细胞培养操作指南
细胞实验的基本操作
细胞实验的基本操作【细胞培养】一、细胞的复苏：非原代培养的细胞一般冻存于液氮之中，需要培养时要先从液氮中取出使之复苏。
细胞复苏的原则——快速融化：必须将冻存在－196℃液氮中的细胞快速融化至37℃，使细胞外冻存时的冰晶迅速融化，避免冰晶缓慢融化时进入细胞形成再结晶，对细胞造成损害。
具体操作如下：1、实验前准备：1.1、将水浴锅预热至37℃，并将含10%FBS的培养液置于其中预热；。
1.2、用75％酒精擦拭紫外线照射30min的超净工作台台面。
1.3、在超净工作台中按次序摆放好消过毒的离心管、吸管、培养瓶等等。
2、取出冻存管及迅速解冻：2.1、根据细胞冻存记录按标签找到所需细胞的编号。
2.2、从液氮罐中取出细胞盒，取出所需的细胞，同时核对管外的编号。
2.3、迅速将冻存管投入到已经预热的水浴锅中迅速解冻，并要不断的摇动，使管中的液体迅速融化，约1-2min后冻存管内液体完全溶解，取出用酒精棉球擦拭冻存管的外壁，再拿入超净台内。
3、平衡离心将细胞悬液吸到离心管中，1000～1500rpm离心3分钟；4、制备细胞悬液吸去上清液，加入10 ml培养液，用吸管轻轻吹打均匀，使细胞悬浮；5、细胞计数细胞浓度以5×105/ml为宜。
6、培养细胞将复合细胞计数要求的细胞悬液吸到培养瓶中，将培养瓶放入37℃和5％CO2的培养箱内培养（略微拧松培养瓶盖），换液的时间由细胞情况而定。
通常，除少数特别注明对DMSO 敏感的细胞外，绝大部分细胞株（包括悬浮性细胞），在解冻之后，可直接放入含有10-15ml（5－10倍）新鲜培养基的培养角瓶中，待隔天再置换新鲜培养基以去除DMSO 即可，如此可避免大部分解冻后细胞无法生长或贴附的问题。
二、细胞的传代：培养的细胞生长至一定密度之后，由于培养液中营养逐渐消耗、代谢物逐步积累（可见到培养液变黄），而且细胞的生长空间也受到限制，就会影响到细胞的继续生存。
这时就需要分离出一部分细胞和更新培养液，这一过程就叫做传代。
细胞培养的实验步骤
细胞培养的实验步骤细胞培养的实验步骤如下：1、细胞复苏：细胞培养条件2、复苏流程：（1）确认水浴锅的水清洁可用，方可提前打开37度预热。
（2）确认好复苏细胞的液氮罐中具体位置，并做好复苏登记。
（3）提前做好复苏准备，预热培养基。
（4）悬浮和贴壁细胞复苏参数：（5）将细胞快速放入37度水浴锅中迅速溶解，1.8ml时间大概1分30秒，1ml大概1min左右，需计时，其间不要老是拿起来观察，需要快速复溶，避免细胞受到损伤。
（6）贴壁细胞需离心，1000rpm，5min。
悬浮细胞直接加入预热的培养基中然后放入培养箱中（7）贴壁细胞离心后去除上清，用预热的培养基重悬细胞后加入T25方瓶，蕞后放入培养箱中培养。
（8）取小样计数观察，细胞活力在70%以上算正常。
低于70%活力可能细胞状态不太好，需要培养和恢复。
3、细胞传代培养1．悬浮细胞传代流程：（1）先将装有细胞的摇瓶从培养箱拿出，用酒精喷洒瓶身后将摇瓶拿进超净台。
（2）打开摇瓶瓶盖，用200ul移液器取100~200ul细胞放入1.5mlEP管中，瓶盖过火，拧紧，将培养瓶放回摇床。
（3）将200ul细胞混匀，取10ul细胞加入10ul台盼蓝，显微镜下计数。
根据细胞数决定下游实验。
（4）细胞需计数两次求平均值。
（5）悬浮细胞生长参数（6）根据不同细胞的生长曲线在合适的时间和密度给细胞接种传代。
