新生BALB/c小鼠大脑皮质神经元细胞培养方法的建立

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大鼠皮层神经元细胞原代培养 ppt课件

大鼠皮层神经元细胞原代培养  ppt课件
镊仔细剥离软脑膜和血丝,剥离干净后用PBS 液洗2-3遍。
Hale Waihona Puke ppt课件11实验步骤
5 剪碎:
将大脑皮层转移到另一装有PBS的平皿中,用 手术剪将其剪成小块(1mm3),用PBS液洗 三次,转移至离心管中离心1000 rpm 5min 。
6 消化:
加入0.25%胰蛋白酶,放入37℃培养箱消化 20min,中间翻转振荡一次。使细胞分离。
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9
实验步骤
布局
器械
PBS 剪碎组织块
取脑,分离皮层神经 元
剥离血管及筋膜
PBS
冰盒
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酒精
PBS
断头
清洗血液
10
实验步骤
3 断头取脑: 超净台内,断头取脑,置于盛有PBS的培养皿
内,洗涤3次,弃除表面残余血迹,迅速置于无 菌的生理盐水冰浴上。
4 剥离软脑膜: 剥离大脑皮层至预冷的PBS中,用两把无齿弯
培养基
材料
包被
剥膜
消化
低温操作
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影响因素
材料选择
胎鼠就要胎鼠,新 生鼠就要新生鼠, 不能混淆
★易于操作 ★有一些受体,在 培养的工作中失去 功能,会不能再生
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影响因素
培养基选择
不建议血清培养
1 血清刺激胶质细胞和杂细胞分裂,影响神经元产量; 2 抑制胶质生长,往往要加入阿糖孢苷。严重的毒性会影响许多灵敏实验; 3血清培养的细胞状态很不均一,从正常到凋亡都有,严重影响试验准确,
皮层神经元细胞原代培养
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☞ 主要内容 :
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实验原理

神经元细胞培养

神经元细胞培养

神经元细胞培养1. 孕16 d SD 大鼠经戊巴比妥钠麻醉后,碘酒、75%乙醇消毒腹部皮肤,依次剪开皮肤、肌肉、皮下筋膜,无菌操作下取出胚胎放入预冷的D-Hanks’平衡盐液中。

2. 在解剖显微镜下分离并取出胚胎大脑皮层,除去脑膜,剪碎组织成约1mm3 大小,加入胰酶-EDTA 消化液并放入37℃孵箱内消化20 min,中间摇晃一次。

3. 随后用滴管吸出组织转移到装有预冷的培养液(DMEM+10%FBS)的离心管内终止消化液作用5 min。

4. 用滴管吸出组织转移到装有预冷的DMEM+10%FBS 的离心管内,用火焰抛光的巴斯德滴管吹打数次,静置后取上清吸到另一支离心管内。

重复上述步骤2~3 次。

5. 将所收集的上清经200 目筛网过滤。

6. 过滤后的细胞悬液于800 rpm 离心5 min,弃上清,管内加入新鲜培养液(DMEM+20%FBS)并吹打成单细胞悬液。

7. 细胞计数,调整细胞密度按(700000个)1.5×105/cm2 种入6 孔板内,放入CO2 孵箱中培养。

(1)把细胞悬液用(DMEM+20%FBS)悬浮,种到培养皿上6-12 h 后,全量换成2% B27的neurobasal 培养基,继续培养,3 d 半量换液。

(+0.5mmol/L谷氨酰胺)鉴定1.形态学的观察,在DIC下可以很清楚的看到神经元特有的形态,轴突树突以及胞体非常明显。

2.免疫学鉴定:正如楼上几位所说,NF(神经丝)或者tubulin 或者MAP2等都是目前鉴定神经元的Marker,不论你好似免疫荧光还还是免疫组化,阳性表达即可!3.在进一步你可一做mRNA水平的实验,也就是RT-PCR了。

