测序基本步骤
一代测序流程
一代测序流程一代测序是指通过一种高通量测序技术，对DNA或RNA样本进行测序，从而获取样本的全基因组或转录组信息。
一代测序技术的发展，为科研工作者和临床医生提供了更多的遗传信息，有助于揭示疾病的发病机制、诊断和治疗方法的研究。
一代测序流程主要包括样品准备、文库构建、测序仪测序、数据分析和结果解读等步骤。
下面将对一代测序流程进行详细介绍。
首先是样品准备。
样品可以是DNA、RNA或其它类型的核酸。
在样品准备阶段，需要对样品进行提取、纯化和定量，确保样品的质量符合测序的要求。
此外，还需要对样品进行质控，检测样品的完整性和纯度，以确保后续步骤的顺利进行。
接下来是文库构建。
文库是指将样品中的DNA或RNA片段连接到测序适配器上，构建成文库，为后续的测序提供样品。
文库构建的关键步骤包括DNA片段的剪切、末端修复、连接适配器和PCR扩增等。
在文库构建过程中，需要严格控制各个步骤的条件和时间，以确保文库的质量和可靠性。
然后是测序仪测序。
文库构建完成后，样品就可以送入测序仪进行测序。
测序仪会根据测序平台的不同，采用不同的测序技术进行测序，如Illumina、Ion Torrent、PacBio等。
在测序过程中，测序仪会逐个读取文库中的DNA或RNA片段，并生成原始的测序数据。
接着是数据分析。
测序仪生成的原始测序数据需要进行数据分析，将原始数据转化为可解读的生物信息学数据。
数据分析的步骤包括序列质量控制、序列比对、变异检测和功能注释等。
通过数据分析，可以获取样品的基因组或转录组信息，识别基因突变、表达差异和功能通路等生物学信息。
最后是结果解读。
在数据分析完成后，需要对分析结果进行解读，理解样品的生物学意义。
结果解读需要结合实验设计和科研目的，对数据分析结果进行综合分析和解释，从而得出科学结论，并为后续的研究或临床诊断提供参考。
总的来说，一代测序流程是一个复杂的过程，涉及样品准备、文库构建、测序仪测序、数据分析和结果解读等多个环节。
单细胞测序步骤
单细胞测序步骤单细胞测序技术正在发挥重要作用，它能够从每一个来源中捕获基因组项目的元素，并且能够提供更高的分辨率和密度，从而提供大量的细胞信息和转录组数据。
然而，单细胞测序技术的实现过程较为复杂，主要包括细胞分选、样品抽取、DNA转录和测序等步骤。
本文将详细介绍单细胞测序的具体步骤。
第一步，细胞分选：通常情况下，单细胞测序过程的前期细胞分选是必须的，对细胞进行分选可以有效地获得高质量的细胞样本，从而提高整个测序过程的质量。
比如，使用流式细胞术(FACS)可以有效地划分不同功能的细胞，也可以通过悬液单细胞选择器(LSM)获取高质量的单细胞来源。
第二步，样品抽取：单细胞抽取是单细胞测序过程中必不可少的一步。
一般来说，用流体力学过程将细胞样本从载体中单独抽取出来，提取出的细胞以后才能继续进行后续的实验步骤。
手动抽取技术可以实现快速、稳定、可重复地抽取单细胞样本，而实现抽取自动化的机器人系统更加灵活，能够有效地降低抽取时间，提高可靠性。
第三步，DNA转录：细胞的DNA转录是单细胞测序的关键步骤，将DNA序列转换成新的RNA序列，从而可以获取基因表达信息。
常见的DNA转录方法有两种：全转录和基因特异性转录。
由于全转录采用的是普适的逆转录试剂，复杂的序列反应可以进行转录，因此能够获取较高质量的RNA序列；而基因特异性转录则采用特定的逆转录酶，可以获取基因特异性的表达信息。
第四步，测序：测序是单细胞测序过程中非常重要的一步，用于获取准确而可靠的序列信息。
目前常用的单细胞测序技术主要集中在两个方面：一是核酸测序，包括单碱基扩增重复序列(single base extension repeat sequencing)、测序通孔阵列(sequencing by hybridization array)等，它们能够提供高质量的DNA序列数据；二是蛋白测序，如核磷酸链酶定量序列(nucleosome chain enzyme quantification sequencing)、弹性波分子测序(elastic wave molecule sequencing)等，可以获取蛋白质和信号分子组成比、稳定性等信息。
mrna测序流程
mrna测序流程
mRNA测序流程主要包括以下几个步骤：
