玉米愈伤组织再生体系

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晋谷21_号成熟胚再生体系的优化

晋谷21_号成熟胚再生体系的优化

doidoi:10.3969/j.issn.1002-2481.2022.04.04山西农业科学2022,50(4):469-477Journal of Shanxi Agricultural Sciences晋谷21号成熟胚再生体系的优化王玉玲1,张世芳1,尹艺臻1,马春英1,王育选1,刘清丽2,赵娟1(1.山西农业大学农学院,山西太谷030801;2.辽宁农业职业技术学院,辽宁营口115009)摘要:为了提高谷子成熟胚愈伤组织的诱导率和分化率,建立高效、稳定的再生体系,以优质品种晋谷21号成熟胚为外植体,研究植物激素、蔗糖、硝酸银(AgNO3)、多效唑(PP333)等不同物质对晋谷21号愈伤组织诱导、继代、分化和生根的影响,进而优化了晋谷21号离体再生培养方案,最终确定了晋谷21号各阶段的最适培养基和激素浓度。

结果表明,在MS培养基中加入2.0mg/L2,4-二氯苯氧乙酸(2,4-D)、0.2mg/L6-苄氨基嘌呤(6-BA)、5.0%蔗糖时愈伤组织诱导率最高,可达95.24%,较前期试验筛选出的诱导培养基(2.0mg/L2,4-D、0.2mg/L6-BA、3.0%蔗糖)提高了2.38百分点,产生的愈伤组织致密,颜色淡黄,状态更佳,有利于进一步的分化;再分化过程中添加1.0mg/L6-BA、0.5mg/L NAA、3.0mg/L PP333、3.0%蔗糖、14g/L琼脂时分化率最高,可达28.33%,较前期试验筛选出的分化培养基(1.0mg/L6-BA、3.0%蔗糖、5g/L琼脂)提高了15百分点,且分化出的谷苗健壮;生根阶段最适培养基为1/2MS培养基,生根健壮,适合移栽。

关键词:谷子;成熟胚;愈伤组织;植物激素;附加物中图分类号:S515文献标识码:A文章编号:1002-2481(2022)04-0469-09Optimization of Regeneration System of Mature Embryo of Jingu21WANG Yuling1,ZHANG Shifang1,YIN Yizhen1,MA Chunying1,WANG Yuxuan1,LIU Qingli2,ZHAO Juan1(1.College of Agriculture,Shanxi Agricultural University,Taigu030801,China;2.Liaoning Agricultural Technical College,Yingkou115009,China)Abstract:In order to improve the callus induction and differentiation rate of mature embryos of millet and to establish an efficient and stable regeneration system,in this study,mature embryos of a foxtail millet cultivar Jingu21with excellent quality was used as explant.The effects of the substances including plant hormones,sucrose,silver nitrate(AgNO3)and paclobutrazol(PP333)on callus induction,subculture,differentiation and rooting of Jingu21were studied,and the in vitro regeneration culture scheme of Jingu21was optimized,finally,the optimum concentrations of culture mediums and hormones in stages of Jingu21were defined. The results showed when2.0mg/L of2,4-dichlorophenoxyacetic acid(2,4-D),0.2mg/L of6-benzylaminopurine(6-BA)and 5.0%of sucrose were added to MS medium,the callus induction rate was the highest,it reached95.24%,compared with the induction medium screened out in the previous experiment with the addition of2.0mg/L of2,4-D,0.2mg/L of6-BA and3.0%of sucrose,increased by2.38percentage points.Additionally,the callus produced was dense,yellowish and better,which was beneficial to further differentiation.In the process of redifferentiation,when1.0mg/L of6-BA,0.5mg/L of naphthylacetic acid (NAA),3.0mg/L of PP333,3.0%of sucrose,and14g of agar were added,the differentiation rate was the highest,it reached 28.33%,compared with the differentiation medium screened in the previous experiment with the addition of1.0mg/L of6-BA, 3.0%of sucrose and5g/L of agar,increased by15percentage points,and the differentiated millet seedlings were strong.The optimum medium for rooting stage was1/2MS medium,in which roots were robust and suitable for transplanting.Key words:foxtail millet;mature embryo;callus;plant hormone;additive谷子(Setaria italica)又称为粟,是禾本科狗尾草属最古老的作物之一[1]。

