Illumina测序基础知识

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高通量测序原理篇-Illumina测序原理4

高通量测序原理篇-Illumina测序原理4

高通量测序原理篇-Illumina测序原理4
那么要读这个Index序列,先用碱把上面这根测完“Read 1”的序列把它上面的那条DNA链给解链掉,再加入中性液。

然后,加入“Read 2”的这个测序引物,“Read 2”结合的位点正好再这个Index序列的旁边。

接下来进行第二轮测序,一般来说读到6~8个碱基,把这6~8个碱基读下来。

我们就可以知道,我们具体的DNA它来自于原始的哪个样本。

5)双端测序
这是Illumina最核心的另外一个技术,就是双端测序。

双端测序就是一根DNA链,除了从正向读一遍,还可以从DNA的负向再读一遍。

这样一下子就把Illumina测序的有效长度加了一倍。

这是非常有实际用途的。

那么这个倒链的过程,是先让DNA先合成,合成出来这跟互补链。

有了这个互补链之后用一个化学试剂再原来这根链的根上切一下,切一下原来这跟链的模板链就掉了,剩下那根互补链。

再接下来就进行第2端的测序。

第二段的测序原理和第一段的测序原理是一样的,加上了“Read 3”的引物,依次往下,一个一个碱基地往下读。

最重要的事情是一个点经过几百个循环就读出了几百个碱基,这个芯片上可以有上亿个点,“cluster”也就是簇,上亿个簇每一个循环都可以读出那么多序列。

这也就是Illumina测序非常强大的原因,
因为是成千上完,准确说是上亿个链都在合成,就得到了一个很大的数据量。

illumina-solexa原理

illumina-solexa原理

Illumina-Solexa技术是一种广泛应用于基因组学和生物信息学领域的测序技术,它通过读取生物个体的基因组序列数据,从而实现对生物体的遗传结构和进化历史等方面的研究。

本文将详细介绍Illumina-Solexa技术的原理、应用和未来发展趋势。

一、原理Illumina-Solexa技术的基本原理是基于DNA测序仪的原理。

测序仪通过将DNA分子进行打断、标记和序列读取,实现对基因组的测序。

具体来说,Illumina-Solexa技术主要包括以下几个步骤:1.样本制备:将样本DNA样品进行打断、分离和标记,以便于测序仪进行检测。

2.测序反应:将标记后的DNA分子进行测序反应,通过测序仪的检测系统,实现对DNA分子的序列读取。

3.数据解析:将测序仪获取的序列数据进行分析和解析,得到基因组的序列信息。

Illumina-Solexa技术具有较高的测序深度和覆盖度,可以实现对生物体全基因组的深度测序,从而获得更加准确和全面的遗传信息。

二、应用Illumina-Solexa技术在基因组学、遗传学、生物信息学等领域得到了广泛的应用。

具体来说,Illumina-Solexa技术可以应用于以下几个方面:1.遗传性疾病研究:通过Illumina-Solexa技术对遗传性疾病患者的基因组进行测序,可以发现与遗传性疾病相关的基因突变和遗传变异,为遗传性疾病的预防、诊断和治疗2.进化生物学研究:通过对不同物种的基因组进行比较分析,可以研究物种的进化关系、物种起源和演化过程。

3.基因表达研究:Illumina-Solexa技术可以对基因表达谱进行高通量测序和分析,从而了解不同细胞或组织中基因的表达情况,为研究细胞或组织的生理状态提供依据。

