雨生红球藻中虾青素的C30-反相高效液相色谱法测定
雨生红球藻色素分析[设计+开题+综述]
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开题报告生物工程雨生红球藻色素分析一、选题的背景与意义虾青素是发现于某些水生动物体内的一种酮式类胡萝卜素,又名虾黄素,是一种具有极强抗氧化活性的类胡萝卜素,超强的抗氧化活性赋予了虾青素突出的生理功能,如提高动物免疫力、抑制肿瘤、清除自由基和活性氧等。
虾青素具有广泛的应用价值,不仅可以用作水产养殖的饵料添加剂、人的食品添加剂,在药品、化妆品和高级营养保健品等领域也有非常大的应用潜力。
雨生红球藻是一种单细胞淡水绿藻,其在多种不适宜生长的外界环境条件下都会在细胞核周围的细胞质基质中加速积累次生类胡萝卜素,其中80%以上为虾青素及其酯类。
雨生红球藻中虾青素的积累量可高达细胞干质量的4% ,是其他生物虾青素合成积累量的一到几个数量级,是目前首选的天然虾青素合成生物。
目前虾青素作为天然色素和生物活性物质受到了极大的重视,具有广阔的应用前景和巨大的市场潜力。
随着人们对雨生红球藻虾青素认识的逐步清晰以及对虾青素在雨生红球藻中积累的分子机制研究如虾青素合成酶基因应答环境胁迫的表达调控机制将会是新一轮研究的热点,也将是根本性地改变雨生红球藻虾青素生产限制问题的唯一途径。
二、研究的基本内容与拟解决的主要问题:研究的内容利用UPLC-Q-TOF-MS分析系统,建立雨生红球藻色素的分析方法;利用建立的方法对雨生红球藻生活周期不同阶段进行色素组成及结构分析。
主要解决问题:1、确立雨生红球藻色素提取方法;2、建立雨生红球藻色素分析方法;3、利用建立的方法对雨生红球藻生活周期不同阶段进行色素组成及结构分析,特别是虾青素及其酯类化合物的结构分析与定量。
三、研究的方法与技术路线:研究的方法本研究首先收集雨生红球藻生长周期不同阶段的藻样,即对数期(绿色或游动孢子期)、绿色向红色转化时期(即刚开始积累虾青素时)、不动细胞时期(全部转红),然后提取色素,最后用高效液相色谱质谱技术对叶绿素、虾青素及其它类胡萝卜素进行结构鉴定及定量分析。
技术路线:四、研究的总体安排与进度:2010年11月20-12月15日:更多地收集并阅读与该课题相关的中英文资料,对实验进行设计并制订出详细的研究方案,撰写开题报告与文献综述。
高效液相测定虾青素的含量

高效液相测定虾青素的含量
张玉珍;刘喆
【期刊名称】《中国食品添加剂》
【年(卷),期】2007(000)004
【摘要】建立虾青素的含量及有关物质的反相高效液相色谱测定方法.采用Discovery-C18(4.6mm×250ram,5μm)色谱柱,以甲醇-丙酮-水(76:15:9)为流动相,流速为1.0mL/min,检测波长为482nm,柱温为30℃.在所选定的液相色谱条件下,有关物质与主药分离良好,虾青素在6~36μg/mL范围内线性良好,检出灵敏度为11ng/mL,平均回收率为100%,RSD为0.29%.
【总页数】2页(P151-152)
【作者】张玉珍;刘喆
【作者单位】浙江新昌制药厂研究院,浙江新昌,312500;浙江新昌制药厂研究院,浙江新昌,312500
【正文语种】中文
【中图分类】TS207.3
【相关文献】
1.高效液相法测定虾青素的含量 [J], 饶毅;曾恋情;魏惠珍;龚建平;金浩鑫;郭强;彭琳;
2.高效液相法测定虾青素的含量 [J], 饶毅;曾恋情;魏惠珍;龚建平;金浩鑫;郭强;彭琳
3.虾壳中虾青素及虾青素酯的高效液相测定 [J], 李帅; 郭俊如; 冯金华; 朱泽民; 李玲莉; 郭晓芳; 隋汶燕; 王萌; 左文婷
4.一种测定福寿花浸膏中虾青素含量的酶解-正相高效液相色谱法研究 [J], 陈小兵;
林劲冬;冼啟志;许雪磊;陶正国
5.高效液相色谱法测定虾青素油中虾青素的含量 [J], 孔凡华;徐佳佳;郭倩;白沙沙;李东;方从容;邱楠楠;崔亚娟
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不同有机溶剂对雨生红球藻中虾青素提取成分的影响_李婷

34海洋科学/ 2012年/第36卷/第7期不同有机溶剂对雨生红球藻中虾青素提取成分的影响李 婷1, 2, 韩丽君1, 袁 毅1(1. 中国科学院 海洋研究所, 山东 青岛 266071; 2. 中国科学院 研究生院, 北京 100049)摘要: 研究了有机溶剂提取雨生红球藻中虾青素过程中, 不同液料比对提取效率的影响, 并以分光光度法及高效液相色谱法(HPLC), 检测了不同有机溶剂对提取组分及主要组分(叶绿素和虾青素)含量的影响。
结果显示, 提取率随着液料比的增加而上升, 当液料比大于20:1时, 其升高变缓, 趋于平衡; 不同有机溶剂提取物的化学组分无明显差异, 但各组分含量的比例差异较大, 如二氯甲烷提取物在480 nm 下吸光度为30.64±0.54, 高于丙酮、乙酸乙酯及甲醇(分别为27.68±5.54、25.32±8.43及24.31±0.79), 而645和663 nm 下吸光度为2.54±0.46和5.33±0.19, 较丙酮、三氯甲烷、无水乙醇及甲醇(分别为5.70±0.71、12.87±0.14、7.60±0.23及6.44±0.28)低, 说明该种溶剂对于虾青素有较高的提取效率, 但其挥发性强且毒性大, 而无水乙醇的提取率略低于二氯甲烷, 具有安全、低毒的优势, 因此无水乙醇是较为合适的虾青素提取溶剂。