大豆愈伤组织诱导及再分化的影响因素探索

大豆愈伤组织诱导及再分化的影响因素探索
外,光照强度影响外植体细胞的增殖,组织和器官的分
化,因此不同植物 对 光 照 强 度 也 有 不 同 要 求。 大 豆 在
体细胞胚胎发生诱 导 过 程 中 对 光 照 的 要 求 不 太 严 格,
可以是黑暗,也可 以 采 用 12~24h 光 照,光 照 强 度 的
[ ]
变化范围也较宽,在 50~6000l
另外,取材季节、外植体的大小与灭菌效果及存活率存
基中的生长素和细胞 分 裂 素 的 相 对 浓 度 有 关,当 生 长
在一定关联,在合适时间如生长旺季取样,试验材料的
素/细胞分裂素比值 高 时,促 进 根 的 分 化;比 值 低 时 则
消毒效果、成活率、诱导率及增殖率往往比在生长末期
促进芽的分化;而当 两 者 平 衡 时 则 会 一 直 处 于 愈 伤 组
分以及激素种类配比 选 取 不 同,大 豆 愈 伤 组 织 的 诱 导
导分化的成功率高,有 的 部 位 极 难 脱 分 化 或 再 分 化 率
以及再生也会相应呈现不同的效果。培养条件对大豆
组织培养的作用也 不 容 忽 视。 因 此,深 入 探 索 大 豆 组
很低。雷 海 英 等 [3]以 晋 豆 19 号 为 材 料,选 取 子 叶 节、

刘思言等 [9]以吉农 28、吉农 27、吉农 17 三个基因型大
2.
1 培养基的影响
2.
1.
1 培养基营养组分的影响
豆子叶节作为外植体进行植株再生的研究,结果表明,
培养基 是 外 植 体 赖 以 生 存 的 基 质。 培 养 基 的 种
类、营养组分以及培 养 基 的 状 态 等 也 关 系 着 组 织 培 养
关键。
导效果依次递减,说 明 胚 轴 是 比 较 适 合 的 外 植 体。 再

以玉米自交系18-599为受体的转基因再生体系优化

以玉米自交系18-599为受体的转基因再生体系优化

wh e n e x p o s e d t o KM n O4 i n s h o r t t i me .[ Re s u l t s ]T h e r e s u l t s s u g g e s t e d t h a t N6 me d i u m c o n t a i —
收 稿 日期 : 2 0 1 3—0 2— 0 7
基金项 目: 国家 自然 科 学 基 金 项 目( 3 1 1 7 1 5 6 6 ) 。 作者简介 : 苏顺宗 , 硕士, E — ma i l :g a o s u @s i c a u . e d u . c n 。 责任作者 : 张素芝 , 博士 , 教授 , 主要研究 方向 : 玉米 遗传 育种 , E
t h e me d i u m,a n d a i me d t o f a c i l i t a t e l a r g e — s c a l e o f t r a n s g e n i c b r e e d i n g .[ Me t h o d ]I n t h i s s t u d y ,
SU Sh un — z o n g,W U Li n g,ZHANG Xi ao — xi a,LI U Dan,GAO Shi — bi n,ZHANG Su — z hi ( Ma i z e Re s e a r c h I n s t i t u t e ,S i c h u a n Ag r i c u l t u r a l Un i v e r s i t y ,W e n j i a n g 6 1 1 1 3 0,S i c h u a n,Ch i n a )
ma ke s e e dl i ngs dwa r f a nd v i g o r . Th e s u r vi v a l r a t e of t h e t r a ns g e n i c s e e d l i ng s c a n be r a i s e d up t o

农杆菌介导玉米愈伤遗传转化研究

农杆菌介导玉米愈伤遗传转化研究
W AN G o g. e ,LI H n w i AN G - on , S I Zhe s e ,ZH AN G Ye h g H n. h ng Shihua g ,G e Yun- i - n xa
( .ntueo pca C r ,h n a gA r ut a U iesy S e yn 8 6 C ia 1 Is tt f ei on S ey n gi l rl nvri ,h na g10 6 , hn ; i S l c u t 1 2 Is t eo r c n e C ieeA r utrl c ne , e ig10 8 , hn ) .ntu f o Si c , hn s g c l a Si cs B in 0 C ia it C p e i u e j 0 1
研究报告

