电生理实验报告
神经干动作电位电生理综合实验
实验目的
了解蛙类坐骨神经干的单相、双相动作 电位的记录方法及与强度的关系. 用电生理 学方法测定蟾蜍或蛙坐骨神经的神经冲动传 导速度.
实验原理
蛙类的一些基本生命活动和生理功能与 恒温动物相似，若将蛙的神经标本放在任氏 液中，其兴奋性在几个小时内可保持不变。 若给神经一次适宜刺激，可在神经上产生一 个动作电位。制备坐骨神经标本是生理学实 验的一项基本操作技术。
3强度变化时双相动作电位波形的变化 4观察单相动作电位：用镊子将两个引导电极r1,r2 之间的神经夹伤，再刺激时呈现的即是单相动作电 位。
注意事项
1.避免蟾蜍体表毒液和血液污染标本，压 挤、损伤和用力牵拉标本，不可用金属器械 触碰神经干。 2.在操作过程中，应给神经滴加任氏液， 防止表面干燥，以免影响标本的兴奋性。
实验对象 蟾蜍或蛙
实验药品 任氏液
仪器与器械
蛙类手术器械,RM6240实验系统、屏 蔽盒
动物
蟾蜍。
实验方法与步骤
(1).游离坐骨神经 1.破坏脑、脊髓
2.剪除躯干上部、皮肤及内脏 3.剥皮 4.分离两腿 5.完成坐骨神经腓肠肌标本 6.锌铜弓测试标本 7.游离坐骨神经
实验原理
神经干动作电位是神经兴奋的客观表现。 动作电位一经产生，即可向外周传播，即 为神经冲动。神经干兴奋部位的膜外电位 负于静息部位，二者之间出现一个电位差； 当神经冲动通过后，兴奋处的膜外电位又 恢复到静息水平。神经干兴奋过程所发生 的这种电位变化称神经干动作电位。
基本原理
神经冲动的传导速度（v）是指动作电位 在单位时间（t）内传导的距离（s），可 根据神经干上动作电位从一点传导到另一 点所需要的时间来计算:
实验二 蟾蜍坐骨神经干电生理实验
缩，使收缩张力逐渐增大，完全强直收缩时收缩张力达到了一个稳
定的最大值[3]。
1.5 仪器连接和参数( Apparatus junction and parameter ) 换能
器接第1通道。1通道时间常数直流、滤波频率30Hz、灵 敏度7.5g、，采样频率：800Hz，扫描速度：2.5s/div。
1.6 坐骨神经腓肠肌的股骨插入固定孔固定，神经干标本盒的
电极上，神经与电极接触良好，调节刺激电压，记录肌肉 收缩曲线。
1.1实验动物（laboratory animal) 蟾蜍（中华蟾蜍指名亚种，
Zhuoshan Toad）
1.2药品(drug) 任氏液
1. 3器材( Experimental apparatus) RM6240 生物信号处理系统 (RM6240 multichannel physiological recording and processing system )（成都仪器厂）、神经标本盒（ nerve chamber )、 张力换能器。
1.4 坐骨神经腓肠肌标本制备 (Preparation of sciatic gastrocnemius )
蟾蜍
毁脑脊髓，去上肢和内脏，下肢剥皮浸于任氏液中。蟾蜍下肢背面向 上置于蛙板上；用剪刀从脊柱正中剪开，向下从耻骨联合剪开分成两 个下肢标本，用玻璃分针分离脊柱傍的神经丛，用线在近脊柱处结扎， 剪断神经，从大腿至腘窝分离坐骨神经，将神经干提起剪断分支。去 除股骨上的肌肉，距膝关节1cm剪断股骨，分离腓肠肌跟腱穿线结扎， 剪断跟腱，游离腓肠肌，在膝关节剪去小腿其余办法，将坐骨神经－ 腓肠肌标本标本置任氏张力也逐渐增大，强直收缩产
生的张力显著大于单收缩。肌肉单收缩时，胞浆内Ca2+浓度升高的持 续时间太短，被激活的收缩蛋白尚未产生最大张力时，胞浆Ca2+浓度
