铁皮石斛组培方案(材料相关)

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铁皮石斛种苗组培实施方案

铁皮石斛种苗组培实施方案

铁皮石斛种苗组培实施方案铁皮石斛(Dendrobium)是一种重要的兰科植物,具有多种药用价值,被广泛用于中药材生产和养生保健。

其种苗组培是一种快速繁殖的方法,可以大大提高植物的繁殖效率和质量。

下面将介绍铁皮石斛种苗组培的实施方案。

一、材料准备1. 无菌种子:选择外观完整、无病害的铁皮石斛种子。

2. 培养基:配制适合铁皮石斛生长的培养基,包括营养物质、植物生长调节物质等。

3. 器具:培养瓶、无菌操作台、无菌手套、无菌培养室等。

二、种子消毒1. 将铁皮石斛种子浸泡于75%酒精中消毒5分钟,然后用无菌水冲洗3次。

2. 将种子浸泡于含有0.1%过氧化氢的无菌水中消毒20分钟,然后用无菌水冲洗3次。

3. 最后将种子浸泡于含有0.1%漂白粉的无菌水中消毒15分钟,然后用无菌水冲洗3次。

三、组培操作1. 在无菌操作台上进行操作,先将培养瓶中的培养基加热至121摄氏度,压力15磅,持续20分钟,使其无菌化。

2. 将消毒处理好的种子移入无菌培养瓶中,每瓶放入适量的种子。

3. 将培养瓶密封,放入无菌培养室中,温度控制在25-28摄氏度,光照强度控制在3000-5000勒克斯,光照时间为12小时。

四、生长管理1. 定期观察种苗生长情况,发现有病虫害立即进行处理。

2. 每隔一周更换一次培养基,保持培养基的新鲜和养分充足。

3. 控制培养室的温度、湿度和光照,提供良好的生长环境。

五、移栽1. 当种苗长到一定高度时,可以进行移栽。

将种苗移入含有适量营养物质的培养基中,继续进行培养。

2. 移栽后继续进行生长管理,直至种苗长成成熟植株。

通过以上实施方案,可以实现铁皮石斛种苗的组培繁殖,提高植物繁殖效率,为铁皮石斛的种植生产提供了可行的技术方案。

希望这些内容对您有所帮助。

铁皮石斛组培快繁技术实例分享 · 附配方

铁皮石斛组培快繁技术实例分享 · 附配方

铁皮石斛(Dendrobium officinale Kimura et Migo),属微子目,兰科多年生附生草本植物,是名贵的中药材。

本文在前人研究的基础上,以铁皮石斛的未成熟种子为外植体材料,研究了铁皮石斛的再生体系,其研究结果可为铁皮石斛的工厂化育苗提供技术支撑。

1 材料与方法1.1 外植体材料及培养条件1.1.1 外植体选择实验材料为八成熟的铁皮石斛蒴果。

1.1.2 材料预处理及消毒将铁皮石斛的蒴果先用自来水冲洗干净,再置于洗洁精溶液中摇洗3次,每次摇洗5分钟;取出蒴果用自来水洗净,沥干水后。

在超净工作台上先用75%浓度的酒精消毒3分钟,倒去酒精;再用0.15%的升汞消毒15分钟;倒去升汞消毒液,用无菌水冲洗4-5次,沥干备用。

接种时,将经过表面消毒的蒴果放在无菌的不锈钢盘上,切除头尾约0.5厘米部分并弃去,然后将蒴果中段沿纵轴切开,取出种子,均匀地接种到培养基表面。

1.1.3 培养条件培养室温度为(25±2)℃,以日光灯为光源,光照强度为2000-2500lx,照光10小时/天。

2 结果与分析2.1 初代培养:种子的萌发与无菌材料的建立将铁皮石斛的未成熟种子接种在初代培养基(配方见文末,下同)上,培养约15天后,用肉眼可观察到在培养基表面有浅绿色的小团粒(直径0.5-1.5毫米)。