王宏伟 等 : 农杆菌介 导玉米愈伤遗传转化研究
研 究报 告 ・
农 杆 菌 介 导 玉 米 愈 伤 遗 传 转 化 研 究
王 宏伟 梁业 红 史 振声 张世 煌 葛 云侠 , , , ,
( . 阳农业 大学 特 种玉 米研 究所 , 沈 阳 10 6 ; 2 中国农 业科 学 院作 物科学 研究 所 , 北 京 1 0 8 ) 1沈 186 . 0 0 1
本 试 验 以 国 内 高 再 生 频 率 的 优 良 玉 米 自交 系 R 1 -9 和齐 3 9的胚 性 愈伤 组 织 为受 体 , 农 杆 菌 85 9 1 对 介 导 玉米 胚性 愈伤 组织 遗传 转 化 的部分 影 响因素 进行
受体 , 立不 受基 因型 限制快 速 、 建 高效 的遗传 转化 体 系
材料 为 自交系 R 1 —9 85 9和 齐 3 9 由本 实 验 室 提 1,

第三章 植物愈伤组织的诱导、继代及分化

第三章 植物愈伤组织的诱导、继代及分化

⑶先芽后根:愈伤组织中产生多个分生细胞形成分生中心, 从中仅分化出芽,一般情况下待芽长到一定大小时,切下 移入生根培养基中,在其基部即可分化出根。
有些植物在分化芽的培养基上同时在芽器官基部分化出根, 形成完整的植株。大多数植物均属这类正常的分化途径, 这类苗移栽较易成活。
⑷先根后芽:有些植物外植体脱分化后在愈伤组织上先分 化出根,而后在靠近愈伤组织的根部上再分化出芽,有的 将根切下放入分化培养基,再于根上分化出芽器官,甚至 在根端也能分化出芽。
从单个细胞或外植体上脱分化形成典型的愈 伤组织,大致经历三个时期:
起动期:又称为诱导期,
是愈伤组织形成的起点。 外植体已分化的活细胞 在 外源激素的作用下,
通过脱分化起动而进入 分裂状态,并开始形成 愈伤组织。
起动期
分裂期
分裂期:外植体切口边缘开
始膨大,外层细胞通过一分 为二的方式进行分裂,从而 形成一团具有分生组织状态 细胞的过程。
二、从愈伤组织建立悬浮培养体系
多数悬浮培养物(suspension cultures)是将生长快、质地 疏松的愈伤 小块转移到与愈伤诱导含同样成分的液体培养 基里进行振荡培养而获得。
接种时必须有足够多的细胞块,以保证有较合适的细胞密 度。振荡速度一 般为 30-150rpm。
第一次继代时,应去掉开始时接入的大块细胞团——过滤。
第三节 愈伤组织分化与植株再生
体细胞胚胎发生:指从体细胞进行的类胚结构的生产。 体细胞胚是一个二极结构,不物理地附着于原组织,每一 个体细胞胚称为胚状体,它可以同 合子胚一样发育成植株。 器官发生:指从愈伤组织形成芽及根的过程,芽是一个单 极性结构,物理地同母体组织联结着。
细胞分化
无论是在离体还是在活体条件下,植物细胞分化 研究的重点是维管组织的分化,特别是木质部成 分的分化。

愈伤组织培养(共70张PPT)