人体心电图生理实验报告
人体心电图生理实验报告1. 引言人体心电图（Electrocardiogram，简称ECG）是一种常用的生理信号检测方法，通过记录心脏的电活动来评估心脏的功能状态。
本实验旨在通过记录健康受试者的心电图信号，了解心脏的电生理特征以及识别心脏疾病的可能。
2. 实验方法2.1 实验仪器和材料本实验使用的主要仪器和材料如下：- 心电图记录仪：能够记录心电图信号的仪器，本实验使用的是BioAmp系统。
- 导联电缆：将受试者与心电图记录仪连接的导联电缆。
- 心电图贴片电极：置于受试者身上用于记录心电信号的电极。
2.2 实验步骤1. 将心电图记录仪接通电源，并进行仪器校准。
2. 将导联电缆的接口与心电图记录仪的相应接口连接。
3. 清洁受试者的皮肤，确保贴片电极能够充分贴附。
4. 将贴片电极粘贴在受试者的身体上，按照国际标准配置3导联或12导联。
5. 确保受试者放松并保持安静，开始记录心电图信号。
6. 记录足够长的时间以获得稳定的心电图信号。
7. 结束实验，拆除电缆和贴片电极。
3. 实验结果3.1 心电图信号特征根据所记录到的心电图信号，可以观察到以下特征：1. 心电图由一系列波形组成，其中最有代表性的是P波、QRS波群和T波。
2. P波代表心房的收缩，可用于评估心房的电活动。
3. QRS波群代表心室的收缩，用于评估心室的电活动。
4. T波代表心室的舒张，用于评估心室的电活动。
5. 心电图的波形和间期可以提供有关心脏节律、传导阻滞和心脏肥厚等心脏疾病的信息。
3.2 心电图的异常表现心电图可以提供识别心脏疾病的线索。
以下是一些常见的心电图异常表现：1. 心律失常：心律过缓、心律过速、心房颤动等心律失常可以通过心电图进行定量评估和诊断。
2. 传导阻滞：心室传导阻滞、束支传导阻滞等可以在心电图上显示出延长的P-R 间期或QRS波群扩展。
3. ST段变化：ST段上升或下移可以反映心肌缺血或损伤，是心肌梗死的重要依据。
4. QT间期延长：长QT间期可能是一种遗传性疾病或某些药物副作用的表现。
坐骨神经实验报告
一、实验目的1. 了解坐骨神经的解剖结构，掌握坐骨神经的走行路径。
2. 观察坐骨神经的生理特性，学习神经传导的基本原理。
3. 掌握坐骨神经的实验操作方法，提高实验技能。
二、实验原理坐骨神经是人体最长的一对神经，起始于骶丛，向下延伸至下肢，支配下肢的肌肉运动和皮肤感觉。
本实验通过解剖坐骨神经，观察其结构，了解其走行路径；通过电生理实验，观察坐骨神经的生理特性，学习神经传导的基本原理。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：青蛙、解剖器械、生理盐水、任氏液、电生理刺激器等。
2. 实验仪器：解剖显微镜、手术刀、剪刀、镊子、电极等。
四、实验步骤1. 解剖坐骨神经（1）将青蛙置于解剖盘中，用解剖显微镜观察坐骨神经的走行路径。
（2）沿坐骨神经走行方向，用手术刀在青蛙背部切开皮肤，暴露坐骨神经。
（3）用剪刀和镊子分离坐骨神经，观察其颜色、质地和分支情况。
2. 电生理实验（1）将青蛙的坐骨神经与电极连接，确保连接牢固。
（2）设置电生理刺激器，调节刺激参数。
（3）观察坐骨神经的生理特性，包括动作电位的产生、传导速度等。
（4）分析实验结果，总结坐骨神经的生理特性。
五、实验结果与分析1. 坐骨神经解剖本实验成功解剖出青蛙的坐骨神经，观察其走行路径、颜色、质地和分支情况。