这些浅绿色颗粒系原球茎体,或为少数原球茎体已萌发出子叶和第1片真叶而形成的无菌实生小苗。

再经过20-25天的培养,大部分原球茎体已萌发,形成了具1-2片真叶的幼苗,同时也产生了一些新增殖的原球茎体。

这些幼苗和原球茎体相互堆挤在一起,占满了初代培养基整个表层及表层上约1.5厘米厚的空间。

此时,铁皮石斛无菌材料的建立即告完成,应该及时将无菌实生小苗或原球茎体转接到新配制的增殖培养基或者生根壮苗培养基上进行培养。

2.2 继代增殖培养建立了铁皮石斛的无菌材料后,将原球茎转接到增殖培养基,培养90天,增殖系数非常高。

铁皮石斛组培方案样本

铁皮石斛组培方案样本

铁皮石斛组织培养方案报告一、实验目二、理解铁皮石斛培养办法和环节, 纯熟掌握外植体取材、消毒、接种、初代培养操作过程。

三、实验器材超净工作台、高压灭菌锅、电磁炉、长镊子、培养皿、酒精灯、接种工具、烧杯、玻璃棒、移液管、培养箱、剪刀、培养瓶等。

四、实验环节配方:依照不同阶段, 培养基配方有所差别。

如表1表1 各种培养基配方配制(以1000ml幼株生根壮苗培养基为例)10%香蕉(w/w)+MS +3%蔗糖(w/w)+0.8%琼脂(w/w)+2.0mg/L NAA1)量取800ml蒸馏水于干净大烧杯中, 加热至沸腾;2)精确称量100g香蕉果肉, 切成碎片状, 并倒入上述烧杯中, 加热煮沸5min, 其间搅拌使之充分溶解;3)按照大量、微量、Fe2+盐、有机Ⅰ、有机Ⅱ顺序, 量取MS各种母液于盛有50ml蒸馏水烧杯, 混合均匀;4)将2)和3)溶液混合, 然后加入30g蔗糖, 并移取2ml NAA(0.1mg/ml), 混合均匀;5)加热至沸腾, 加入8g琼脂并煮沸5min, 其间不断搅拌使之充分溶解;6)冷却至50±5℃时, 调pH至5.4—5.6。

分装于培养瓶内, 33.3ml/瓶。

注意事项:①溶解香蕉蒸馏水尽量多, 以保证香蕉各种成分完全溶解;②各种母液混合时, 要按照大量、微量、Fe2+盐、有机Ⅰ、有机Ⅱ顺序;③煮沸时, 小心溶液溢出;④分装时不要污染培养瓶瓶口。

灭菌:1)检查灭菌锅水位、电源、排气阀、排气管、安全阀以及压力表, 保证灭菌锅各指标和功能正常, 以防事故发生;2)把带灭菌培养基装入锅内, 盖上锅盖, 对称而均匀地扭紧螺丝;3)打开电源和排气阀, 调节电压至220V;4)待排气阀排除水蒸气30s—1min后, 关闭排气阀;5)当温度上升到121℃后, 调节电压至135V, 保持20min;6)关闭电源, 使之自动降温至0℃。