关键词: 虾青素; 雨生红球藻(Haematococcus pluvialis ); 溶剂类型; 分光光度法; HPLC 中图分类号: P745 文献标识码: A 文章编号: 1000-3096(2012)07-0034-05虾青素(astaxanthin, 3, 3' -二羟基-4, 4 -二酮基-β, β' -胡萝卜素), 是水产动物体内最主要的类胡萝卜素之一。
从雨生红球藻中快速提取虾青素的方法

从雨生红球藻中快速提取虾青素的方法说实话从雨生红球藻中快速提取虾青素这事,我一开始也是瞎摸索。
我试过好多种方法呢。
最开始我就想简单粗暴地把雨生红球藻碾碎了,然后用什么有机溶剂去溶解,我就试了乙醇。
我寻思乙醇不是能溶解好多东西嘛,但结果可把我坑惨了,虾青素没提取出来多少,杂质倒是一堆,就像你想从一堆沙子里找金子,结果只找到几块碎石头一样。
后来啊,我听说可以用超临界流体萃取。
这名字听起来就挺高大上的。
我就去研究这个超临界二氧化碳。
但是这个设备可不好弄,操作起来特别麻烦。
我当时没把那些参数设置好,压力温度没控制准,结果也是失败的。
这过程就像你做饭,火候没调好,再好的食材也做不出好菜。
再然后呢,我看到有人说酸碱处理法。
我心想这个方法好像有点靠谱。
我就开始小心翼翼地调节酸碱度。
可这里面的度太难把握了,稍微酸了一点或者碱了一点,要么就是虾青素结构被破坏了,要么就是藻体分解得不完全。
就像走钢丝似的,稍不留神就掉下去了。
不过经历了这么多失败后,我总算找到一个相对有效的方法。
我先把雨生红球藻进行预处理,就像把食材先洗干净切好准备下锅一样。
我把藻细胞给破壁,这个过程我用了物理和化学结合的方法,先用超声破碎一部分细胞,再用酶处理剩下的部分。
然后我用一种特殊的有机溶剂进行萃取,这个有机溶剂我试了好多种比例才找到比较合适的,而且萃取的过程中要不断搅拌,就像搅拌咖啡要把糖和咖啡充分混合一样。
之后呢再经过浓缩、分离和纯化等步骤,我在浓缩的时候可是慢慢升温的,不敢着急,就像小火煲汤一样。
不过这个方法我也不能确定就是最完美的,可能还有别的更好的方式,只是我目前觉得这个方法还比较快而且能提取出来的虾青素质量也相对不错。
大家如果要试的话一定要小心谨慎操作,精确测量每个步骤的数据,别像我当初那么莽撞。
对了,还要总检查设备是不是正常运行,可别让设备问题影响提取过程。
最后我觉得在提取的过程中多做记录也是很重要的,像我记录每次不同的条件下提取的效果,这样可以方便自己回头分析怎么能改进。
超高效液相色谱法测定虾青素

超高效液相色谱法测定虾青素陈伟珠;张怡评;晋文慧;方华;洪专【摘要】A ultra performance liquid chromatography(UPLC) method for determination of astaxanthin was developed. The determination of astaxanthin was performed on a UPLC BEH C8 column (50 mm×2.1mm,1.7μm). The influence of mobile phase,flow rate and column temperature on the separation of astaxanthin was comprehensively studied. The optimal separation condition was as follows:the mobile phase was methanol–water (volume ratio was 75∶25) with a isocratic elution profile and flow rate of 0.5 mL/min,the detection wavelength was 475 nm,the column temperature was 40℃. The mass concertration of astaxanthin has good linear ralationship with the chromatographic peak area in the range of 0.2–10.0 µg/mL,the correlation coefficient r was 0.998 8. The detection limit was 0.1 µg/mL (S/N=3). The quantitation detection limit was 0.2 µg/mL(S/N=10). The relative standard deviation of determination results was 0.41%(n=6), and the recovery was 105.8%–110.3%. The method is rapid,simple,reliable,and sensitive with a good reproducibility, it can be used for the determination of astaxanthin.%建立超高效液相色谱法快速检测虾青素的方法。
高效液相色谱法测定油脂类保健食品中虾青素

