家兔颈总动脉插管实验报告
家兔气管插管实验
取。 （2）耳缘静脉取血 常用于家兔。将家兔放在固定箱内，拔毛或用二甲 苯棉球擦拭耳廓，使耳部血管扩张，用粗针头刺破耳缘静脉，或用刀片 在血管上切口（方向可与血管平行或垂直）。血液自然流出。采血完 毕，用干棉球压迫止血。 （3）心脏取血 常需两人合作。一人将动物背位固定，一人持配7号针 头的10ml注射器，于胸壁心跳最明显处，将针头刺入心脏，直至取够血 量，迅速拔出针头。
取新鲜兔肺，剪成小块，洗净血液，磨成糊状。加入3-～4倍量的生理盐水，摇匀，放冰箱 中过夜，过滤后即可得到肺组织浸液。保存冰箱备用。
号针头。鼠类亦可从背部皮下注射，但需两个人合作完成。兔、狗、猫 常在背部或大腿内侧等皮下脂肪少的部位进行皮下注射，禽类常选翼下 注射。 （3）肌肉注射法 鼠类常选后肢外侧肌肉。兔、猫、狗多选臀部肌肉， 鸟类选胸肌和腓肠肌。方法为左手固定动物，右手持注射器，垂直刺入 肌肉，缓慢注射，注射完毕用手轻轻按摩注射部位，以利药物吸收。 （4）腹腔注射法 除蛙类外，几乎所有动物都可使用此法给药。 （5）静脉注射法 1）鼠类：常选用尾静脉。先将鼠固定于特制的鼠筒内或倒置的玻璃罩 下，使鼠尾外露，用75%乙醇擦之使血管扩张。左手拉住尾端，右手持 注射器（4～4.5号针头），以约15º角刺入扩张最明显的血管内，轻推 药液，阻力不大，血管变色，说明已注入静脉内，如果阻力大，局部变 白，应重新刺入注射部位先从远端开始，以便失败后逐步上移注射部 位。 2）狗：常选用前肢内侧的皮下头静脉和后肢外侧的小隐静脉。剪毛消 毒，在血管近心端先扎一条绷带，使血管充盈，左手握肢体，拇指向远 端轻轻绷紧皮肤，右手持注射器，顺血管方向向心性刺入皮下，沿血管 外平行走约0.5cm后，再刺入血管，有回血后即表明进入血管，放松近 心端绷带，缓慢注入药液。 3）兔：常选用耳缘静脉。先拔毛，左手食指和中指夹住耳缘静脉近心 端，使血管充盈；拇 指和无名指固定耳朵，并与食、中指绷紧注射部位，右手持注射器，顺 血管方向刺入静0.5～1cm，左手固定针头，右手缓慢注射。如阻力大或 局部肿胀苍白，说明针头在血管外， 应重新注射。应从血管远心端开始，以便逐次向近心端重复注射。 2.常用的采血方法 （1）剪尾采血 常用于小白鼠和大白鼠。小量 采血时用本法。固定动物并露出鼠尾，将尾部浸于45º的温水中数分钟 （也可用二甲苯棉球擦拭或用灯光照射片刻），使尾部血管扩张，擦干 后，用手术剪剪去尾尖0.3～0.6cm，，让血液滴入盛器或直接用吸管吸
家兔动脉实验报告
一、实验目的1. 熟悉动脉的解剖结构；2. 掌握动脉的生理特性；3. 了解动脉疾病的发生机制；4. 培养动手能力和实验操作技能。
二、实验原理动脉是人体循环系统中的一种血管，主要负责将心脏泵出的血液输送到全身各个器官和组织。
动脉壁主要由三层组成：内膜、中层和外膜。
本实验通过对家兔动脉的解剖观察，了解动脉的解剖结构、生理特性以及疾病的发生机制。
三、实验材料1. 家兔尸体1具；2. 刀片、剪刀、镊子、针筒、注射器、生理盐水、酒精、碘酒、生理盐水等；3. 显微镜、载玻片、盖玻片等。
四、实验步骤1. 解剖准备（1）将家兔尸体放置于解剖台上，用剪刀剪开颈部皮肤，暴露出气管和食管；（2）用镊子将气管和食管轻轻挑起，剪断气管和食管；（3）将家兔尸体翻转，剪开腹部皮肤，暴露出内脏器官；（4）用剪刀剪开胸膜，暴露出心脏和肺脏。