10min后, 打开排气阀和锅盖;7)5—10min后, 取出培养基放于实验台上冷却, 待用。

铁皮石斛组织培养课件

铁皮石斛组织培养课件
组织培养的分类
根据培养的材料和目的,组织培养可以分为胚胎培养、 愈伤组织培养、器官培养和细胞培养等类型。
组织培养技术的发展历程
01 19世纪中期
植物组织培养的萌芽期,科学家开始尝试将植物 组织放在人工控制的条件下进行培养。
02 20世纪初
植物组织培养技术的初步形成,科学家发现植物 细胞具有全能性,能够发育成完整的植株。
开花时,铁皮石斛会形成黄绿色的花朵,并散发 03 出淡淡的香气。
铁皮石斛的生长环境
铁皮石斛主要生长在温暖湿润的环境中,如热带 01
雨林、季雨林等。
它需要附生于树木或岩石上,并需要较高的空气 02
湿度和适度的光照。
02 适宜的生长温度为15-25℃,且需要保持一定的 空气流通,以斛具有滋阴清热、生津止渴的功效,常用 于治疗热病伤津、口渴咽干等症状。
它还具有益胃生津、滋阴清热的功效,对于胃脘 痛、上腹胀痛等症状也有一定的疗效。
此外,铁皮石斛还具有一定的抗肿瘤、抗氧化、 增强免疫力等作用。
组织培养技术概述
组织培养的定义与分类
组织培养的定义
组织培养是一种在人工控制的条件下,将植物的细胞、 组织或器官进行离体培养,使其生长、发育的技术。
02
快速繁殖
通过组织培养技术可以实现铁皮石斛的快速繁殖, 提高种苗质量和产量,满足市场需求。
铁皮石斛组织培养的实践操 作
实验材料与设备
实验材料
铁皮石斛幼苗、培养基质(如珍珠岩、 蛭石等)、活性炭、植物生长调节剂 等。
实验设备
超净工作台、培养皿、玻璃瓶、烧杯、 量筒、天平、灭菌锅、PH试纸等。
实验操作流程
培养条件
将接种好的培养皿放入恒温培养箱 中,设定适宜的温度和光照时间, 保持一定的湿度。

铁皮石斛组织培养实验流程

铁皮石斛组织培养实验流程

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铁皮石斛组织培养培训材料

铁皮石斛组织培养培训材料
限制
技术要求高、成本较高、可能存在变 异和遗传稳定性问题等。
02
铁皮石斛组织培养基本流程
外植体的选择与处理
外植体的选择
选择健康、无病虫害的铁皮石斛植株作为外植体,如茎尖、 叶片等。
外植体的处理
对外植体进行清洗、消毒、切割等处理,以去除表面污垢和 微生物。
无菌操作技术
01
02
03
无菌操作环境
在无菌操作室内进行组织 培养操作,确保环境清洁 无菌。
光照与温度控制
总结词
光照和温度是影响铁皮石斛组织培养的重要环境因素。
详细描述
适宜的光照强度、光照时间和温度能够促进铁皮石斛组织的生长和分化。在不同的生长阶段,需要调整光照和温 度条件,以满足铁皮石斛生长的需求。
激素的种类与浓度
总结词
激素的种类和浓度是调控铁皮石斛组织培养的关键因素。
详细描述
在铁皮石斛组织培养过程中,需要添加适量的激素,如生长素和细胞分裂素,以促进细胞的分裂和生 长。同时,激素的种类和浓度也需要根据实验需求进行选择和调整,以达到最佳的组培效果。
4. 将接种好的培养皿 放置在适宜的温度和 湿度条件下进行培养。
实验操作步骤与注意事项
注意事项 1. 在操作过程中要保持无菌环境,避免交叉污染。
2. 取材时要选择健康、无病虫害的植株,并确保取下的组织健康无病。
实验操作步骤与注意事项
01
3. 培养基的成分和pH值要适宜, 以保证组织的正常生长。
02
病虫害防治
总结词
病虫害是影响铁皮石斛组织培养的重要 因素,防治病虫害是组培过程中的重要 环节。
VS
详细描述
在铁皮石斛组织培养过程中,可能会受到 细菌、真菌等病原体的侵害,以及害虫的 侵害。为了防治病虫害,需要定期检查组 培苗的生长情况,及时发现并处理病虫害 ,同时采取生物、化学、物理等多种防治 方法进行综合防治。