愈伤组织培养(共70张PPT)
逐步回到分生组织状态。
第五章 愈伤组织的培养
1 愈伤组响---重要因素。 转移到新鲜培养基:定期地将它们分成小块,接种到新鲜的培养基上,可以长期保持旺盛的生长。
脱分化:细胞由静止期进入分裂期,恢复分裂机能 影响培养的难易:一般生理状态年轻,来源于生长活跃或生长潜力大的组织和器官的细胞容易培养。
1 愈伤组织 形态 发 生方式
通过体细胞胚胎/胚状 体途径再生植株
愈伤组织器官发生
2 愈伤组织器官发生
先不定芽,在茎基部长根 先长根 后长芽
在不同部位分别形成根和芽
影响愈伤组织器官发生的因素:
无机盐混合物类
营养条件 有机物类 植物激素类
植物激素的作用
天然复合物类
外因
渗透压
酸碱度
影响因子
环境条件 湿度
From embryo culture
From root
2 愈伤组织的形成
从外植体脱分化形成典 型的愈伤组织大致可 分为三个时期:
愈伤组织形成
起始期
分裂期
形成期
2. 1 起始期:
细胞准备进行分裂的时期。 外植体的细胞处在静止状态。 一些刺激因素(如机械损伤、改变光照强度、增加氧等)和
各种生长素对黄瓜各外植体愈伤组织诱导的效应 (各种生长素浓度为10μmol/L)
生长素
种子
愈伤组织形成 下胚轴
果皮
IBA
无愈伤组织形成 愈伤组织增殖强
IBA浓度为1μmol/L时愈 伤组织生长良好
NAA
无愈伤组织形成 所有外植体均产生 愈伤组织
愈伤组织增殖强
2,4-D
所有外植体均产 2,4-D浓度为1μmol/L时
4)其他培养条件对胚状体发生的影响 液体培养 适宜pH5-6 光照:不需要光或半天光照时间 温度25 ℃左右

第六章 目的基因的转化


2. 根癌农杆菌Ti质粒基因转化
3. 发根农杆菌Ri质粒基因转化 4. 植物病毒载体介导基因转化 5. DNA直接导入法基因转化 6. 植物种质系统介导基因转化 7. 植物质体基因转化系统
第一节 植物基因转化受体系统的建立
植物基因转化受体系统,是指用于转化 的外植体通过组织培养途径或其他非组 织培养途径,能高效、稳定地再生无性 系,并能接受外源DNA整合,对转化选择 性抗生素敏感的再生系统。
2.较高的遗传稳定性 植物受体系统接受外源DNA后不影响其自身的遗传
体系,同时又能稳定地将外源基因遗传给后代,保
持遗传的稳定性。 组织培养发现体细胞无性系变异非常普遍,而这些 变异与组织培养的方法、再生途径及外植体的基因 型等都有密切关系。 因此,在建立基因转化系统时应充分考虑到这些因素, 确保转基因植物的遗传稳定性。
20世纪70年代以来,对植物基因转化受体系统的研 究已进行了大量的工作,先后建立了多种有效的受 体系统,适应于不同转化方法的要求和不同的转化 目的。这些受体系统类型各有所长。
植物组织培养转化受体系统
植物非组织培养转化受体系统
二、植物组织培养转化受体系统
愈伤组织再生系统 直接分化再生系统 原生质体再生系统 胚状体再生系统
胚状体胚性细胞接受外源DNA能力强,是理想的基因
转化感受态细胞;
多数为单细胞起源,嵌合体少; 具有两极性,可分化出芽和根,减少生根培养环节;
利用转基因胚状体可以生产人工种子;
个体遗传背景一致、无性系变异小、胚结构完整、成 苗快、数量大等,有利于转基因植株的生产和推广; 现今普遍认为胚状体是较理想的基因转化受体系统。
胚状体再生系统 胚状体是指经体细胞胚发生而形成的形态结构和功能 上类似于有性胚的结构,又称为体细胞胚。与有性胚 一样,在一定条件下可发育成完整的植物体。 有些植物本身在自然条件下其珠心组织或助细胞就 可自发地形成胚状体。 组培过程中,一些体细胞及其单倍体细胞也诱导形 成胚状体。

原生质体转化法

原生质体转化法原生质体转化法是以原生质体为受体的转基因方法的总称。

该方法包含两个重要的部分:原生质体的分离与再生和外源DNA 转化。

根据外源DNA 转化方法的不同可分为PEG介导转化法、电击法、脂质体介导转化法、显微注射法和农杆菌介导法等原生质体转化法。

原生质体的分离是原生质体转化法的核心步骤。

历史上原生质体的分离经历了以下三个重要阶段:(1)1892年,Klercker采用机械法进行了植物原生质体的分离。

(2)1960 年,Cocking 使用疣孢漆斑菌(Myrothecium verrucaria)培养物制备的高浓度的纤维素酶溶液降解细胞壁,获得大量有活力的裸细胞(原生质体)。