2. 解剖动脉（1）找到主动脉弓，用剪刀剪断主动脉弓与心脏的连接；（2）分离主动脉弓与头臂动脉的连接；（3）用剪刀剪断头臂动脉与颈总动脉的连接；（4）分离颈总动脉与颈外动脉的连接；（5）分离颈外动脉与颈内动脉的连接；（6）分离颈内动脉与大脑中动脉的连接；（7）分离大脑中动脉与大脑前动脉的连接；（8）分离大脑前动脉与大脑后动脉的连接；（9）分离大脑后动脉与基底动脉的连接；（10）分离基底动脉与脊髓动脉的连接。
3. 观察动脉结构（1）观察动脉内膜，注意其光滑度、完整性；（2）观察动脉中层，注意其厚度、弹性；（3）观察动脉外膜，注意其完整性、厚度。
4. 观察动脉生理特性（1）用注射器抽取动脉血液，观察血液颜色、黏稠度；（2）将动脉剪成小段，用生理盐水冲洗，观察动脉的弹性、脆性。
5. 观察动脉疾病（1）观察动脉内膜有无斑块形成；（2）观察动脉中层有无病变；（3）观察动脉外膜有无炎症。
五、实验结果与分析1. 解剖结果本实验成功解剖出家兔的主动脉、头臂动脉、颈总动脉、颈外动脉、颈内动脉、大脑中动脉、大脑前动脉、大脑后动脉和基底动脉等。
实验家兔心电图及高钾血症的治疗
10、高钾血症模型的复制（分工合作） 10.1 基础阶段： ⑴. 通过颈外静脉输液装置，静脉滴注3％的KCl溶液 (20滴/min)，密切观察和记录心电图变化 注意：从慢到快调滴速：6滴/第1min—9滴/第2min— 20 滴/第3min。
⑵. 一旦心电图出现正弦波时或QRS波群与T波发生融 合时，立即停止滴注。 注意：改变滴速时，动作要快。因为ECG出现正弦波 时心室颤动已迫在眼前。
对机体的影响
• 对心肌的影响 • 对骨骼肌的影响 • 对酸碱平衡的影响
对心肌的影响
• 对心肌跨膜电位的影响 • 对心肌生理特性的影响 • 对心电图的影响
高钾血症心电图波形变化特征
高钾血症对心肌电生理特性的影响
血清[K＋]
？ • 兴奋性下降 • 传导性减慢 • 自律性下降
血[K+]↑ →细胞内外[K+]差↓ →RP↓ →与Et距离↓ →兴奋性↑
高钾血症心电图波形变化特征
• ① 心房肌细胞兴奋性↓：使P波压低、增宽或 消失。
• ② 传导性↓：使P-R间期延长，QRS复合波增 宽。
• ③ 细胞膜电导性↑，3期钾外流加速：反映复 极化3期的T波高耸，反映动作电位的Q-T间期 缩短或正常。
• ④ 自律性降低、传导性降低和心肌兴奋性降 低，故心电图上有心率减慢（可伴有心律不 齐）、甚至停搏。
10、高钾血症模型的复制（分工合作）
10.2 维持阶段： ⑴.改变静脉滴注3％的KCl溶液的速度为(6-9滴/min)， 维持阶段持续30分钟 ⑵. 30分钟后于动脉插管取血，采第2管血0.5ml。
注意：维持阶段的滴速6-9滴/分是可以调整的，以 ECG保持宽大的QRS波群、高尖T波和无P波状态20 min，即维持重度高钾血症30 min。
家兔基本手术操作实验报告
竭诚为您提供优质文档/双击可除家兔基本手术操作实验报告篇一：家兔解剖实验一、实验目的1.通过对家兔的外形观察、骨骼系统及内部解剖的观察，掌握哺乳类躯体轮廓、消化系统、呼吸系统、循环系统、泌尿系统和生殖系统的结构特点2.掌握哺乳纲动物的主要特征，理解其进步性特征3.熟练解剖动物的方法二、实验原理将家兔处死是利用静脉注射空气致死：向静脉注射空气后，进入血液形成空气栓，空气栓随血流回流至右心室，然后被送到肺动脉，造成肺栓塞，大面积的肺栓塞使人体不能进行气体交换，发生严重的缺氧和二氧化碳储留，导致猝死。
三、实验器材活家兔、解剖盘、酒精棉球、注射器、镊子、烧杯、手术刀、手术剪、骨钳、止血钳等四、实验步骤1、外形观察，处死家兔身体分为头、颈、躯干、尾和四肢五部分。
颈很短，躯干较长，背部有明显的腰弯曲。