以sf9细胞为例：细胞接种密度0.4x10^6个/ml,24h密度1x10^6个/ml,48h密度2.4x10^6个/ml,72h密度6x10^6个/ml，此时需要传代细胞。
要求留样100ml0.4x10^6个/ml具体操作如下：计算：需要母细胞体积=100*0.4/6=6.6ml需要培养基体积=100-6.6=93.4ml将上面体积的细胞和培养基加入摇瓶中，放回27度培养箱培养即可2.贴壁细胞传代流程：（1）显微镜下观察细胞状态和密度，80%汇合率以上需要传代。
（2）T25方瓶中加入0.5ml~1ml0.25%胰酶溶液（需37度预热），使瓶底细胞都浸入溶液中。
细胞培养的方法与步骤
细胞培养的方法与步骤1．开紫外灯前先擦超净台，台内紫外30分钟，室内紫外10分钟。
同时将放在4℃内的培养液提前放置到室温。
（可放在抽屉中，防止紫外照射）换液2．先将培养液打开（开一层烧一层），放置在酒精灯旁。
3．将细胞从培养箱中拿出，进超净台前先要喷酒精。
4．打开培养瓶，烧瓶口，而后弯脖朝后，倒液，注意瓶口不要残留液体，若有残液要用纱布擦净。
5．倒培养液（之前要烧瓶口），注意量（5ml）不要再瓶口有残留液体是烧瓶口，否则碳化的培养液会对细胞的生长有毒害作用。
6．倒一瓶封一瓶，迅速放平，培养瓶口拧紧后再松一下，放入培养箱中。
传代2．拿出细胞，开口，烧，倒液。
3．（5ml大枪加3ml）用PBS洗2~3遍（洗净血清，放置血清钝化胰酶）。
4．胰酶消化，37℃5分钟（时间可自控）。
消化程度是细胞不能滑落，要吹落。
500微升胰酶（4×，1%）+1.5mlPBS→工作浓度0.25%（此时要用大枪）。
5．（大枪）加入3mlDMEM完全培养液终止消化，用吸管缓慢吹打壁上的细胞（不要让吸管的嘴端接触到瓶壁）6．将混合物吸入离心管，加封口膜，离心500g 5分钟（此时洗去胰酶）在此期间PBS 洗培养瓶3遍，PBS一定要吸净，否则加入培养液后会产生沉淀（培养瓶要重复使用，至少100次）7．倒掉上清，此时动作要轻或用大枪吸，加入3mlDMEM完全培养液重悬细胞，用吸管吹掉（再洗，清除胰酶）。
8．离心完毕，加入3ml新鲜培养液，再次吹打（约50~100下，视细胞情况而定），防止起泡沫，至细胞单个，圆球状为宜。
9．在培养瓶中加入新鲜培养液4ml，将吹打起来的细胞分配至各培养瓶中（量依需要而定）。
80微升，100微升都可以。
冻存8．在冻存管中加入200微升冻存液，在离心管中加入1000微升冻存液，吹打（防止起泡），移入冻存管中，此段时间不宜过久（DMSO对细胞伤害很大）。
9．封口膜封紧冻存管，可多封几层，用胶布缠紧，只缠一层就行，然后写字。
细胞培养室操作指南
细胞培养室操作指南操作前的准备在进入细胞培养室之前，请做好以下准备工作：1. 穿戴适当的实验室衣物，包括实验服、手套和口罩。
2. 确保细胞培养室的工作台面、仪器和设备已经清洁干净。
3. 检查培养基、细胞培养物和其他试剂的质量和数量，确保充足供应以及正确的储存条件。
4. 准备好所需的实验室用品和器具，如离心机、培养皿、培养瓶等。
操作步骤1. 进入细胞培养室后，先进行必要的消毒。
使用合适的消毒剂擦拭工作台面和仪器设备，确保无菌环境。
2. 打开细胞培养室的通风系统，保持室内空气流通。
3. 对培养皿和培养瓶进行预处理。
使用稳定的手法将培养皿倒置于工作台上，滴入适量的无菌培养基，避免气泡产生，并确保密封良好。
4. 将培养皿和培养瓶放入培养箱中，并设置适当的温度和湿度。