(3)1968年,Takebe首次使用商品酶(离析酶和纤维素酶)消化掉了烟草叶肉细胞细胞壁,释放出原生质体。

自此,植物原生质体变成了一个热门的研究领域。

原生质体作为转化受体具有以下优点:(1)无细胞壁的原生质体的细胞全能性较普通细胞更好。

(2)原生质体是单细胞系统,没有或较少受周围细胞和微环境的影响。

(3)原生质体再生的植株也是由单细胞发育而来,性状易纯化且遗传稳定。

所以向原生质体导入外源基因比向其他外植体导入外源基因有更大的优势,成为遗传转化中一种良好的受体。

由于基因枪技术的不断发展,向植物体直接导入外源基因已不再像以前那么困难,所以原生质体转化法的应用日趋减少,但在特定条件下,如转移细胞器及DNA 大片段时仍有一定的应用价值。

一、基本原理植物细胞壁由中胶层(主要成分果胶质)、初生壁(主要成分纤维素和半纤维素)和次生壁(主要成分纤维素,一般也含有木质素)三部分组成,利用果胶酶和纤维素酶消化植物细胞壁,释放出原生质体。

以原生质体为转基因受体,采用转基因方法,如PEG介导转化法通过改变质膜透性,促进外源DNA 进入已分离的植物原生质体,然后经过转化原生质体组织培养获得转化植株。

二、转化方法主要包括植物原生质体的分离和外源基因转化两个重要部分。

植物激素配比对大蒜茎盘愈伤组织再生体系的影响

Ab ta t P a tgo t e uaospa n i otn oei l rc se f lnltrg n rt n f m h tm sr c : ln r w h rg ltr ly a mp r t l n fe po e sso a t e e eai o tese a r i p e o r ds al o al . E p r na aa s g e t t a ic c l f rc i g i x ei tld t u g ss h t2,4 D i mo ti otn o se ds alsid cin me - s s mp r tt tm ic c l n u t . a u o
根分化的影响, 以为进一步完善大蒜 的快繁体系提供依据。 可
1 材 料 与 方 法
1 1 材料 .
试验材料均为苏联改 良蒜的茎盘 。
12 方 法 .
取通过 自 然休眠的苏联大蒜 的蒜瓣 , 剥去外层保 护叶 , 去除基部褐色蒜 踵 , 流水 冲洗 3 6 i 后 , 用 0~ 0m n 用 7 %酒精消毒 3 , 0 0S然后再用 0 1 .%升汞消毒 2 i, 0mn 用无菌水冲洗 5次。接种前先用无菌滤纸轻轻吸干材料表
摘要: 植物激 素对 大蒜 茎盘愈伤 组织再 生的各 个环节都发挥 着重要 的作用。试验结果表 明 : ,一 2 4D对 茎盘愈 伤组织 的诱
导具有 主要 作用 , 高浓度 的 24D有利于大蒜愈伤组 织的诱 导 , 并不利于其增殖分化 。M + A m / + A 1 gL , - 但 s N A2 gL B m /
等为外植体的多种大蒜组织培养再生体系。大蒜的离体再生途径主要有愈伤组织途径和不定芽途径 , 其中, 愈伤
组织途径通过外植体的脱分化进行植株建成。植物激素对大蒜愈伤组织再生途径的每个 过程都起着重要作用 , 但 目前对此进行的系统研究较少。因此 , 通过系统 的研究植物激素对茎盘愈伤组织的诱导 、 继代、 不定芽分化和

植物愈伤组织培养


酶活力 增加
细胞的 大小变 化不大
第一节 植物愈伤组织及形成过程
二 植物愈伤组织的形成过程:
诱导期长短
植物种类
外植体生理状 况
ห้องสมุดไป่ตู้
外部因素
第一节 植物愈伤组织及形成过程
二 植物愈伤组织的形成过程:
分裂期:细胞通过一分为二的分裂,不断
增生子细胞
细胞分裂 快
结构疏松
缺少有组 织的结构
颜色浅而 透明
第一节 植物愈伤组织及形成过程
生细胞
愈伤组织
第一节 植物愈伤组织及形成过程
一 植物愈伤组织的形态结构:
由许多异质细胞集合而成的一个无一定形态结构的细胞聚集体。
松脆
有大量的分 生组织中心
内有大量的 细胞间隙
细胞排列无 次序
致密
无大的细胞 间隙
管状细胞组 成维管组织
第一节 植物愈伤组织及形成过程
一 植物愈伤组织的形态结构:
生 液泡细胞所占比例较高
第三节 植物愈伤组织培养条件与定向诱导
一 植物愈伤组织培养条件:
外植体
• 材料的基因型 • 同一种植物的不同器官和组织 • 幼龄外植体
培养基
• 生长调节剂 • 无机营养元素 • 有机成分 • 物理性质
环境条件
• 光照 • 温度
第三节 植物愈伤组织培养条件与定向诱导
二 不同用途愈伤组织的定向诱导:
三 愈伤组织的形态发生方式:
器官