高效液相色谱法测定油脂类保健食品中虾青素刘泰然;赵海燕;罗仁才【摘要】提出了高效液相色谱法测定油脂类保健食品中虾青素含量的方法.样品经乙腈提取,提取液浓缩后,用Dikma C18色谱柱(4.6 mm×250mm,5μm)分离,用不同配比的乙腈和水的混合溶液为流动相梯度洗脱,用紫外检测器于波长479 nm处检测.虾青素的质量浓度在30.0~300mg·L-1范围内与其峰面积呈线性关系,检出限(3S/N)为0.07 mg·L-1.在空白样品中进行加标回收试验,方法的回收率在90.0%~96.7%之间;方法的相对标准偏差(n=6)为2.8%.【期刊名称】《理化检验-化学分册》【年(卷),期】2013(049)005【总页数】3页(P553-555)【关键词】高效液相色谱法;虾青素;油脂类保健食品【作者】刘泰然;赵海燕;罗仁才【作者单位】北京市疾病预防控制中心,北京100013;北京市疾病预防控制中心,北京100013;北京市疾病预防控制中心,北京100013【正文语种】中文【中图分类】O657.63虾青素(3,3′-二羟基-4,4′-二酮基-β,β′-胡萝卜素)又名虾黄素,广泛存在于虾、蟹、某些藻类及真菌中的一种类胡萝卜素。
纯的虾青素为褐红棕色粉末,熔点224 ℃,不溶于水,具脂溶性,易溶于氯仿、丙酮等有机溶剂[1]。
近年来大量的研究表明虾青素具有许多重要的生物学功能,如增强免疫、抗癌等作用,并且在消除时差方面的效果要优于褪黑激素[2]。
虾青素还是一种强大的抗氧化剂,抗氧化效果是普通维生素E 的550倍[3],动物试验表明,虾青素可以清除二氧化氮、硫化物、二硫化物,有效地抑制自由基引发的脂质过氧化,故而在食品添加剂、水产养殖、化妆品、保健品和医药工业方面有广阔的应用前景,因此建立快速、简便、准确的测定虾青素的方法十分必要。
目前报道的虾青素测定方法有紫外分光光度法[4-5]、高效液相色谱法[1,6],但这些方法都适用于藻类样品,未见有关于测定油脂类保健食品的文献报道。
雨生红球藻的研究及发展前景【文献综述】

毕业论文文献综述食品科学与工程雨生红球藻的研究及发展前景摘要:雨生红球藻是一种普遍存在的绿藻,藻中虾青素含量为1.5%~3.0%,被看作是天然虾青素的“浓缩品”。
虾青素具有超强的抗氧化性,抗氧化性比α-生育酚强10-15倍。
胡萝卜素高10倍,比维生素E高1000倍,是OPC的20倍。
虾青素具有抗癌,缓解疲劳,增强免疫力等功能,目前在食品、医药、化妆品及养殖行业得到了广泛的应用。
关键词:雨生红球藻;抗氧化性;虾青素;发展前景1雨生红球藻的研究1.1雨生红球藻的简介第一个关于红球藻的全面描述的英文资料是由T.E.Hazen 在1899年发表Torrey 植物学俱乐部的报告中。
他发现这种藻类经常以一种血红色外壳的形式附着在水坛或靠海的周期性有水的浅水湾边上,这种藻类的生命历程是经过一个红色的休眠阶段,之后是一个绿色的游动阶段,再之后又是一个红色的休眠阶段。
几年后,Peebles发表了这种藻的生长史,更为详细的描述了“haematochrom”在整个生命周期过程中的变化。
1934年,Elliot从细胞形态学的角度补充了这种藻类的生长史的细节。
在整个生命周期中出现四种典型的细胞形态:小虫体、长有鞭毛的大虫体、没有运动能力的胶鞘体、带有坚硬细胞壁的红色大细胞——红孢(haematocysts)。
在有充足营养的清洁环境中,大虫体占主导地位;一旦环境恶化就会转化为叫胶鞘体,之后转化为具有抵抗力的红孢囊,并开始积累虾青素。
随后,当周围的环境又变得营养充足适宜的时候,红孢囊变成可运动的小虫体,这些小虫体长成胶鞘体或者大虫体。
红球藻形体的暂时状态要比恒定状态普遍的多,部分是因为这些水坑中通常没有其他竞争性的藻类,而与水坑的固有特性没有什么关系[1]。
红球藻比其他大多数藻类更能适应光线、温度和盐度的迅速且剧烈的变化,这是因为它具有迅速形成孢囊的能力。
雨生红球藻又被叫做湖生红球藻或湖生血球藻,是一种普遍存在的绿藻,属于团藻目,红球藻科。
雨生红球藻中虾青素的研究与应用

㊀㊀第38卷第2期2019年4月中国野生植物资源ChineseWildPlantResourcesVol.38No.2Apr.2019㊀㊀doi:10.3969/j.issn.1006-9690.2019.02.016收稿日期:2018-04-21基金项目: 十二五 国家科技支撑计划(2012BAD36B01)ꎮ雨生红球藻中虾青素的研究与应用张广伦ꎬ肖正春ꎬ张锋伦ꎬ张卫明(南京野生植物综合利用研究院ꎬ江苏南京211111)摘㊀要㊀雨生红球藻是单细胞微藻ꎬ其中的虾青素具有抗氧化㊁抗肿瘤㊁预防心脑血管疾病等多种生物活性ꎬ在食品㊁医药㊁保健品㊁化妆品及养殖业有诸多用途ꎮ概述了雨生红球藻虾青素含量影响因素ꎬ雨生红球藻培养方法㊁虾青素的提取方法及其应用领域等最新研究成果ꎬ为虾青素的开发利用提供帮助ꎮ关键词㊀雨生红球藻ꎻ虾青素ꎻ抗氧化ꎻ抗肿瘤ꎻ应用中图分类号:Q949㊀㊀㊀㊀㊀㊀文献标识码:A㊀㊀㊀文章编号:1006-9690(2019)02-0072-06StudyandApplicationofAstaxanthininHaematococcuspluvialisZhangGuanglunꎬXiaoZhengchunꎬZhangFenglunꎬZhangWeiming(NanjingInstituteforComprehensiveUtilizationofWildPlantsꎬNanjing211111ꎬChina)Abstract㊀Haematococcuspluvialisisakindofmicroalgawithsinglecellꎬcapabletoaccumulatelargequantitiesofastaxanthinꎬwhichpossessesavarietyofbiologicalactivitiesꎬsuchasantioxidantꎬanti-tumorandpreventingcardiovascularandcerebrovasculardiseasesꎬetcꎬandfindsmanyusesinfoodsꎬmedicineꎬhealthproductsꎬcosmeticsandaquaculture.Thispapersummarizedtheresearchfindingsa ̄boutinfluencingfactorsofastaxanthincontentinH.pluvialisꎬculturemethodsofH.pluvialisꎬextractingmethodsofastaxanthinanditsapplicationꎬtoofferareferencefordevelopmentofastaxanthininH.plu ̄vialis.Keywords㊀HaematococcuspluvialisFlotowꎻastaxanthinꎻantioxidantꎻanti-tumorꎻapplication㊀㊀雨生红球藻(HaematococcuspluvialisFlotow)是一种单细胞淡水微藻ꎬ属绿藻门(Chlorophyta)㊁团藻目(Volvocales)㊁红球藻科(Haematococcaceae)㊁红球藻属(Haematococcus)ꎮ生活史中细胞具有多样性ꎬ主要有营养细胞和厚壁孢子两种形态ꎮ在弱光㊁氮磷丰富的环境中以游动的绿色营养细胞存在ꎬ在此状态下雨生红球藻生长旺盛ꎬ细胞内虾青素含量很低ꎮ在不利生存条件下(高光照㊁高温㊁高盐或营养盐饥饿)下失去鞭毛ꎬ以不动的厚壁孢子形态存在ꎬ并积累大量虾青素[1]ꎮ天然虾青素的生物来源主要有虾㊁蟹等水产品的废弃物㊁红发夫酵母和雨生红球藻ꎮ其中ꎬ虾㊁蟹等水产品的废弃物中虾青素不仅含量低ꎬ而且提取费用高ꎬ天然红发夫酵母中虾青素的平均含量仅0.4%ꎮ雨生红球藻是天然虾青素的理想生物来源[2]ꎮ本文主要概述了雨生红球藻中虾青素的积累规律㊁虾青素含量变化的影响因素ꎬ提取方法㊁雨生红球藻的培养方法以及虾青素的生物活性及其应用等内容ꎬ希望有助于雨生红球藻的开发利用ꎮ1㊀虾青素积累过程中雨生红球藻的形态和生理变化雨生红球藻为单细胞微藻ꎬ生活史主要分为两个阶段:绿色营养细胞(GV)阶段和不动细胞阶段ꎮ绿色营养细胞有两条鞭毛ꎬ能运动ꎬ在光下进行光合作用ꎬ在黑暗中营异养生活ꎮ不动细胞根据颜色和形态特征ꎬ又分为绿色不动细胞(GR)㊁桔黄色不动细胞(OR)和红色孢囊(RC)ꎮOR细胞处于营养饥饿状态ꎬ是快速积累虾青素的时期ꎮ环境胁迫诱导形成孢囊ꎬ随着孢囊细胞成熟ꎬ类胡萝卜素大量积累ꎮ虾青素可达到细胞干重的4%~6%ꎮ通过显微观察ꎬOR细胞叶绿体中类囊体的膜解27第2期张广伦ꎬ等:雨生红球藻中虾青素的研究与应用体成碎片状ꎬ积累大量的虾青素酯㊁淀粉和脂质体ꎬ这和GV细胞有很大不同ꎮ但OR细胞保留了大部分光合色素ꎬ如紫黄素(violaxanthin)ꎬ玉米黄素(an ̄theraxanthin)和新黄素(neoxanthin)ꎬ仍能进行一定程度的光合作用ꎬ但光合效率明显下降ꎮ光合系统I和光合系统II中ꎬ能量分配类型更倾向于光合系统I(PSI)ꎮ通过OR细胞和GV细胞类囊体的蛋白质组比较分析ꎬ两者的调节蛋白均参与光合作用ꎬ但OR细胞类囊体蛋白与胁迫响应有关ꎬ而GV细胞的类囊体蛋白参与生物量积累ꎮ这些研究结果为OR细胞中虾青素的合成提供了生理依据[3]ꎮ虾青素在雨生红球藻中是通过类异戊二烯途径合成的ꎬ合成在叶绿体外进行ꎮ起始物质为乙酰-CoAꎬ经茄红素㊁番茄红素㊁ζ-胡萝卜素㊁角黄素等中间物ꎬ最后合成为虾青素ꎮ虾青素合成后ꎬ在3 -羟基酯化ꎬ增加其在细胞环境中的溶解性和稳定性ꎮ2㊀虾青素及其生物活性虾青素(astaxanthin)又名虾红素ꎬ在体内可与蛋白质结合而呈青色㊁蓝色ꎮ化学名称为3ꎬ3 -二羟基-βꎬβ -胡萝卜素-4ꎬ4 二酮ꎬ分子式:C40H52O4ꎬ相对分子质量:596.82ꎮ除了雨生红球藻和红发夫酵母(XanthophyllomycesdendrorhousꎬPhaffiarhodozyma)外ꎬ近年来ꎬ发现一些绿藻也含有虾青素:如Coelastrellastriolata㊁单针藻Monoraphidiumsp.㊁斜生珊藻Scenedesmusobliquus㊁小球藻Chlorellazof ̄ingiensis等ꎮ此外ꎬ虾青素也存在于虾㊁蟹以及一些贝类动物体内ꎮ雨生红球藻虾青素含量较高ꎬ是提取虾青素的好原料ꎮ虾青素具有多种生物活性[4-5]: (1)抗氧化虾青素具有长的共轭双键ꎬ末端酮基和羟基的活泼电子易提供电子给自由基或吸引自由基的未配对电子ꎬ从而清除自由基ꎬ起到抗氧化作用ꎮ虾青素的抗氧化作用比其它类型的类胡萝卜素更强ꎬ清除自由基的能力和淬灭单线态氧的活性比维生素E强500多倍ꎬ比玉米黄质㊁番茄红素㊁叶黄素㊁角黄素以及β-胡萝卜素高10倍ꎬ是花青素的17倍ꎬ被称为 超级维生素E