组氨酸发酵条件及高产菌株选育研究进展

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L-精氨酸合成及高产菌选育与发酵研究进展

L-精氨酸合成及高产菌选育与发酵研究进展

库 利 棒 杆 菌
A C 1 8 8 及 黄 色 短 杆 菌 T C3 6
A C 10 7中 , 建 精 氨 酸 工 程 菌 。最 近 ,kd T C 46 构 Iea 等¨ 以 3株 谷 氨 酸棒 杆 菌 突变 株 为 出发 菌 株进 行基 因 重 组 , 得 高 产 精 氨 酸 菌 株 。 表 明 将 获 A rR和 ag 2 ag rB 6组 合 并 导 人 野 生 型 c ltm — .gua i cm 中 , u 可得 到 精 氨 酸 高产 菌 株 。来 源 于亮 氨酸
( 江 师 范大 学 化 学 与生 命 科 学 学 院 , 江 金 华 浙 浙 3 10 ) 2 04


精 氨 酸是 合 成蛋 白质 的重 要 原 料 , 一 些代 谢 途 径 的 中间 代谢 物 。 它在 人 和 动 物 体 内具 有 重 要 的 生 是
理 生 化 功 能 , 食 品 与 医药 工 业 应 用 十 分 广 泛 。对 精 氨 酸 高产 菌 株 选 育 、 酵 工 艺优 化 、 核 生 物 中的 合 成 途 在 发 真 径 、 谢 调 控 机 制 等 方 面 最 新 研 究进 展 做 了 综述 。 代 关 键词 精氨 酸; 成途径 ; 控机制 ; 合 调 菌种 选育 ; 酵 生产 发 Q 1 85 文献标识码 A 文章 编 号 10 7 2 ( 0 2 0 —07 0 0 5— 0 1 2 1 ) 1 0 0— 5
鸟氨 酸 , 甲酰磷 酸的合 成 , 氨 鸟氨 酸与 氨 甲酰磷 酸
合 成精 氨酸 。精氨 酸合成途 径见 图 1 。
2 1 精 氨酸 的合成 .
2 1 1 鸟氨 酸的合 成 . .
在 2种 模式 生物 中 , 氨 鸟
生 产菌株 的基 因 l C 5 , e 4 6 能够 提高 氨基酸包 括精 u

《发酵菌种选育》课件

《发酵菌种选育》课件
重要性
发酵菌种选育是提高发酵工业生产效率和产品质量的关键环节, 对于降低生产成本、提高经济效益、推动产业发展具有重要意义 。
菌种选育的基本原则
80%
适应性
选育的菌种应适应发酵工业生产 的环境条件,如温度、pH、压力 等。
100%
产率
选育的菌种应具有较高的发酵产 率,以提高生产效率和降低成本 。
80%
人工智能的应用将有助于提高菌种选育的效率和成功率,缩短研发周期,降低研 发成本。同时,人工智能还可以结合自动化技术实现菌种筛选和发酵过程的自动 化控制,提高生产效率。
THANK YOU
感谢聆听
04
发酵菌种选育的应用与案例
在工业生产中的应用
生物能源
发酵菌种可用于生产生物燃料 ,如乙醇、生物柴油等,替代 化石燃料。
化学品生产
发酵菌种可以用于生产各种化 学品,如氨基酸、抗生素、维 生素等。
食品加工
在食品加工中,发酵菌种可用 于生产酸奶、奶酪、面包等食 品。
在农业上的应用
有机肥料
发酵菌种可以将有机废弃物转化为有机肥料,提高土 壤肥力。
合成生物学结合了基因编辑技术和系 统生物学,通过设计和构建人工基因 线路和细胞系统来优化微生物发酵过 程。
随着合成生物学的发展,未来将有望 实现定制化的菌种设计和优化,提高 发酵产物的产量和纯度,降低生产成 本。
人工智能在菌种选育中的应用前景
人工智能技术如机器学习和深度学习能够处理大量的菌种数据,预测和优化菌种 生长和代谢过程。
菌种选育的成功案例分析
青霉素的发现
通过对霉菌的发酵产物进行筛选,发 现了青霉素,为人类治疗细菌感染做 出了巨大贡献。
酵母菌的选育
高赖氨酸玉米的选育

L-组氨酸高产菌株的选育及其发酵条件优化

L-组氨酸高产菌株的选育及其发酵条件优化

文章 编号 :0 9 0 0 (0 60 - 7 7 0 10 - 0 2 0 )5 0 4 — 3 2
研 究 报 告
L 组氨酸高产菌株的选 育及其发酵条件优化 一
史楠 , 刘辉 , 陈宁
天 津科 技 大 学 生 物 工程 学 院 , 天津 3 0 2 022
[ 要 ] 目的 : 摘 以谷 氨 酸 棒 杆 菌 T 2 2 (h - y-5 M' S V - / I 为 出发 菌 株 , 向选 育 具 有 5 Q 23 P e T r - P G 5  ̄ CN ) / / / 定 -甲基 色 氨 酸 抗 性
( - ' ) 磺胺 胍抗 性 ( G )5 氟 色 氨 酸 抗 性 ( - P) 8 氮 鸟 嘌 呤抗 性 ( - G ) 6 巯 基 嘌 呤 抗 性 ( -  ̄ 、- 唑 丙 氨 酸 抗 5 MP 、 S r、 - 5 F 、- 8 A '、- 6 M1 ) 2 噻
性 (- ) 遗 传 标 记 的 突 变株 ; 2T 等 同时 对 突 变 株 发 酵培 养 基 及 条 件 进 行 研 究 , 获得 最优 条 件 。方 法 : 经硫 酸 二 乙 酯诱 变处 理 , 测 定 了诱 变 时 间 与致 死 率 的 关 系 , 对 发 酵 培 养 基 中不 同氮 源 、 物 素 添 加 量 进 行 了单 因 素 实验 , 接 种 量 、 酵 培 养 温 度 并 生 对 发 等发 酵 条 件 也 进行 了实验 确 定 。 结 果 : 诱 变处 理 后 , 向选 育 出 的菌 株 T 10 (- P S V 一 P 8 A V 一 V2 T 在 经 定 L 15 5 M' G 5 F / 一 G 6 MP 一 A) / 未 经 优 化 的 摇 瓶 发 酵条 件 下 ,_ 氨 酸 的 产量 为 1. / ; 优 化 培 养条 件 后 ,_ 氨酸 的产 量 达 2 — 4 g L L组 20 g L 而 2 L组 3 2 / 。结 论 : 确定 最佳 诱 变 时 间 3mi, 时 致 死 率 为 8 %。 酸 铵 为 发 酵 培 养 基 中最 适 碳 源 , 物 素 添加 量 为 5 p / 采 用 5 0 n此 0 硫 生 0  ̄ L, g %接 种 量 为 宜 , 组 氨 酸发 酵 的最 适 温 度 为 3 ℃ 。 0 [ 键 词 ] 组 氨酸 ; 氨 酸棒 杆 菌 ; 变 ; 化 关 谷 诱 优