5. 操作前，确保用于细胞培养的仪器和器具已经经过严格的清洁和消毒，以防止污染细胞培养物。
6. 用适当的实验室方法取得需要培养的细胞，并按照实验要求进行处理和培养。
7. 在细胞培养的过程中，定期检查细胞的生长和状态，并根据需要进行细胞传代或其他处理。
8. 在操作结束后，将实验室用品和培养物妥善清洁和处理。
将使用过的培养皿和培养瓶放入含有漂白剂的计量瓶中进行消毒，确保无菌。
注意事项1. 在操作过程中，尽量减少对细胞培养物的污染和扰动，以维持细胞的健康生长。
2. 每次操作前，检查培养基、培养皿和培养瓶的有效日期和质量，确保使用的试剂和设备符合要求。
3. 严格遵守实验室安全操作规范，避免意外事故的发生。
4. 当存在不确定的实验结果或问题时，及时寻求上级或相关专家的意见和帮助。
5. 保持细胞培养室的整洁和有序，定期进行消毒和清理，确保实验环境的良好状态。
以上是细胞培养室操作的基本指南，请在进行任何实验前仔细阅读并理解。
如有需要，随时更新和补充这份操作指南，并及时将变更通知相关人员。
祝实验顺利！。
细胞培养操作步骤
细胞培养操作步骤细胞培养是一项用于研究和生产生物技术产品的基础技术。
以下是细胞培养的一般操作步骤：1.实验室准备：-消毒：在开始实验之前，对实验室进行消毒处理，确保实验环境的无菌。
-工具准备：准备好所有需要的培养器具，如离心管、试管、培养皿、吸管等。
-培养基准备：根据实验需要，准备好适当的培养基，并对其进行消毒处理。
2.细胞准备：-细胞收获：收获细胞，并将其转移到一个装有细胞培养基的培养皿中。
-细胞计数：使用细胞计数器或显微镜对细胞进行计数和分析，以确定细胞的浓度和活性。
-细胞传代：如果需要，将细胞进行传代以维持其活性和数量。
3.培养条件：-培养温度：根据细胞的要求，将培养皿放置在适当的温度控制设备中，通常为37℃。
-CO2浓度：对于一些细胞（如哺乳动物细胞），需要提供适当的CO2浓度来维持其生长和代谢。
-培养液更换：根据具体要求，定期更换培养液，以保持细胞的健康生长。
4.细胞培养：-培养基添加：向培养皿中加入适当量的培养基，以提供细胞生长和繁殖所需的养分。
-培养皿处理：将培养皿放入恒温培养箱中，确保细胞在适宜的环境中生长。
-细胞观察：定期使用显微镜观察细胞的生长情况和形态变化，以评估细胞的健康状态。
-培养皿除菌：如果培养皿被发现有细菌或真菌污染，需要将其除菌，以保证细胞的无菌状态。
5.细胞传递：-细胞解离：当细胞达到所需密度或需要进行分离时，使用适当的酶或溶液将细胞从培养皿中解离。
-细胞收获：通过离心，将细胞收集到离心管中，并进行计数和分析。
-细胞传递：将细胞转移到新的培养皿中，重新开始培养过程。
细胞培养是一项复杂而精细的操作，需要高度的无菌技术和细心的操作。
在整个过程中，需要持续监测和调整培养条件，以确保细胞的健康生长和繁殖。
此外，注意遵循实验室的安全规范，保护自己和实验室的安全。
细胞培养的成功与否，将直接影响到后续实验的结果和应用。
细胞培养室操作指南
细胞培养室操作指南---1. 引言细胞培养室是进行细胞培养的重要场所，严格的操作规范可以确保细胞培养的成功和细胞的活力。
本文档旨在提供明确的操作指南，以确保细胞培养室的操作规范和细胞培养的高质量。
2. 安全操作指南2.1 穿戴好实验室服进入细胞培养室前，必须穿戴好干净的实验室服，确保衣物无毛发、皮屑等污染物，并配戴好所需的防护用品：手套、口罩、护目镜等。
2.2 细胞培养室的清洁与消毒细胞培养室应保持干净整洁，并定期进行消毒。