ꎮ虾青素强抗氧化性和清除自由基的能力ꎬ对人体健康起着极其重要的作用ꎮ(2)增强机体免疫力虾青素可增强T细胞ꎬ刺激人体内血细胞产生免疫球蛋白ꎬ显著增强机体的免疫功能ꎬ增加对病毒㊁细菌等的抵抗力ꎮ此外ꎬ其在抗原入侵初期增强特异性体液免疫反应的效果优于ζ-胡萝卜素等物质ꎮ(3)抗衰老㊁抗老化虾青素可强化机体需氧代谢ꎬ增强肌肉力量和耐受力ꎬ起到抗衰老作用ꎮ虾青素的抗氧化活性使其成为光的高效保护剂ꎬ可阻止皮肤老化ꎬ作用效果优于维生素A㊁β-胡萝卜素和叶黄素ꎮ虾青素脂溶性好ꎬ对细胞膜有亲和力ꎬ用虾青素开发防晒霜ꎬ不仅可防止光辐射ꎬ还有抗细胞老化的效果ꎮ此外ꎬ虾青素有抗癌活性ꎮ3㊀雨生红球藻中虾青素含量影响因素培养雨生红球藻时ꎬ影响虾青素含量的因素是多方面的ꎬ如温度㊁光照强度㊁pH值㊁培养基种类以及藻种品系等ꎬ这些因素往往是协同起作用的ꎮ(1)培养基种类㊁品系的影响采用BBM㊁HGZ两种培养基培养雨生红球藻结果表明:BBM培养基比HGZ培养基更适合营养生长ꎮ3个品系(H17㊁HPM㊁HPB)的平均生长速率分别提高57.2%㊁28.97%㊁18.1%ꎮ培养10dꎬ叶绿素含量增加201.9%~288.2%ꎬ干重增加38.8%~114.3%ꎻ而HGZ培养基更适合虾青素积累ꎮ在强光和缺氮条件培养15d后ꎬ用HGZ培养基培养的3个红球藻品系细胞的虾青素累积为BBM培养基的2.0~2.5倍[6]ꎮ邱保胜等对传统培养基作了改良ꎬ保持了绿色游动细胞培养期pH值的相对稳定ꎬ可培养出高密度绿色营养细胞[7]ꎮ(2)接种密度㊁pH值将pH值控制在偏碱性条件下(7.75ʃ0.10)ꎬ有利于藻细胞生长ꎻ较高的接种密度(2.3ˑ104个/mL)能缩短营养培养周期(7d)ꎬ接种密度变化对胁迫周期长短无明显影响(均为4d)ꎬ所以选用较高的接种密度可望降低花青素工业生产的成本ꎮ(3)氮磷等营养因素在BBM培养基中NaNO3浓度减半时(0.13g/L)ꎬ细胞增殖及色素累积都相对有利ꎮ在高光强下实施氮㊁磷饥饿ꎬ红球藻细胞分裂明显受抑ꎬ但色素的累积作用增强ꎬ培养9dꎬ细胞内次生类胡萝卜素的含量分别比对照组提高141.0%和60.5%ꎬ色素的累积高峰也比对照组提前2~4dꎮ因此ꎬ在培养适当时机控制氮磷的量ꎬ特别是氮素ꎬ对提高虾青素含量有利[8]ꎮ氮素种类对雨生红球藻生长和虾青素积累的影37中国野生植物资源第38卷响也有不同ꎮ雨生红球藻797株以NH4+-N培养的生长速率明显高于NO3--N培养ꎬ平均生长速率分别为0.279m/d和0.190m/dꎬ且NH4+-N培养所消耗的N㊁P营养盐比NO3--N培养消耗的少ꎮ两种氮源下强光照处理1d和7d均导致雨生红球藻细胞数减少而静细胞比例增加ꎮ在虾青素合成阶段ꎬ藻液N含量急剧下降而P含量基本保持稳定ꎬ说明虾青素合成对N的需要量大而对P的需要小ꎮ在NH4+-N培养下SOD活性下降而虾青素含量升高ꎬ而在NO3--N培养下SOD活性与虾青素含量同时升高ꎮ(4)光照和碳源不同光照强度及添加不同葡萄糖量进行混合培养对雨生血球藻虾青素产量的影响研究表明ꎬ单位体积培养液虾青素产量随光照强度和葡萄糖添加量变化ꎬ在光照强度为2500lx以及葡萄糖添加量为3g/L时ꎬ虾青素产量最高ꎮ光照强度和葡萄糖添加浓度对虾青素产量有交互影响ꎮ通过中心组合试验ꎬ混合培养条件下最高虾青素产量所需要的葡萄糖添加量及光照强度分别为3.1616g/L和2605.66lxꎮ此时的虾青素产量为41.06mg/Lꎬ是自养培养时的2.02倍[9]ꎮ(5)温度在环形培养池模拟系统培养雨生红球藻ꎬ观察温度对雨生红球藻生物量及虾青素产量的影响ꎮ结果表明ꎬ在15ħ~25ħ的范围内ꎬ不同温度下雨生红球藻生物量和虾青素含量及产量都经历了一个上升-最高-下降的过程ꎮ25ħ与22ħ时红球藻的虾青素产量㊁虾青素含量(干重)均显著高于其他温度(P<0.01)ꎮ15ħ时ꎬ红球藻生物量㊁虾青素含量和虾青素产量均最低ꎬ分别为1.4g㊁0.54%和2.49mg/Lꎻ25ħ时ꎬ红球藻生物量和虾青素产量最高ꎬ分别为2.68g和13.53mg/Lꎻ22ħ时ꎬ虾青素含量最高ꎬ为1.52%[10]ꎮ(6)光照光照是诱导虾青素积累的重要因子ꎮ高光照强度有利于虾青素积累而不利于生长ꎬ但光照过强会导致红球藻大量死亡ꎮ一般认为ꎬ2klx以下的弱光有利于红球藻营养细胞的生长ꎬ最佳光强为1.1~1.3klxꎮ红光可促进雨生红球藻的生长ꎮ虾青素积累的最适光强范围为34.4~36.6klxꎬ雨生红球藻置于10~12klx光强下ꎬ营养细胞迅速由绿色变为红色ꎮ蓝光比红光更有利于红球藻合成虾青素[11]ꎮ也有试验认为ꎬ光照强度10~12klx有利于绿色营养细胞转化为红色细胞[12]ꎮ(7)碳氮比在低C/N的营养培养基中雨生红球藻营养生长期延长ꎬ长势旺盛ꎬ而高C/N的培养基中易形成孢囊ꎬ虾青素含量也高[13]ꎮ4㊀雨生红球藻培养方法根据雨生红球藻的不同存在形式ꎬ一般将虾青素的生产分成微藻培育和虾青素积累两个阶段ꎮ第一阶段让营养细胞高密度生长ꎮ第二阶段中ꎬ通过高温㊁增加光强度㊁提高盐浓度等手段ꎬ促使营养细胞转变成厚壁孢子ꎬ达到积累虾青素的目的ꎮ雨生红球藻的培养主要有以下方式:分批培养(batchculture)ꎮ用少量藻液接种ꎬ培养一段时间ꎬ当细胞生长繁殖达到较高的密度ꎬ进行采收或进一步扩大培养ꎮ将收获的的培养物胁迫处理获得虾青素ꎮ分批培养是传统培养方式ꎬ耗时长㊁产量低ꎬ不适合大规模培养ꎮ半连续培养(semi-continuousculture)ꎮ在分批培养的基础上ꎬ当藻细胞达到一定浓度后ꎬ每次收获一部分藻液ꎬ同时补充等量的培养液ꎬ继续培养ꎮ待培养物达到一定浓度后ꎬ再次收获并补充培养液ꎬ如此循环ꎮ根据雨生红球藻生长特点ꎬ采用连续异养