发生
分 离体器官、 化
分 化
发 育

组织或细
愈伤组织
根、芽等
植株

胚状体
植株
无激素 培养基
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上游: 5'-ACCATCGTCAACCACTACAT-3', 下 游 : 5'-AGTCCAGCTGCCAGAAACCC-3', 引 物由生物工程公司合成。 (3)Southern-blotting: Southern 杂 交 取 20 μg 纯 化后的 DNA 进行, 用 PCR 地高辛探针标试剂盒标 记质粒中的 bar 作为探针, 用随机引物法标记分子 标记, 用 CSPD 法显影。
关键词: 香白糯玉米; 幼胚; 愈伤组织; 根癌农杆菌
中图分类号: S513.01
文献标识码: A
The Optimiza tion of Re ge ne ra tion S ys te m from Ma ize Embryo a nd the Re s e a rch of the Agroba cte rium Tra ns forma tion
一般对诱导 产生胚性愈 伤组织来说 , MS 比 N6 好, 但对幼胚直接诱导再生植株则相反。MS 与 N6 的 主 要 区 别 在 于 氮 源 的 形 式 不 同 , NO3- 与 NH4+ 的 比值在 MS 中为 1.9, N6 中为 4.0。在体细胞胚发生 和植株再生时, 氮源起重要的调节作用。但在诱导产 生胚性愈伤 组 织 中 , MS 的 特 别 优 势 在 本 实 验 却 不 明显, 因为在叶分化阶段, 在 MS 培养基中的愈伤组 织对于叶的分化比在 N6 中的愈伤组织好, 但 N6 培 养基对于根的分化比 MS 培养基好(图 3、图 4)。而 在成苗阶段中, MS 与 N6 的区别不明显(图 5)。
摘 要: 实验以香白糯玉米为供试材料, 通过不同的培养条件比较优化玉米胚植株再生体系, 考察不同胚龄、
不同的培养基对糯玉米幼胚的愈伤诱导、分化、成苗的影响。用根癌农杆菌 GV3850 介导转化了 CpTI 和 Bar 基因, 获
得 5 株 PCR 和 Southern 杂交表现阳性的植株, 建立了农杆菌在香白糯玉米上的基因转化体系。
2 结果与分析
2.1 糯玉米幼胚再生体系的优化 2.1.1 不同胚龄对再生体系的影响
图 2 不同胚龄的玉米胚性愈伤组织之间的比较 (接种后 23 d)
Fig.2 Comparison of callus derived from different aged embryos
28
玉米科学
15 卷
诱 导 愈 伤 情 况 对 照 结 果 见 图 2。 结 果 表 明 , 15~21 胚龄的 玉米幼胚能 更多地诱 导 出 胚 性 愈 伤 组织, 而且愈伤组织也比较疏松。胚龄在 15~21 d 的香白糯玉米幼胚相对来说比较合适作玉米胚性植 株再生体系。 2.1.2 MS 与 N6 对再生体系的影响
农杆菌介导法进行基因转化通常是利用根癌农 杆菌介导植物的胚性愈伤组织, 如介导玉米幼胚愈 伤组织使其成为转基因作物。不同发育时期的幼胚, 离体培养成功率差异很大。一般胚龄越大成功率越 高。有报道指出玉米幼胚胚龄越小可能对基因转化 越有利。同时, 离体培养幼胚的成功率很大程度上取 决于培养基的组成。对不同胚龄的诱导性愈伤组织 进 行 比 较 , 并 且 针 对 两 种 不 同 的 培 养 基(MS 与 N6) 考察它们在愈伤不同发育时期的培养结果。本实验 以玉米幼胚为转化受体, 优化转化条件, 改进转化技 术, 提高农杆菌介导转化频率, 并在此基础上, 将 CpTI 和 Bar 基因导入香白糯玉米自交系中。
XbaI BamHI EcoRI HindⅢ
RB
LB
35S 35S
CPTI
bar
TN2S
图 1 植物表达载体 P BC302- 3 简图 Fig.1 Map of expression vector (PBC302- 3)
1.1.3 培养基 MS: MS 有 机 +MS 大 量 +MS 微 量 + 铁 盐(MS