4.生物多样性研究:通过对生物多样性的样本进行Illumina-Solexa 技术测序,可以了解物种的遗传结构和分布情况,为生物多样性的保护和管理提供依据。

三、未来发展趋势随着测序技术的不断发展,Illumina-Solexa技术也将在未来得到更加广泛的应用。

Illumina测序

Illumina测序

Illumina新一代测序技术可以高通量、并行对核酸片段进行深度测序,测序的技术原理是采用可逆性末端边合成边测序反应,首先在DNA片段两端加上序列已知的通用接头构建文库,文库加载到测序芯片Flowcell上,文库两端的已知序列与Flowcell基底上的Oligo序列互补,每条文库片段都经过桥式PCR扩增形成一个簇,测序时采用边合成边测序反应,即在碱基延伸过程中,每个循环反应只能延伸一个正确互补的碱基,根据四种不同的荧光信号确认碱基种类,保证最终的核酸序列质量,经过多个循环后,完整读取核酸序列。

利用该技术,可以对任何物种(包括动物、植物、细菌、病毒、寄生虫等)在DNA水平上进行全基因组测序、基因组靶向区域测序,检测基因组范围内的遗传变异或多态性,在细菌、病毒等病原溯源上分辨率最高;在RNA水平上进行基因的表达测序分析,准确检测基因表达量和表达片段的序列信息;对DNA处理后,可以对基因组甲基化水平进行检测,从表观遗传学角度对影响基因表达的因素进行分析;利用转录因子的抗体对DNA进行处理,寻找转录因子影响的DNA序列信息,定位影响基因表达的片段;自然界存在的微生物基本上都是混合物,传统的Sanger法测序技术无法对混合物中的各微生物进行准确检测,利用新一代测序的高通量、并行性特点,通过宏基因组分析方法,可以从整体上对自然界本来状态进行分析,得到最客观信息。

在DNA测序商业化的浪潮下,我国《生物产业发展“十二五”规划》提出完成10000种微生物、100种动植物基因组测序、发现约500个新的功能基因、转化应用5个以上有重大经济价值的基因或蛋白。

按照每种微生物进行“基因组完成图”测序的费用为30-50万元来看,DNA测序带来的市场容量达千亿元,这还仅仅是DNA测序商业应用市场的冰山一角。

illumina最小测序仪-iSeq上机操作手册(图文版)

illumina最小测序仪-iSeq上机操作手册(图文版)

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科学的乐趣是获得新知识的喜悦高通量测序、大数据
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小确幸的科研也很好。

与君共勉!
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小巧精致的iseq,作为illumina大家族中的一员,其体型小,可移动的特点让我很喜欢。