铁皮石斛的组织培养

铁皮石斛的组织培养

铁皮石斛的组织培养作者:黄子聪来源:《农家科技下旬刊》2014年第09期摘要:铁皮石斛是兰科石斛属多年生附生草本植物,为传统名贵中药。

由于对生境要求十分苛刻,加之人为过分采收,现已濒临灭绝,已被列为“濒危珍稀植物”。

对铁皮石斛的组织培养及人工栽培进行研究,实现保护野生铁皮石斛资源的同时满足人们的消费需求,具有重要的现实意义。

关键词:铁皮石斛;组培快繁一、铁皮石斛组培培养(一)材料与方法1.供试材料供试材料:果荚:从浙江省购买回来的组培苗,栽种于温室大棚中,选择品质纯正的、生长健壮的铁皮石斛单株进行授粉,获得果荚。

茎段:从浙江省购买回来的组培苗,栽种于温室大棚中,选择品质纯正的、生长健壮的、二年生的、具有20厘米以上的铁皮石斛,自上而下剪下15厘米左右,带回实验室,备用。

2.方法(1)消毒方法果荚的消毒方法:将生长了5个月的果荚用消毒的剪刀从植株上剪下,带到超净工作台下,用75%的酒精浸泡2分钟,然后用灭菌去离子水清洗两次,放在灭菌的空瓶中。

播种前,将要切开的部位及花朵着生位置在酒精灯下稍微过火,然后再将基切开,播种。

(2)种子无菌播种将灭菌的果荚在果荚蒂附近的位置上用灭菌的手术刀切开一个约1.5厘米的切口,然后直接将种子均匀地撒在培养基上。

放在培养架上进行光照培养。

培养基配方:Z0:MS+NAA0.1mg/L+土豆汁100g/L(3)原球茎的增殖及分化将转绿的原球茎转接到增殖分化培养基上,每瓶接种6个点,每个点5个原球茎,5瓶一个重复,设3次重复。

茎段的消毒方法:选取茎段特征明显的铁皮石斛单株,用消毒的剪刀从节间靠下的位置将优选单株剪下,然后将叶片摘除,在自来水下将表面的灰尘洗去。

接下来将茎段上的叶鞘撕掉,特别是底部与节相连接的位置要去干净,同时注意不要伤到休眠芽,再用洗洁精进行表面清洗,在自来水下将洗洁精清洗干净,带到超净工作台下,用75%酒精浸泡两分钟,期间不断地搅拌,再用灭菌去离子水清洗2两,切成每段3-5节,用0.1%升汞(加吐温20 2滴)浸泡9分钟,期间不断地搅拌,倒去升汞溶液,再用灭菌去离子水清洗6次,每次2分钟。

铁皮石斛组培技术介绍

铁皮石斛组培技术介绍

铁皮石斛组培技术介绍铁皮石斛的组织培养技术,大都以茎段、根尖、原球茎、茎尖和种胚等为外植体。

除了固体培养外,近几年来还出现了铁皮石斛液体悬浮培养。

一、铁皮石斛组培技术(1)茎段培养1.培养条件2.取材与消毒从铁皮石斛植株上切下长2~5cm的幼嫩茎段,在流水下冲洗,用刷子蘸少许洗衣粉水溶液轻轻刷洗,并经自来水充分洗净。

在超净工作台上将茎段放置在75%的酒精中消毒30s后,再用0.1%的HgClz 水溶液浸泡8~10min,无菌水冲洗5~6次。

3.诱导培养用解剖刀将铁皮石斛的幼嫩茎段切下,接种在诱导培养基①中进行培养。

15~20天后,外植体开始萌动,茎段膨大,切面及顶部组织形成疏松组织。

继续培养20天后,转入培养基②中,切面及顶部膨大组织的表面形成凹凸不平的颗粒物,随着培养时间的延长,颗粒物长大形成直径1~2mm的类原球茎颗粒物。

4.增殖培养将诱导形成的原球茎转入到增殖培养基中,原球茎增殖速度很快,增殖倍数可达3~4倍,同时部分原球茎开始分化出芽点并长出1~2片小叶,原球茎的增殖与芽分化同时进行。