坐骨神经起始于骶丛，向下延伸至下肢，支配下肢的肌肉运动和皮肤感觉。
2. 电生理实验（1）动作电位：在电生理实验中，当给予坐骨神经一定强度的刺激时，可以观察到动作电位的产生。
动作电位是神经传导的基本单位，其产生与神经细胞膜电位的变化有关。
（2）传导速度：本实验测得坐骨神经的传导速度为（数值）m/s。
传导速度是神经传导的一个重要指标，与神经纤维的类型、直径、髓鞘厚度等因素有关。
六、实验结论1. 本实验成功解剖出青蛙的坐骨神经，观察其走行路径、颜色、质地和分支情况。
2. 通过电生理实验，观察了坐骨神经的生理特性，包括动作电位的产生和传导速度。
3. 本实验验证了坐骨神经的解剖结构和生理特性，为神经生物学研究提供了实验依据。
生物电现象的观察实验报告
生物电现象的观察实验报告
实验名称：测量静息电位及动作电位
实验目的：通过对生物体内的电现象进行观察，了解生物电现象的基本特征和测量方法。
实验原理：生物电现象是指生物体内的电现象，主要包括静息电位和动作电位。
静息电位是指细胞膜在静息状态下的电位，其大小在-70mV左右。
动作电位是指细胞膜受到某种刺激后的瞬时电位变化，其大小在+30mV左右。
测量静息电位可通过采用微电极技术封管吸管进入细胞内，测量动作电位则可采用外置微电极技术。
实验器材：微电极、外置微电极、示波器、信号发生器等。
实验步骤：
1. 进行静息电位的测量：将微电极封管吸管进入细胞内，通过示波器显示出其输出的电位信号，记录其数值。
2. 进行动作电位的测量：将外置微电极放置于细胞膜表面，通过示波器显示出其输出的电位信号，用信号发生器调节输出信号的大小和频率，使细胞膜产生动作电位，观察其输出信号的变化并记录其数值。
实验结果及分析：通过实验观察，得出如下结论：
1. 静息电位大小约为-70mV左右，表明在静息状态下细胞内外存在静电场差，在细胞膜的质子泵和离子泵的共同作用下，使得细胞内外的离子浓度不同，形成细胞外液为高钠离子、低钾离子的环境，而细胞内液则相反，这种离子梯度的存在使得细胞内外电位产生差别。
2. 动作电位为短暂的电生理现象，其大小约为+30mV左右，表明在受到某种刺激时，细胞膜上离子通道发生开关状态的转换，使得离子在细胞膜上发生大量的流动，形成电生理现象。
结论：通过实验我们了解了生物体内的电现象及其基本特征和测量方法，增强了我们对生物学基础知识的理解和认识。
青蛙电实验报告
一、实验目的1. 理解并掌握电生理实验的基本原理和方法。
2. 观察和记录青蛙神经肌肉标本在电刺激下的反应，分析刺激频率与肌肉收缩的关系。
3. 探讨神经肌肉兴奋传导的机制。
二、实验原理电生理实验是研究生物体内电信号传递和转换的重要手段。
在本实验中，通过向青蛙坐骨神经施加电刺激，观察腓肠肌的收缩反应，可以分析刺激强度、频率与肌肉收缩之间的关系，从而了解神经肌肉兴奋传导的基本规律。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：青蛙、蛙类手术器械、铁支架、电刺激器、刺激电极、秒表、棉球、生理盐水、麻醉剂等。
2. 实验仪器：放大器、示波器、刺激控制器、记录仪、蛙板、量尺等。
四、实验步骤1. 准备实验材料：将青蛙用麻醉剂麻醉，然后进行解剖，制备坐骨神经和腓肠肌标本。
2. 连接实验装置：将刺激电极连接到电刺激器，通过蛙板将电极固定在坐骨神经上，记录电极连接到腓肠肌上。
3. 调整实验参数：设置刺激强度、频率和持续时间，记录肌肉收缩情况。
4. 实验观察与记录：a. 在保持刺激强度不变的条件下，观察不同刺激频率对腓肠肌收缩的影响。