1. 总RNA提取：从细胞或组织中提取总RNA。
提取后的总RNA要进行纯度、浓度、完整性的质量检查。
不同样品的total RNA中mRNA含量差异较大，若total RNA起始投入量过低，不能保证有足够的mRNA用于后续建库，因此建议RNA起始量为1～4μg。
2. mRNA分离：由于总RNA中混杂着多种不同的RNA分子，需要通过逆转录反应将mRNA转化为cDNA。
3. cDNA文库构建：将cDNA连接到适当的接头上，并克隆到文库载体中，从而构建cDNA文库。
4. 文库质量检测：对构建好的文库进行质量检测，包括插入片段大小分布、阳性克隆比例等指标。
5. 高通量测序：将文库中的cDNA分子进行高通量测序。
6. 数据分析：对测序得到的数据进行质控及过滤，然后进行比对、表达量分析等生物信息学分析。
sanger法测序步骤
sanger法测序步骤
Sanger法测序的步骤如下：
1.在进行聚合反应时，有可能结合上ddNTP且终止反应，也有可能结合上正常dNTP正常反应，直到结合上ddNTP终止反应。
反应结束生成长短不一的含有荧光标记的DNA片段混合物（荧光颜色与模板的碱基有互补对应的关系）。
2.过滤混合物，去除ddNTP等其他杂质，只留下长短不一的DNA片段。
3.上机测序。
先在长长的中空的玻璃毛细管中注入丙烯酰胺溶液，用紫外光照射丙烯酰胺溶液发生聚合反应变成聚丙烯酰胺凝胶。
聚丙烯酰胺凝胶对于在其中电泳的核酸有分离作用，短的片段在其中电泳得快，长的片段在其中电泳的慢。
把DNA片段混合物，加到有聚丙烯酰胺凝胶的毛细管的一段，在毛细管的两端加上高电压，DNA片段就在电场的作用下，从负极向正极电泳。
4.从所得图谱即可直接读得DNA的碱基序列。
高通量测序流程和原理
高通量测序流程和原理高通量测序是一种快速、准确地测定DNA或RNA序列的技术，它在生物学研究、医学诊断和药物研发等领域发挥着重要作用。
本文将介绍高通量测序的流程和原理，帮助读者更好地理解这一技术。
高通量测序的流程主要包括样品准备、文库构建、测序仪测序和数据分析四个步骤。
首先，样品准备阶段需要从生物组织中提取DNA或RNA，并进行纯化和定量。
接下来是文库构建，这一步骤包括将DNA或RNA片段连接到测序适配器上，并进行PCR扩增，然后通过尺寸筛选和纯化得到文库。
然后，文库被加载到测序仪中进行测序，测序仪会通过不同的化学方法和光学检测技术获取DNA或RNA片段的序列信息。
最后，通过数据分析软件对测序得到的数据进行处理，包括序列拼接、比对、变异检测等步骤，最终得到样品的DNA或RNA序列信息。
高通量测序的原理是基于DNA或RNA的合成和测序技术。
在测序过程中，DNA或RNA片段会被适配器连接，并通过PCR扩增得到文库。
然后，文库中的DNA或RNA片段会被固定在测序仪的表面上，并进行碱基的逐个添加和检测。
测序仪会通过光学检测技术记录每个碱基的信号强度，并将其转化为序列信息。
最后，数据分析软件会对这些信号进行处理，得到样品的DNA或RNA序列信息。
高通量测序技术的发展使得科研人员能够更快速、更准确地获取大规模DNA或RNA序列信息，从而推动了基因组学、转录组学和表观基因组学等领域的发展。
同时，高通量测序技术也在临床诊断和个性化医疗中发挥着越来越重要的作用。
总的来说，高通量测序的流程主要包括样品准备、文库构建、测序仪测序和数据分析四个步骤，其原理是基于DNA或RNA的合成和测序技术。
这一技术的发展对于推动生物学研究、医学诊断和药物研发具有重要意义，相信随着技术的不断进步，高通量测序技术将会在更多领域展现出其巨大的潜力。
单细胞测序之基本的数据处理基本流程
单细胞测序之基本的数据处理基本流程1.数据质控：数据质控是单细胞测序数据处理的第一步，其目的是对原始数据进行过滤和剔除质量差的细胞。
常见的数据质控指标包括读取数、基因表达数、基因覆盖度、外源RNA比例、低质量细胞比例等。
读取数和基因表达数可以用来评估测序深度和数据完整性，基因覆盖度可以用来评估测序覆盖的均匀性，外源RNA比例可以用来评估细胞捕获的纯度，低质量细胞比例可以用来评估细胞的RNA完整性。
2.数据预处理：数据预处理是单细胞测序数据处理的第二步，其目的是对原始数据进行标准化和去噪。
常见的数据预处理方法包括基因表达的归一化、批次效应的移除、PCR放大偏差的校正等。