相较于Miseq,iseq更适合小型实验室和应急检测时使用。

为方便后期培训和工作交流,本公众号会陆续将日常工作中整理的测序实验文档与大家交流分享。

今天分享的是iseq上机操作手册。

后续会有其他测序仪的操作说明和视频文档陆续跟上~
欢迎大家关注。

也欢迎各位同行一起分享自己的工作心得,操作经验。

其他链接:
3分钟学会Miseq测序仪上机操作实验
(干货一篇贺中秋)图文并茂说Miniseq上机操作。

华大二代测序原理

华大二代测序原理

华大二代测序原理
华大二代测序(Illumina sequencing)是一种高通量测序技术,也称为高通量测序或短读长测序,是当前最常用的测序方法之一。

其原理基于桥式扩增和碱基荧光信号转换。

具体原理如下:
1. 文库构建:将DNA样品经过酶切或随机剪切形成大量短小的DNA片段。

然后将片段的两端进行连接,形成能够在单个DNA片段上进行扩增和测序的文库。

2. 桥式扩增:将文库中的DNA片段固定在一块玻璃芯片上,然后在其表面进行多次循环PCR扩增。

每轮循环PCR,每个DNA片段都会通过桥式扩增形成成百上千个相同的复制体,因此数目庞大的DNA复制体可在一块芯片上形成成百上千个簇。

3. 碱基荧光标记:在每次PCR扩增之后,加入由四种荧光标记色阵列的碱基(A、C、G、T)以标记进行扩增。

每种标记色阵列与不同碱基配对。

例如,红色标记色阵列代表碱基A,绿色标记色阵列代表碱基C,类似地,黑色标记色阵列代表碱基G,黄色标记色阵列代表碱基T。

4. 去除终止子:在每个周期结束后灭活不必要的核苷酸,然后进行清洁并准备下一个周期。

这个过程可以保证只在当前周期内加入了一种四种碱基的其中一种。

5. 信号检测和图像分析:每个碎片都会在单个碱基位点停顿,因
此在所有碱基位点上的荧光被摄像头记录下来,并分析荧光重叠模式,以确定该位点的碱基。

6. 数据分析:将图像转换为质量草图,并生成碱基对应于原始参
考序列的序列数据文件。

最后,将这些数据与某个基因组的参考序列
进行比对。

因此,通过华大二代测序,可以通过高通量、高速度的方式有效
地得到大量的DNA序列信息。

二代测序illumina原理

二代测序illumina原理

二代测序illumina原理
二代测序illumina原理是一种革命性的高通量测序技术,被广泛应用于基因组学、转录组学和表观遗传学等领域。

这种技术基于DNA复制、DNA片段连接和扩增、DNA文库构建以及高通量测序等步骤。

二代测序illumina原理的核心是通过将DNA样品切割成短小的片段,然后将
这些片段连接到DNA芯片上的固定位置。

随后,DNA聚合酶从片段的末端开始扩增,生成数百万个从同一初始片段派生的DNA复制品。

这些复制品被通过荧光标
记的核酸碱基识别方式进行测序。

在测序过程中,DNA复制品会被依次合成,其中每个碱基都用一种特定的荧
光染料标记。

通过不断照射荧光,检测不同碱基的发光信号,并记录下它们的相对位置,从而确定DNA序列。

通过识别不同的荧光标记和记录信号,我们可以得到
原始DNA序列的高质量编码。

二代测序illumina原理具有高通量、高效、高精度和低成本等优点。

能够同时
测序数百万个片段,从而大大提高了测序速度和效率。

该技术还具有较低的错误率,能够检测到极低水平的DNA序列变异。

此外,二代测序illumina原理还能够在较
短的时间内获得大量的DNA序列信息,从而加快了基因组学、转录组学和表观遗
传学等研究的进展。

总结而言,二代测序illumina原理是一种先进的高通量测序技术,通过将DNA 样品切割、连接、扩增和测序,以高效、高精度和低成本的方式获得大量DNA序
列信息。

这项技术在基因组学研究、临床诊断和生物学领域的进展中发挥着重要作用。

Illumina测序原理


EE Slawson Tempel, © WUSTL
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Nebulizer
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Illumina
cBot: Cluster Generator HiSeq 2500: Sequencing
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简述illumina测序原理和流程

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Illumina测序原理


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illumina测序特点

illumina测序特点Illumina测序是一种高通量测序技术,也被称为二代测序技术。

相较于传统的Sanger测序技术,Illumina测序具有以下几个特点:1. 高通量:Illumina测序使用微米级的反应容器,将DNA样本片段固定在表面上,并通过序列引物进行扩增,最后得到数千万个碱基的测序读数。