这就更能支持2的阳性表达了。

4.电生理学的鉴定:测定神经元特有的电生理学也是证据之一啊!从以上几个方面去做,应该能证明是神经元了!错误之处还请赐教!TUJ1。

白藜芦醇抑制神经元MMP_9表达的作用机制研究

白藜芦醇抑制神经元MMP_9表达的作用机制研究
Abstract Ob jective R esveratro l is a k ind of natura l po lypheno.l Expermi ents confirm that resveratrol can exert pro tective effects on neurons by down regulating m atr ix meta llopro te inase 9 (MM P 9). Re lationsh ip be tw een resvera tro l and MM P 9 w ill be investigated in the study. M ethods Re lationsh ip betw een resveratro,l MM P 9 and peroxisom e pro liferators activated receptor ( PPAR ) was studied in oxygen glucose depr ivation ( OGD ) mouse neuron mode.l D ifferent doses of resveratro l and PPAR antagon ist MK886 were added into cultural m ed ium. N euronal damage w as evaluated by lactate dehydrogenase ( LDH ) leakage ratio. W estern b lot and reverse transcription PCR w ere carried out to evaluate the expression of PPAR and MM P 9. Results It show ed that resvera tro l could up regu late the expression o f PPAR and inhib itmRNA and protein expression o fMM P 9. The effect of resvera tro l on both PPAR and MM P 9 could be partially antagonized by M K886. Conc lusion It suggests that resveratro l can inh ibitMM P 9 expression by up regu lating PPAR .

大鼠胚胎脑新皮质神经干细胞的体外分离培养方法研究

大鼠胚胎脑新皮质神经干细胞的体外分离培养方法研究
674
第 39 卷 第 6 期 2010 年 11 月
卫 生 研 究 JOURNAL OF HYGIENE RESEARCH
Vol. 39 N067405 文章编号:1000-
· · 论著
大鼠胚胎脑新皮质神经干细胞的体外分离培养方法研究
王霞
三种途径实现, 主要通 过 悬 浮 生 长 和 贴 壁 培 养 两 种 方 式 进 行 体外扩增 。 悬浮神经球法( neurosphere assay ,NSA ) 是 神 经 干 细胞体外培养中最常用的 方 式
[ 5]
, 该法基于神经干细胞在体
外无血清培养基中可依赖有丝分裂原的维系, 悬浮成球生 长 、 维持自我更新和未分化状态的特点发展建立起来 。 尽管神 经 球法相对简单易行, 不同实验室提出各自的操作程序, 但神 经
关键词 : 神经干细胞 中图分类号 : Q593. 2
Study on in vitro isolation and culture method of neural stem cells from fetal rat neocortex
WANG Xia ,WEI Xiao ,ZHENG Weiwei ,ZHANG Hao ,CHEN Hanyi ,TIAN Dajun , JIANG Songhui ,QU Weidong
于倒置显微镜下观察 不 同 时 点 神 经 干 细
胞和神经球的形态 。 神经干细胞标志蛋白的检测 神经球 nestin 表达的检测 将第二代( P 2 ) 神 经 球 移
37℃ 贴 壁 2h , 4% 多 聚 甲 醛 ( 含 至多聚鸟 氨 酸 包 被 的 盖 玻 片, 50mmol / L 硼 酸 钠, pH9. 5 ) 室 温 固 定 30min , PBS 洗 5min × 3% BSA 封 闭 后, 3 ;0. 3% Triton X100 破 膜, 一 抗 nestin ( 1 ∶ 100 ) 、 二 抗 alexa fluor 488 goat-anti-mouse IgG ( H + L ) ( 1 ∶ DAPI 核复染, 500 ) 37℃ 分别孵育 1h , 封片 。 1. 5. 2. 2 SOX2 蛋白的流式检测 P 2 神经球 经 accutase 消 化 经 固 定 破 膜 后, 分 别 与 SOX2 一 抗 和 同 型 对 制成单细胞 悬 液,

神经元原代培养_

神经元原代培养_

神经元原代培养_
神经元原代培养
从孕17-18天的雌鼠的胎儿分离神经元细胞。

孕雌鼠麻醉然后解剖,胎儿收集到HBSS-1中然后快速断头。

剥离脑膜和白质后,大脑皮质收集入HBSS-2 液中机械磨碎。

皮质碎片移到有0.025%胰酶的H BSS-2液中37°C消化15分钟。

胰酶消化后,细胞用含有10%胎牛血清的HBSS-2液冲洗两次,用神经基础培养液重悬细胞(培养液添加了0.5mM左旋-谷氨酰胺,25μM左旋-谷氨酸,2%B27和0.12mg/ mL庆大霉素)。