2021-2022学年四川省成都市武侯高级中学高二下学期期中生物试题

2021-2022学年四川省成都市武侯高级中学高二下学期期中生物试题

2021-2022学年度高二下期生物期中考试卷考试时间:90分钟考试总分:100分一、单选题(每小题1.5分,共60分)1.下列关于果酒和果醋制作过程中的叙述,正确的是()A.果酒和果醋制作过程中都应注意适时排气B.在发酵过程中都应该不断地通入无菌空气C.两者制作过程中都应该注意防止杂菌污染D.发酵的适宜温度都应该维持在25℃左右2.图甲是传统发酵技术的装置图,图乙是果酒和果醋制作过程中发生的物质变化。

下列有关叙述中,错误的是()A.甲装置可用于果醋制作,也可用于果酒的制作B.用甲装置制作果醋时,要打开阀a,关闭阀bC.制作果酒和果醋过程中,发酵液pH都会降低D.过程③④都需要氧气的参与,但反应场所不同3.下列关于“腐乳的制作”实验,叙述正确的是()A.控制发酵温度的主要目的是腐乳调味B.腐乳制作后期加入香辛料和料酒有防腐作用C.毛霉的主要作用是分解脂肪和淀粉D.成品腐乳表面的粘性物质主要由细菌产生4.下列关于腐乳制作叙述中,正确的是()A.腐乳制作过程中加酒精含量一般控制在70%左右B.将长满毛霉的豆腐分层装瓶腌制时,底层和接近瓶口的盐要铺厚些C.勤向腐乳坯表面喷水,有利于毛霉菌丝的生长D.腐乳生产的现代化工艺中,常将优良毛霉菌种直接接种在豆腐上5.我国是名副其实的发酵大国,发酵工程在食品工业、医院工业及农牧业等许多领域得到了广泛的应用。

下列相关叙述错误的是()A.利用黑曲霉将大豆原科中的蛋白质水解,经淋洗后可调制成酱油B.利用酵母菌等菌种的发酵工程生产的单细胞蛋白,可作为食品添加剂C.将乙型肝炎病毒的抗原基因转入酵母菌,再通过发酵可生产乙型肝炎疫苗D.利用发酵工程生产的微生物农药,作为化学防治的重要手段,可用于防治病虫害6.下列关于泡菜的制作和亚硝酸盐含量测定的叙述,正确的是()A.将蔬菜用开水和白酒浸泡1min 以加快发酵速度B.在发酵过程中出现白膜可能是由于酵母菌大量增殖而引起的C.测定亚硝酸盐含量用波长为550nm 的光是因为亚硝酸盐对该波长的光有最大的吸收率D.若制作标准曲线时用的比色杯的光程比待测样品的比色杯光程大,则计算出的待测样品中亚硝酸盐的含量偏低7.测定亚硝酸盐含量的有关叙述,不正确的是()A.亚硝酸盐与对氨基苯磺酸发生重氮化反应,需在盐酸酸化条件下B.重氮化反应后,与N-1-萘基乙二胺盐酸盐结合形成玫瑰红色染料C.把显色反应样品与标准显色液进行比较,可估算出泡菜中亚硝酸盐含量D.配制溶液所用的提取剂为氯化镉与氢氧化铝乳液8.下列关于微生物的分离与培养实验的叙述,正确的是()A.高压蒸汽灭菌加热结束后,打开放气阀使压力表指针回到零后,开启锅盖B.倒平板时,应将打开的皿盖放到一边,以免培养基溅到皿盖上C.为了防止污染,接种环经火焰灭菌后应趁热快速挑取菌落D.用记号笔标记培养皿中菌落时,应标记在皿底9.下表为某培养基的配方,下列叙述不正确的有()项成分蛋白胨葡萄糖K2HPO4伊红美蓝蒸馏水琼脂含量10g10g2g0.4g0.065g1000mL20g①从物理性质看该培养基属于固体培养基,从用途看该培养基属于鉴别培养基②培养基中属于碳源的物质主要是葡萄糖,属于氮源的物质是蛋白胨③该培养基中的蛋白胨可提供特殊营养物质④该培养基调节合适的pH和消毒后就可以接种使用⑤该培养基可以用于培养HIV病毒⑥该培养基可以用于大肠杆菌的鉴定,其菌落出现黑色A.1项B.2项C.3项D.4项10.野生型伤寒沙门氏菌(his+)可合成组氨酸,某种突变体丧失了这种能力,必须在添加组氨酸的培养基上才能生长,称为组氨酸营养缺陷型(his),下图甲、乙为培养伤寒沙门氏菌时两种不同的接种方法。