前肢短小，有5指，后肢较长，具4趾。
尾短小，位于躯干末端，腹部腹面近尾根处有泄殖孔和肛门，肛门在后。
肛门两侧各有一个无毛区，提起此处皮肤，开口，打开皮肤。
取10ml注射器，抽入10ml空气，三个人按住兔子，用酒精棉球将其一侧耳外侧毛擦湿，注射空气，到静脉血管。
挣扎一会后死亡。
2、打开皮肤润湿腹部中间的毛，小心用剪刀从泄殖孔稍前方剖一横口，向上剪至颈部，用手术刀使皮肤和肌肉分离，将剥下的皮肤向左右尽可能拉开露出腹部。
3、开腹腔：原位观察膈、胰腺、肝脏、各系统观察，肾脏冠切从泄殖孔的切口处沿腹中线同样左右割开腹壁至胸骨剑突处，暴露腹腔。
先观察各器官的自然位置。
可观察到：胰腺：分散附着于（十二指肠）弯曲处的肠系膜上，为粉红色、分布零散而不规则的腺体。
胃：囊状，横卧于膈肌后面，入口称喷门，出口称幽门。
小肠：肠管长而细，分为十二指肠、空肠和回肠三段。
十二指肠呈“u”形，空肠和回肠界限不易区分。
大肠：分为盲肠、结肠和直肠三段。
盲肠为大肠的起始段，肠管最粗大，相当于一个发酵罐，其末端有蚓突，结肠表面有横褶，直肠细长。
膈肌：呈粉色，上面血多有放射状红色细丝肾脏：移开胃后，可在其下观察到两肾，分布于两侧，其前端内缘各有一小的淡黄色扁圆形为肾上腺，由肾门伸出的一条白色细管为输尿管，与肾血管、神经管相伴行，向后通入膀胱的背侧。
家兔动脉血压的调节实验报告
家兔动脉血压的调节实验报告一、实验目的本实验旨在通过对家兔动脉血压的直接测量和观察，探究各种生理和药理因素对动脉血压的调节作用，深入理解心血管活动的神经和体液调节机制。
二、实验原理动脉血压是心血管系统的重要生理指标，受到神经、体液和自身调节机制的综合影响。
神经调节方面，交感神经兴奋会使血管收缩，增加外周阻力，导致血压升高；而副交感神经兴奋则会使血管舒张，降低外周阻力，引起血压下降。
体液调节中，肾素血管紧张素醛固酮系统、肾上腺素和去甲肾上腺素等激素会对血压产生调节作用。
三、实验材料与方法（一）实验动物健康家兔 1 只，体重 20 25kg。
（二）实验器材1、哺乳动物手术器械一套，包括手术刀、手术剪、镊子等。
2、压力换能器、生物信号采集处理系统。
3、动脉插管、静脉插管、输液装置。
4、 20%氨基甲酸乙酯溶液（麻醉剂）、肝素生理盐水溶液（抗凝剂）、肾上腺素、去甲肾上腺素、乙酰胆碱等药品。
（三）实验步骤1、家兔称重后，用 20%氨基甲酸乙酯溶液按 5ml/kg 的剂量于耳缘静脉缓慢注射进行麻醉。
当家兔角膜反射迟钝、肌肉松弛、疼痛反射消失时，表明麻醉效果良好。
2、将家兔仰卧固定于手术台上，剪去颈部和腹股沟部的毛。
3、在颈部正中做一长约 6 8cm 的切口，分离皮下组织和肌肉，暴露气管。
在气管两侧分离出左侧颈总动脉和右侧颈外静脉，并分别穿线备用。
4、向动脉插管内注入肝素生理盐水溶液，排尽气泡，然后将动脉插管插入左侧颈总动脉，通过压力换能器与生物信号采集处理系统相连，用于测量动脉血压。
5、右侧颈外静脉插入静脉插管，用于注射药物。
6、待血压稳定后，观察并记录正常血压值。
7、依次进行以下操作，并观察血压的变化：夹闭右侧颈总动脉 15 20s，观察血压变化。
松开夹闭后，观察血压的恢复情况。
刺激右侧迷走神经外周端，观察血压变化。
刺激停止后，观察血压的恢复情况。
由静脉注射 01%肾上腺素溶液 02 03ml，观察血压变化。
动物生理学实验课件08家兔颈部动脉
注意：
1.麻醉注射的部位一定要从耳缘静脉的远端 开始，而且务必要慢；
2.注意气管插管； 3.注意钝性分离，分离血管神经时，首先要