-光合自养培养法对雨生红球藻进行培养ꎬ可得到高产量的虾青素ꎮ方法是先用异养方法培养细胞ꎬ使其达到很高的细胞浓度ꎬ再采用光培养积累虾青素ꎮ异养阶段生物量形成的最适pH值为8ꎬ温度为25ħꎮ醋酸盐在10~30mmol/L的浓度范围内变化对细胞的比生长速率没有明显影响ꎮ但高浓度的醋酸盐抑制细胞生长ꎮ因此异养培养阶段以醋酸盐为有机碳源时ꎬ可用流加培养法保持pH值稳定ꎬ可获得质量浓度高达7g/L的细胞ꎮ异养培养期间由于细胞从营养到孢囊转变ꎬ要想得到更高浓度的细胞似乎不大可能ꎮ但反复流加培养ꎬ可让细胞维持在生长型ꎬ获得2倍多的数量的细胞ꎮ用连续异养-光合自养培养法可获得114mg/L的虾青素ꎬ生产率为4.4mg/(dL)[14]ꎮ利用红发夫酵母细胞吸收利用雨生红球藻代谢过程中产生的NH4+的特点ꎬ可让两者混合培养ꎬ稳定pH值在7.0左右ꎬ使雨生红球藻碳代谢在虾青素合成方向占优势ꎬ提高虾青素产量[15]ꎮ目前ꎬ光生物反应器已普遍应用于微藻培养ꎬ有开放式和封闭式两大类ꎮ封闭式光生物反应器有管47第2期张广伦ꎬ等:雨生红球藻中虾青素的研究与应用道式㊁平板式㊁柱状气升式㊁搅拌式等ꎬ主要用于雨生红球藻原藻液培养和扩种培养ꎮ开放式具有投资少㊁成本低㊁技术要求简单的特点ꎬ用于雨生红球藻规模化绿色细胞高密度培养和虾青素积累期孢子培养ꎮ据报道ꎬ在最佳培养条件下ꎬ雨生红球藻细胞接种1d后即进入指数生长阶段ꎬ在胁迫阶段仅需4d即达到虾青素含量的峰值[16-17]ꎮ5㊀虾青素的提取方法虾青素在雨生红球藻红色孢囊内ꎬ壁厚且坚硬ꎬ需经研磨法㊁微波法㊁高压均质等方法破壁处理ꎮ根据虾青素脂溶性的特点ꎬ用乙酸乙酯㊁乙醇㊁丙酮等有机溶剂提取ꎮ考察匀浆法等5种破壁方法对虾青素提取率影响的结果表明ꎬ对雨生红球藻最佳破壁条件:匀浆法破壁时间22minꎬ水为介质ꎻ冻融温差法破壁温度为-70ħꎬ时间为12hꎬ冻融2次ꎬ水为介质ꎻ超声功率400Wꎬ每次超声时间5sꎬ共超声25minꎻ直接研磨法研磨时间1minꎻ加液氮低温研磨法破壁2次ꎬ每次时间0.5minꎻ虾青素的提取率依次为0.76%㊁0.93%㊁1.03%㊁1.51%和3.21%ꎮ加液氮低温研磨法在破壁过程中不添加化学试剂ꎬ不产生污染ꎬ能最大限度地保留虾青素的生理活性ꎬ是所选方法中最好的[18]ꎬ但所需成本较高ꎮ陈兴才等研究了几种物理破壁法对雨生红球藻厚壁孢子细胞破壁率及虾青素提取率的影响ꎬ确定了高压均质处理㊁超声波法和反复冻融法的最适工艺条件ꎮ试验结果表明:高压均质处理最适合于雨生红球藻厚壁孢子的破碎和虾青素的提取ꎮ优化条件为:40MPaꎬ室温ꎬ循环3次ꎬ破壁率可达91.4%ꎬ虾青素提取率为28.02μg/mg(细胞干重)ꎬ而未经破壁的虾青素提取率仅为17.92μg/mg(细胞干重)ꎬ提取率提高了56.3%[19]ꎮ对微波萃取研究结果表明:萃取时间4.5minꎬ萃取功率540Wꎬ液料比220:1的条件下ꎬ虾青素的提取率最佳ꎬ可达1.020%[20]ꎮ(1)溶剂提取法ꎮ以冻干的雨生红球藻粉为原料ꎬ采用乙醇和乙酸乙酯混合溶剂进行虾青素酯的提取ꎮL9(33)正交试验筛选获得虾青素酯的最佳条件:温度25ħꎬ提取时间为6hꎬ乙酸乙酯和乙醇的配比为1:2ꎬ固液比为1:120(g/mL)ꎮ对提取的虾青素酯进行皂化ꎬ分别研究了4ħ和40ħ时碱的浓度及皂化时间对提取效果的影响ꎮ结果表明:0.06mol/LKOH-甲醇溶液于4ħ皂化12h效果最好ꎬ从100mg藻粉可以得到(575.86ʃ5.68)μg虾青素单体[21]ꎮ(2)超临界流体萃取法ꎮ以雨生红球藻粉为原料ꎬ采用超临界CO2萃取技术ꎬ萃取雨生红球藻浸膏ꎬ最佳工艺条件为:萃取压力44.6MPaꎬ萃取温度64.2ħꎮCO2流速7.1L/hꎬ萃取时间3.5hꎬ在此条件下获得的虾青素提取率可达1.028%[11]ꎮ6㊀虾青素的应用雨生红球藻在自然界生活在池塘湖泊中ꎬ是鱼㊁虾㊁蟹㊁贝类等水产的天然食物来源ꎬ参与生态系统的物质循环和能量代谢ꎮ通过培养雨生红球藻ꎬ获得的虾青素可应用于食品㊁保健品㊁化妆品㊁医药等多领域ꎮ6.1㊀食品添加剂虾青素有很强的抗氧化作用ꎬ可用于食品保鲜ꎬ延长食品货架期ꎮ对南湾鳙鱼油抗氧化性能测试结果表明:鱼油中添加虾青素可明显抑制酸价和过氧化值上升ꎮ虾青素抗氧化性能优于油溶性茶多酚ꎬ并优于维生素Eꎮ虾青素联合茶多酚抗氧化作用更为明显ꎬ对南湾鳙鱼油的抗氧化作用与TBHQ(叔丁基对苯二酚)相当ꎮ0.02%虾青素+0.02%茶多酚的复合抗氧化剂可使南湾鳙鱼油在20ħ条件下的预期贮藏期从20d延长到120dꎮ虾青素作为新型天然抗氧化剂用于食品越来越受到青睐[22]ꎮ6.2㊀在保健品中的应用[23-24]虾青素可用于多种功能保健品的开发ꎬ如增强免疫力ꎬ抗氧化㊁缓解视疲劳㊁保护胃粘膜等ꎮ(1)虾青素能防止脂质过氧化ꎬ是单线态氧的淬灭剂ꎬ清除自由基ꎬ延缓衰老ꎮTinkler等研究了几种类胡萝卜素对体外血细胞淬灭单线态氧的效率ꎬ其中虾青素比β-胡萝卜素高ꎬ仅次于番茄红素ꎮ虾青素清除自由基的效率比β-胡萝卜素和玉米黄质高50%ꎮ(2)虾青素可增强动物的免疫功能ꎮ促进脾细胞产生抗体ꎬ增强T细胞刺激下人体内血细胞免疫球蛋白的产生ꎮ动物试验表明ꎬ虾青素能增强小鼠释放白细胞介素-1α和肿瘤坏死因子αꎬ其作用比β-胡萝卜素和角黄素强ꎮ(3)虾青素对视力有保护作用ꎬ可预防和减轻眼疲劳ꎮJyonoychi等报道虾青素可有效防止人视网膜氧化和感光细胞损伤ꎬ改善视网膜功能[25]ꎮLennikov用小鼠实验表明虾青素可预防或治疗紫外线诱导的角膜炎[26]ꎮCort也证实虾青素对高眼压 