基因表达归一化是指通过一系列数学变换将细胞之间的基因表达进行标准化，以解决测序深度的差异带来的问题。
批次效应的移除是指通过线性模型或非线性模型将不同批次的数据调整到同一水平，以消除批次效应对单细胞聚类和差异表达的影响。
PCR放大偏差的校正是指通过数学建模和统计推断将PCR放大过程中引入的偏差进行校正，以提高数据的准确性。
3.单细胞聚类：单细胞聚类是单细胞测序数据处理的第三步，其目的是将相似的细胞归为同一类别。
常见的单细胞聚类方法包括层次聚类、K 均值聚类、Gaussian 混合模型聚类等。
单细胞聚类的基本原理是通过定义相似度度量和聚类算法，将细胞之间的相似性转化为距离或相似性矩阵，然后将相似的细胞归为同一类别。
聚类的结果可以通过可视化和生物学功能注释来进一步理解细胞的类型和状态。
4.差异分析：差异分析是单细胞测序数据处理的最后一步，其目的是比较不同细胞类型或状态之间的基因表达差异。
常见的差异分析方法包括差异基因分析、差异表达矩阵构建和富集分析等。
差异基因分析是指通过统计方法比较不同细胞类型或状态之间的基因表达水平，以识别具有显著差异的基因。
差异表达矩阵的构建是指将差异基因根据其差异表达的程度和模式进行聚类和可视化，以揭示不同细胞类型或状态之间的表达特点和变化趋势。
sanger测序的原理和步骤
Sanger测序，也被称为双脱氧链终止法，是一种用于确定DNA或RNA序列的技术。
以下是其原理和步骤：
原理：
Sanger测序基于DNA聚合酶的DNA合成过程，通过添加双脱氧核苷三磷酸（ddNTP）来终止DNA链的延伸，从而得到一系列不同长度的DNA片段。
ddNTP与普通dNTP的区别在于其3′端缺少一个羟基，这使得ddNTP在DNA合成过程中不能形成磷酸二酯键，从而导致DNA合成反应中断。
通过在反应中加入四种不同的ddNTP，可以得到包含不同长度的DNA片段，从而揭示出DNA分子中核苷酸的顺序。
步骤：
DNA模板制备：从待测序的DNA样品中提取出目标DNA片段，并进行PCR扩增，得到足够的DNA模板。
DNA合成反应：在PCR扩增反应中，加入四种不同的dNTP和一种ddNTP。
由于ddNTP可以随机地终止DNA链的延伸，因此可以得到一系列不同长度的DNA片段。
电泳分离：将得到的DNA片段进行电泳分离，使不同长度的DNA 片段得以分离。
检测：通过放射自显影等技术对电泳结果进行检测，从而确定DNA 序列。
一代测序流程
一代测序流程
一代测序是指通过测序仪器一次性读取DNA或RNA样本的全部信息，是基因组学研究中常用的一种测序方法。
一代测序流程主要包括样本提取、文库构建、测序仪器运行和数据分析等步骤。
首先，样本提取是一代测序的第一步，也是最关键的一步。
在样本提取过程中，需要从生物组织中提取出DNA或RNA，并进行纯化和定量。
这一步的成功与否直接影响后续的文库构建和测序结果。
接下来是文库构建，文库是指将提取的DNA或RNA样本转化为可以被测序仪器识别的文库。
文库构建包括断裂DNA或RNA、连接适配体、PCR扩增等步骤。
在这一步中，需要严格控制各个环节的操作，以确保文库的质量和稳定性。
文库构建完成后，就是测序仪器的运行。
在测序仪器运行过程中，DNA或
RNA样本会被逐个碱基地读取，并转化为电信号。
测序仪器会将这些电信号转化
为序列信息，并输出原始测序数据。
这一步需要仔细监控测序仪器的运行状态，以保证数据的准确性和完整性。
最后是数据分析，数据分析是一代测序流程中最为复杂和耗时的步骤之一。
在
数据分析过程中，需要对原始测序数据进行质控、序列比对、变异检测等一系列分析。
通过数据分析，可以获得样本的基因组序列、基因表达水平、基因突变情况等重要信息。
总的来说，一代测序流程是一个复杂而又精细的过程，每一个步骤都需要严格
控制和操作。
只有在每一个环节都做到精准和可靠，才能够获得高质量的测序数据，为后续的基因组学研究提供可靠的数据支持。
DNA测序实验室标准作业流程
DNA测序实验室标准作业流程一、引言DNA测序在现代生物学和医学领域具有广泛的应用，为了确保测序结果的准确性和可靠性，建立一套标准化的DNA测序实验室作业流程至关重要。
本文档旨在详细阐述DNA测序实验室的标准作业流程，以指导实验室人员进行规范的操作。
二、实验材料与设备2.1 实验材料- 基因组DNA模板：从样本中提取的基因组DNA。
