B细胞非霍奇金淋巴瘤患者IgH基因重排检测分析及意义_吴书一
弥漫大b细胞淋巴瘤诊断标准

弥漫大b细胞淋巴瘤诊断标准弥漫大B细胞淋巴瘤(diffuse large B-cell lymphoma,DLBCL)是一种常见的非霍奇金淋巴瘤。
该病的诊断标准主要包括病理学特征、免疫表型、分子遗传学和临床表现。
本文将对弥漫大B细胞淋巴瘤的诊断标准进行详细介绍。
1. 病理学特征弥漫大B细胞淋巴瘤病理学上主要表现为淋巴结或外部淋巴组织中存在大量异常的B细胞。
该病的病理学特征主要有以下几个方面:(1)弥漫性生长模式:肿瘤细胞在淋巴结或其他组织中弥漫分布,没有明显的结节形成。
(2)大细胞形态特征:肿瘤细胞体积较大,核染色质呈绒毛状,核仁明显,胞浆丰富。
(3)核分裂象:肿瘤细胞中常见核分裂象,反映其高度增殖活性。
2. 免疫表型弥漫大B细胞淋巴瘤的免疫表型在诊断中起到重要作用,常见免疫标记物有以下几个:(1)CD20:阳性表达率高达90%以上,是弥漫大B细胞淋巴瘤的特异性标记。
(2)CD79a:阳性表达率高,也是本病的特异性标记。
(3)CD3:常见阴性,可以与外周T细胞淋巴瘤鉴别。
(4)CD10和BCL6:阳性表达率较高,提示较好的预后。
(5)Ki-67:高表达与肿瘤的生长活跃程度有关。
3. 分子遗传学分子遗传学变异在引起弥漫大B细胞淋巴瘤发生发展过程中起到重要作用。
其中,Bcl-6、c-Myc和Bcl-2等基因异常表达与弥漫大B细胞淋巴瘤的发生发展密切相关。
克隆性IgH基因重排也是该病的常见遗传学异常。
4. 临床表现弥漫大B细胞淋巴瘤的临床表现多样,可包括以下症状和体征:(1)肿块或肿大淋巴结:常见的首发表现是局部淋巴结肿大、无痛。
(2)全身症状:如发热、盗汗、消瘦等,提示疾病进展和系统性受累。
(3)其他表现:肝脾肿大、黄疸、骨髓受累等。
5. 诊断标准根据以上病理学特征、免疫表型和临床表现,弥漫大B细胞淋巴瘤的诊断标准为:(1)病理学特征:存在弥漫性生长模式、大细胞形态和核分裂象。
(2)免疫表型:CD20和CD79a阳性,CD3阴性。
B细胞非霍奇金淋巴瘤中CD40和NF-κB表达及意义

B细胞非霍奇金淋巴瘤中CD40和NF-κB表达及意义胡荣;朱珂;李佳;苗苗;杨莹;刘卓刚【摘要】目的探讨B细胞非霍奇金淋巴瘤(non-hodgkinlymphoma,NHL)中CD40、NF-κB的表达及意义.方法采用免疫组化SP法检测69例B细胞NHL及22例淋巴结反应性增生组织中CD40、NF-κB的表达.B细胞NHL患者应用CHOP(环磷酰胺、阿霉素、长春新碱、地塞米松)方案治疗6~8个周期.结果CD40和NF-κB在B细胞NHL组织中阳性率分别为72.46%(50/69)(P<0.05)和59.42%(41/69)(P<0.001).CD40在Ⅰ+Ⅱ和Ⅲ+Ⅳ期B细胞NHL中的阳性率分别为87.88%(30/33)和58.33%(20/36)(P<0.05);NF-κB在Ⅰ+Ⅱ和Ⅲ+Ⅳ期B细胞NHL中的阳性率分别为36.36%(12/33)和80.56%(29/36)(P<0.05).B细胞NHL 组织中CD40与NF-κB的表达呈负相关(r=-0.443,P<0.01).结论 CD40阳性提示B细胞NHL侵袭性低,NF-κB阳性则提示B细胞NHL侵袭性高;CD40是一种提示预后良好的因子,而CD40-NF-κB信号途径对B细胞NHL预后提示的作用尚需进一步研究.%Purpose To study the relationship between the expression of CD40 and NF-kB in the tissues of B cell non-hodgkin lym-phoma ( NHL ) and to explore its clinical implications. Methods The expression of CD40 and NF-kB in 69 cases of B cell NHL tissues and 20 cases of reactive hyperplasia of lymph node tissues were determined by immunohistochemical method. All the patients received CHOP regimen ( cyclophosphamide, epirubicin, vincristine, dexamethasone ) for 6 ~ 8 courses. Results CD40 positive over-expression rate in B cell NHL samples was 72. 46% ( 50/69 ) ( P <0. 05 ). NF-kB positive overexpression rate in B cell NHL samples was 59. 42% ( 41/69 ) ( P <0. 001 ). CD40 positiveoverexpression rate in B cell NHL samples in stages I and I was 87. 88% ( 30/ 33 ) and that in stages Ⅲ and Ⅳ was 58. 33% ( 20/36 ), respectively. NF-kB positive overexpression rate in B cell NHL samples in stages Ⅰ and Ⅱ was 36. 36% ( 12/33 ) and that in stages Ⅲ and Ⅳ was 80. 56% ( 29/36 ) ( P <0. 05 ), respectively. CD40 and NF-κB expression in B cell NHL was negatively relevant ( r = -0. 443 , P <0. 