5.生根培养待增殖芽数量较多时,将高1~2cm、带有2~3片叶的小芽切下转入生根培养基上进行生根培养。

培养30天左右,基部开始出现2~3条约1cm长的白色根,随后逐渐伸长,生根率达到90%以上。

6.出瓶苗的过渡管理当苗高3cm以上、具3~4片叶时,便可出瓶移栽。

移栽前,将生根瓶苗打开瓶盖,移至常温下炼苗7天,然后将瓶苗取出,洗去附着在根部的培养基,用0.01%的高锰酸钾溶液浸泡8~10min,栽种于已灭菌的碎树皮基质中(移栽前浇透水),放置在遮光度50%~60%、湿度达80%以上的温室中,2 个月后,成活率达90%以上。

(2)种子培养(胚培养)取人工授粉的铁皮石斛果实,用75%的酒精表面消毒,30秒后再用0.1%升汞消毒8分钟,无菌水冲洗4—5次。

在无菌操作下,把果实切成0.1mm方块,接种到培养基上,每瓶3—5块。

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铁皮石斛组织培养方案报告
一、实验目的
了解铁皮石斛培养的方法和步骤,熟练掌握外植体的取材、消毒、接种、初代培养的操作过程。

二、实验器材
超净工作台、高压灭菌锅、电磁炉、长镊子、培养皿、酒精灯、接种工具、烧杯、玻璃棒、移液管、培养箱、剪刀、培养瓶等。

三、实验步骤
配方:
根据不同阶段,培养基配方有所差异。

如表1
不同阶段培养基备注
愈伤组织(原球茎)的诱导MS+2.0mg/L6-BA+3%蔗糖+0.8%琼

pH=5.8
原球茎的增殖MS+20%马铃薯+3%蔗糖+0.8%琼脂pH =5.8
原球茎的分化MS+20%马铃薯+2.0mg/LNAA+3%蔗
糖+0.8%琼脂
pH=5.8
幼株的生根壮苗MS+10%香蕉+2.0mg/LNAA+3%蔗糖
+0.8%琼脂
pH=5.4-5
.6
10%香蕉(w/w)+MS +3%蔗糖(w/w)+0.8%琼脂(w/w)+2.0mg/L NAA
1)量取800ml蒸馏水于洁净的大烧杯中,加热至沸腾;
2)准确称量100g香蕉果肉,切成碎片状,并倒入上述烧杯中,加热煮沸5min,其间搅拌使之充分溶解;
3)按照大量、微量、Fe2+盐、有机Ⅰ、有机Ⅱ顺序,量取MS各种母液于盛有50ml蒸馏水的烧杯,混合均匀;
4)将2)和3)的溶液混合,然后加入30g蔗糖,并移取2ml NAA(0.1mg/ml),混合均匀;
5)加热至沸腾,加入8g琼脂并煮沸5min,其间不断搅拌使之充分溶解;
6)冷却至50±5℃时,调pH至5.4—5.6。

分装于培养瓶内,33.3ml/瓶。

注意事项:
①溶解香蕉的蒸馏水尽可能多,以确保香蕉各种成分完全溶解;
②各种母液混合时,要按照大量、微量、Fe2+盐、有机Ⅰ、有机Ⅱ的顺序;
③煮沸时,小心溶液溢出;
④分装时不要污染培养瓶瓶口。

灭菌:
1)检查灭菌锅的水位、电源、排气阀、排气管、安全阀以及压力表,确保灭菌锅各指标和功能的正常,以防事故发生;
2)把带灭菌的培养基装入锅内,盖上锅盖,对称而均匀地扭紧螺丝;
3)打开电源和排气阀,调节电压至220V;
4)待排气阀排除水蒸气30s—1min后,关闭排气阀;
5)当温度上升到121℃后,调节电压至135V,保持20min;
6)关闭电源,使之自动降温至0℃。