确认在一侧的气管旁边的总鞘摸内找到1个 颈总动脉，3根N,并最小的开始穿线，插管 时注意远心端要结扎。 4.结束时,先要再结扎动脉近心端才能拆插管， 不要把动脉夹弄丢，并通过注射空气处死 实验动物
考核内容
• 自行设计一个综合性的动物生理学实验
要求: 1、要有自己的创新 2、写出设计的依据和目的 3、实验方案 4、最后一次实验课交（注明姓名，联系方式）
兔动脉血压实验报告
一、实验目的1. 了解兔动脉血压的基本测量方法。
2. 掌握血压测量的原理和操作步骤。
3. 掌握血压测量的注意事项。
4. 观察不同生理、病理因素对兔动脉血压的影响。
二、实验原理动脉血压是指血液在动脉内流动时对血管壁产生的压力。
动脉血压是心血管系统功能的重要指标，反映心脏泵血功能和血管系统的阻力。
本实验通过测量兔动脉血压，观察不同生理、病理因素对血压的影响，从而了解血压的调节机制。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：家兔2. 实验仪器：血压计、动脉夹、手术器械、注射器、生理盐水、肝素、血压换能器、电子刺激器、兔手术台等。
四、实验方法1. 家兔的麻醉与固定：将家兔用3%戊巴比妥钠进行麻醉，麻醉成功后固定在兔手术台上。
2. 颈部手术：分离颈部血管与神经，暴露两侧颈总动脉和迷走神经，穿线备用。
3. 颈总动脉插管术：将充满肝素生理盐水的动脉导管从切口向心脏方向插入颈总动脉直至动脉夹处。
用手术丝线将动脉导管连同颈总动脉一起扎紧。
4. 测量血压：将血压换能器连接到动脉导管，打开血压计，观察血压变化。
5. 观察不同生理、病理因素对血压的影响：进行以下操作，观察血压变化。
（1）夹闭颈总动脉：观察血压升高情况。
（2）电刺激向心端迷走神经：观察血压下降，心率减慢。
（3）注射肾上腺素：观察血压升高，心率加快。
（4）注射酚妥拉明：观察血压下降。
6. 实验结束：拔除动脉导管，缝合伤口。
五、实验结果1. 颈总动脉夹闭后，血压升高，心率加快。
2. 电刺激向心端迷走神经后，血压下降，心率减慢。
3. 注射肾上腺素后，血压升高，心率加快。
4. 注射酚妥拉明后，血压下降。
六、实验讨论1. 颈总动脉夹闭后，血压升高，心率加快，可能是由于颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢，颈动脉窦受到压迫，导致血压升高。
2. 电刺激向心端迷走神经后，血压下降，心率减慢，可能是由于迷走神经兴奋，导致心脏迷走神经支配的心肌收缩力减弱，心率减慢。
3. 注射肾上腺素后，血压升高，心率加快，可能是由于肾上腺素兴奋α受体，导致血管收缩，血压升高；兴奋β受体，导致心脏收缩力增强，心率加快。
兔血管刺激实验报告
一、实验目的1. 掌握兔血管刺激实验的基本操作方法。
2. 了解兔血管刺激对心血管系统的影响。
3. 分析不同刺激强度对兔血管的影响。
二、实验材料1. 实验动物：健康成年家兔2只，体重2-3kg。
2. 实验器材：哺乳动物手术器械一套、兔手术台、气管插管、5 ml注射器一只、50 cm长的橡皮管一条、球胆二只、机械电换能器及生理记录仪、刺激器、肝素生理盐水、生理盐水、0.1%肾上腺素、0.1%去甲肾上腺素、0.1%乙酰胆碱。
3. 实验药品：20%氨基甲酸乙酯、0.9%NaCl、肝素、1:10000去甲肾上腺素、1:10000肾上腺素、1:100000乙酰胆碱。
三、实验方法1. 麻醉：取家兔，称重，用25%乌拉坦麻醉，4ml/kg，耳缘静脉注射。
2. 气管插管：分离气管，在气管上作一倒T型切口，插入气管插管并以粗线固定。