01 ). Conclusions CD40 expression implicates the low aggressiveness of B cell NHL and positive NF-kB implicates high aggressiveness in the B cell NHL. Patients with positive CD40 expression implicates good prognosis. The role of CD40-NF-kB signaling in B cell NHL needs further investigation.【期刊名称】《临床与实验病理学杂志》【年(卷),期】2013(029)002【总页数】3页(P131-133)【关键词】非霍奇金淋巴瘤;CD40;NF-κB;免疫组织化学【作者】胡荣;朱珂;李佳;苗苗;杨莹;刘卓刚【作者单位】中国医科大学附属盛京医院血液科,沈阳,110004;中国医科大学附属盛京医院血液科,沈阳,110004;中国医科大学附属盛京医院血液科,沈阳,110004;中国医科大学附属盛京医院血液科,沈阳,110004;中国医科大学附属盛京医院血液科,沈阳,110004;中国医科大学附属盛京医院血液科,沈阳,110004【正文语种】中文【中图分类】R733.4细胞表面分子CD40是I型跨膜蛋白,属于肿瘤坏死因子(tumor necrosis factor receptor,TNFR)家族成员,能够调节体液及细胞免疫,传递调节细胞增殖、分化、生长抑制及细胞死亡的信号。
黏膜相关淋巴组织淋巴瘤中Ig蛋白重链表达与IgH基因重排的研究

黏膜相关淋巴组织淋巴瘤中Ig蛋白重链表达与IgH基因重排的研究林海月;王红霞;胡东东;陈昊【摘要】目的探索黏膜相关淋巴组织淋巴瘤(MALToma)中Ig蛋白重链表达及IgH基因重排对其与反应性淋巴组织增生(RLH)鉴别诊断的价值,以期找到有助于两者鉴别诊断的新方法.方法收集30例MAL-Toma、10例滤泡性淋巴瘤(FL)、10例浆细胞瘤(PC)作为试验组,并收集10例RLH作为对照组.应用免疫组织化学和Biomed-2引物系统分别检测两组Ig蛋白重链表达及IgH基因重排情况.结果 Ig 蛋白重链在两组表达模式有3种:单种Ig重链表达(模式1)、全阴性Ig重链缺失(模式2)及多种Ig重链表达(模式3).3种肿瘤及试验组中模式1/2及IgH基因单克隆重排检出率均高于对照组(P<0.05),且两者联合检测的阳性率显著升高.结论单种Ig重链/全阴性Ig重链缺失表达的检出可以作为B细胞恶性淋巴瘤尤其是MALToma的诊断线索;联合Ig重链及IgH基因重排检测有助于MALToma的鉴别诊断.【期刊名称】《重庆医学》【年(卷),期】2018(047)028【总页数】5页(P3663-3667)【关键词】淋巴瘤,B细胞,边缘区;免疫球蛋白类;基因重排【作者】林海月;王红霞;胡东东;陈昊【作者单位】江苏省连云港市第一人民医院/徐州医科大学附属连云港医院病理科,江苏连云港222002;江苏省连云港市第一人民医院/徐州医科大学附属连云港医院病理科,江苏连云港222002;江苏省连云港市第一人民医院/徐州医科大学附属连云港医院妇产科,江苏连云港222002;江苏省连云港市第一人民医院/徐州医科大学附属连云港医院病理科,江苏连云港222002【正文语种】中文【中图分类】R733近年来黏膜相关淋巴组织淋巴瘤(mucosa-associated lymphoid tissue lymphoma,MALToma)发病率有所提高,居非霍奇金淋巴瘤(non-hodgkin′s lymphoma,NHL)的第二位[1-2],因缺乏特征性的免疫标记,仍属于排他性诊断。
聊聊基因重排检测那些事

聊聊基因重排检测那些事随着科学技术⼿段的进步,以及⼈们对疾病的认识程度加深,⼀些新的检测⼿段在疾病诊断和治疗中发挥越来越重要的作⽤,基因重排检测作为分⼦领域的⼀个新⽣军,被⼴泛应⽤于临床。
本⽂就基因重排的⼀些基本知识、在淋巴与造⾎疾病诊断和治疗中的临床应⽤做简单介绍。
何谓基因重排机体内,每个淋巴细胞的重排基因都是独特的,因此T淋巴细胞和B淋巴细胞才能辨别出各种不同的抗原。
如果机体在某些不良因素的刺激下,失去对某个基因重排细胞的控制,则该细胞就会出现不可控制性、单克隆性的增⽣,最终导致淋巴瘤的发⽣。
理解淋巴细胞的基因重排,⾸先要了解其发育过程。
众所周知,淋巴细胞分T、B、NK三类细胞:NK细胞没有基因重排过程;对B细胞⽽⾔,发育过程相对简单,不做过多赘述;T细胞的分化发育过程相对较复杂:由⾻髓中的⼲细胞分化发育⽽来,经历前胸腺、胸腺⽪质、胸腺髓质,最终到达外周淋巴组织和⾎液。
正常淋巴细胞发育过程呈现多样的重排形式,即多克隆性;⽽在肿瘤状态下,呈现单克隆的重排形式[1]。
基因重排检测⽅法⽬前,临床上对于重排检测的应⽤主要在:疾病的辅助诊断与鉴别诊断、治疗后微⼩残留病(MRD)的监测两⽅⾯,市场上有相对应的产品试剂盒。
应⽤于疾病辅助诊断与鉴别诊断,主要应⽤⽑细管电泳⽅法[2];⽽治疗后MRD的监测主要采⽤⼆代测序(NGS)的⽅法。
回顾基因重排检测的发展过程:“⾦标准”是Southernblot 法,但该⽅法需要提取⼤量⾼质量的DNA分⼦,并且⽯蜡包埋标本中DNA分⼦降解成⼩⽚段,限制该⽅法的⼴泛应⽤[3];⽽后续的PCR技术衍⽣的⽅法具有⾼效、快速等优点,同时对样本DNA的质量和数量要求相对较低(也可以采⽤10%中性福尔马林固定的穿刺⽯蜡包埋标本),所以临床应⽤⾮常⼴泛。
总之,⽆论采⽤哪⼀种分析⽅法,基因重排结果判断必需结合形态学特征、免疫表型特点和临床特征,这样才能更准确的对淋巴瘤进⾏诊断和分类。
基因重排在临床上的应⽤随着淋巴与造⾎疾病WHO分类标准的不断更新,⾎液病的综合诊断越来越重要。
基因重排检测技术的建立及其在淋巴瘤诊断中的应用