组氨酸生产工艺

组氨酸生产工艺

组氨酸生产工艺组氨酸是一种重要的氨基酸,广泛应用于食品、医药和化工等领域。

组氨酸的生产工艺主要包括:微生物发酵法、化学合成法和转基因工程法。

微生物发酵法是目前最主要的组氨酸生产工艺。

常用的微生物菌株包括窄小芽孢杆菌、铜绿假单胞菌和乳酸杆菌等。

发酵过程中,首先需要选择合适的培养基,通常以葡萄糖、蛋白质和无机盐为主要成分,同时添加适量的氨基酸和辅助因子。

接种合适的菌株后,通过调控温度、pH值和搅拌速率等条件,控制发酵过程的进展。

在发酵过程中,组氨酸的产量和收率与菌株的选择、培养基的配方和发酵条件的优化有关。

通常,发酵液经离心、浓缩、除杂等处理步骤后,得到纯化的组氨酸产品。

化学合成法是另一种组氨酸生产工艺。

该方法主要通过合成反应,将合适的化学物质转化为组氨酸。

目前常用的合成方法包括环氧乙烷法、亚甲苯法和脱羧氨基乙酸法等。

其中,环氧乙烷法是最常用的合成方法。

该方法的主要步骤包括环氧乙烷与氨水的反应、甲基化和水解等。

化学合成法的优点是生产工艺简单,但缺点是反应条件较苛刻,产物纯度较低。

转基因工程法是一种新兴的组氨酸生产工艺。

通过将合适的基因导入到微生物菌株中,使其具有产生组氨酸的能力。

这种方法通常通过重组DNA技术实现。

首先,将编码组氨酸合成酶的基因与合适的表达载体连接,形成重组质粒。

然后将重组质粒导入到微生物菌株中,并通过培养和筛选等步骤,获得产生组氨酸的转基因菌株。

转基因工程法的优点是可通过基因工程手段调控菌株的代谢途径,提高组氨酸的产量和纯度。

综上所述,组氨酸生产工艺主要包括微生物发酵法、化学合成法和转基因工程法。

微生物发酵法是目前最主要的生产工艺,化学合成法是另一种常用的方法,而转基因工程法是一种新兴的生产工艺。

不同的工艺具有各自的特点和应用范围,可以根据需要选择合适的方法进行组氨酸的生产。

大肠杆菌L-组氨酸生物合成途径的改造及其对工程菌L-组氨酸产量的影响

大肠杆菌L-组氨酸生物合成途径的改造及其对工程菌L-组氨酸产量的影响

大肠杆菌L-组氨酸生物合成途径的改造及其对工程菌L-组氨酸产量的影响魏伟;刘倩;卢利宁;谢希贤【摘要】To modify the metabolic pathway of L-histidine biosynthesis in E. Coli and increase L-histidine yield. E. Coli M-18 (SGr + 2-Tar + HisHxr) was obtained by N-Methyl-N-nitro-.N-nitrosoguanidine (NTG) mutagenesis derived from the original strain E. Coli M-17(SGr). The histidine operon was amplified by PCR from E. Coli M-18(SGr + 2-Tar + HisHxO chromosome and ligated it into the Puc118 vector. The recombinant plasmid Puc118-his-operon was transformed into E. Coli M-18 (SGr + 2-Tar + HisHxr) by electroporation. The zwf gene and prs gene were amplified by PCR, and then ligated to Pstv28 plasmid. The recombinant plasmids Pstv28-zwf, Pstv28-prs and Pstv28-zwf-prs were transformed into E. Coli M-19 (SGr + 2-Tar + HisHx/Puc118-his-operon), respectively. Flask-shaking fermentation results showed that, compared with E. Coli M-18, the L-histidine yield in the engineering strain E. Coli M-19 was 4.5 folds of that in the control, and in the two-plasmid system of recombinant engineering strains E. Coli MZH-19,E. Coli MPH-19 and E. Coli MZPH-19 were 5.14 folds, 5.78 folds and 8.43 folds of that in the control, respectively.%改造大肠杆菌L-组氨酸生物合成途径,以提高L-组氨酸的产量.用NTG诱变大肠杆菌M- 17 (SGr),依次赋予其2-噻唑丙氨酸(2-TA)和组氨酸氧肟酸盐(HisHx)遗传标记,再以突变株M-18 (SGr+ 2-TAr+ HisHxr)基因组为模板,扩增组氨酸操纵子基因,构建出重组质粒pUC118-his-operon,将重组质粒导入突变株M-18 (SGr+ 2-TAr+HisHxr)得到工程菌E.coli M- 19 (SGr+ 2-TAr+ HisHxr/pUC 118-his-operon).根据zwf和prs基因序列分别合成引物进行PCR扩增,PCR产物与载体pSTV28连接,构建重组质粒pSTV28-zwf、pSTV28-prs和pSTV28-zwf-prs,将重组质粒分别转化至工程菌E.coli M-19,摇瓶发酵测定重组工程菌L-组氨酸的产量.摇瓶发酵结果显示,L-组氨酸产量与对照株相比,工程菌E.coli M-19提高了4.5倍,双质粒系统重组工程菌E.coli MZH-19、Ecoli MPH-19和E.coli MZPH-19分别提高了5.14、5.78、8.43倍.【期刊名称】《天津科技大学学报》【年(卷),期】2011(026)004【总页数】4页(P6-9)【关键词】L-组氨酸;组氨酸操纵子;大肠杆菌;双质粒系统;摇瓶发酵【作者】魏伟;刘倩;卢利宁;谢希贤【作者单位】工业发酵微生物教育部重点实验室,天津科技大学生物工程学院,天津300457;工业发酵微生物教育部重点实验室,天津科技大学生物工程学院,天津300457;工业发酵微生物教育部重点实验室,天津科技大学生物工程学院,天津300457;工业发酵微生物教育部重点实验室,天津科技大学生物工程学院,天津300457【正文语种】中文【中图分类】Q812L–组氨酸的化学名为 L–α–氨基–β–咪唑丙酸,是含有咪唑核的碱性氨基酸,具有多种生理功能,在医药、饲料及食品行业发挥着重要的作用[1].目前,国内对发酵生产组氨酸的研究和报道较少,且产酸水平较低.其中姚晓玲等[2]利用黄色短杆菌发酵可积累 L–组氨酸 128.28,mg/L,许益清等[3]以谷氨酸棒杆菌为出发菌株,定向选育突变株,发酵 3,d产 L–组氨酸达1~1.6,g/L.但这远远不能满足市场需求,因此加快研究发酵生产L–组氨酸的意义重大.本文通过亚硝基胍(NTG)诱变选育具有组氨酸结构类似物抗性的突变株,解除 L–组氨酸对生物合成途径上的关键酶[4]——ATP磷酸核糖基转移酶(ATP-PRT,hisG 基因编码)的反馈抑制.