3. 动脉插管：自气管左侧分离颈总动脉1.5-2cm，动脉下穿两根丝线。
结扎远心端，近心端以动脉夹夹闭。
用眼科剪在结扎端与动脉夹之间剪开一小口。
将连于压力传感器的动脉套管充满1%肝素生理盐水后，插入颈总动脉，并用手术线固定。
松开动脉夹。
4. 记录血压：将压力传感器连接于主机前面板的1通道，打开BL-410生物机能实验系统，将1通道设置成血压和心电，点击开始记录血压。
5. 稳定5-10min，记录正常血压和心率。
6. 刺激：将刺激器输出端连接至动脉套管，以1Hz、2Hz、4Hz、8Hz、16Hz的频率分别刺激动脉套管，观察血压和心率的变化。
7. 药物干预：在刺激过程中，分别给予0.1%肾上腺素、0.1%去甲肾上腺素、0.1%乙酰胆碱，观察血压和心率的变化。
四、实验结果1. 刺激动脉套管时，随着刺激频率的增加，血压和心率逐渐升高。
在16Hz刺激频率下，血压和心率升高最明显。
2. 给予0.1%肾上腺素后，血压和心率均明显升高；给予0.1%去甲肾上腺素后，血压升高明显，心率无明显变化；给予0.1%乙酰胆碱后，血压和心率均明显降低。
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家兔颈总动脉插管实验报告 家兔颈部神经颈总动脉的分离以及动脉的插管手术 家兔颈部神经颈总动脉的分离以及动脉的插管手术 篇二:家兔动脉血压的神经体液调节实验报告 [目的与要求] 1 学习直接测定家兔动脉血压的急性实验的方法 2观察神经,体液因素对心血管活动的影响 [基本原理] 在正常人体内,任何高等动物的动脉血压时相对稳定的.这种相对稳定是通过神经和体液调节来实现的,其中以静动脉窦-主动脉弓压力感受性反射最为重要.此反射即可使升高的血压下降,又可使降低血压升高,故有血压缓冲反射之称.家兔的主动脉神经在解剖上独成一支,易于分离与观察起作用 本实验是应用液导系统直接测定动脉血压,即由动脉插管与压力传感器连通,其内充满抗凝液体,构成液导系统,将动脉插管插入动脉,动脉内的压力及其变化,可通过封闭的液导系统传导压力感受器,由计算机采集系统记录下来 [动物与器材] 家兔 ,手术台, 常用手术器械, 止血钳,眼科剪,支架,双凹管, 气管插管,动脉插管,三道管, 动脉夹,计算机采集系统 ,压力传感器,保护电极,照明灯,纱布,棉球,丝线,注射器(1ml,5ml,20ml),生理盐水,4%柠檬酸钠,20%-25%氨基甲酸已酯,肝素(200U/ml),肾上腺素 (1:5000),已酰胆碱(1:10000) 【方法与步骤】 1、实验仪器的准备 打开计算机采集系统，接通压力传感器。从显示器的“实验项目”中找出“循环实验”的“家兔血压的调节”条，使显示器显示压力读数。 2、连通液导系统并制压 将压力传感器的下方支管，通过输液管连接三通管，再连接动脉插管。上侧管供制压时排除管内空气使用。先用装有20ml 4%柠檬酸钠的注射器，通过三通管向连接动脉插管的输液管内推注，使之充满液体(不要使动脉插管高过压力传感器的上方支管)后，再用止血钳夹住动脉插管端的输液管。然后继续向三通管内推注，直至充满压力传感器的上方支管，并用塞子塞住(注意:液导系统内不可有气泡)。继续向三通管内推注，同时观察显示器上压力变化。当加压到120mmHg时既可关闭三通管。观察压力是否变化，如果压力下降，则需要检查液导系统的漏液原因，并重新制压。调节血压显示器的灵敏度，使30~130mmHg的变化都能在显示器上明显的反映出来。将动脉插管端的导管内充满肝素溶液。 