b. 在保持刺激频率不变的条件下，观察不同刺激强度对腓肠肌收缩的影响。
c. 记录肌肉收缩的最大幅度、收缩时间、恢复时间等参数。
5. 实验重复：对同一标本进行多次实验，以验证实验结果的可靠性。
五、实验结果与分析1. 刺激频率与肌肉收缩的关系：a. 在一定范围内，随着刺激频率的增加，肌肉收缩幅度逐渐增大。
b. 当刺激频率超过一定阈值时，肌肉收缩幅度不再随频率增加而增大，甚至出现肌肉疲劳现象。
2. 刺激强度与肌肉收缩的关系：a. 在一定范围内，随着刺激强度的增加，肌肉收缩幅度逐渐增大。
b. 当刺激强度超过一定阈值时，肌肉收缩幅度不再随强度增加而增大，甚至出现肌肉损伤现象。
3. 反射弧完整性与反射活动的关系：a. 在反射弧完整的情况下，刺激坐骨神经会引起腓肠肌的收缩反应。
b. 在反射弧不完整的情况下，刺激坐骨神经不会引起腓肠肌的收缩反应。
昆虫电生理实验报告
一、实验目的通过本实验，了解昆虫电生理学的基本原理和方法，掌握昆虫神经肌肉标本的制备、电生理实验技术，以及分析昆虫神经肌肉动作电位、神经肌肉接头电位等电生理现象。
二、实验原理昆虫电生理学是研究昆虫神经肌肉系统的电生理现象及其调控机制的科学。
通过记录昆虫神经肌肉标本的动作电位、接头电位等电生理信号，可以分析昆虫神经肌肉系统的功能状态。
三、实验材料与仪器1. 实验材料：昆虫神经肌肉标本、电极、玻璃管、生理盐水、酒精、解剖刀、镊子、剪刀等。
2. 实验仪器：电生理记录仪、放大器、刺激器、示波器、电脑等。
四、实验步骤1. 标本制备（1）取昆虫神经肌肉标本：用解剖刀在昆虫后腹部切开，暴露出神经肌肉接头。
（2）制备神经肌肉标本：将神经肌肉接头剪下，放入生理盐水中浸泡。
（3）插入电极：将两根电极分别插入神经肌肉标本的神经纤维和肌肉纤维。
2. 电生理实验（1）记录动作电位：打开电生理记录仪，设置合适的放大倍数和采样频率。
用刺激器对神经纤维进行刺激，观察并记录动作电位。
（2）记录接头电位：调整放大倍数和采样频率，观察并记录接头电位。
（3）分析电生理信号：使用示波器观察电生理信号，分析动作电位和接头电位的特点。
3. 实验数据处理（1）绘制动作电位和接头电位曲线：将实验数据导入电脑，绘制动作电位和接头电位曲线。
（2）分析电生理信号：根据曲线分析动作电位和接头电位的特点，如波幅、时程、潜伏期等。
五、实验结果与分析1. 动作电位特点动作电位曲线呈典型的尖峰状，波幅约为1mV，时程约为1ms，潜伏期约为0.5ms。
2. 接头电位特点接头电位曲线呈双峰状，波幅约为0.5mV，时程约为1ms，潜伏期约为0.3ms。
六、实验结论1. 成功制备了昆虫神经肌肉标本，并记录了动作电位和接头电位。
2. 分析了动作电位和接头电位的特点，了解了昆虫神经肌肉系统的电生理现象。
3. 本实验验证了昆虫神经肌肉系统在神经调节和肌肉收缩过程中的重要作用。
动作电位实验报告
参照实验
2-1
的方法剥离蛙的坐骨神经干，
尽量把神经干标本剥离得长一些，
要
求上自脊髓附近，下沿腓神经与胫神经一直分离到踝关节附近；尽量把神经干
周围的组织剔除干净，剥离时切勿损伤神经干标本。
2.
实验装置的连接
按照图
2-3-1
将神经屏蔽盒与信号采集处理系统连接，屏蔽盒的地线良好接地。
3.
仪器的操作和实验参数的设置
（
1
）
本实验在
Windows
界面的生理采集处理系统平台下进行，打开生理采集
系统。
（
2
）
采样窗参数的设置。
（
3
）
刺激参数的设置。
4.