以1×105cell/cm2接种到事先用多聚赖氨酸包被的培养皿上,放到37°C,5%CO2湿温培养箱里进行培养。

每3天用吸管换液,一次换0.5mL。

体外培养8天细胞就能用于实验。

选用17-18天的胎鼠能够提高神经元培养的效率,因为与乳鼠相比胚胎组织的细胞连接还很少。

因此,用乳鼠会使神经元的分离更加困难,会造成细胞连接不可逆的损伤,细胞之间的共同的轴突和树突更容易发生损伤。

另外,用出生后1天内的大鼠皮质培养容易有胶质细胞污染,而用胎鼠则可以避免这种情况。

如果用的是乳鼠,一般是在培养36个小时后加入阿糖胞苷,抑制胶质细胞生长。

另外,如果把分化的影响看成是考虑的重要因素,可以用培养4天的、8天的、18天的细胞。

其中一个例子可以是观察毒性物质对小孩和成年的不同效应。

胚鼠大脑皮层神经元培养方法的改进

胚鼠大脑皮层神经元培养方法的改进

胚鼠大脑皮层神经元培养方法的改进
李红;陈晓蓉;赵正梅;思盼盼;张金秋;汤俊峰
【期刊名称】《四川解剖学杂志》
【年(卷),期】2009(017)002
【摘要】目的建立一种简单、高效的胚鼠大脑皮层神经元原代培养的方法 .方法17 d胎鼠大脑皮质,直接机械切碎后经200目滤网研磨过滤,得到细胞悬液进行培养.结果神经元生长良好,相邻细胞的突起交错形成网络,鉴定神经元纯度为(94.7±5.6)%.结论本方法简单可行,可以获得高纯度的胚鼠大脑皮层神经元.【总页数】2页(P8-9)
【作者】李红;陈晓蓉;赵正梅;思盼盼;张金秋;汤俊峰
【作者单位】安徽医科大学组织胚胎学教研室,合肥,230032;安徽医科大学组织胚胎学教研室,合肥,230032;安徽医科大学组织胚胎学教研室,合肥,230032;安徽医科大学组织胚胎学教研室,合肥,230032;安徽医科大学组织胚胎学教研室,合
肥,230032;安徽医科大学组织胚胎学教研室,合肥,230032
【正文语种】中文
【中图分类】R813.11
【相关文献】
1.鼠胚脑皮质及海马神经元原代培养方法的改进 [J], 孙海梅;季凤清;赵天德;岳旭;郭崇洁
2.苯丙氨酸对胚鼠大脑皮层神经元Rho GTPases基因表达的影响 [J], 张拥军;张
惠文;顾学范
3.鼠胚脊髓运动神经元原代培养方法的改进 [J], 鄂玲玲;周长满;徐忠涛;王常利;文天秀;苏剑斌
4.胚鼠大脑皮质神经元的最佳分离和培养方法的探讨 [J], 李胜富;毛萌;周晖;李幼平;孙明菡
5.新生大鼠大脑皮层和海马神经元体外培养方法及改进 [J], 付丽娟;苗巍;常彦忠;张宏丽
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新生大鼠大脑皮层少突胶质前体细胞的培养分离及鉴定

新生大鼠大脑皮层少突胶质前体细胞的培养分离及鉴定

新生大鼠大脑皮层少突胶质前体细胞的培养分离及鉴定【摘要】[目的]探讨新生(spraguedaley,SD)大鼠大脑皮层少突胶质前体细胞在体外条件下的生长情况及培养分离,以获得纯化的少突胶质前体细胞,为今后细胞移植治疗研究提供良好的种子细胞。

[方法]出生48hSD大鼠取大脑皮层进行混合胶质细胞的体外培养,原代培养第9~10d时采用水平振荡、差速贴壁的方法分离、纯化少突胶质前体细胞,继续用定向培养基传代培养。

相差显微镜观察少突胶质前体细胞在体外条件下的生长情况,免疫细胞化学技术进行细胞鉴定。

[结果]混合胶质细胞原代培养第9~10d时出现明显的细胞分层,少突胶质前体细胞散布于单层的星形胶质细胞表面,胞体呈椭圆形或圆形,具有典型的双极突起,少数呈三极突起。