基因重排检测技术的建立及其在淋巴瘤诊断中的应用【关键词】淋巴瘤Detection and clinical significance of gene rearrangements in diagnosis of lymphomas【Abstract】 AIM: To establish a way to detect the gene rearrangements of IgH and TCR and to assess the application of the detection technique in the diagnosis of malignant lymphoma. METHODS: Fiftythree cases of malignant lymphoma and 20 cases of reactive lymphoid hyperplasia were chosen for making tissue sections. Genomic DNA was extracted, and amplified via PCR. The products were resolved on denaturing polyacrylamide gels and visualized through silver staining. RESULTS: Gene rearrangements of IgH and TCR were negative in 20 cases of reactive lymphoid hyperplasia. In all of 18 cases of T cellnonHodgkins lymphoma (TNHL), gene rearrangement of TCR γ was found in 12 cases and that of TCR β was found in 3 cases, and IgH gene rearrangement was not found. IgH gene rearrangement was found in 28 cases out of 32 cases of B cellNHL (BNHL),in 2 cases of which gene rearrangements of TCR γ and IgH were both found. There was IgH gene rearrangement in 3 cases of suspected lymphomas. There was a remarkable difference between NHL group and benign group in gene rearrangment (P<0.05). CONCLUSION: The detection of gene rearrangements of IgH and TCR by PCR can be a kind of subsidiary means to diagnose the lymphoproliferative disease. Particularly, the clonality showed in the formalinfixed and paraffinembedded samples may be useful in the retrospective researches.【Keywords】 lymphoma; gene rearrangement; polymerase chain reaction; neoplasm【摘要】目的:建立基于克隆性分析技术的B和T淋巴细胞产生的抗原受体分子基因重排检测技术,探讨B淋巴细胞免疫球蛋白及T淋巴细胞受体基因重排在恶性淋巴瘤临床诊断中的应用. 方法:从组织蜡块中切取组织片5~10张,提取基因组DNA,PCR扩增,聚丙烯酰胺凝胶电泳后银染显示基因重排结果. 结果:20例良性淋巴组织反应性增生病例中,淋巴细胞IgH及TCR基因重排均为阴性;18例T细胞非何杰金氏淋巴瘤中TCRγ基因重排12例,TCRβ基因重排3例,未见有IgH基因重排;32例B细胞性非何杰金氏淋巴瘤标本中有28例IgH基因重排阳性,有2例TCRγ和IgH基因重排均阳性;3例未确诊的疑难病例均为IgH基因重排;IgH及TCR基因重排检出率在淋巴瘤组与良性组之间,差异有显著意义(P<0.05). 结论:应用PCR法检测B淋巴细胞IgH和T淋巴细胞TCR基因重排可作为淋巴细胞来源的良、恶性病变的一种辅助诊断手段,且适用于石蜡标本以进行回顾性研究.【关键词】淋巴瘤;基因重排;聚合酶链反应;肿瘤0引言恶性淋巴瘤(malignant lymphoma)是免疫系统的原发性恶性肿瘤,主要发生于淋巴器官和淋巴组织. 根据肿瘤的组织结构及细胞学特征可分为何杰金氏病(Hodgkins disease, HD)及非何杰金恶性淋巴瘤(nonHodgkins malignant lymphoma, NHL),淋巴瘤的诊断一直是病理诊断中的难点,部分淋巴组织增生性病变单纯通过HE和免疫组化很难明确性质,另外NHL由于种类繁多,分类复杂,给临床病理工作者带来了一定的困难.淋巴细胞从原始的胚系构型到分化成熟,其抗原受体(Ig和TCR)基因通过基因重排而形成有功能的基因. 一个T,B细胞或其克隆性后代,均只含一种独特的分子遗传学标记. 一旦某一克隆的淋巴细胞发生恶性变化,即可呈现特异的基因重排[1]. 因此,对基因重排类型进行检测可用于对淋巴细胞增殖性疾病的诊断. 此研究拟应用这一手段,探讨淋巴组织增生性病变的性质,并对该技术在恶性淋巴瘤中的诊断价值进行探讨.1材料和方法1.1材料53例恶性淋巴瘤标本均来自第四军医大学唐都医院病理科(1995~2005). 其中男性29例(55%),女性24例(45%);年龄12~76岁,平均年龄44.2岁. 所有标本均为福尔马林固定、石蜡包埋组织. 其中B细胞非何杰金淋巴瘤32例,T细胞非何杰金淋巴瘤18例,未能定性的淋巴组织增生性病变3例. 20例良性淋巴组织反应性增生病例作为阴性对照. 所有淋巴瘤病例均在取PCR 模板前经临床病理HE和免疫组化标记(B细胞: CD20,CD79α; T细胞: CD3,CD45RO)证实,以确定为相应病例且所取部位确为病变部位,包含有需检测的部分. 