利用双质粒系统对 L–组氨酸生物合成途径进行改造,过表达整个组氨酸操纵子和中心代谢途径的zwf和prs基因,增加大肠杆菌 L–组氨酸生物合成的代谢流,以期进一步提高 L–组氨酸产量,并为构建高产 L–组氨酸工程菌奠定基础.1.1.1 菌株及质粒E. coli DH5α及 E. coli M-17(SGr)均为天津科技大学代谢工程实验室保藏菌种;质粒 pUC118、pSTV28,TaKaRa公司.1.1.2 培养基(g/L)LB 培养基:蛋白胨 10,酵母粉 5,NaCl,10,pH,7.0,抗生素氨苄青霉素使用质量浓度为100µg/mL,氯霉素使用质量浓度为25,µg/mL.基本培养基:葡萄糖5,硫酸铵10,磷酸二氢钾1.0,硫酸镁0.4,硫酸锰0.01,硫酸亚铁 0.01,VB 1,100,µg,VH,100,µg,琼脂粉 20,pH,7.0~7.2.种子培养基:葡萄糖 15,硫酸铵 3,玉米浆10,mL,磷酸二氢钾 1.0,硫酸镁 0.4,硫酸锰 0.01,硫酸亚铁 0.01,VB1 300,µg,VH 200,µg,pH,7.0~7.2.发酵培养基:葡萄糖 20,硫酸铵 10,玉米浆20,mL,磷酸二氢钾1.5,硫酸镁0.2,硫酸锰0.015,硫酸亚铁 0.015,VB1,200,µg,VH,100,µg,pH,7.0~7.2.限制性内切酶、T4 DNA连接酶、Taq DNA聚合酶,TaKaRa 公司;Long PCR Enzyme Mix、1 000 bp ladder,Fermentas公司;PCR引物由北京博迈德科技发展有限公司合成;PCR产物纯化试剂盒,北京天恩泽基因科技有限公司;质粒小样快速提取试剂盒和细菌基因组提取试剂盒,北京博迈德公司;IPTG、X-gal、氨苄青霉素、氯霉素,北京索莱宝公司;诱变剂亚硝基胍(NTG),日本 TCI公司;L–组氨酸(L-His)、2–噻唑丙氨酸(2-TA)及组氨酸氧肟酸盐(HisHx),美国Sigma公司;其余试剂均为国产分析纯.1.3.1 诱变方法常规化学诱变法,参见文献[5].1.3.2 目的突变株的筛选结构类似物突变株的获得:将诱变处理的菌液适度稀释后涂布于含有一定浓度的2-TA和 HisHx的基本培养基上,培养 2~3,d,挑出单菌落,即得到结构类似物2-TA和HisHx抗性突变株.1.3.3 PCR引物设计与合成根据 GenBank中 E. coli K-12编码 his operon(7,461,bp)、zwf(1,476 bp)和prs(948,bp)基因序列,分别设计引物,在两端引入酶切位点(下划线所示)和保护碱基.分别用引物 H1(CTCGTCGGATCC TCCTTTCCCCGCTCATTCATT)/H2(TGTTCGGGA TCC AAGAAAAAGGGCAGGGTGGTG)、Z1(GCAA GGATCC ACTTAAGGAGAATGACATGGCGGT)/Z2(TGAGCGCATGCCGCAGATATTACTC AAACTCA T)和P1(GCTAGAATTC CCTGAGGTTCTTCTCGTGCCTGATA)/P2(AGCCGGATCCTTAGTGTTCGAA CATGGCAGAGATC)来扩增突变株 E.,coli M-18(SGr+2-TAr+HisHxr)的 his operon、zwf和 prs基因及其上下游部分序列,其中长片段his operon基因PCR扩增反应体系总体积为50,µL,反应条件为:94,℃,2,min,94,℃,20,s,55,℃,30,s,68,℃,6,min,共25 个循环;68,℃,10,min.DNA片段的回收、酶切、纯化、与载体的连接、转化等操作参见文献[6].1.3.4 his operon、zwf和prs基因的克隆与测序取PCR产物5,µL在1%琼脂糖凝胶中进行电泳检测,使用 DNA凝胶回收试剂盒回收,回收产物直接与 pMD19-T Simple载体连接,连接产物转化E.,coli DH5α,感受态,在含 IPTG(24,mg/mL)和 X-gal(20,mg/mL)的Ampr(100,µg/mL)的 LB 平板上37,℃培养16,h,随机挑选白色菌落进行PCR;并提取质粒单酶切验证,得到重组质粒 pMD19-his-operon、pMD19-zwf和pMD19-prs,进行测序和序列分析.1.3.5 重组质粒的构建用限制性内切酶 BamHI酶切重组质粒 pMD19-his-operon,纯化回收后,与pUC118 BamHI/BAP载体按等物质的量比连接转化,电转化法转化E.,coli DH5α感受态细胞,在氨苄青霉素抗性平板上筛选转化子,挑选单克隆,提取质粒,酶切鉴定.用限制性内切酶 BamHI和SphI对重组质粒 pMD19-zwf及质粒pSTV28双酶切,用限制性内切酶EcoRI和BamHI对重组质粒 pMD19-prs及质粒 pSTV28双酶切,琼脂糖凝胶电泳回收酶切片段,按照质粒 DNA与目的基因物质的量比为1∶4进行连接转化,化学法转化E.,coli DH5α感受态细胞,在氯霉素抗性平板上筛选转化子,随机挑取单菌落进行菌落PCR验证,并提质粒进行双酶切验证. 1.3.6 摇瓶发酵种子培养:500,mL挡板瓶中装液量为30,mL,9层纱布封口,往复式摇床200,r/min、32,℃培养12~15,h.摇瓶发酵:按10%的接种量将种子液接入装液量为27,mL的500,mL挡板瓶中,摇床200,r/min、32,℃培养 36,h.发酵期间补加氨水控制 pH在 7.0左右,流加60%葡萄糖,使其维持在1%~2%.1.3.7 分析方法采用高效液相分析系统测定L–组氨酸含量[7].利用NTG对出发菌株E. coli M-17(SGr)进行诱变处理,将其涂布到含有 2-TA(3,g/L)的基本培养基上,筛选到11株能积累 L–组氨酸的突变株,在这 11株菌中选活力较高的突变株 E.,coli M-17(SGr+2-TAr)为再次诱变的出发菌株.在野生菌体内,当L–组氨酸含量达到生理需要时,L–组氨酸操纵子受到终产物L–组氨酸的反馈阻遏.另外,合成途径的第1个酶ATP-PRT是L–组氨酸合成途径的限速酶,酶活性受到终产物 L–组氨酸的反馈抑制[4].通过赋予组氨酸结构类似物抗性标记可以解除 L–组氨酸对 ATPPRT的反馈抑制[8].对突变株E. coli MTA-17(SGr+2-TAr)再次诱变,同样方法筛选得到 HisHx(10 g/L)的抗性突变株E. coli M-18(SGr+2-TAr+ HisHxr),但是该突变株的组氨酸产量没有明显的提高.以提取的突变株 M-18的基因组为模板,H1/H2、Z1/Z2和 P1/P2为引物分别扩增部分脱敏的his operon、zwf和prs基因,PCR产物经1%琼脂糖凝胶电泳分析,结果如图 1所示.在约 7,500、1,500、1,000,bp处有目的条带,与预期大小相符.按方法 1.3.5构建重组质粒,并对阳性克隆进行限制性酶切分析,结果如图 2所示.重组质粒pUC118-his-operon、pSTV28-zwf、pSTV28-prs 和pSTV28-zwf-prs双酶切后与预期大小相符,表明重组质粒构建成功.