将蛙的坐骨神经干标本置于屏蔽盒内的电极上，神经干的中枢端置于刺激电
极一侧，从末梢端引导动作电位。
5.
刺激、观察、记录神经干复合动作电位
（
1
）
缸、棉线、纱布、滴、任式液管。
四
、
实验方法和步骤
1
．制备蟾蜍坐骨神经干标本
（
1
）毁脑脊髓和下肢标本制备。
（
2
）剥皮的下肢标本俯卧于蛙板上，用尖头镊子夹住骶骨尾端稍向上提，使骶部向上
隆起，用粗剪刀水平位剪除骶骨。
（
3
）标本仰卧置于蛙板上，用玻璃分针分离脊柱两侧的坐骨神经，穿线，紧靠脊柱根
部结扎，近中枢端剪断神经干，用尖头镊子夹结扎线将神经干从骶部剪口处穿出。
八、思考题
1
、神经干动作电位的上、下相图形的幅值和波形宽度为什么不对称？
答
：这是因为正负导电极距离太近，
正相波的复极化受到负波去极化的影响，相互叠加，波
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④将.txt文件导入BWDrawer软件，叠加1000次，分别作绘制、FFT、滤波图，分析。
【注意事项】
1.佩戴自制闪光激发装置后，被测试者进行10分钟的暗适应。
2.在测量过程中，要求被测者保持心情放松以及身体放松，特别是头颈部放松，3.不要思考问题，尽量减少身体移动，集中注意力于LED灯闪烁，周围人员尽量保持安静，不要说话或行走。
3.由于刺激频率是20Hz，在稳态闪光诱发电位可以看到一连串较为明显的峰值。
4.分析瞬态闪光诱发电位波形过于尖锐的原因，可能是由于外部环境造成的干扰，如测试者说话声，受试者触摸了电极和视觉敏感等。因此与标准诱发电位形成一定的误差。
5.分析稳态闪光诱发电位波形中间段较为平坦的原因，可能是由于受试者在测量过程中闭眼，造成闪光对视网膜的刺激变小，因此波形也变小。
3.点击“设置”→“Display Channels”，设置channel数量为1。
Powerlab参数设置
4.点击“设置”→“Stimulator”，弹出如下窗口：Mode设为“Pulse”，刺激状态设为“Continuous”。
5.在Chart应用窗口中设置采样率为2K，在通道功能下拉菜单中选择“Bio Amplifier”，在弹出窗口：在“EEG Mode”和“50Hz Notch”前打上√，如果有“AC Couple”和“Mains Filter”，也需打上√。High Pass设为1Hz，Low Pass设为30Hz，观察High Pass和Low Pass设置之前和之后的信号有什么区别。
【实验原理】
1.Powerlab生物信号采集处理系统，是由澳大利亚ADInstruments公司研制开发的计算机数据采集分析系统。搞系统可实现多通道生物信号数据的实时采集、记录和分析功能。
2.系统硬件包括各类型的信号调节器，多通道接口，通过USB与用户计算机连接使用，具有多种采样速率、信号放大和信号滤波功能。
7.瞬态闪光诱发电位测量
①参数设置:在Stimulator Panel中，“Pulse frequency”设为2Hz，“Duration”设为5ms，“Amplitude”设为8V。
②电位测量:暗适应10分钟后，测量持续480秒。
③保存采集数据:点击Chart应用窗口中的“File”→“Save”，设置保存类型为.txt文件。
【实验目的】
1.熟悉Powerlab多通道生物信号记录系统及其配套软件Chart的操作，设置实验参数。
2.掌握单通道瞬态和稳态闪光视觉诱发电位的测量。
3.使用低通滤波器处理信号，了解滤波器在信号处理中的用途。
4.使用平均叠加法处理信号，显示处理后的脑电波形，了解平均叠加法的基本原理
5.将经过平均叠加法处理后的脑电波形与理论波形相比较总结实验中可能出现的误差。
①记录电极放在枕骨粗隆上方2.5cm处的Oz位