在每次培养细胞前，使用酒精将培养台面、培养箱、培养器具等进行消毒处理，确保无细菌污染。
2.3 合理使用培养物料在细胞培养室内，严禁使用过期的培养物料和试剂。
新开封的培养物料和试剂，应经过质量控制检验，并按照使用要求进行存储。
3. 细胞培养操作指南3.1 培养细胞前的准备工作在培养细胞之前，确保准备充分，包括以下内容：- 清洁工作台和培养箱。
- 检查培养物料和培养基的储存情况。
- 保证所需的培养器具和设备可用。
3.2 细胞的传代和分离- 按照实验要求，选择适当的培养基和传代倍数。
- 去除细胞培养瓶的上清液，进行细胞的分离。
- 细胞的传代时，应注意传代倍数的控制，避免细胞老化和突变。
3.3 细胞的培养和存储- 将细胞分散均匀地添加到预先准备好的培养基中，根据要求添加适宜的生长因子和抗生素。
- 监测细胞的生长状态和数量，确保培养的成功。
- 细胞培养完成后，将培养瓶和细胞样品储存在恰当温度和湿度的培养箱中。
4. 实验结束后的注意事项- 清洗培养器具：将培养器具进行清洗和消毒处理，确保下一次使用时的无菌环境。
~- 处理废弃物：将用过的培养器具、培养材料等废弃物集中处理，按照实验室废物管理的要求进行处理。
~- 关闭培养箱、灭菌器等设备，确保实验室的安全和设备的长寿命。
---以上是细胞培养室操作指南的主要内容。
在操作过程中，务必保持专注和细心，按照操作规范进行操作，确保细胞培养的质量和实验室的安全。
悬滴法三维细胞培养操作
悬滴法三维细胞培养操作指南
哎呀，说起这个悬滴法三维细胞培养，咱们得仔细点儿整，毕竟这活儿精细得很。
首先嘞，你得准备好个干净得跟镜子似的培养皿，还有那些个细胞悬液，浓度要调得刚刚好，稀了浓了都不得行。
接下来，就是技术活了。
拿根细长的吸管，手要稳，心要细，轻轻地把细胞悬液滴到培养皿的盖子上，注意哦，不是直接滴到皿里，是盖子上头，一滴一滴，均匀得很。
这滴子要悬在半空中，不能沾到边上的，这就叫悬滴，懂了吧？
滴好之后，赶紧把培养皿的盖子轻轻盖上，别让空气进去搅了局。
然后，放到那恒温恒湿的培养箱里头，温度、湿度都得调得巴巴适适的，让细胞娃娃们舒舒服服地长。
过个几天，你再去瞅一眼，嘿，那悬滴里的细胞，已经开始抱团取暖，长成个小球球了，三维结构就这么自然而然地出来了。
这时候，你就可以根据实验需要，进行下一步的操作了。
记得哦，整个过程中，无菌操作是关键，手别抖，心别急，慢慢来，悬滴法三维细胞培养，就是这么个讲究的活儿。
细胞培养操作指南
细胞培养操作指南细胞培养操作指南1，原代细胞培养原代培养需要严格要求：（1）取材时需要去除脂肪和坏死的组织(2)为减少对组织的损伤，需用锋利的器具(3)适度离心以去除用于解离的酶（4）由于原代培养组织细胞的存活率很低，故用于原代培养的细胞的密度应高于正常的传代培养的细胞密度。
（5）营养丰富的培养基比单一的培养基更可取，如果要添加血清，胎牛血清比牛马的血清更好。
(6)对于取材部位易于感染（如皮肤）应先用70%乙醇消毒，在无菌条件下切除组织，尽快转移入BSS或培养基中。
不要再培养室取材，因为动物可引入微生物污染。
若必须推迟，可保存在4℃，72h。
1. 剪切组织先将所取得的组织，用D-Hanks或Hanks液清洗，以去除表面血污，并用手术镊去除粘附的结缔组织等非培养所需组织。
再次清洗后，用手术剪将组织剪成若干小块，移入青霉素小瓶或小烧杯中，加入适量缓冲液，用弯头眼科剪，反复剪切组织，直到组织成糊状，约1mm3大小。