- 测序试剂盒：包含测序引物、酶、缓冲液等。
- 测序仪器：用于DNA测序的仪器，如Illumina测序平台。
- 标记标签：用于标记DNA模板，便于测序仪识别。
- 对照品：用于质量控制的已知序列DNA模板。
2.2 实验设备- 离心机：用于DNA提取、纯化和分离。
- PCR仪器：用于扩增目的基因。
- 测序仪器：用于DNA测序，如Illumina测序平台。
- 生物安全柜：用于操作生物样本，防止交叉污染。
- 移液器：用于准确移取试剂和样本。
- 恒温孵育器：用于DNA扩增和测序反应的保温。
三、实验步骤3.1 DNA提取与纯化1. 取适量样本，加入裂解液，进行充分裂解。
2. 加入蛋白酶K，进行消化，去除蛋白质。
3. 加入无水乙醇，沉淀DNA，并进行洗涤。
4. 重溶DNA，并进行定量分析。
3.2 DNA扩增1. 设计并合成测序引物，进行PCR扩增。
2. 设立阴性对照，检测PCR反应体系是否有污染。
3. 进行PCR扩增，监控扩增曲线和产物大小。
4. 扩增产物进行纯化，备用。
3.3 DNA测序1. 按照测序试剂盒说明书进行反应体系配制。
2. 将基因组DNA模板与测序引物进行连接，加入反应体系。
3. 将反应体系加入测序仪器，进行测序反应。
4. 测序数据通过仪器进行分析，生成序列结果。
3.4 质量控制1. 对照品测序：使用已知序列的DNA模板进行测序，以验证仪器和操作的正确性。
2. 样本测序：对提取、扩增和测序过程中的各个环节进行质量控制，确保测序结果的准确性。
3. 数据质控：使用测序软件对原始数据进行质控，包括去除低质量序列、比对到参考基因组等。
hic测序原理
hic测序原理hic测序（Hi-C sequencing）是一种高通量测序技术，用于研究染色体的三维空间结构和基因组互作关系。
该技术的原理基于染色体在细胞核内的物理交联，通过交联的染色体片段间的连接，确定染色体的空间接触。
hic测序的基本步骤包括：1）细胞固定：细胞被交联固定，以保持染色体的空间结构不受扰动；2）染色体切割：染色质被酶切割成短片段，生成带有交联点的DNA片段；3）连接：切割的DNA片段被连接，形成环状DNA分子，其中连接点表示染色体的空间接触；4）测序：连接的DNA分子经过测序，确定交联的染色体片段的序列。
hic测序的主要应用之一是研究染色体的空间结构和基因组互作。
通过测量染色体片段间的连接频率，可以得到染色体的空间接触图谱，从而揭示染色体的组织和折叠方式。
这对于理解基因组的功能和调控机制非常重要，因为基因表达和调控往往与染色体的空间结构密切相关。
此外，hic测序还可以用于研究基因组中的长程染色体相互作用。
长程相互作用指的是不同染色体之间的互动，如染色体间的结合、共抑制或共激活等。
通过hic测序，可以鉴定出不同染色体片段之间的连接，从而识别出基因组中不同染色体的相互作用，并揭示其在基因调控中的作用。
在最近的研究中，hic测序也被应用于研究疾病的发生机制。
例如，hic测序可以帮助我们了解染色体重排事件对基因组结构和功能的影响，从而揭示与疾病相关的变异和突变。
此外，通过hic测序，还可以探索染色体异常与疾病之间的关系，例如癌症中的染色体重排和染色体转位等。
综上所述，hic测序是一种重要的高通量测序技术，可用于研究染色体的空间结构、基因组互作和疾病发生机制。
随着该技术的不断发展和改进，我们对于基因组的理解将会更加深入，为研究和治疗疾病提供更多的线索和可能性。
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• 该酶的专一性比较低，切点多，生成肽 段包括含有二硫键的肽段比较小，对后 面的分离、鉴定比较容易；
• 该酶的作用pH在酸性范围，有利于防止 二硫键发生交换而造成的麻烦。
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反向遗传法分析多肽链的氨基酸序列
基本原理：中心法则 基本步骤： 1、分离编码蛋白质的基因 2、测定DNA序列 3、排列mRNA出序列 4、按照三联密码原则推演氨基酸序列
A
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为什么进行蛋白质测序?