②参考电极本应放置于鼻根上12cm处的Fz位，考虑到同学Fz位有头发，电极难以固定，故参考电极前移至额中线与发际交点处
③接地电极放在一侧耳垂。
④佩戴自制闪光激发装置。
⑤以佩戴普通游泳眼镜的方法佩戴自制闪光激发装置，并确保双眼LED灯的开关闭合，后脑固定带压在记录电极盘上。
滤波结果与讨论通过波形叠加和过滤干扰波后在稳态和瞬态闪光诱发电位中都可以观察到在90120ms有明显的n由于刺激频率为2hz在瞬态闪光诱发电位可以明显看到有两次电位高峰分别是50ms120ms和850ms1000ms
电生理实验报告
闪光视觉诱发电位测量
实验报告：赖轲小组成员：赖轲焦晓张晓阳王娟日期：2014-1-4
【实验步骤】
1.打开Powerlab多通道生物信号记录系统和配套计算机。采用Powerlab的Bio Amplifier通道作为输入端。将自制闪光刺激装置与Powerlab的Simulator信号控制端连接。
2.Powerlab参数设置
本实验采用与Powerlab配套的Chart多通道生理信号记录处理软件。进入windows系统后打开放置于桌面上的Chart图标。
软件主要有Chart和Scope，本实验使用chart5软件，提供了实时的多通道记录仪、X—Y绘图仪、数字滤波等多种功能。
3.视神经通路：经过视网膜神经网络处理的信息，由神经节细胞的轴突——视神经纤维向中枢传递。在视交叉的部位，100万条视神经纤维约有一半投射至同侧的丘脑外侧膝状体，另一半交叉到对侧，大部分投射至外侧膝状体，一小部分投射至上丘，最后投射到皮层枕叶。
【波形处理】
一、瞬态闪光诱发电位测量
1.FFT：
2.滤波
二、稳态闪光诱发电位1.FFTຫໍສະໝຸດ 2.滤波【结果与讨论】
1.通过波形叠加和过滤干扰波后，在稳态和瞬态闪光诱发电位中都可以观察到在90-120ms有明显的N波和P波。
2.由于刺激频率为2Hz，在瞬态闪光诱发电位可以明显看到有两次电位高峰，分别是50ms-120ms和850ms-1000ms。
4.单通道闪光视觉诱发电位电极放置位置：电极：用ERG盘电极。记录电极放在枕骨粗隆上方2.5cm处的Oz位，参考电极放在鼻根上12cm处的Fz位、耳垂或乳突处，地电极放在另一侧耳垂或乳突处。
5.标准闪光诱发电位波形：瞬态闪光刺激VEP是由一系列正波和负波组成的复合波，开始于30ms左右，结束于300ms左右。在波的成分的命名中，先标示为正波或负波（P或N）,然后以数字下标标示出现的先后顺序，不要使用正负结合潜伏期，以便能自动将闪光VEP与图像翻转VEP相区别。闪光VEP最常见成分是分别出现于大约90ms和120ms处的N2和P2成分。
④将.txt文件导入BWDrawer软件，叠加1000次，分别作绘制、FFT、滤波图，分析。
8.稳态闪光诱发电位测量
①参数设置:在Stimulator Panel中，“Pulse frequency”设为20Hz，“Duration”设为5ms，“Amplitude”设为8V。
②电位测量:暗适应10分钟后，测量持续480秒。
如果发现依然有高频信号存在，在通道功能下拉菜单中选择“Digtal Filter”，在弹出窗口中选择“Source Channel”为Channel 1，“Fliter type”为Low-pass，“Low cut-off frequency”为30Hz。
6.放置单通道脑电电极：电极用ERG盘电极。放置电极前用酒精棉球用力擦拭放置位置附近的头皮，去除皮屑和油脂，并在头皮上涂抹导电膏。
【总结】
Powerlab多通道生物信号记录系统及其配套软件Chart可以准确的记录闪光视觉诱发电位，通过低通滤波器将背景噪声过滤，尽量减少噪声干扰。而通过叠加法处理诱发电位信号，可以将微小的脑电波信号放大，以便实验者观察。要更加准确的测量闪光视觉诱发电位还需避免外界干扰，从而得出准确可靠的实验结果。