静置片刻后，用吸管吸去上层液体，加入适当的缓冲液再清洗一次。
2. 消化分离消化分离的目的是将细小的组织块消化分离成细胞团或分散的单个细胞，以利于进一步的培养，常用的消化酶有胰蛋白酶和胶原酶。
3. 培养细胞悬液用计数板进行细胞计数，用培养液将细胞数调整为2～5×105 cells／m1，或实验所需密度。
分装于培养瓶中，使细胞悬液的量以覆盖后略高于培养瓶底部为宜。
置CO2培养箱内，5％CO2，37℃静置培养。
一般3～5d，原代培养细胞可以粘附于瓶壁，并伸展开始生长，可补加原培养液量1／2的新培养液，继续培养2～3 d后换液，一般7～14 d可以长满瓶壁，进行传代。
注意事项：1. 无菌操作细菌或霉菌污染是培养失败的常见原因，必须加强各个环节的无菌操作观念，以预防为主，一旦污染，一般是很难消除。
2. 培养液所用的培养液必须满足细胞生存和生长的必要条件。
由于细胞来源的动物种类、组织类型不同，对培养液的要求有一定的差异，必要时可用预实验的方法选择适当的培养液。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
细胞培养操作指南
1.实验室准备：
在开始细胞培养之前，准备好所有所需的实验室设备和试剂：培养皿、细胞培养基、胎牛血清、无菌移液器、无菌离心管、显微镜等。
2.个人准备：
进入实验室前，务必穿戴好个人防护装备，包括实验室服、手套和口罩。
确保双手清洁，并使用含酒精的消毒液消毒工作台。
3.细胞培养基准备：
根据实验需求，配制适当的细胞培养基。
将细胞培养基加热至37摄
氏度，使其变得温暖。
4.细胞扩增与传代：
a.从冷冻保存的细胞存储管中取出细胞，并将其转移到一只预先加热
的离心管中。
b.离心管轻轻离心，使细胞沉淀在管底。
c.弃去上清液，加入预先加热的新鲜培养基，轻轻悬浮细胞沉淀。
d.将细胞悬液转移到一个新的培养皿中，确保细胞均匀分布。
e.将培养皿放入恒温培养箱，并根据细胞类型和实验要求设置合适的
温度和湿度。
f.观察细胞生长情况，并根据需要传代细胞。
传代细胞时，将细胞悬
液转移到新的培养皿中，注意细胞定植的密度不要太高。
5.细胞分裂与凝聚度检测：
使用显微镜观察细胞培养的生长情况，检查细胞的形态和凝聚度。
正常细胞应该呈现光滑、扁平、并且凝聚在一起的形态。
6.细胞的移植和收获：
当细胞生长到适当的数量时，可以进行细胞的移植或收获。
使用无菌移液器将细胞转移至其他试管或培养皿中，确保操作环境和使用器皿都是无菌的。
7.细胞冻存：
根据实验的需要，将细胞制备成冻存物。
将细胞悬液转移到冻存保存培养基中，并加入适量的冷冻保护剂（如DMSO），在-80摄氏度的冰箱中快速冷冻。
8.废弃物处置：
在培养过程中产生的废弃物（例如培养皿、试管等），必须按照实验室的规定进行处理。
通常情况下，将废弃物放入带有生物危险标识的废物箱中。
9.清洗和消毒：
在培养工作完成后，清洗并消毒实验室工作台和使用的器皿。
使用含酒精的消毒液对工作台表面进行擦拭，并将使用过的器皿彻底清洗，并经过高温高压灭菌。
10.实验记录：
进行细胞培养时，要详细记录每个操作步骤，包括使用的细胞类型、培养方法、检测结果等。
这些记录对于实验后续的数据分析和结果解释非常重要。
以上是细胞培养的基本操作指南，但每种细胞类型和实验要求可能会有所不同。
因此，在进行细胞培养之前，还应查阅专业文献和指南，了解特定实验需要遵循的具体操作步骤。