这种高通量的特点使得Illumina测序成为目前最常用的高通量测序技术之一,可以同时处理多个样本,快速获取大规模的基因组数据。

2. 快速:Illumina测序技术能够在较短的时间内完成大规模的测序任务。

通过并行测序的方法,Illumina测序可以同时进行数以万计的反应,从而大大提高了测序速度。

通常,Illumina测序可以在几个小时内获得数十亿个碱基的测序读数,大大缩短了实验周期。

3. 高准确性:Illumina测序技术具有较高的准确性。

通过使用碱基可逆终止的方法,Illumina测序可以在每个循环中正确识别和记录碱基的信息。

除此之外,Illumina还利用多重序列重叠,以及锚定引物对测序结果进行验证和校准,从而提高了测序的准确性。

4. 较低成本:相较于传统的Sanger测序技术,Illumina测序技术的成本更低。

这是因为Illumina测序可以使用微米级的反应容器,并且通过并行测序的方法同时进行多个反应,从而节约了测序试剂和设备的使用量,降低了实验成本。

5. 应用广泛:由于其高通量、高准确性和较低成本的特点,Illumina测序被广泛应用于基因组学、转录组学、表观遗传学和单细胞测序等领域。

它在基因组组装、突变检测、DNA甲基化分析、RNA测序和单细胞转录组学等方面都具有重要的应用价值。

Illumina测序的特点使得其成为目前最常用的高通量测序技术之一。

它在科学研究、生物医学和临床领域都发挥了重要的作用。

Illumina测序的不断发展和改进,使得其测序速度更快、数据质量更高、成本更低,为研究人员提供了更好的工具和平台来探索生物学中的复杂问题。

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1 第一个要给大家讲的,是它这个flowcell。Flowcell翻成中文,就叫“流动池”。 我们来看这个图片。图片当中,我们看到一个象载玻片大小的芯片。这个芯片里面,是做了8条通道。在这个通道的内表面,是做了专门的化学修饰。它的化学

修饰,主要是用2种DNA 引物,把它(2种DNA引物)种在玻璃表面。 这两种(DNA引物的)序列是和接下来要测序的DNA文库的接头序列相互补的。而且这2种引物是通过共价键,连到Flowcell上去。之所以要用共价键连到Flowcell上去,是因为接下来有大量的液体要流过这个Flowcell,只有有共价键连接的这些DNA,才不会被冲掉。这就是Flowcell。

再接下来,讲一下文库、和文库的制作(过程) 所谓的DNA文库,实际上是许多个DNA片段,在两头接上了特定的DNA接

头,型成的DNA混合物。 文库有2个特点,第1个特点,是当中这一段插入的DNA,它的序列是各种各样的。第2个特点,它的两头的接头序列,是已知的,而且是人工特地加上去的。 要做这个文库,首先是把基因组DNA,用超声波打断。然后打断之后,两头用酶把它补平,再用Klenow酶在3’端加上一个A碱基。然后,再用连接酶把这个接头给连上去。 连好了接头的DNA混合物,我们就称为一个“文库”。英文也称作“library”。

做好了Library之后,就要做桥式PCR了。桥式PCR,实际上是把文库种到芯片上去,然后进行扩增,这样的一个过程。 这个过程,首先是把文库加入到芯片上,因为文库两头的DNA序列,和芯片上引物是互补的,所以,就会产生互补杂交。 2

杂交完了之后,我们在这里面加入dNP和聚合酶。聚合酶会从引物开始,延着模板合成出一条全新的DNA链来。 新的这条链,和原来的序列是完全互补的。 接下来,我们再加入NaOH碱溶液。DNA双链在NaOH碱溶液存在下,就解链了。而且被液流一冲,原来的那个(模板)链,也就是没有和芯片共价连接的链,就被冲走了。而和芯片共价连接的链,就被保留下来。 然后,我们再在液流池里加入中性液体,主要是为了中和这个碱液,在加入中和

液之后,整个环境变成中性了。这时侯,DNA链上的另外一端,就会和玻璃板上的第二种引物,发生互补杂交。 接下来,我们加入酶和dNTP,聚合酶就延着第二个引物,合成出一条新链来;

然后,我们再加碱,把2条链解链解开;然后,我们再加中和液,这时侯,DNA链会和新的引物杂交。再加酶,再加dNTP,又从新引物合成出新的链来。 连续重复这一过程,DNA链的数量,就会以指数方式增长。

在桥式PCR完成之后,接下来要做的工作,就是要把合成的双链,变成可以测序的单链。 办法是通过一个化学反应,把其中一个引物上的一个特定的基团给切断掉。

然后,再用碱溶液来洗这个芯片。这时侯,碱让DNA的双链解链,那根被切断

了根的DNA链就被水冲掉了。留下那根共价键连在(芯片)上面的链。 接下来,再加入中性溶液,然后在这个中性溶液里面加入测序引物。

好,接下来正式的测序工作就开始了。 那么,在测序的时侯,加入进去的,最主要是2个东西:一个是带荧光标记的

dNTP。而这个dNTP,它还有一个特点,它的3’末端是被一个叠氮基堵住的。 然后,再加一个聚合酶,聚合酶就会选择:哪一个dNTP是和原来位置上的那个碱基是互补的,根据互补性原理,把这个dNTP合成到新的这个DNA链上去。 3