3例未能定性的淋巴组织增生性病变怀疑为BNHL(免疫组化标记CD79α阳性),但诊断仍未明确.1.2方法1.2.1石蜡包埋组织DNA的提取每例标本制备厚度为4 μm的切片6张,贴于载玻片上,常规烤片、二甲苯脱蜡、乙醇冲洗,切片自然干燥. 用无菌双面刀片将组织刮入1.5 mL的离心管中,按以前的方法[2-3]提取基因组DNA.1.2.2引物合成引物序列由上海生工生物工程技术公司合成. 引物序列为: β球蛋白基因内对照PC03:ACACAACTGTGTTCACTAGC, PC04:CAACTTCATCCACGTTCACC;免疫球蛋白基因重排(IgH) FR3A:ACACGGCTGTGTATTACTGT, LJH: TGAGGAGACGGTGACC,VLJH:GTGACCAGGGTACCTTGGCCCCAG;T细胞受体基因重排(TCR β链和γ链)Db1: CAAAGCTGTAACATTGTGGGGAC, Jb2:AGCACTGTGAGCCTGGTGCC,TVG: AGGGTTGTGTTGGAATCAGG, TJX: CGTCGACAACAAGTGTTGTTCCAC,Vγ11: TCTGGAGTCTATTACTGTGC,Vγ101: CTCACACTCTCACTTC,Jγ12:CAAGTGTTG TTCCACTGCC, Jp12: GTTACTATGAGCTAGTCC.1.2.3PCR扩增及循环条件PCR扩增在PT200型热循环仪(MJ Research)上进行. 反应体系为25 μL,含10 mmol/L dNTP(Gibco BRL)2 μL,10×缓冲液2.5 μL,50 mmol/L MgCl2 0.75 μL,Taq DNA聚合酶(Gibco BRL) 1 U,20 pmol/L引物1 μL,DNA样品1~5 μL. IgH基因采用半巢氏PCR扩增: 第一轮引物为FR3A和LJH,95℃预变性3 min,然后94℃变性40 s,62℃退火50 s,72℃延伸40 s,共30个循环; 最后72℃延伸10 min. 扩增产物经1∶100稀释后取1 μL进行第二轮扩增,引物为FR3A和VLJH,95℃预变性3 min,然后94℃变性40 s,60℃退火50 s,72℃延伸40 s,共30个循环; 最后72℃延伸10 min. FR 3A与VLJH扩增产物为100~120 bp.TCRβ和TCRγ采用40个循环,其中TCRγ引物为Vγ11,Vγ101和Jγ12或Vγ11,Vγ101和Jp12的混合物. 95℃预变性3 min,然后94℃变性40 s,56℃退火50 s,72℃延伸40 s;最后72℃延伸10 min. TCRβ扩增产物为65~85 bp. TCRγ各组扩增产物在70~200 bp不等.β球蛋白基因引物作为内对照进行扩赠,共40个循环. 95℃预变性3 min,然后94℃变性40 s,60℃退火50 s,72℃延伸40 s;最后72℃延伸10 min. 产物长度为110 bp.1.2.4电泳及结果观察琼脂糖凝胶(20 g/L)电泳评价扩增效果后,将3 μL产物和等体积的上样缓冲液[4](990 mL/L甲酰胺,1 g/L溴酚蓝,1 g/L二甲苯青)混匀后加到厚度为0.8 mm的聚丙烯酰胺凝胶(100 g/L,含尿素8mol/L),应用miniVE系统(AmershamPharmacia Biotech)泳动8 h(80 V).取出后按以前的方法[2]银染,分别用UVP凝胶分析系统(UVP, Cambridge,UK)和光学照相记录数据,根据IgH及TCR相应阳性位置判断结果.1.2.5结果判定阳性结果判定标准:①PCR扩增电泳条带清晰,宽度不大于1 mm,边缘锐利;②片段大小与预计范围相符,与期望值相差不超过5 bp;③若出现期望值大小之外的其他条带或期望值内出现两条或以上可接受的条带,应判定为重排阴性.统计学处理:采用SPSS 10.0统计分析软件对组间率的差别进行χ2检验,以P<0.05为有统计学意义.2结果2.1组织学观察和免疫组织化学结果32例B细胞非何杰金淋巴瘤免疫组化证实CD20和(或)CD79α阳性, CD3和CD45RO阴性(图1); 18例T细胞非何杰金淋巴瘤免疫组化证实CD3和(或)CD45RO阳性, CD20和CD79α阴性(图2),支持原来的诊断和分型. 3例未能定性的淋巴组织增生性病变免疫组化标记CD79α阳性, CD3和CD45RO阴性,怀疑为BNHL. 20例良性淋巴组织反应性增生病例CD20,CD79α,CD3,CD45RO均有不同程度的阳性表达.A: CD79а; B: CD20.图1BNHL组织中CD79а和CD20阳性表达(略)A: CD45RO; B: CD3.图2TNHL组织中CD45RO和CD3阳性表达(略)2.2基因重排检测结果2.2.1石蜡组织标本DNA检测PC03,PC04引物对良性增生的淋巴组织以及淋巴瘤组织DNA进行扩增,均见110 bp大小的β球蛋白特异条带(图3).右侧泳道为100 bp DNA标志物的位置. 1:实验组TNHL. 黄色箭头为110 bp涌动位置;2:实验组BNHL;3:阳性对照TNHL(已知TCRγ重排阳性);4:阳性对照BNHL(已知IgH重排阳性);5:反应性增生淋巴组织作为阴性对照.图3PC03/PC04引物PCR扩增结果电泳图(略)2.2.2良性淋巴组织反应性增生病例结果20例良性淋巴组织反应性增生病变组织B细胞和T细胞抗原受体重排均为阴性(图4).2.2.3阳性对照T,B淋巴瘤检测结果B细胞淋巴瘤阳性对照标本组织B细胞Ig重排阳性(图5). T细胞淋巴瘤阳性对照标本组织T细胞TCRγ1重排阳性(图6).右侧泳道为100 bp DNA标志物的位置. 1:IgH FR3A/LJH, FR3A/VLJH引物扩增产物;2:TCRβDb1/Jb2引物扩增产物;3:TCRγ1 TVG/TJX引物扩增产物;4:TCRγ2 Vγ11/Vγ101/Jγ12引物扩增产物; 5:TCRγ3Vγ11/Vγ101/Jp12引物扩增产物. 黄色箭头为110 bp涌动位置.