基因组测序,为了破译遗传密码.现在密码已破,那进行蛋白质组测序有必要 吗?
基因研究贯穿了整个20世纪,100多年里,双螺旋结构的提出,中心法则的发 现,直至基因组的重大突破,使基因研究达到了前所未有的深度与广度. 然而,基因只是信息的携带者,蛋白质才是执行者.基因组计划有其固有的局限性, 基因组测序是否正确,要从其表达的蛋白来验证,否则,只是一堆乱码而已.3.5万 左右基因中一半以上是理论推断,需要从蛋白质角度确认.而且,从蛋白质研究的 自身发展来看,我们无法逃避蛋白质组表达谱分析,只是时间问题而已.
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萃取： 将该衍生物用有机溶剂（例如氯丁烷）从反应 液中萃取出来，而去掉了一个N-端氨基酸残基 的肽仍留在溶液中。 转化： 萃取出来的噻唑啉酮苯胺衍生物不稳定，经酸 作用，再进一步环化，形成一个稳定的苯乙内 酰硫脲（PTH）衍生物，即PTH-氨基酸。
Edman降解法测序每次只能测定几十个氨基酸残基， 所以要测定较大蛋白质的氨基酸序列，需要将其降解为 一些肽段，经HPLC分离出各个肽段，然后再进行 Edman降解测序。
羧肽酶 来源
专一性
CpA
胰脏
能释放除Pro、Arg、Lys外的所有
的C-端氨基酸
CpB
胰脏
主要水解C-端为Arg、Lys的肽键
CpC 植物或微 相当广泛，几乎能释放C-端的所有
生物
氨基酸
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还原成氨基醇法
• 多肽C-端氨基酸可被硼氢化锂（LiBH4） 还原成α-氨基醇，用层析法可以鉴定氨 基酸种类。
蛋白质一级结构（primary structure）的测定
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• 蛋白质测序的发展简史
自从1953 年Sanger首次完成胰岛素的 氨基酸顺序测定以来，目前已有很大改进。 但是Sanger花费多年时间才基本搞清胰岛 素的一级结构，现在由于方法改进及自动 化分析仪器的产生，现在已有数百种蛋白 质的氨基酸序列问世。
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氨基酸序列测定的基本步骤（化学方法）
分析已纯化蛋白质的氨基酸残基组成 测定多肽链的氨基末端和羧基末端
为何种氨基酸 把肽链水解成片段 测定各肽段的氨基酸排列顺序 综合运用多种水解法分析肽段中的氨基酸顺序
A
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测序前的准备工作
要求： 样品纯度：97%以上 相对分子质量：允许误差在10%左右
（一）多肽链的拆分 几条多肽链借助非共价键连接在一起，称为寡聚蛋白质；可用 8mol/L尿素或6mol/L盐酸胍或高浓度的盐处理，即可使寡聚蛋白质 中的亚基。 如果多肽链间通过共价键（S—S）连接在一起，可采用氧化剂或还 原剂将其断裂。
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五、鉴定每个肽段氨基酸
顺序
ABCDE
*ABCDE
部分水解
*A,*AB,*ABC,*ABCD,*ABCDE
完全水解
*A,*A+B,……*A+B+C+D+E
DNFB
*A,*A+*B,……*A+*B*+*C+*D+* E
肽段经过分离纯化后， 即可进行氨基酸测序。但是 获得数据之后，还不能得出 整条多肽链的氨基酸排列顺 序，因为尚不清楚这些片段 在多肽链中的先后次序。一 般需要用到多种水解法，并 分析出各肽段的氨基酸顺序， 然后经过组合排列对比，最 终得出完整肽链中的氨基酸 序列。
（二）测定蛋白质分子中多肽链的数目 通过测定末端氨基酸残基的摩尔数与蛋白质分子量之间的关系，即 可确定多肽链的数目。