LIANG Xue- lian, LIANG Hong, ZHU Jian- biao, et al. (Life Science College, Zhongkai University of Agricultural and Technology, Guangzhou 510225, China) Abs tra ct: The paper got the optimized regenerative system from immature embryo by comparing the different tis- sue culture mediums and examining the infection rate in different phases of different aged maize embryos. The experi- ment used the agrobacterium tumefaciens GV3850 to transfer Guangnuo maize and obtained 5 positive transgenic plants by PCR and Southern- blotting. Ke y words : Glutinous maize; Immature embryos; Callus; Agrobacterium tumefaciens
5 种胚龄的愈伤组织, 分别浸泡 5、10、15 min 进行 感染对照。
(4)共培养: 将感 染 后 的 愈 伤 组 织 放 在 无 菌 滤 纸 上 晾 干 , 然 后 分 别 接 入 共 培 养 基 中 , 25℃进 行 暗 培养。
(5)杀菌筛选培养: 共培养 3 d 后, 将共培养的愈 伤组织分别放入加有羧苄青霉素的无菌水中漂洗, 洗去其表面的农杆菌, 然后在无菌滤纸上晾干。待晾 干后分别放入杀菌筛选培养基, 25℃进行暗培养。期 间做好观察、记录, 根据愈伤组织产生的脓状物决定 更换新的杀菌筛选培养基。
1.1.1 材料 以 香 白 糯 玉 米 为 供 试 品 系 , 在 上 午 10: 00~
11: 00 时授粉后用纸袋套好雌蕊, 分别于授粉后第 12、15、18、21、25 天摘取幼穗放置冰箱备用。 1.1.2 农杆菌菌株及质粒
菌株为根癌农杆菌 GV3850, 由美国 Miami Uni versity 李庆顺博士惠赠。该菌株内含质粒 pcB302-3。 质粒的 T-DNA 区含有抗虫基因豇豆蛋白酶抑制基 因(CpTI)和 耐除草剂基 因(Bar)(图 1)。 取 30 μL 菌 液, 接种于 30 mL 加 有 50 μg/mL 卡那霉素 的 LB 液体培养基中, 37℃条件下 250 r/min 振荡培养。
玉 米 科 学 2007, 15(3): 26~29 文章编号: 1005- 0906(2007)03- 0026- 04
Journal of Maize Sciences
香白糯玉米农杆菌转化体系的建立
梁雪莲, 梁 红, 朱建标, 苏杏妹, 曾慕衡, 王晓明, 张 璧
(仲恺农业技术学院, 广州 510225)
(6)分化培养: 待愈伤组织没有再产生脓状物或 产生很少的脓状物后, 将不同胚龄的愈伤组织转入 分化培养基, 在光照下进行分化培养。
(7)生根培养与(8)炼苗与再生体系相同。 1.2.3 转化植株的分子检测
(1)DNA 提取: DNA 提取采用改良 SDS 碱裂解 法。
(2)PCR 检 测 : PCR 扩 增 体 系 为 25 μL, 扩 增 程 序 为 : 94℃ 预 变 性 45 s; 58℃ 退 火 45s; 72 ℃ 延 伸 1 min 45 s; 30 个循环; 72℃延伸 10 min。根据质粒中 bar 基因序列设计引物如下(其扩增片段为 438bp):
1 材料与方法
1.1 材料
收稿日期: 2007-01-17; 修回日期: 2007-03-28 基金项目: 仲恺农学院项目(G3061322) 作者简介: 梁雪莲(1969-), 女 , 山 西 文 水 人 , 副 研 究 员 , 博 士 , 主 要 从
事农作物转基因工作。Tel: 13424101002 E-mail: liangxuelian2005@sina.com