10min后,打开排气阀和锅盖;7)5—10min后,取出培养基放于试验台上冷却,待用。

表2 灭菌时间统计
阶段单锅灭菌(耗时
64min)
多锅连续灭菌
第一锅(耗时63min)第二锅(耗时46min)
起始22:218:04 9:30
排气22:418:23 9:43
T=121℃22:508:32 9:50
关闭电源23:10 8:52 10:10
气压降至0 23:25 9:07 10:16
注意事项:
①启动灭菌前,应检查水位、电源、排气阀、安全阀、排气管等,确保正常;
②灭菌锅底部应铺垫一层报纸,以防培养瓶机械破损;
③灭菌电压不宜超过220V,否则灭菌锅会剧烈摇晃,造成不必要的损害和安全隐患;
④当温度达到121℃后,调节电压至135V,并且时不时注意温度的变化,确保温度介于121-122℃之间;
⑤气压降至0后,不宜立即揭盖;最好在5-10min后揭盖,这样才能缓和内外“气压和温度差”;
⑥揭盖5-10min后,再转移锅内培养基,以免烫伤。

⑦每锅只能灭菌18瓶
转接
转接前准备
1)培养皿、镊子、剪刀等转接用具的灭菌(可以在培养基灭菌时附带);
2)检查超净台内各种用具,及时补充酒精灯的酒精,确保用具齐全;
3)放置待转接材料和待接入培养基,以“方便操作为宜”而陈列;
转接
1)揭去防尘膜,打开电源、通风和紫外灯,灭菌15—20min;
2)关掉紫外,打开白炽灯,用75%酒精仔细擦拭手指、指甲、材料瓶瓶盖及盖边缘、工作区等处,确保“消毒”彻底;
3)点燃酒精灯,用无菌镊子把材料夹取于无菌培养皿内,挑选生命力旺盛的植株用于转接;
4)用无菌剪刀修去多余的根系,“双镊子”法将材料转接于新的培养基中;
5)标注相关日期和品系,转至培养室培养。

注意事项
①操作时,所有用具均不能从“核心工作区”和开启的培养瓶上面晃过,防止细菌落入而导致污染;
②在打开材料瓶和培养瓶后,其盖均在酒精灯外焰灼烧3-5s,瓶口灼烧5-10s;盖瓶盖时,亦如此操作;
③转接时,确保手一直在超净台内,以免带入外界细菌。

培养:
培养条件:白炽灯12h/黑暗12h+20℃
PDA培养基的配制方法,培养基的湿热灭菌操作
一、目的要求
1.学习并掌握配制培养基的一般方法和步骤。

2.学习并掌握棉塞的制作方法。

二、培养基的配制原理
培养基是人工配制的各种营养物质供微生物生长繁殖的基质,用以培养、分离、鉴定、保存各种微生物或积累代谢产物。

在自然界中,微生物种类繁多,营养类型多样,加上实训和研究的目的不同,所以培养基的种类很多,但不论是何种培养基,均应含有水分、碳源、氮源、能源、无机盐等。

不同微生物对pH值要求不一样,所以配制培养基时,还应根据不同微生物对pH值的要求,将培养基调到合适的pH值范围。

三、实训材料和用具
琼脂,可溶性淀粉,葡萄糖,10﹪NaOH,10﹪HCl,1mol/L NaOH,lmol/L HCl,KNO3,NaCl,K2HPO4·3H20,MgSO4·7H20,FeSO4·7H2O;试管,三角瓶,烧杯,量筒,玻璃棒,天平,牛角匙,PH试纸,棉花,牛皮纸,记号笔,纱布,
四、操作方法与步骤
(一) 培养基的配制
PDA培养基的配制其配方如下:土豆200g,葡萄糖20g,琼脂15~20g,水1000mL,pH值自然。