图4良性淋巴组织反应性增生病例PCR扩增结果电泳图(略)左侧泳道为100 bp DNA标志物的位置. 1:内对照PC03/PC04引物扩增产物;2:IgH FR3A/LJH,FR3A/VLJH引物扩增产物;3:TCRβDb1/Jb2引物扩增产物; 4:TCRγ1 TVG/TJX引物扩增产物; 5:TCRγ2 Vγ11/Vγ101/Jγ12引物扩增产物;6:TCRγ3 Vγ11/Vγ101/Jp12引物扩增产物;7:阴性对照FR3A/LJH,FR3A/VLJH引物扩增产物. 黄色箭头为110 bp涌动位置.图5阳性对照BNHL PCR扩增结果电泳图(略)2.2.4淋巴瘤组织检测结果18例T细胞淋巴瘤中TCRγ基因重排为12例,TCRβ基因重排为3例, TCR基因重排阳性率83.3%,与良性组(TCR基因重排均阴性)相比,差异有显著意义(χ2=15.10, P<0.05);32例B细胞性非何杰金氏淋巴瘤标本中有28例IgH基因重排阳性,其中2例TCRγ基因重排也阳性,基因重排阳性率87.5%,与良性组(IgH基因重排均阴性)相比,差异有显著意义(χ2=25.30, P<0.05).中间泳道为100 bp DNA标志物的位置. 1:TCRβDb1/Jb2引物扩增产物; 2:TCRγ3 Vγ11/Vγ101/Jp12引物扩增产物;3:TCRγ2Vγ11/Vγ101/Jγ12引物扩增产物;4:TCRγ1 TVG/TJX与内对照PC03/PC04引物扩增产物;5:阴性对照TCRγ1 TVG/TJX与内对照PC03/PC04引物扩增产物;6:阴性对照TCRγ2 Vγ11/Vγ101/Jγ12引物扩增产物; 7:阴性对照TCRγ3Vγ11/Vγ101/Jp12引物扩增产物;8:IgH FR3A/LJH,FR3A/VLJH引物扩增产物. 黄色箭头为110 bp涌动位置,红色箭头为190 bp涌动位置,红色箭头为80 bp涌动位置.图6阳性对照TNHL PCR扩增结果电泳图(略)2.2.5未确诊病例检测结果3例未确诊的疑难病例均为IgH基因重排,经FR3A/LJH,FR3A/VLJH引物采用半巢氏PCR扩增后出现95 bp大小IgH阳性条带.3讨论恶性淋巴瘤(malignant lymphoma)是免疫系统的原发性恶性肿瘤,主要发生于淋巴器官和淋巴组织. 淋巴瘤的诊断一直是病理诊断中的难点,部分淋巴组织增生性病变单纯通过HE染色和免疫组化方法很难明确性质,另外NHL种类繁多,分类复杂,给临床病理工作者带来了一定的困难[5].干细胞在向淋巴细胞分化过程中, Ig重链基因(IgH)和T细胞受体(TCR)基因的可变区(V)和结合区(J)基因会发生重排[6]. 基因重排过程是一个正常的过程,正常淋巴细胞在发育中是多克隆性质,但淋巴造血系统肿瘤所具有的是单克隆性重排,也就是全部肿瘤细胞具有一个相同的免疫球蛋白或TCR 基因重排,即表现为重排基因为单一模式,这对研究淋巴细胞恶变的机制和解决临床的诊断问题都十分重要[6]. 检测单克隆性免疫球蛋白和T细胞受体基因有助于鉴别淋巴系统的肿瘤性和反应性增生,并确定细胞的来源.本研究中18例T细胞淋巴瘤中TCRγ基因重排为12例,TCRβ基因重排为3例, TCR基因重排阳性率83.3%,与Diss等[7]报道的T 细胞淋巴瘤78.2%的检出率相近. 而良性淋巴组织未见克隆性条带, TCR基因重排检出率在TNHL及良性淋巴结反应性增生之间相比,差异有显著意义(P<0.05). 说明TCR基因引物对T细胞性NHL的克隆性确定有重要价值. 32例B细胞性非何杰金氏淋巴瘤标本中有28例IgH基因重排阳性,基因重排阳性率87.5%,与Kros等[8]报道的B细胞淋巴瘤77%的检出率以及国内王萍等[9]报道的B细胞淋巴瘤72 %的检出率相近. 而TNHL及反应性增生均未见IgH克隆性基因重排, IgH基因重排检出率在BNHL及良性淋巴结反应性增生之间相比,差异有显著意义(P<0.05). 说明IgH基因引物对B细胞性NHL的克隆性和细胞源性确定有重要价值,可用于淋巴瘤的诊断和分型.B淋巴细胞产生的抗原受体分子Ig和T淋巴细胞产生的抗原受体分子TCR,其编码基因在细胞的分化过程中均发生重排. 一个T,B细胞或其克隆性后代,均只含一种独特的分子遗传学标记. 大量的实验已证实,淋巴细胞肿瘤源于单克隆性增生. 我们利用特定的引物对其基因进行扩增,当将扩增产物进行聚丙烯酰胺凝胶电泳时,多克隆淋巴细胞将产生一片弥漫带(见于反应性增生),而单克隆性增殖的淋巴组织则出现一明显条带(见于恶性淋巴瘤).因此对于淋巴瘤的诊断,首先应依靠形态学检查,并辅以免疫组化结果,对于仍不能明确诊断一小部分病例得,可行基因重排检测,在本研究中有3例较难诊断病例,由于病理HE切片、免疫组化均不能做出明确诊断,通过运用PCR技术对其进行基因重排检测,有IgH的特异性重排条带,提示基因重排的检测对于识别此类交界性及淋巴瘤的早期发现可能具有重要价值.参考文献[1] Garcia MJ, Delgado BM, Granizo JJ, et al. IgH,TCRγ and TCRβ gene rearrangement in 80 B and Tcell NonHodgkins lymphomas: Study of the association between proliferation and the socalled “A berrant” patterns[J]. Diag Mol Pathol, 2001, 10(2): 69-77.[2]王淑芳,苏勤,朱少君,等.多发性子宫平滑肌瘤的克隆性[J].中华病理学杂志,2002, 31:107-111.[3]朱少君,苏勤,王淑芳,等. 女性外阴尖锐湿疣的克隆性[J]. 诊断病理学杂志, 2003, 10:81-84.[4] Lucas DR, Shroyer KR, McCarthy PJ, et al. Desmoid tumor is a clonal cellular proliferation: PCR amplification of HUMARA for analysis of patterns of Xchromosome inactivation[J]. Am J SurgPathol, 1997, 21:306-312.