将重组质粒 pUC118-his-operon、pSTV28-zwf、pSTV28-prs和pSTV28-zwf-prs分别转化至突变株E.coli M-18,得到重组工程菌 M-19(SGr+,2-TAr+His Hxr/pUC118-his-operon)、MZH-19(SGr+,2-TAr+HisHxr/pSTV28-zwf/pUC118-his-operon)、MPH-19(SGr+2-TAr+HisHxr/pSTV28-prs/pUC118-his-operon和MZPH-19(SGr+2-TAr+HisHxr/pSTV28-zwf-prs/pUC118-hisoperon).将重组工程菌 E.,coli M-19、E. coli MZH-19、E.coli MPH-19、E.,coli MZPH-19和对照株E.,coli M-18进行摇瓶发酵36,h,测定L-组氨酸产量,结果如图3所示.由图3可知,工程菌E. coli M-19、E. coli MZH-19、E. coli MPH-19、E. coli MZPH-19 的 L–组氨酸产量与对照株相比,分别提高了 4.5、5.14、5.78、8.43倍.工程菌 E. coli M-19中重组质粒携带了脱敏的his operon基因,L–组氨酸产量提高,推测其原因为提高了其在大肠杆菌内的拷贝数及其所编码酶的活性.zwf 基因编码的 G-6-PDH是 HMP途径的限速酶,工程菌E. coli MZH-19在过表达his operon的同时又过表达了 zwf基因,使得 L–组氨酸产量提高,推测其原因为工程菌E. coli MZH-19的HMP途径相对活跃,且 G-6-PDH催化产生了大量的NADPH和H+,为生物体的合成提供还原力,同时也为L–组氨酸的合成提供了氢供体.工程菌E. coli MPH-19共表达了his operon和prs基因,使得L–组氨酸产量提高,推测其原因为 prs基因的过表达为 L–组氨酸的合成提供了更多的前体物质PRPP.工程菌E. coli MZPH-19表达了his operon和zwf-prs,使得L–组氨酸产量提高,推测其原因为 L–组氨酸合成的中心代谢途径——HMP途径增强,前体物质PRPP增多,葡萄糖的整个代谢流向合成L–组氨酸的方向分布.L–组氨酸的合成代谢途径较长,调控相对复杂,因此通过诱变单一地选育结构类似物抗性突变株并不会完全打通菌体内合成 L–组氨酸的代谢途径,进而大量积累组氨酸.本研究通过传统的诱变方法和基因工程相结合的手段来构建 L–组氨酸基因工程菌,对大肠杆菌 L–组氨酸生物合成的代谢途径进行了改造.首先用亚硝基胍(NTG)诱变 E.,coli M-17(SGr),依次赋予其2-TA和HisHx遗传标记,得到突变株 E.,coli M-18(SGr+2-TAr+HisHxr),再以提取的突变株E.,coli M-18基因组为模板,利用PCR技术扩增突变株的整个组氨酸操纵子基因,并将其连接到pUC118载体上,过表达组氨酸生物合成途径上的一系列酶系,从而使组氨酸得到积累.由于重组质粒pUC118-his-operon在 11,000,bp左右,不易再进行分子生物学操作,故选择了另一个可以相容的质粒pSTV28进行进一步的改造,且pSTV28质粒的拷贝数较低,更有利于代谢物的生成.本研究利用了复制子不同的两个相容性质粒 pSTV28(复制子为 p15A)和 pUC118(复制子为 pMB1)对 L–组氨酸生物合成途径进行了进一步的改造,扩增了 L–组氨酸生物合成中心代谢途径的关键酶编码基因 zwf和编码合成L–组氨酸的前体物质PRPP的prs基因.由实验结果表明,双质粒重组基因工程菌E. coli MZH-19、E.,coli MPH-19和 E.,coli MZPH-19与对照株比较,L–组氨酸产量分别提高了5.14、5.78、8.43倍,因此双质粒系统的改造可进一步提高L–组氨酸的产量.[1]陈宁. 氨基酸工艺学[M]. 北京:中国轻工业出版社,2009.[2]姚晓玲,曾莹,宋卫江. L–组氨酸产生菌的诱变选育[J]. 中国酿造,2007(7):18-20.[3]许益清,张伟国. L–组氨酸产生菌株的选育[J]. 食品与发酵工业,2005,31(1):83-85.[4]Mizukami T,Hamu A,Ikeda M,et al. Cloning of the ATP phosphoribosyl transferase gene of Corynebactewium glutamicum and application of the gene to L-histidine production[J]. Bioprocess and Biosystems Engineering,1994,58(4):635-638.[5]施巧琴,吴松刚. 工业微生物育种学[M]. 2版. 北京:科学出版社,2003. [6]Sambrook J,Fritsch E F, Maniatis T,等. 分子克隆实验指南[M]. 2版.北京:科学出版社,2002.[7]张昌伟,徐庆阳,刘淑云,等. 2,4-二硝基氟苯衍生法测定发酵液中组氨酸方法的优化[J]. 现代化工,2007,27(S2):743-943.[8]Araki K,Nakayama K. L-histidine production by histidine analog-resistant mutants from several bacteria[J].Agricultural Biology and Chemistry,1971,35(13):2081-2088.【相关文献】[1]陈宁. 氨基酸工艺学[M]. 北京:中国轻工业出版社,2009.[2]姚晓玲,曾莹,宋卫江. L–组氨酸产生菌的诱变选育[J]. 中国酿造,2007(7):18-20. [3]许益清,张伟国. L–组氨酸产生菌株的选育[J]. 食品与发酵工业,2005,31(1):83-85. [4]Mizukami T,Hamu A,Ikeda M,et al. Cloning of the ATP phosphoribosyl transferase gene of Corynebactewium glutamicum and application of the gene to L-histidine production[J]. Bioprocess and Biosystems Engineering,1994,58(4):635-638. [5]施巧琴,吴松刚. 工业微生物育种学[M]. 2版. 北京:科学出版社,2003.[6]Sambrook J,Fritsch E F, Maniatis T,等. 分子克隆实验指南[M]. 2版. 北京:科学出版社,2002.[7]张昌伟,徐庆阳,刘淑云,等. 2,4-二硝基氟苯衍生法测定发酵液中组氨酸方法的优化[J]. 现代化工,2007,27(S2):743-943.[8]Araki K,Nakayama K. L-histidine production by histidine analog-resistant mutants from several bacteria[J].Agricultural Biology and Chemistry,1971,35(13):2081-2088. Modification of L-histidine Biosynthesis Pathway in E. coli and Its Effect on L-histidine Yield。