（三）二硫键的断裂 几条多肽链通过二硫键交联在一起，可在8mol/L尿素或6mol/L盐酸 胍存在下，用过量的β-巯基乙醇处理，使二硫键还原为巯基，然后 用烷基化试剂保护生成的巯基，以防它重新被氧化。
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一、氨基酸组成
蛋白质经盐酸水解后成为个别氨 基酸，用离子交换树脂将各种氨基酸分 开，测定它们的量，算出各氨基酸在蛋 白质中的百分组成或个数。
A
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A
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二、末端测定的具体方法
二硝基氟苯法（DNP法）
化学法 二甲基氨基萘磺酰氯法
肼解法
（Dansyl-氯法）
还原成氨基醇法
酶解法
亮氨酸氨肽酶法 细胞外氨肽酶法
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C-末端之肼解法
• 多肽与肼在无水条件下加热，C-端氨基酸即从肽链 上解离出来，其余的氨基酸则变成肼化物。肼化物 能够与苯甲醛缩合成不溶于水的物质而与C-端氨基 酸分离。
• 肼解过程中，谷氨酰胺、天冬酰胺、半胱氨酸等被 破坏而不易测出，C-末端的精氨酸转变为鸟氨酸
A
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羧肽酶法
• 羧肽酶是一种肽链外切酶，它能从多肽链的C-端逐个地 水解。根据不同的反应时间测出酶水解所释放出的氨基 酸种类和数量，从而知道蛋白质的C-端残疾顺序
• Sanger早期测定胰岛素C-末端氨基酸采 用此法。
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三、水解肽链成肽段
水解酶或化 水解部位 学试剂
胰蛋白酶 羧基侧
作用的氨基酸 赖氨酸、精氨酸
胰凝乳蛋白 羧基侧 酶
溴化氰 羧基侧
芳香族氨基酸（苯丙氨酸、色 氨酸和酪氨酸）
甲硫氨酸
•水解后得到的肽段，可用离子层析或其他层析方法将其分离 纯化。比如用双向电泳可以得到肽图，由此可知肽段的多少。
A
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四、 Edman降解法测定肽 段的氨基酸序列
耦联： 使用苯异硫氰酸酯（PITC）在pH9.0的碱性 条件下对蛋白质或多肽进行处理，PITC与肽 链的N-端的氨基酸残基反应，形成苯氨基硫 甲酰（PTC）衍生物，即PTC-肽。
水解： PTC-肽用三氟乙酸处理，N-端氨基酸残基 肽键被有选择地切断，释放出该氨基酸残基 的噻唑啉酮苯胺衍生物。
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六、确定肽段在多肽链中 的次序
利用两套或多套肽段的氨基酸顺序彼此间的交错 重叠，拼凑出整条多肽链的氨基酸顺序。
• — — — — — — — — — — — 多肽
• 氨基酸序列
重叠法：小片段重叠的原理主要 用于一级结构的测定
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七、确定原多肽链中二硫 键的位置
一般采用胃蛋白酶水解原来的含二硫键 的蛋白质
羧肽酶A法 羧肽酶B法 羧肽酶C法
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二硝基氟苯法(Sanger法）
2,4-二硝基氟苯在碱性条件下，能够与肽链 N-端的游离氨基作用，生成黄色二硝基苯衍 生物（DNP-氨基酸）
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氨基肽酶法
• 氨肽酶是一种肽链外切酶，它能从多 肽链的N-端逐个地向里水解。
• 根据不同的反应时间测出酶水解所释 放出的氨基酸种类和数量，按反应时 间和氨基酸残基释放量作动力学曲线， 从而知道蛋白质的N-端残疾顺序