经振荡分离后少突胶质前体细胞纯度达95%,少突胶质细胞特异性标记lig2反应阳性,胶质纤维酸性蛋白抗体反应阴性。

[结论]新生SD大鼠大脑皮层原代培养中少突胶质前体细胞能够维持在未成熟阶段,细胞分层后通过振荡法及差速贴壁法可以获得较高纯度的少突胶质前体细胞。

【关键词】少突胶质前体细胞;细胞培养;脱髓鞘化;脊髓损伤Keyrds:ligdendrytepreursrell;ellulture;deyelinatin;spinalrdinjury脊髓损伤是一种常见的中枢神经系统损伤,可以造成患者严重的神经功能损害。

目前,临床上尚无有效办法治疗脊髓损伤。

随着研究深入,人们对于脊髓损伤的病理过程有了更进一步的认识。

脊髓损伤不仅导致神经元丢失,同时还造成大量少突胶质细胞的死亡,从而引起残留神经轴突的脱髓鞘改变,进一步影响了脊髓神经功能的恢复。

近来不少研究显示通过髓鞘形成细胞移植治疗脊髓损伤,有利于脱髓鞘轴突的再髓鞘化,促进损伤脊髓的神经功能恢复[1,2]。

研究表明,少突胶质细胞不仅形成髓鞘包绕轴突,同时它还起着为其他神经细胞提供营养因子、促进轴突生长等作用[3]。

此外,少突胶质前体细胞是处于分化早期阶段的未成熟细胞,既能够定向分化为成熟少突胶质细胞,同时又具有一定的增殖与迁移能力[4],更加适合于细胞移植治疗。

新生大鼠视皮层神经元的原代培养及鉴定

新生大鼠视皮层神经元的原代培养及鉴定

新生大鼠视皮层神经元的原代培养及鉴定宋海岩;邓晓慧;赵超;连辉【摘要】目的探讨新生大鼠视皮层神经元的原代培养方法,以获取数量多、纯度高的视皮层神经元.方法取新生1d内的SD大鼠视皮层,通过胰酶消化法获取单细胞悬液,倒置相差显微镜下计数后种植于6孔培养板内培养.培养24 h后用终浓度10μmol·L-1阿糖胞苷处理,抑制非神经元的生长,作用24h后半量换液,以后每隔1d半量换液1次.每天倒置相差显微镜下观察细胞的生长状况和形态变化,Nissl染色法进行视皮层神经元鉴定,免疫荧光显示神经元特异性烯醇化酶鉴定培养视皮层神经元的纯度.结果接种4h后,大部分细胞已贴壁,细胞立体感较强;接种后24h,大部分细胞长出短的突起,细胞形态发生变化,胞体呈多边形或三角形,细胞周围有或多或少的光晕;培养4d后,细胞突起伸长、增粗;培养6~8d后,细胞状态较佳,细胞胞体饱满,光晕明显,突起进一步伸长、增粗,且分支多,突起交织成网状,非神经元细胞减少,为实验的最佳时间;培养14 d后,细胞开始退化.培养6d行焦油紫染后,倒置相差显微镜下观察,可见细胞内的尼氏体呈蓝紫色的颗粒或斑块.免疫荧光染色结果显示,原代培养的细胞中,大部分细胞为绿染细胞,形态良好,核大而清晰,神经元所占比例高.结论本研究获得视皮层神经元的方法简单经济,通过形态学观察、Nissl 染色及免疫荧光染色可以对体外培养的视皮层神经元细胞进行准确鉴定.【期刊名称】《眼科新进展》【年(卷),期】2013(033)008【总页数】3页(P733-735)【关键词】视皮层;神经元;原代培养;大鼠【作者】宋海岩;邓晓慧;赵超;连辉【作者单位】453003 河南省新乡市,新乡医学院基础医学院解剖学教研室;453003 河南省新乡市,新乡医学院基础医学院解剖学教研室;453000 河南省新乡市,解放军371医院;453003 河南省新乡市,新乡医学院基础医学院解剖学教研室【正文语种】中文视皮层是视觉系统的高级中枢,培养观察视皮层神经元对弱视等与视皮层相关性眼科疾病的基础研究具有重要的意义。

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生 物 技 术 通 讯 LETrERS IN B10TECHN0L0GY Vo1.22 No.1 Jan.,2011 

doi:10.3969 ̄.issn.1009—0002.2011.01.020 技术方法 

新生BALB/c小鼠大脑皮质神经元细胞培养方法的建立 辛岗,苏芸,王革非,许燕璇,李康生 汕头大学医学院微生物与免疫学教研室,广东省免疫病理重点实验室,广东汕头515041 