高产精氨酸菌株选育及发酵培养基优化

高产精氨酸菌株选育及发酵培养基优化

菌株 的初步 发酵 和检测产精 氨酸试 验 , 确定 一株精 氨 酸产 量较 高的生产 菌株 , 并对 其进行 单 因素和正交 设 计试验 , 获得 了该高产精氨 酸菌株 的最适 发酵条 件 , 以 期为氨基酸发酵生 产中高产菌株 的选 育提供相应 的参 考价值 和应 用意义 。
1 材 料 与方 法
利用 阿须 贝培养 基筛选 固氮 菌的特 点 , 阿须 贝 对 培养基进 行改 良, 使其 适合于微 生物对无 机氮源 的固 定, 从而进行必须 氨基酸 如精氨酸 的合成 。本 文利 用 改 良阿须贝培养基 筛选 出 4种产精 氨酸菌 株 , 其形 态 特征分别为 白色链球状菌株 、 白分散球状 菌株 、 干 金黄 色杆状菌株 、 红色球状 菌株 。通 过对 4种产精 氨酸 粉
方面也有一定 的 作用
。近 年来 , 随着人 们对 一 氧
化氮途径 研究 的不断深入 , 为一氧化氮 合成前 体的 作 精氨酸在心血管 疾病 菌株并优化其发酵工艺有着重要 的意
义 一 。
醇 中结 晶的是无 水精 氨酸 。由于胍基 的存 在 , 氨酸 精
第2 8卷第 4期
2 1 年 8月 01
生 物 学 杂 志
J 0URN I O AL OF B OL GY
Vo . No. 128 4 Au g,2 1 01
d i 0 3 6/.s .0 5—13 .0 10 . 8 o: .9 9ji n2 9 1 s 7 6 2 1 .40 8
Ke wo d :agn n ;s r e i g o t i y r s r i i e c e n n fs a n;o t z t n o r na ie me i m r pi ai ff me tt d u mi o e v

精氨酸产生菌的代谢机制及选育进展

精氨酸产生菌的代谢机制及选育进展

精氨酸产生菌的代谢机制及选育进展伊廷存1,袁建国2*,李 峰3,高艳华3(1. 山东师范大学生命科学学院,山东 济南 250014;2. 山东省食品发酵工业研究设计院,山东 济南 250013;3. 济南京鲁生物技术研发中心,山东 济南 250013)摘 要:L-精氨酸是氨基酸的一种,是蛋白质和肌酸的重要组成成分。