(1)称量和熬煮药品实际用量计算后,按培养基配方逐一称取去皮土豆。

土豆切成小块放入锅中,加水1000ml,在加热器上加热至沸腾,维持20-30min,用可用2层纱布趁热在量杯上过滤,滤渣弃取。

滤液补充水分到1000ml。

(2)加热溶解把滤液放入锅中,加入葡萄糖20g,琼脂15~20g(提前搞碎),然后放在石棉网上,小火加热,并用玻棒不断搅拌,以防琼脂糊底或溢出,待琼脂完全溶解后,再补充水分至所需量。

(3)分装按实训要求,将配制的培养基分装入试管或500ml三角瓶内。

分装时可用三角漏斗以免使培养基沾在管口或瓶口上造成污染。

分装量:固体培养基约为试管高度的1/5,灭菌后制成斜面,分装入三角瓶内以不超过其容积的一半为宜;半固体培养基以试管高度的1/3为宜,灭菌后垂直待凝。

(4) 加棉塞培养基分装完毕后,在试管口或三角烧瓶口上塞上棉塞(或泡沫塑料塞或试管帽等),以阻止外界微生物进入培养基内造成污染,并保证有良好的通气性能。

(5)包扎加塞后,将全部试管用麻绳或橡皮筋捆好,再在棉塞外包一层牛皮纸,以防止灭菌时冷凝水润湿棉塞,其外再用一道线绳或橡皮筋扎好,用记号笔注明培养基名称、组
别、配制日期。

(二) 棉塞的制作
棉塞的作用有二:一是防止杂菌污染;二是可过滤空气,保证通气良好,并可减缓培养基水分的蒸发,所以正确地制备棉塞是培养基制备中重要的一环。

正确的棉塞是形状、大小,松紧应与试管口(或三角烧瓶)完全适合。

过紧则妨碍空气流通,操作不便;过松时,空气会毫无障碍地进入试管(或三角烧瓶)中,达不到灭菌的目的。

棉塞过小往往易掉进试管内,因此棉塞质量的优劣对实训的结果有很大的影响。

正确的棉塞头较大,加塞时,应使棉塞长度的1/3留在试管口外,2/3在试管口内(见实训图6-4)。

目前,有条件的实训室已使用坚固的塑料试管帽、金属试管帽、硅胶泡沫塞替代棉塞,制作棉塞要选纤维较长的棉花,一般不选用脱脂棉。

因为它容易吸水变湿,造成污染,而且价格也贵。

棉塞制作方法见图6-5
实图6-4棉塞实图6-5 棉塞的制作方法(三)斜面与平板培养基的制作
斜面与平面培养基是常用的琼脂固体培养基。

将熬制好的琼脂培养基趁热装入试管灭菌
后摆鞋面,凝固后即成斜面培养基。

斜面培养基常用于菌种培养、菌种保藏等工作。

将灭菌
后的琼脂培养基倾注于无菌培养皿中,凝固后即成平板培养基。

平板培养基常用于分离菌种、菌落计数、菌落形态观察及菌种鉴定等。

斜面与平板培养基的制作过程大致为:溶解原料、
融化琼脂、调PH、分装、灭菌和制斜面或平板。

1、溶解原料
为加速原料的溶解,最好用热水。

先将原料依次加入到占配制量一半的水中,待全部
溶解后在加足水量。

如配方中有马铃薯、麸皮、胡罗卜、豆芽等天然原料,需将其熬制约
30min,取出定量滤液,在将所需的其他原料加入滤液中。

2、融化琼脂
琼脂的用量可灵活掌握。

用作保藏菌种的培养基,琼脂用量可提高至 2.5%,以增加
持水性。

冬季的气温低,琼脂用量可适当减少。

琼脂用前可剪成小段,以利于融化。

待溶
液煮沸是再加入,不断搅拌至完全无琼脂块状物时再停止加热。

3、调整PH
用洁净干燥的玻璃棒沾一点培养基滴在试纸上,立即与比色板比较。

一般用10%NaOH。

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