的蛋白具有识别DNA上错配序列的功能,并能修复其错配序列(GC→AT),防止基因突变。

mutS 基因的变异导致DNA 的错配序列不能得到修复,容易发生基因突变,这对于利用点突变进行基因改造是有利的。

mutT(Mutator)功能:野生大肠杆菌在进行DNA复制时,细胞中的8-OXO-dGTP插入模板DNA中的DA位点的效率几乎与插入DC位点的效率相同,导致A-T转换成G-C,使DNA产生变异。

而mutT 蛋白就是特异性地降解8-OXO-dGTP 成为单磷酸盐(8-OXO-dGMP),这种单磷酸盐状态的G (鸟嘌呤) 不能作为底物进行DNA 合成,从而防止了上述的基因突变。

mutT 基因的变异使细胞中8-OXO-dGTP 浓度增高,A→C 的突变几率增大,有利于利用点突变进行基因改造。

dut(dUTPase)功能:dut 基因表达脱氧尿嘧啶三磷酸核苷酸水解酶(dUTPase),它能水解dUTP 成为dUMP,使细胞体内dUTP的浓度维持在较低的水平,尿嘧啶(U)就不易掺入到DNA中,避免了基因发生A→U的突变。

dut基因发生突变使dUTPase活性缺失,导致dUTP浓度升高,碱基U(尿嘧啶)极易掺入到DNA中,使其发生A→U的基因突变,有利于利用点突变进行基因改造。

ung (Uracil DNAglycosylase)功能:ung基因表达尿嘧啶-N-糖苷酶,这种酶能特异性识别DNA单链或双链上发生突变的尿嘧啶残基,并从DNA 上水解去除尿嘧啶残基,防止DNA 发生突变。

ung 基因的变异导致上述功能缺失,有利用点突变。

uvrB(Ultraviolet)功能:uvrB基因表达核酸外切酶中的b亚基,这种核酸外切酶具有DNA的切补功能,对紫外线损伤的DNA 有修补作用。

uvrB 基因的变异使细胞中核酸外切酶切除变异碱基的活性缺失,有利于点突变。

4、核酸内切酶相关的基因型hsdR (Host specificitydefective)功能:hsdR基因表达I型限制酶Eco K(K12株)或Eco B(B株),在大肠杆菌细胞中起到一种“抗体”的作用,对外来的各种DNA 有严格的限制。

HsdR 基因的变异导致菌株细胞内的I型限制酶Eco K或Eco B活性缺失,这对于外来基因的导入及质粒转化是有利的。

hsdS (Host specificitive defective)功能:hsdS所表达的特异性蛋白是I型限制酶Eco K或Eco B复合体中的一部分,它专门负责hsdR酶和hsdM酶对DNA序列的特异识别。

hsdS基因的变异使hsdR和hsdM不能正确识别其作用的特异DNA序列,可以保持插入DNA的稳定性。

end A(Endonuclease)功能:endA基因表达非特异性核酸内切酶I,它能使所有DNA双链解开,在DNA的复制和重组中起重要作用。

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