作为一种条件必需性氨基酸,L-精氨酸在营养生理、医药工业和饲料工业方面有重要作用和良好的应用前景,本文综述了精氨酸的代谢机制及精氨酸产生菌的选育研究进展。

关键词:精氨酸;代谢;选育;诱变;基因工程中图分类号:Q538 文献标识码:A 文献编号:1672-9791(2010)05-0203-04收稿日期:2009-10-28作者简介:伊廷存(1982-),男,山东蒙阴人,硕士,研究方向为微生物资源与发酵工程*通讯作者:袁建国,男,研究员 E-mail:yitc_999@Metabolism and Advances in Research of High Yielding Strains of L -ArginineYI Ting-cun 1, YUAN Jian-guo 2, LI Feng 3 ,GAO Y an-hua 3(1 .College of Life Sciences, Shandong Normal University, Jinan 250014, China;2. Shandong Food & Fermentation Industry Research & Design Institute, Jinan 250013,China;3.JingluBiotechnology Research and Development Center of Shandong Province ,Jinan 250013, China )Abstract: L -arginine is one kind of amino acid, and a building block of proteins and creatine. As a conditionally essential amino acid, it plays an important role and has good application prospects in nutrition physiology, medicine industry and feed industry. This paper reviews the metabolic mechanism and breeding development of L -arginine-producing strains.Key Words: L -arginine; metabolism; breeding; mutagenesis; genetic engineeringL -精氨酸是具有多种用途的氨基酸。

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2010No.9Serial No.222China BrewingL-组氨酸(L-Histidine )化学名为L-α-氨基-β-咪唑丙酸,是分子中含有咪唑核的碱性氨基酸[1]。

L-组氨酸具有多种生理功能,广泛用于医药、饲料及食品行业。

尤其在医药领域的作用日益受到重视,目前,其主要应用于氨基酸输液及综合氨基酸制剂方面,已成为中国医疗最常用的药物之一,用量逐年递增。

但目前L-组氨酸生产的先进技术主要掌握在欧、美、日等发达国家手里,主要采用发酵法。

日本在20世纪70年代就开展发酵生产组氨酸的研究,而国内在这方面还仅处于实验室研究阶段[2-3]。

因此加快研究发酵法生产L-组氨酸具有非常重要的意义。

1发酵法生产L-组氨酸发酵法借助微生物具有合成自身所需氨基酸的能力,通过对组氨酸产生菌进行诱变,选育出营养缺陷型及组氨酸结构类似物抗性突变株,以解除代谢调节中的反馈抑制和反馈阻遏,从而达到过量积累L-组氨酸的目的[4-5]。

其具有原料成本低,反应条件温和极易实现大规模生产等优点,是一种非常经济有效的生产方法[6]。

1.1L-组氨酸的产生菌目前发现的组氨酸产生菌有谷氨酸棒杆菌、黄色短杆菌、枯草芽孢杆菌和粘质赛氏杆菌。

已投入工业化生产的有谷氨酸棒杆菌、黄色短杆菌和粘质塞氏杆菌,其产酸水平分别为15.4g/L 、12.5g/L 和17.0g/L ,糖酸转化率分别为15.4%、12.5%、10.0%[7]。

1.2发酵过程中pH 值的控制大部分组氨酸发酵培养基中的氮源是硫酸铵,当铵离子被利用之后,剩余的硫酸根离子会导致发酵液的pH 值下降,从而对发酵产生影响。

可以考虑在发酵培养基中添加碳酸钙,因为碳酸钙可以中和硫酸根离子,通过优化试验确定碳酸钙的最佳添加量。

1.3生物素对L-组氨酸发酵的影响作为L-组氨酸的主要产生菌,谷氨酸棒杆菌是生物素缺陷型菌,生物素是细胞生长的必需因子,同时还是多种羧化酶的辅酶,在CO 2固定反应中起重要作用,可影响糖酵解速度,改变发酵代谢流向。

添加适量的生物素可以增加单磷酸己糖支路(HMP )途径的代谢流量,有利于L-组氨酸的产生[8]。

1.4柠檬酸钠对L-组氨酸发酵的影响在发酵初期添加柠檬酸钠能够改变L-组氨酸生物合成途径的关键节点6-磷酸葡萄糖、丙酮酸及乙酰辅酶A 的代谢流分布,保持糖酵解途径、三羧酸循环与HMP 之间代谢流量平衡[9-11]。

在发酵培养基中添加适量的柠檬酸钠后葡萄糖的酵解途径EMP 被抑制,使碳架流向HMP 途径,有利于组氨酸的生成[12]。

影响组氨酸发酵的因素还有许多,可以通过正交试验或响应面法进行优化试验。

2L-组氨酸的测定方法对L-组氨酸含量测定的研究较少,建立一种简便可行的测定方法,对组氨酸的生产具有指导意义。

目前较常用组氨酸发酵条件及高产菌株选育研究进展孙希叶,杨平平,李旋,王燕*(山东轻工业学院食品与生物工程学院,山东济南250353)摘要:L-组氨酸是含咪唑核的碱性氨基酸,是人体和动物体内的半必需氨基酸。

L-组氨酸具有多种生理功能,应用广泛,尤其在医药领域中的应用日益受到重视,是市场上急需的氨基酸品种之一。

文中简要介绍了发酵法生产L-组氨酸及产物检测方法,通过对L-组氨酸生物合成途径的分析指出了大量合成L-组氨酸的关键控制点及选育的基本思路,并重点概括了国内外对L-组氨酸高产菌株选育方案的研究。

关键词:L-组氨酸;发酵;代谢途径;选育方法中图分类号:TQ922文献标识码:A文章编号:0254-5071(2010)09-0028-03Study Progress of fermentation conditions of L-histidine and screening of high productive strainSUN Xiye,YANG Pingping,LI Xuan,WANG Yan*(College of Food and Biological Engineering,Shandong Institute of Light Industry,Jinan 250353,China)Abstract:L-histidine is an alkalescency amino acid with an imidazole core.It's a semi-essential amino acid in human and animals.L-histidine has a variety of physiological functions,and has been widely used,especially in the field of medicine.It is one of the urgently needed amino acid on the market.Production of L-histidine by fermentation and concerned detecting methods was briefly introduced.Critical control points of high-level synthesis of L-histidine and the basic idea for screening of strains were summarized after analysis of biosynthetic pathways L-histidine,and approaches to screening of strains were emphasized,as well.Key words:L-histidine;fermentation;metabolic pathway;screening approaches收稿日期:2009-11-22作者简介:孙希叶(1986-)女,山东临沂人,在读硕士研究生,研究方向为微生物资源开发;王燕*,教授,通讯作者。