[5]高子芬,潘增刚,裴斐,译. 女性生殖系统. 见: Juan Rosai,ed. 回允中,主译. 阿克曼外科病理学[M]. 8版. 沈阳: 辽宁教育出版社,1999. 1319.[6]朱平. 现代血液肿瘤诊断治疗学[M] . 北京:北京医科大学、中国协和医科大学联合出版社,1998:24-41.[7] Diss TC, Watts M, Pan LX, et al. The polymerase chain reaction in the demonstration of monoclonality in T cell lymphomas[J]. J Clin Pathol, 1995, 48:1045-1050.[8] Kros JM, Bagdi EK, Zheng P, et al. Analysis of immunoglobulin H gene rearrangement by polymerase chain reaction in primary central nervous system lymphoma[J]. J Neurosurg, 2002,97:1390-1396.[9]王萍,王瑞年,卢健,等. 非霍奇金淋巴瘤的IgH和TCRδ基因重排[J]. 临床与实验病理学杂志, 2002,18: 21-23.。
BCL-2、BCL-6、C-MYC基因重排的高级别B细胞淋巴瘤临床病理分析

present(rs=0.323,P<0.05).Conclusion Combined de-tection of Ig heavy chain protein expression pattern and IgH gene rearrangement can effectively assist in the differentiation between MALToma andRLH.IgH gene breakage may be highly correla-ted with the loss of Ig heavy chain protein expression.Key words:lymphoma;MALToma;Ig heavy chain protein;IgH gene rearrangement;IgH gene split网络出版时间:2019-8-1615:07网络出版地址:http://kns.cnki.net/kcms/detail/34.1073.R.20190816.1506.006.htmlBCL-2、BCL-6、C-MYC基因重排的高级别B细胞淋巴瘤临床病理分析林珍珍,黄菲,马晓梅,叶明,熊淑晨,姜艳泽,房新志摘要:目的探讨C-MYC、BCL-2和BCL-6基因重排的高级别B细胞淋巴瘤(high-grade B-cell lymphoma,HGBL)的病理形态、免疫表型及治疗方案。
方法收集58例B细胞淋巴瘤患者临床资料,对其进行免疫组化及基因检测。
结果58例B细胞淋巴瘤中伴有C-MYC、BCL-2和BCL-6重排的HGBL仅1例,C-MYC和BCL-2、C-MYC和BCL-6重排各1例。
3例患者均为中老年人,临床表现多为多部位受累,1例乳酸脱氢酶水平升高,Ann Arbor分期均为Ⅲ+Ⅳ期;生存期短。
3例HGBL免疫组化检测均为生发中心B细胞型,Ki-67增殖指数均较高(90% 95%)。
非霍奇金淋巴瘤患者血清LDH与β2-MG检测及其临床意义

n i i f c a n c e G UA i . h u , K O UK e — r e n , W A N G Y o n g , e t a 1 .D e p a r t m e n t o fO n c o l o g y , t h e F i r s t P e o p l e ’ s H o  ̄i t d o fW u h u ,
陈献忠 )
勇
作 者简介 :古爱虎 ( 1 9 7 4 一) , 男, 硕士研究生 , 主治医师 , 研究方向 : 淋 巴瘤诊治。E - m a i l : g u a i d a h u @1 6 3 . c o n r
[ 摘要 ] 目的 探讨 非霍奇 金淋巴瘤 ( N H L ) 患者血清乳酸脱氢 酶 ( L D H ) 及 3 2 - 微 球蛋 白( 3 2 - M G ) 水平
c o n t r o l g r o u p ( P< O . 0 1 ) ; ( 2 ) T h e l e v e l o f s e r l l m L D H a n d 3 2 - M G i n Ⅲ +I V s t a g e w e r e o b v i o u s l y h i g h e r t h a n t h a t i n 1+ 1 1 s t a g e ( P< 0 . 0 1 ) ; ( 3 )A f t e r t w o c y c l e s o f c h e m o t h e r a p y , t h e r e w a s s t a t i s t i c a l d i f e r e n c e b e t w e e n p r e c h e mo — t h e r a p y a n d p o s t c h e m o t h e r a p y( P<0 . 0 1 ) . C o n l c u s i o n T h e l e v e l s o f s e r u m L D H a n d 3 2 - MG c a n b e t a k e d a s a n
IL4I1在B细胞淋巴瘤中的表达及临床意义

IL4I1在B细胞淋巴瘤中的表达及临床意义淋巴瘤是一种恶性肿瘤,由淋巴细胞恶性增生引起。
B细胞淋巴瘤是其中一种常见类型,其发病率和死亡率逐年上升。