3、动物的准备 (1)按照实验4-9方法，麻醉家兔并进行颈部手术，插入气管插管、分离主动脉神经。同时分离迷走神经并穿线备用。再将止血钳从颈总动脉下方穿过，轻轻张开止血钳，分离出2~3cm长的 颈总动脉。分离出的颈总动脉外壁应该十分光洁，外面并无结缔组织及脂肪等物。在动脉上穿两条备用棉线，分别打上活结。将两线分别拉至分离出的动脉两端备用。同样方法分离另一侧血管与神经(一侧动脉用于插管侧压，另侧动脉实验用)。由于家兔的品种不同，个体之间也有差异，常发现3条神经的解剖位置有些变异。主动脉神经的最后确认，蓄意对血压的影响为准。 (2)动脉插管 首先用5ml注射器从耳缘静脉注入肝素(200U,kg体重)以防凝血。然后在一侧动脉行动脉插管术以记录血压。其方法如下: 将动脉头端的备用线尽可能靠头端结扎(务必扎紧，以防渗血)，然后在另一备用线的向心侧(尽可能近心端)，用动脉夹夹闭。轻轻提起动脉头端的结扎 线，用锐利的眼科剪在靠近扎线的稍后方，沿向心方向斜向剪开动脉上壁(注意:不可只剪开血管外膜，也切勿剪断整个动脉，剪口大小约为管径的一半)。一手持弯头眼科镊，将其一个弯头从剪口处插进动脉少许，轻轻挑起剪开的动脉上壁，另一手将准备好的动脉插管由开口处插入动脉管内。如果插入较浅，可用一手轻轻捏住进入插管的动脉管壁，另一手拿住动脉插管，顺势轻轻推进至6~8mm左右(如果手感滞涩，说明插管并未进入动脉，必须退出插管，重新剪口再插)，用备用线将动脉连同进入的插管扎紧(插管不可因扎线松动而滑出，亦不可漏液)，并将余线系在插管的固定侧支上，以免滑脱。注意:插管应与动脉血管的方向一 致，以防插管尖端扎破动脉管壁。轻轻取下向心端动脉夹，可见动脉血与插管内液体混合。再取下通向压力传感器的止血钳，此时显示器上出现血压的波动曲线。 4、实验观察 (1)观察正常血压曲线 调节扫描速度与增益，可以明显地观察到心室射血与主动脉回缩形成的压力变化与收缩压、舒张压的读数。有时可以观察到血压曲线随呼吸变化，心搏为一级波，呼吸波为二级波。然后将扫描速度调慢，观察正常血压曲线。 (2)轻轻提起对侧完好颈总动脉上的备用线，用动脉夹夹闭30s(于夹闭前记录动脉通畅时的血压曲线)，观察并记录血压变化。出现变化后即取下动脉夹，记录血压的恢复过程。 (3)记录对照血压曲线后，用手指按压颈动 脉窦(下颌下方内侧)，观察并记录血压变化。当血压明显下降时，则停止按压，待血压恢复(如果血压反而升高，说明按压的是血管，需重新寻找按压位置)。 (4)刺激主动脉神经 使刺激输出端连接保护电极，轻轻提起主动脉神经上的备用线，小心地将神经置于保护电极之上。记录对照血压曲线后，再用中等强度的连续电脉冲信号，通过保护电极，刺激神经10~20s。血压出现明显下降后即可停止刺激，并待血压恢复。如果血压并不下降，可调整刺激强度或刺激频率再行刺激。任何刺激都无效时，则表示此神经并非主动脉神经。需要重新辨认神经后再行实验。 (5)分别刺激主动脉神经中枢端和外周端 双结扎主动脉神经后(务必结扎)，从两扎线结之间剪断神经。记录对照血压后，同法分别刺激神经的中枢端和外周端，观察并记录血压变化。 (6)刺激迷走神经 记录对照血压后，用同样的方法刺激迷走神经，观察血压下降曲线与(4)有何不同(如果血压下降很快、很低，应立即停止刺激)。 (7)结扎并剪断迷走神经 同时结扎双侧迷走神经后剪断，观察血压有何变化。 (8)刺激迷走神经外周端 分别刺激两侧迷走神经外周端，观察并记录血压变化有何不同。 (9)肾上腺素对血压的影响 记录对照血压曲线后，用1ml注射器，从耳缘静脉注入0.1~0.3ml肾上腺素溶液，观察并记录血压变化及恢复曲线。 (10)乙酰胆碱对血压的影响 同法注入0.1~0.2ml乙酰胆碱溶液，观察并记录注射前后血压变化。 (11)失血对血压的影响 从另一侧动脉插管后慢慢放血，观察放血量对血压的影响。 5、整理实验结果，并将实验结果填入下表 家兔血压实验记录表 篇三:家兔血压调节实验报告 实验报告 专业班级:康复治疗技术2班 实验小组:第四组 姓名:卢锦 锟 实验日期:2015年11月10日 (一)实验项目:家兔动脉血压调节 (二)实验目的: 1、掌握神经体液因素及受体阻断或兴奋药物对家兔心血管活动的影响机制。 2、掌握动脉血压作为心血管功能活动的综合指标及其相对恒定的调节原理和重要意义。 3、掌握家兔实验的基本方法和技术(静脉麻醉、静脉输液、动脉插管、分离神经等)。 4、掌握压力生物信号采集与处理系统的使用 。 (三)基本原理:(要求对写出关键点) 动脉血压是心血管功能活动的综合指标。正常心血管的活动在神经、体液因素的调节下保持相对稳定，动脉血压相对恒定。动脉血压的相对恒定对于保持各组织、器官正常的血液供应和物质代谢是极其重要的。通过实验改变神经、体液因素或施加药物，观察动脉血压的变化，间接反映各因素对心血管功能活动的调节或影响。 实验仪器与试剂:BL-420生物信号采集与处理系统、血压换能器、刺激电极、哺乳类动物手术器械、注射器(5mL、1mL)等;3%戊巴比妥钠、0.3%肝素、1:10000盐酸肾上腺素、1:10000去甲肾上腺素、1:1000异丙肾上腺素、0.01%多巴胺、1%酚妥拉明、0.01%普萘洛尔、0.001%乙酰胆碱、0.01%阿托品 1、夹闭颈总动脉血压升高，心跳加快。这是由于颈动脉窦管壁的外膜下分布有丰富的感觉神经末梢，是动脉张力感受器。这个感受器位于兔颈总动脉的远心端，颈内动脉与颈外动脉的分叉交界处。夹闭颈动脉后，远心端的颈动脉窦张力感受器感受到血压下降，传出神经冲动的频率减慢。信息沿窦神经上传至延髓孤束核心血管中枢。使心迷走紧张减弱，心交感和心缩血管紧张加强，作用于心脏，使心率加快，心输出量增加，血管收缩，血管外周阻力增加。从而血压恢复性升高。若血压下降过大，交感缩血管紧张还会扩展到静脉系统，是静脉收缩，促进血液回心，使每博输出量增加。 2、静脉注射0.01%重洒石酸去甲肾上腺素:去甲肾上腺素与血管平滑肌上的α和β2受体结合，使血管收缩，管径变小，外周阻力增加，从而使平均动脉压升高。此外，去甲肾上腺素还可以使心率增加，心收缩力变大，因此血压升高。 3、静脉注射0.005%盐酸异丙肾上腺素:异丙肾上腺素能与骨骼肌血管β2受体结合，骨骼肌血管(在全身血管中比例较大)持续舒张抵消了皮肤粘膜血管的收缩作用，因而出现后降压作用。 4、静脉注射0.01%盐酸肾上腺素:肾上腺素能与心肌β1受体结合激动心肌心肌收缩力增强，因此心率加快，传导加速，心排出量增多而导致收缩压升高。肾上腺素能激动腹腔内脏血管α1受体，使动腹腔内脏血管收缩，血压升高。 5、静脉注射1%酚妥拉明:α受体阻断剂，α受体的作用:α受 体为传出神经系统的受体，根据其作用特性与分布不同分为两个亚型:α1、α2。 α1受体主要分布在血管平滑肌(如皮肤、粘膜血管，以及部分内脏血管)，激动时引起血管收缩;α1受体也分布于瞳孔开大肌，激动时瞳孔开大肌收缩，瞳孔扩大。 α2受体主要分布在去甲肾上腺素能神经的突触前膜上，受体激动时可使去甲肾上腺素释放减少，对其产生负反馈调节作用。 (四)实验主要设备和仪器、药品和用品(要求分类、简洁、清晰表述) 1、仪器设备:婴儿秤、兔手术台、哺乳动物手术器械一套，BL-420生物机能实验系统，动脉夹、压力换能器等;