Forum and Summary28··中国酿造2010年第9期总第222期的有比色法和高效液相色谱法。

比色法是测定组氨酸含量的简便方法,Pauly 比色法简单、快速,准确性也比较好,对仪器的要求也不高,比较适用于工业生产中组氨酸的快速测定[13]。

但试验证明此法受铵离子的影响较大,铵离子与Pauly 试剂反应呈黄色,会将组氨酸的橙红色覆盖掉。

另外茚三酮显色-分光光度法也是一种常用的比色法,该法易于实现、精密度较好,适合在菌种选育过程中定性、定量测定发酵液中的L-组氨酸[14]。

高效液相色谱法是一种准确测定的方法,一般在梯度洗脱前采用衍生试剂(如2,4-二硝基氟苯)进行柱前衍生。

与比色法相比,此法的准确度和灵敏度较高,但操作比较复杂,对于样品多、工作量大的菌种筛选并不适用,所以试验中根据实际要求选择适当的测定方法。

3L-组氨酸的代谢及相关途径调节组氨酸的代谢途径比较复杂,要选育组氨酸高产菌株,就必须对细胞原有的代谢途径进行改造。

L-组氨酸的代谢及相关途径见附图。

3.1增加前体物的合成5-磷酸核糖焦磷酸(PRPP )不仅是组氨酸的前体物也是嘌呤和嘧啶的前体物,而且ATP 还直接参与组氨酸的合成,利用嘌呤的结构类似物来解除反馈调节,增加组氨酸前体物的积累。

3.2增强HMP 途径的流量根据EMP 和HMP 途径的调节得出,选育能以HMP 途径上的代谢产物为碳源且生长良好的菌株可以达到增加HMP 途径流量的目的。

通过削弱EMP 途径也能增加HMP 途径的流量,进而增加组氨酸的产量。

3.3阻断转酮酶由附图可知,5-磷酸核糖也是5-磷酸核糖焦磷酸(PRPP )的重要来源。

而PRPP 是组氨酸的前体物,转酮酶活性丧失,导致HMP 戊糖分子重排阶段中的转酮酶催化的反应被阻断,进而大量积累5-磷酸核糖,通过选育莽草酸缺陷型突变株,可成功分离出转酮酶缺陷突变株,使得L-组氨酸产量提高[15]。

3.4解除组氨酸的反馈调节在组氨酸的合成途径中,磷酸核糖-ATP 焦磷酸化酶是限速酶[7],组氨酸对其既反馈抑制又反馈阻遏,一般通过选育专属解除组氨酸对其反馈调节的结构类似物来完成;同时组氨酸对其合成途径上的其他酶也有抑制或阻遏作用,通过选育其他一些组氨酸结构类似物来逐步解除反馈调节。

3.5阻断组氨酸的分解组氨酸酶又称组氨酸解氨酶,能把L-组氨酸脱氨形成尿刊酸,再通过一系列反应生成谷氨酸。

选育在以组氨酸为主要或唯一氮源的基本培养基上生长微弱或不能生长的细胞,则能形成组氨酸酶缺陷型。

4国内外对L-组氨酸高产菌株选育的研究通过对L-组氨酸生物合成途径的分析,了解了其育种的基本思路,介绍近年来国内外对L-组氨酸高产菌株选育的研究,希望对进一步研究有一定帮助。

4.1L-组氨酸的诱变育种顾正华等[16]以谷氨酸棒杆菌ATCC13761为出发菌,经硫酸二乙酯和亚硝基胍诱变处理,获得菌株H-24,产L-组氨酸1.6g/L 。

此研究基于解除反馈抑制和反馈阻遏、增加前体合成与切断产物代谢途径3方面考虑,使组氨酸有较大的积累。

后又经过多次诱变筛选得到多重遗传标志的菌株DH-8,产酸2.1g/L 。

另外选育能在D-葡萄糖酸基本培养基上生长的突变株,也能提高产酸[17]。

添加柠檬酸能增加HMP 途径的代谢流量,同样能提高产酸。

由于芳香族氨基酸对PRPP 激酶有抑制作用,可以通过筛选莽草酸缺陷型菌株来降低芳香族氨基酸的代谢流量,进而增加流向PRPP 的通量。

于是利用亚硝基胍诱变谷氨酸棒杆菌HZ4221,选育得到莽草酸缺陷型的渗漏突变株CLW0560,积累L-组氨酸达5.31g/L [15]。

如果进一步研究5L 发酵罐发酵动力学及发酵条件优化,将能使组氨酸得到更大积累,对工业化生产具有重要的指导作用[18]。

曾莹等[20]对L-组氨酸选育方面也做了大量的研究,采用HNO 2和紫外线复合诱变处理黄色短杆菌,选育得到一株高产菌,产L-组氨酸128.28mg/L 。

虽然该菌株产酸水平比较低,但可以在此基础上定向选育结构类似物抗性突变株及营养缺陷型菌株,打破代谢调节机制。

利用硫酸二乙酯和亚硝基胍诱变处理谷氨酸棒杆菌S 9114,最终得到一正突变株S6(D-his r),可积累L-组氨酸327mg/L [21]。

首先对其进行最佳发酵工艺的研究,确定了菌株的最佳发酵条件[22],继续对S6进行了一系列的诱变处理,经亚硝酸钠和紫外线专论与综述29··2010No.9Serial No.222China Brewing复合诱变,所得菌株F6产L-组氨酸量为330mg/L[23]。

进行多次亚硝基胍的反复诱变。

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