[摘要】 目的:经改良和优化,建立高纯度BALB/c小鼠大脑皮质神经元培养的方法。方法:采用L一多聚赖氨酸包被 细胞培养板,取新生BALB/c小鼠(出生24 h内)大脑皮质组织,经O.25%胰酶消化后吹打成单个细胞,按lx106/孔 接种于35 mm的六孔板中,用神经元细胞培养种植液培养6 h后换神经元细胞培养饲养液,培养40 h时加入阿糖 胞苷抑制神经胶质细胞的生长,随时观察神经元培养情况。结果:培养5 d的神经元细胞形态最为典型;经免疫荧光 方法鉴定,神经元细胞纯度为93%。结论:经方法改良与优化,获得了高纯度的原代培养小鼠大脑皮质神经元细胞。 [关键词】 大脑皮质;神经元细胞;培养;BALB/c小鼠 【中图分类号]Q813.1 [文献标识码】A [文章编号】1009—0002(2011)01—0085-04 

Cultivation of Cerebral Cortex Neuronal Cells of Newborn BALB/c Mice 

X/N Gang,SU Yun,WANG Ge—Fei,XU Yan-Xuan,LI Kang-Sheng Department of Microbiology and Immunology,Shantou University Medical College,Key Immunopathology laboratory of Guangdong Province,Shantou 515041,China 

[Abstract] Objective:To establish a method for cultivation of cerebral cortex neuronal cells of newborn BALB/c mice.Methods:The cortexes from newborn(1ess than 24 h1 BALB/c mice were obtained and digested by 0.25% trypsin.and then dissociated into single cell suspension.About l ̄10 cells were seeded onto each 35 mm dish which was coated by poly—L—lysine overnight previously.After cultivated in seeding medium for 6 h.the neuron cells were cultured in neurobasal medium containing B27, FBS, and glutamine. Cytosine arabinofuranoside was added to the cultures at a final concentration of 5 mg/mL on 40 h. Results:The neuron cells showed a typical morphorlogy at day 5.As indicated by indirect immunofluorescence using antibodies against neuron specific BⅢ tubulin.the purity of the neuronal cultures was 93%.Conlusion:The optimized method to culture neuron from BALB/c mice was established. [Key words]cerebral cortex;neuronal cells;culture;BALB/c mice 

中枢神经系统包含2类细胞,即神经元和神经 胶质细胞,这些细胞构成高度复杂的神经元和神经 胶质细胞网络。神经元细胞体外培养是研究神经系 统疾病、神经元与神经胶质细胞关系的重要技术。 神经元细胞培养一般采用孕鼠,多数采用大鼠【l】。小 鼠虽然是研究神经系统疾病的重要模型,但用新生 小鼠进行神经元培养的方法文献却较少,仅见Bon— garzone等采用新生SJ/L/L小鼠[21、Ahlemeyer等采 用新生CD57B1/6J小鼠皮层[31进行了神经元培养。 小鼠神经细胞与大鼠神经细胞具有很大的不同,在 神经元培养上需要注意胰酶消化的浓度和时间、加 入阿糖胞苷抑制神经胶质细胞的时机等。我们经过 改良和优化,建立了一种高密度、高纯度的BALB/c 小鼠大脑皮质神经元细胞的培养方法。 

1材料和方法 1.1材料 出生24 h内的BALB/c小鼠,由汕头大学医学 院实验动物中心提供。 神经元培养中所需L一多聚赖氨酸(poly—L—Iy— sine hydrobromide,相对分子质量≤150 000)、阿糖 胞苷购自Sigma公司;Neurobasal培养基、DMEM/ F12培养基、L一谷氨酰胺、B27、抗生素一抗真菌素、 

[收稿日期] [基金项目] 