因此,研究深入了解B细胞淋巴瘤的发病机制和治疗靶点具有重要意义。
IL4I1(Interleukin 4 induced gene 1)是一种编码酶的基因,主要在B细胞中表达。
最近的研究发现,IL4I1在B细胞淋巴瘤中的表达水平明显升高,并与患者的临床特征和预后相关。
首先,IL4I1的高表达与B细胞淋巴瘤的临床特征密切相关。
研究发现,IL4I1的表达水平在淋巴结受累的患者中明显高于未受累的患者。
此外,IL4I1的表达水平与淋巴瘤的分期、病理类型和转移程度等临床特征也有关联。
这些结果表明IL4I1可能参与了淋巴瘤的发展和进展过程。
其次,IL4I1在B细胞淋巴瘤中的高表达与预后不良相关。
研究发现,IL4I1的高表达与患者的生存率显著下降相关。
此外,IL4I1的表达水平还与淋巴瘤的复发和转移风险增加相关。
这些结果提示IL4I1可能成为B细胞淋巴瘤患者预后评估和个体化治疗的重要指标。
最后,IL4I1可能参与了B细胞淋巴瘤的免疫逃逸和免疫调节。
IL4I1是一种氧化酶,能够抑制T细胞的活性和增殖。
研究发现,IL4I1通过抑制T细胞的免疫活性,促进淋巴瘤细胞的逃避免疫监视。
此外,IL4I1还能够调节免疫细胞的分化和功能,进一步影响淋巴瘤的发展。
总之,IL4I1在B细胞淋巴瘤中的高表达与患者的临床特征和预后密切相关。
IL4I1可能参与了淋巴瘤的发展和进展过程,并且可能成为患者预后评估和个体化治疗的重要指标。
进一步的研究有助于深入了解IL4I1在B细胞淋巴瘤中的作用机制,并为淋巴瘤的治疗和预后评估提供新的靶点和策略。
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B细胞非霍奇金淋巴瘤患者IgH基因重排检测分析及意义吴书一1,秦亚溱2,刘文刚1,熊灵军3,刘艳荣21.郑州市第三人民医院干细胞与器官移植实验室,郑州450000;2.北京大学人民医院血液病研究所,北京100044;3.郑州大学第二附属医院摘要:目的探讨外周血和骨髓免疫球蛋白重链(Immunoglobulin heavy chain,IgH)基因重排检测方法及其在监测B细胞非霍奇金淋巴瘤(B-NHL)患者微小残留病(Minimal residual disease,MRD)中的临床意义。
方法应用PCR-SSP方法对B-NHL患者进行IgH基因重排检测,回顾性分析39例B-NHL患者IgH基因重排动态检测结果来了解其与临床MRD的关系。
结果39例B-NHL初诊未经治疗患者IgH基因重排检测34例阳性,阳性率87.1%(34/39)。
34例初诊阳性患者,治疗后19例达到临床完全缓解的患者中16例IgH基因重排转阴,3例持续阳性;15例临床部分缓解者,IgH基因重排持续阳性。
分析发现13例患者骨髓和外周血标本IgH基因重排均呈阳性。
结论IgH基因重排检测可以作为B-NHL的辅助诊断及其微小残留病的监测。
关键词:免疫球蛋白重链;基因重排;B细胞非霍奇金淋巴瘤中图分类号:R733.1文献标识码:A文章编号:1672-3422(2011)03-0072-03Clinical significance of immunoglobulin heavy chaingene rearrangement in patients with B-Cellnon-Hodgkin’s lymphomaWU Shu-yi,QIN Ya-zhen,LIU Wen-gang,XIONG Ling-jun,LIU Yan-rongLaboratory of Stem Cell and Organ Transplantation,Zhengzhouthe Third People’s Hospital,Zhengzhou450000,ChinaABSTRACT Objective To explore the methods of detection and clinical significance of immuno-globulin heavy chain gene rearrangement in patient with B-cell non-Hodgkin’s lymphoma(B-NHL).Methods Detect IgH gene rearrangements of39B-cell non-Hodgkin’s lymphoma cases u-sing polymerase chain reaction/sequence-specific primers and monitoring of these gene rearrange-ments.Results Totally39cases of B-NHL without the treatment of newly diagnosed patients with IgH gene rearrangements detected34cases of positive,positive rate of87.1%(34/39).34cases of newly diagnosed patients with positive,after treatment19patients achieve complete clinical remission,16cases in which negative,3cases of continuous positive.15cases were partial remission,IgH gene rearrangement continued positive.Conclusions IgH gene rearrangement can be detected as a B-NHL diagnosis and monitoring of minimal residual disease.KEY WORDS Immunoglobulin heavy chain(IgH);Gene rearrangement;B-cell non-Hodgkin’s lymphoma(B-NHL)淋巴瘤是一种原发于淋巴结及其他淋巴组织的恶性肿瘤,其细胞的恶性克隆表现为多种基因异常,克隆性免疫球蛋白重链(Immunoglobulin heavy chain,IgH)基因重排被认为是B淋巴细胞克隆性增生的特异性标记之一,可作为B细胞非霍奇金淋巴瘤(B-NHL)的临床诊断和监测微小残留病(Minimal residual disease,MRD)的标志分子[1]。