57中国野生植物资源第38卷大鼠视网膜有保护作用[27]ꎮ(4)对慢性胃炎研究表明ꎬ虾青素提取物通过抗氧化作用能保护小鼠的胃黏膜免受损伤ꎬ对溃疡形成有抑制作用ꎮBennedsen等证实虾青素可减少细菌侵入ꎬ减轻胃炎症ꎬ并通过淋巴细胞释放因子抗小鼠幽门螺旋菌感染[28]ꎮ此外ꎬLingnell等研究发现口服虾青素可明显增强人的肌肉力量和耐受力ꎮ6.3㊀在医药领域的应用[23-24](1)抗癌动物实验模型证实ꎬ虾青素能显著抑制肿瘤生长㊁诱导细胞凋亡㊁抑制癌细胞转移ꎮ其作用机制不仅与其抗氧化作用有关ꎬ还可能通过活化过氧化物酶体增殖物激活受体γ(PPARγ)ꎬ抑制NF-κB激活等调控多种信号分子实现其抑癌作用ꎮ虾青素可有效抑制胃癌㊁肝癌等[29]ꎮ(2)防治心脑血管疾病Choi等观察了虾青素对肥胖人群的血脂和氧化应激的影响:服用虾青素后低密度脂蛋白㊁载脂蛋白B等指标都显著降低ꎮSasaki等用大鼠所做的实验证实虾青素具有抗血栓和抗高血压的作用ꎮ因此ꎬ虾青素可用于防止心脑血管疾病ꎮ(3)预防糖尿病及肾病Chan研究表明虾青素能减弱糖尿病所导致的血凝㊁氧化应激以及炎症反应ꎮNaito等研究了虾青素对小鼠肾病的预防效果ꎬ结果显示虾青素的抗氧化作用减少了肾病的氧化应激并能防止肾细胞损伤ꎮ虾青素有望用于糖尿病和肾病治疗ꎮ6.4㊀化妆品虾青素脂溶性好ꎬ对细胞膜具有亲和力ꎬ抗氧化活性强于维生素Eꎬ可用于新型化妆品的开发ꎮ目前ꎬ不少品牌的化妆品均把雨生红球藻提取物作为配方成分ꎬ包括日本品牌高丝(KOSE)㊁芳凯(Fancl)㊁姿姿(JUJU)等都推出了雨生红球藻提取物系列保湿霜㊁抗皱眼霜㊁面膜等ꎮ我国用虾青素为原料生产的抗氧化眼霜㊁眼贴㊁洁面乳等产品也已问世ꎮ6.5㊀饲料多数动物都不能合成类胡萝卜素ꎬ虾青素作为饲料添加剂能显著改善动物的体色ꎬ促进生长ꎬ增强机体免疫力ꎬ提高营养价值和商品价值ꎮ北极红点鲑饲料中添加虾青素ꎬ肌肉的红色程度与添加虾青素的量呈正相关ꎮ虹鳟鱼饲料中添加100mg/L的虾青素可使肌肉中的类胡萝卜素含量大幅度升高ꎮ雨生红球藻虾青素对血鹦鹉观赏鱼的生长㊁着色及抗氧化能力试验结果表明:喂食添加虾青素饲料的实验组鱼体增重300%ꎬ较对照组提高50%ꎻ鱼皮肤中虾青素㊁类胡萝卜素含量分别是实验前的174%㊁184%ꎻ鳞片中虾青素㊁类胡萝卜素含量为实验前的207%㊁256%ꎬ鱼肌肉总抗氧化能力显著高于对照组ꎮ用虾青素喂养鸡鸭ꎬ可生产出天然色素红心蛋ꎮ7㊀展㊀望虾青素卓越的抗氧化性能令人瞩目ꎬ目前已有日本的YAMAHA集团㊁FUJI化学集团㊁Biogenic公司㊁美国Cyanotech公司㊁印度BioPrex公司㊁以色列Algatech公司规模化养殖红球藻生产天然虾青素ꎮ我国在商业化养殖红球藻也取得突破ꎮ湖北一家公司在荆州已建成2.4万m2的雨生红球藻培养池ꎬ年产虾青素含量2.0%以上雨生红球藻粉10~25t[30]ꎮ2010年卫生部批准雨生红球藻为新资源食品之一ꎮ除了含有类胡萝卜素外ꎬ雨生红球藻还含有蛋白质(23.62%)㊁碳水化合物(38.0%)㊁脂肪(13.80%)ꎬ铁㊁镁㊁钙等矿物质以及叶酸㊁烟酸㊁泛酸等维生素ꎬ本身就有较高的营养价值[31]ꎮ可根据产品功能定位和消费人群的不同ꎬ直接加工成藻粉或深加工成虾青素提取物ꎮ对雨生红球藻培养废水综合利用也是一项重要课题ꎬ如从中提取活性胞外多糖等ꎮ在挪威斯瓦尔巴特(Svalbard)群岛已发现在4~10ħ生长的耐寒新品系[32]ꎬ加强雨生红球藻低温品种的引种培育ꎬ让更广阔的地区实现其规模化生产已刻不容缓ꎮ参考文献:[1]㊀胡章立ꎬ吴玉荷ꎬ罗杏桃.雨生红球藻细胞类型转化影响因子的协同作用[J].深圳大学学报(理工版)ꎬ2002ꎬ19(3):8-12. 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雨生红球藻中虾青素的C30-反相高效液相色谱法测定孙伟红;肖荣辉;冷凯良;邢丽红;苗均魁;许洋;王泽文【摘要】建立了雨生红球藻中虾青素的C30-反相高效液相色谱测定方法.雨生红球藻经二氯甲烷-甲醇(体积比25 : 75)研磨和超声提取后,在0.5 mL 0.1 mol/L NaOH甲醇溶液中于5 ℃避光皂化12 h,在YMC-Caarotenoid C30色谱柱(250 mm×4.6 mm×5 μm)上以甲醇(A)、叔丁基甲基醚(B)、1%磷酸溶液(C)为流动相梯度洗脱,采用紫外检测器在474 nm测定.在优化实验条件下,雨生红球藻中的虾青素酯可以很好地转化为游离虾青素.实验以虾青素酯和虾青素在C30色谱柱上不同的出峰时间作为判断是否皂化完全的依据.在0.1 ~5 mg·L-1时峰强度与虾青素质量浓度呈良好线性(r=0.999 7),方法的定量下限为2 mg/kg,平均回收率为95% ~108%,相对标准偏差为3.5% ~14.7%.方法准确可靠,适用于雨生红球藻中虾青素含量的测定.