[作者简介】 [通信作者】 2010—06—1 l 国家自然科学基金(30771988);广东省医学科研基金 (A2010392);汕头市科技计划项目(汕府科[2009170号) 辛岗(1973一),女,硕士,副教授 李康生,(E—mail)ksli@stu.edu.an 86 1Tr热I I术通I v・.22 N.1 J.20110TECHN0 Y ol No Jan 2UI I ETrERS IN BI L0G V ・ l ・, 0.25%胰酶(含0.02%EDTA)购自Gibco公司;胎牛 血清(FBS)购自杭州四季青公司。 神经元鉴定中所需试剂兔抗神经元特异B 11I微 管蛋白(ab18207)购自Abcam公司;荧光素标记的 山羊抗兔IgG购自Invitrogen公司。 1.2 小鼠大脑皮质神经元细胞原代培养 细胞培养板(Costar)在使用前用0.01%的L一多 聚赖氨酸包被,室温过夜后用双蒸水洗3次,置超 净台内风干。 取新生BALB/c小鼠,剥离硬脑膜,摘下大脑皮 质(冰上操作),置于装有预冷磷酸盐缓冲液(PBS) 的离心管中,取完全部大脑皮质后吸去上清,用冷 PBS冲洗2次,弃上清,在预冷的含PBS的培养皿 中剪碎组织;加入等量预热至室温的0.25%胰酶, 37℃消化5 rain,用含2O%FBS的DMEM/F12终止 消化,吹打成匀浆;300 r/min离心5 min,弃上清; 加入神经元细胞种植液(DMEM/F12,1%抗生素一抗 真菌素,1%谷氨酰胺,10%FBS),过200目筛网,进 行细胞计数;接种6孑L板(35 mm),密度1×106/孔; 用种植液培养细胞6 h后,以37℃的DMEM/Fl2 洗细胞,换饲养液(Neurobasal,1O%FBS,2%B27, l%抗生素一抗真菌素,1%谷氨酰胺)培养,观察细胞 生长情况,40 h时换用阿糖胞苷培养液(5 ̄g/mL 于饲养液中,换半液)培养,以抑制神经胶质细胞及 杂细胞等的生长,即可获得纯培养的原代神经元细 胞。 以上是优化后的培养方法。同时,采用以下实 验过程进行了比较:培养前用0.O1%的L一多聚赖氨 酸包被或不包被细胞培养板,观察神经元生长情 况;胰酶消化过程采用0.25%胰酶于37℃消化5 min或用0.125%胰酶于37℃消化10 min后,比较 单个细胞的数量是否有差别;分别按5xlO /?L、1× l06/孔、5 ̄106/孔接种细胞于细胞培养板中,选取最 合适的细胞密度,再在不同时间点(40、64、120 h) 加入5或10 mL阿糖胞苷,比较神经元细胞的 生长纯度。 1.3 免疫荧光技术鉴定神经元细胞 神经元特异的BHI微管蛋白在胚胎和出生后的 中枢和外周神经系统中表达丰富,分布在神经元整 个细胞中,包括细胞浆、轴突和树突,是神经元的特 异性标志之一。由于其表达量大,且分布于整个细 胞,因此免疫染色效果较好。神经元细胞培养5 d 后,用预冷的PBS洗3次,用预冷的4%多聚甲醛固 定15 min,PBS洗3次;再用0.1%的Tritonl00穿透 细胞10 rain,PBS洗3次;加抗神经元特异 111微 管蛋白抗体,至终浓度为1 mg/mL,37oC孵育1 h, PBS洗3次;加荧光素标记的山羊抗兔IgG,l:1000 稀释,37clC避光孵育1 h,PBS洗3次;用50%甘油 PBS封片后于荧光显微镜下观察,荧光阳性细胞即 为神经元细胞。随机选取视野,比较相差显微镜和 荧光显微镜下的结果,相差显微镜下计数500个细 胞,计算荧光阳性细胞与相差显微镜下观察到的细 胞数量的比例,即为神经元细胞的纯度。 

2结果 2.1 大脑皮质神经元细胞纯培养 采用改良优化后的方法,小鼠神经元细胞接种 于细胞培养板中后,可见大而圆的神经元细胞,6 h 可观察到明显的细胞突起,随后可见粗大的轴突形 成;40 h左右神经元细胞轴突形成的网状结构逐渐 密集,此时可见部分神经胶质细胞开始明显增多, 应立即加入阿糖胞苷以抑制神经胶质细胞的分裂 增殖,此后神经胶质细胞生长受到抑制。培养第5 d 时神经元细胞形态最为典型(图1),其轴突和树突 交织成稳定的网状结构。典型成熟的神经元具有大 而清晰的核,主要特征为具有圆锥形长突起,轴突 的直径全长均一,而树突的直径从胞体向末梢逐渐 变细。 在培养前,采用0.01%的L一多聚赖氨酸包被细 

图1 小鼠神经元原代培养不同时间形态变化图(400x) A、B、C、D:培养时间分别为2O、4O、6O和l20 h

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