因为这个dNTP的3’端是被一个叠氮基团堵住了,所以,它一个循环只能延长一个碱基。然后,它就停在那儿了。 合成完了之后,就用水把多余的dNTP和酶给冲掉。 冲掉之后,就放到显微镜下,去进行激光扫描。根据发出来的荧光来判断它是哪个碱基。

因为4种dNTP,它每一种dNTP上面标的荧光素都不一样,根据红、黄、蓝、绿,它出来的哪种颜色,那么,就可以倒过来推出来,这个新合成上去的碱基,是哪种碱基。 因为新合成的碱基,是和原来位置(的碱基)是互补的,所以,又推出模板上那个碱基是哪个。 这一个循环完成之后,就加入一些化学试剂,把叠氮基团和旁边标记的荧光基团

切掉。切完了之后,3’端的羟基就暴露出来。

再接下来,加入新的dNTP和新的酶,然后,又延长一个碱基。新延长完一个碱基之后,把多余的酶和dNTP冲掉,再进行一轮显微的激光扫描,再读一下这个碱基是什么。 不断重复这个过程,可以重复上百次,到几百次,就可以把上百个碱基,甚至更多碱基的序列读出来。

那么,什么是Index哪?是因为Illumina的评委会个测序量很大,往往一个样本,用不了那么几亿条DNA。所以,科学家就想了一个办法。在文库的接头上做了一些标记,每一个样本,它有一个特定的接头,每个接头里面,它有一段特定的序列。

这段特定的序列,我们就称为Index。也有人把它叫做Barcode,反正,表达的是一个意思:这么一段特定的序列,标记了样本的来源。 那么,要读这个Index的序列,先用碱把上面这根测完“Read 1”的序列,把

上面这根DNA链给解链掉。 4

解链掉之后,再加入中性液,然后,加入“Read 2”这个测序引物。Read 2测序引物结合的位点,正好,就在这个Index序列的旁边。 接下来,就进行第2轮测序,一般来说,是读6到8个碱基。把这6到8个碱基读下来,我们就可以知道,这某一个具体的一段DNA,它来自于原始的哪个样本。

这是Illumina的最核心的另外一个技术,就是双端测序。 那么双端测序,就是说,一根DNA链,除了从正向读一遍,还可以从DNA的负向,再读一遍。 这一下子就把Illumina测序的有效长度加了一倍。这是非常有实际用途的。

那么这个倒链的过程,是这样,先让这个DNA先合成,合成出来这根互补链。 有了这个互补链之后,用一个化学试剂,在原来这根链的根上切一下。切一下,原来这根模板链就掉了,剩下那根互补链。

再接下来,就进行第2端的测序。第2端的测序原理,和第一端的测序原理是一样的。 加上了“Read 3”的这个引物,依次往下,一个一个碱基地往下读。

那么最重要的事情是什么呢?一个点,经过几百个循环,就读出了几百个碱基。但实际上,这个芯片上可以有上亿个点,上亿个“cluster”,也就是“簇”。

那么上亿个“cluster”,每个循环,它都可以读出地么多序列,这是Illumina测序非常强大的原因。因为是成千上万,准确说是上亿上链都在合成,这个就得到了很大的一个测序数据量。 5

Illumina HiSeq测序仪的工作原理。 也就是芯片上发生了这么多变化,HiSeq是如何把这些信息给读出来,并且把扫描出来的荧光信号,又通过怎样一系列的加工,变成可以识别的“A、C、G、T”的碱基序列的。