2.2 农杆菌的感染 用根癌农杆菌感染愈伤组织时应将培养瓶放于
25℃暗环境, 每天观察感染的情况, 根据农杆菌的繁 殖速度及其产生的脓状物来决定更换培养基。一般 来说, 刚感染时应坚持勤换培养基做好继代工作, 移 植到生根培养基后应注意尽量少更换培养基。因为, 生根培养基含琼脂的比例比其他的培养基高, 每次 更换时都会对幼苗的根造成损伤, 从而会影响幼苗 的 生 长 。另 一 方 面 根 癌 农 杆 菌 感 染 的 时 间 也 是 关 键 , 感染时间太短则效果不好, 太长则会造成幼胚的死 亡。本实验开始时没做好继代工作, 后来又多次更换 生根培养基, 所以造成很多转化幼苗伤害,获得农杆 菌感染的玉米幼苗的数量很少(图 6、图 7)。
培养基成分与以下 N6 培养基相同)
3期
梁雪莲等: 香白糯玉米农杆菌转化体系的建立
27Leabharlann N6: N6 有机 + N6 大量 + N6 微量 + 铁盐 诱 导 培 养 基 (pH=5.8): N6+Gln (500 mg/L)+CH (300 mg/L)+AgNO3(10 mg/L)+ 甘露醇(20 g/L)+ 蔗糖 (20 g/L)+0.7%琼脂 +2,4-D(2 mg/L) 感染培养基(pH=5.2): N6+ 肌醇(100 mg/L)+pra- line(300 mg/L) +2,4-D(2 mg/L)+3%葡萄糖 +6%蔗糖 +400 μL/LAS(50 mg/L) 共 培 养 培 养 基 (pH=5.8): N6+ 肌 醇 (100 mg/L) +proline(300 mg/L) +2,4-D(2 mg/L)+1%葡 萄 糖 +2% 蔗糖 +400 μL/LAS(50 mg/L)+0.5%~0.6%琼脂 杀菌 筛 选 培 养 基(pH=5.8): N6+ 肌 醇(100 mg/L) +proline (300 mg/L)+2,4-D (2 mg/L)+3%蔗 糖 +PPT (2~4 mg/L)+0.5%~0.6%琼脂 分化培养基(pH=5.8): N6+ 肌醇(100 mg/L)+pro- line(300 mg/L) +3%蔗糖 +PPT(2 mg/L)+ 0.6%琼脂 生根培养基(pH=5.8): 1/2 N6(只有大量和微量元 素, 除去有机 元素成分)+IBA (1.0 mg/L) +2%蔗 糖 +PPT(2 mg/L)+ 1%琼脂 1.2 方法 1.2.1 再生体系的构建 (1)诱 导 培 养 : 将 授 粉 后 第 12、15、18、21、25 天 的玉米穗剥掉外苞叶, 在超净工作台上用 70%的酒 精浸泡 5 min 灭菌, 然后用 0.1% HgCl 浸泡 15~20 min 消毒, 同时把镊子、刀子等工具也浸泡消毒。用 无菌水冲洗玉米穗 3 次, 削去玉米果穗的部分胚乳, 用镊子将幼胚挑出, 放入预先准备好的诱导培养基 里(每个培养皿大约放 30 个左右), 然后放到 25℃的 暗箱进行暗培养。 (2)分化培养: 大约 1 个月后将愈伤组织转入分 化培养基, 在 25℃光照下进行分化培养。 (3)生根培养: 大约 3 周左右, 将分化出叶、根的 愈伤组织转入生根培养基, 在光照下进行生根培养。 (4)炼苗: 1 个月左右后, 将培养瓶的盖子打 开, 加上适量的水分, 在光照下进行培养。1 周后将幼苗 移至蛭石中进行育苗。 1.2.2 农杆菌的转化筛选 (1)根癌 农 杆 菌 的 培 养 : 取 30 μL 菌 液 , 接 种 于 30 mL 加 有 50 μL 卡 那 霉 素 的 LB 液 体 培 养 基 中 , 27℃条件下 250 r/min 振荡培养。 (2)介导材料的培养: 取授粉后第 12、15、18、21、 25 天的玉米幼胚诱导愈伤培养 1~3 周备用。 (3)根癌农杆菌 的感 染 : 在 超 净 工 作 台 上 , 将 灭 菌过的培养皿加入约 20 mL 的感染培养基, 再加入 20 μL 的农杆菌菌液, 摇匀, 然后分别接入预备好的
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