本文应用PCR-SSP方法对B-NHL患者进行IgH基因重排检测,回顾性分析2006年3月至2010年6月39例B-NHL患者IgH基因重排动态检测结果来了解其与临床诊断及MRD检测中的临床意义。
·27·医药论坛杂志2011年2月第32卷第3期1材料与方法1.1研究对象39例B-NHL患者源于2006年3月至2010年6月北京大学人民医院血液病研究所及郑州市第三人民医院,经病理学和免疫组织化学确诊,病例资料完整的患者,其中男24例,女15例,年龄14 70岁。
健康体检者为阴性对照,男、女各5例,年龄20 41岁。
分别取外周血或骨髓5ml,以EDTA-K2抗凝。
以B-NHL细胞系Raji细胞或已知具有IgH基因重排的DNA作为阳性对照。
1.2方法1.2.1外周血或骨髓DNA提取EDTA-K2抗凝的外周血或骨髓5ml,用生理盐水倍比稀释,轻轻加至Ficoll淋巴细胞分离液上,2000rpm离心20min,吸取单个核细胞层,用生理盐水洗2遍,转移至1.5ml离心管,加入500μl DNA zol(Invitrogen 公司)反复吹吸5分钟,加入500μl冷无水乙醇,颠倒数次,留取DNA絮状沉淀,加入80%乙醇洗涤1次,留取DNA,待晾干后加入适量去离子水,调整DNA浓度,保证A260/A280比值在1.6 2.0之间。
-20ħ冰箱保存备用。
1.2.2PCR引物设计与合成PCR引物设计参考文献[2],由上海博亚生物技术有限公司合成,引物序列如下:FR3A:5-ACA CGG CCG TGT ATT ACT GT-3’,VLJH:5’-GTG ACC AGG GTA CCT TGG CCC CAG-3’。
1.2.3PCR扩增及产物检测25μl扩增反应体系包括10mmol/L TrisHCl(PH9.0),50mmol/L KCl,3.0mmol/L MgCl2,四种dNTP各400μmol/L,两条引物各200pmol/L,5%去离子甲酰胺,Tag酶0.6U,DNA0.5μg。
扩增反应条件:95ħ预变性5min;95ħ变性40秒,55ħ退火40秒,72ħ延伸60秒,共30循环;72ħ延伸7min,降温至4ħ。
取10μl PCR扩增产物进行聚丙烯酰胺凝胶电泳,银染法显色,观察判断结果。
其扩增产物片段长度80 120bp。
1.3统计学处理应用SPSS11.0软件进行统计学处理。
2结果Raji细胞系DNA及已知IgH基因重排阳性DNA经PCR扩增、银染显色后在80 120bp间呈现一条明亮的电泳条带,10例健康人无此条带。
39例经病理学和免疫组织化学确诊且未经治疗的B-NHL患者IgH基因重排检测34例阳性,阳性率87.1%(34/39)。
34例初诊阳性患者,治疗后19例达到临床完全缓解的患者中16例IgH基因重排转阴,3例持续阳性;15例临床部分缓解者,IgH基因重排持续阳性。
13例患者骨髓标本IgH 基因重排阳性,其同时进行的外周血标本IgH基因重排也呈阳性。
3讨论恶性淋巴瘤分为霍奇金淋巴瘤(HL)和非霍奇金淋巴瘤(NHL)。
在我国NHL发病率在恶性淋巴瘤中占绝对优势(95%),其中又以B-NHL占绝对多数,其余为T细胞淋巴瘤和不能分型者[3]。
2001年WHO淋巴瘤新分类提出了以病理组织学为基础,结合免疫组化、基因分析的诊断方案,体现了基因检测对淋巴细胞恶性病变诊断的重要性。
B淋巴细胞IgH基因结构由可变区(Variable,V)、多变区(Diversity,D)、链接区(Joining,J)和恒定区(Constant,C)组成,这些区域上染色体分布呈不连续状态,片断之间可有长度不等的插入序列将其分开,当淋巴细胞发育到一定阶段,在重组酶的作用下重新排列组合,形成有功能性基因的特殊重排物,即基因重排[4]。
正常人每个淋巴细胞的重排基因都是独有的,因此B淋巴细胞的IgH基因重排形成了上千万种B淋巴细胞的IgH 基因重排的多克隆,PCR扩增产物片段长度可略有不同,聚丙烯酰胺凝胶电泳后常呈弥漫带而看不到单克隆重排带。
B-NHL患者,体内某种基因重排的B细胞癌变后失去机体的正常调控,无限制的分裂增殖,克隆性增生,导致其独有的基因重排形式占有一定优势,其PCR扩增产物电泳后出现一条明显条带。
因此,IgH基因重排带的单克隆检测对B-NHL辅助诊断及治疗后监测MRD的克隆性变化具有重要意义[2,5]。
本组回顾性分析,39例B-NHL初诊未经治疗患者,外周血或骨髓DNA检测发现IgH单克隆性基因重排带34例,阳性率87.1%(34/39),与Krose等[6]报道的B细胞淋巴瘤IgH基因重排阳性率77%,以及国内冯琦等[7]报道的阳性率83.3%相近;对照组10例健康人均未检测到IgH 单克隆性基因重排带,全部阴性;Raji细胞系DNA 及已知IgH基因重排阳性DNA均检测到IgH单克隆性基因重排带。
提示IgH单克隆性基因重排带阳性与B-NHL有良好的相关性,对B-NHL的·37·Journal of Medical Forum Vol.32No.3February2011辅助诊断具有重要价值。
随着先进生物治疗技术的开展和高效化疗药物的应用,许多B-NHL患者经过治疗大部分患者都可达到完全缓解或部分缓解,但其体内仍可能有不同程度的肿瘤细胞残留,是疾病复发的重要因素。
对于这些残存的极少量的肿瘤细胞,单靠常规的形态学或影像学很难证实。
多数学者研究认为,骨髓或外周血的IgH基因重排检测可从分子水平上来判断B-NHL的缓解程度,更有助于MRD的检测和提示临床预后[1]。
本组回顾性分析表明,34例B-NHL初诊时IgH基因重排阳性患者,经过4 6周期的化疗后19例达到临床完全缓解,15例临床部分缓解。