HiSeq首先是一台高精度的显微光学扫描仪。然后再配上了一整套的液流系统,和计算机软硬件,再加温控系统,组成这样一台测序仪。 其中最核心,也是结构最复杂的,是它的光学系统。

前一期,我们讲了,Illumina测序仪主要是靠4种dNTP分别带有不同的荧光基团,在被激光照了之后,发出不同颜色的荧光。再通过对光的颜色的分辩,可以判断出到底是哪个碱基。

这里,我们要说明一下:感光元件CCD,它本身是色盲。所以,它一定要配合滤光片,才能分辩出颜色来。

那我们先来看一下,HiSeq的光路图。 左边这两个元器件,就是激光器。一个发出红色激光,另一个发出绿色激光。 其中红色激光主要是激发A和C,这两种碱基上的荧光基团;而绿色激光主要是激发G和T,这两种碱基上的荧光基团。 红色和绿色这两束光,通过一面半透半反镜,组成一道激光。这道激光打在Flowcell上。

那么请注意,Flowcell就放在这个位置。 在Flowcell里面,结合在DNA上的那个荧光基团在激光的照射下,就发出荧光。 6

荧光通过3面半透半反镜,和1面全反镜,被分成4条光路,这4道光线,分别通过一道滤光片,这4张滤光片的滤过波长不一样。这样,这4 道光在经过了滤光片之后,就变成了4种颜色不同的光线。

然后,这4条颜色不同的光线,各自照在一面反射镜上,通过反射镜进入到CCD。这4个CCD就记录到不同颜色的光线。

HiSeq的光线扫描是“线扫描”,和传统的相机不一样,传统的相机是面扫描。 HiSeq采取了一种特定的叫“TDI”线扫描方式,TDI是Time delayintegration的缩写。

在HiSeq上之所以采取TDI扫描方式,因为它有非常明显的优点。 第一个优点,就是它的扫描速度非常快,在HiSeq 2500上,从Flowcell的一个Lane的一头扫到另外一头,也就是一个“Swath”的扫描时间,大概只有20秒种不到。

第二个好处,就是它的扫描精度非常高。在最新的HiSeq V4版试剂上,它的光点密度,大概可以达到每平方毫米90万个点,要扫描清楚这么高密度的光点,扫描仪的扫描精度是可想而知的。

TDI扫描的第三个好处,是这种方式,可以把Flowcell的上表面、和下表面都扫描到。

接下来,我们再要详细介绍这张Flowcell。 7

那么,先来看一下,这张flowcell有点象一张载玻片,在这一张片子里面,我们可以看到,它做了8条通道。

每条通道,我们称为一个Lane。这8个Lane之间,相互是隔绝的。 每个Lane的两端各有一个小孔。这两个小也孔,就是液流流进、流出的地方。 每个Lane的上表面和下表面,都分别以共价键的方式,种了2种DNA引物。这两种DNA引物,是与文库接头的两头序列相互补的。上一期(节目)我们已经说明了这一点。

一个Lane里面,分成2个面,上表面、和下表面。上表面和下表面,都种了DNA引物,也都是可以产生测序数据的。

在每一条Lane的每一个面,又被分成了3个扫描通道,每个道被称为一个“swath”。每条Swath是从头到底被连续扫描的。但是它的数据,在进行数据分析的时侯,是被分割成16个小方块。这每一个小方块,被称为一个“tile”。

这样一张Flowcell,总共就是768个Tile。每个Tile在扫描的时侯,会根据4种颜色,产生4张照片。

扫描完了之后,就要进行图像处理。扫描出来的最原始的文件,它的格式是“.tiff”文件。Tiff文件记录了每个像素点上采集到的光强度。Tiff文件的优点是它是完全无损,保留了所有的原始信息。但它也有它的不足之处。它的不足之处就是它的这个文件太大了。它的数据量很大,既不便于数据的传输,也不便于数据的存储。

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