【期刊名称】《分析测试学报》【年(卷),期】2010(029)008【总页数】5页(P841-845)【关键词】雨生红球藻;虾青素;皂化法;C30-反相高效液相色谱法【作者】孙伟红;肖荣辉;冷凯良;邢丽红;苗均魁;许洋;王泽文【作者单位】中国水产科学研究院黄海水产研究所,山东,青岛,266071;中国海洋大学食品科学与工程学院,山东,青岛,266100;中国水产科学研究院黄海水产研究所,山东,青岛,266071;中国水产科学研究院黄海水产研究所,山东,青岛,266071;中国水产科学研究院黄海水产研究所,山东,青岛,266071;中国水产科学研究院黄海水产研究所,山东,青岛,266071;中国水产科学研究院黄海水产研究所,山东,青岛,266071;中国水产科学研究院黄海水产研究所,山东,青岛,266071;中国海洋大学食品科学与工程学院,山东,青岛,266100【正文语种】中文【中图分类】O657.72虾青素 (Astaxanthin,3,3′-二羟基 -4,4′-二酮基 -β,β′-胡萝卜素 )是一种类胡萝卜素衍生物 , 具有很强的抑制肿瘤发生和生长,抑制多元不饱和脂肪酸的氧化,抵御紫外线,增强人体免疫功能,改善视力、色素形成和神经连通以及改善生育等作用,同时还有清除二氧化氮、硫化物、二硫化物和降低脂质过氧化的作用[1-4],因此在化妆品、保健品和医药中具有广泛的应用前景。
游离的虾青素主要有 3种同分异构体:trans-astaxanthin、9-cis-astaxanthin、13-cis-astaxanthin,目前国内报道的虾青素的分析方法通常为高效液相色谱法,且一般只分析 trans-astaxanthin[5-11]。
美国食品药品监督管理局 (FDA)规定了雨生红球藻中总虾青素测定的分光光度法[12]。
除了碱皂化法转化虾青素酯为游离的虾青素外,亦有文献采用胆固醇酯酶转化胡萝卜素酯[13];日本 FUJ I化学工业集团建立了分光光度法和高效液相色谱法测定雨生红球藻中虾青素含量的方法[14],该方法采用胆固醇酯酶转化雨生红球藻中的虾青素酯,并采用 C30反相色谱柱测定了虾青素的 3种同分异构体的含量,但成本昂贵。
本文采用 C30-反相高效液相色谱NaOH皂化法测定了雨生红球藻中 trans-astaxanthin、9-cis-astaxanthin、13-cis-astaxanthin的含量,并对不同厂家生产的不同批次的雨生红球藻成品进行了验证。
1.1 仪器与试剂美国 Agilent 1100高效液相色谱仪,配紫外检测器;Millipore Q超纯水器 (美国Millipore公司);H imac CR22G高速冷冻离心机 (日本 Hitachi公司),KQ-300E超声波清洗机 (昆山市超声仪器有限公司);N-EVAP112氮吹仪 (Organomation Associates.jnc,USA);0.45μm滤膜;丙酮、甲醇、乙腈、二氯甲烷和叔丁基甲基醚均为色谱纯;雨生红球藻样品分别购于国内外不同虾青素生产厂家。
虾青素标准品购于德国 Dr.Ehrenstorfer公司,纯度为 (95.8±0.5)%;准确称取适量虾青素标准品,用二氯甲烷或丙酮配成1 000 mg·L-1的储备液 (超声波促进溶解),存放于棕色瓶中,保存于 2~8℃冰箱,使用前配成合适含量的工作液用于液相色谱分析。
1.2 色谱条件色谱柱为 Y MC-Carotenoid C30色谱柱(250 mm×4.6 mm×5μm,日本 Y MC公司);流动相 A为甲醇,流动相 B为叔丁基甲基醚,流动相 C为 1%磷酸溶液。
洗脱梯度程序为:0~15 min,81%~66%A,15%~30%B,4%C;15~23 min,66%~16%A,30%~80%B,4%C;23~27 min,16%~81%A,80%~15%B,4%C;27~30 min,81%A,15%B,4%C。
流速为1.0 mL·min-1;检测器为紫外检测器;检测波长为474 nm;进样量为20μL;柱温:室温。
1.3 虾青素酯的提取与皂化1.3.1 虾青素酯提取准确称取 50 mg市售雨生红球藻产品,置于 10 mL玻璃匀浆器中,加入约 1 mL二氯甲烷 -甲醇 (体积比 25使用不同皂化溶剂∶75)充分研磨,提取液转移至 50 mL离心管中,重复上述步骤 3~4次,使细胞壁充分破碎,合并提取液。
40~50℃下超声提取5 min,5℃下以 8 000 r/min离心 5 min,取上清液于 50 mL容量瓶中,重复超声提取 3~4次以充分提取虾青素酯至藻体为白色,合并上清液定容后稳定15 min,5℃下以 10 000 r/min离心 5 min,取上清液 5 mL定容至 50 mL,待用。
1.3.2 虾青素酯皂化准确移取5 mL“1.3.1”提取液,加入 0.5 mL新配的 0.1 mol·L-1的 NaOH甲醇溶液,涡旋混合,在氮气吹扫下定容至 5 mL,并充氮密封,在5℃冰箱中反应过夜 (12 h以上),用0.45μm滤膜过滤后进行 HPLC分析。
2.1 检测波长的选择游离虾青素和虾青素酯的吸收峰位于 470~480 nm[13],参考文献[11,14]确定 3种虾青素同分异构体 trans-astaxanthin、9-cis-astaxanthin、13-cis-astaxanthin的检测波长为 474 nm。
2.2 皂化条件考察2.2.1 皂化溶剂的影响考察了丙酮、二氯甲烷、二氯甲烷 -甲醇(25∶75)、乙腈 -甲醇(75∶25)作为皂化溶剂对虾青素酯皂化效率的影响。
3次平行实验的结果表明,使用不同皂化溶剂皂化后虾青素的含量分别为:丙酮为 0.4%,二氯甲烷为 0.72%,二氯甲烷 -甲醇为 1.58%,乙腈 -甲醇为1.24%,因此选择二氯甲烷 -甲醇(25∶75)作为皂化溶剂。
2.2.2 提取溶剂的影响以二氯甲烷 -甲醇(25∶75)为皂化溶剂,分别考察了丙酮、二氯甲烷、二氯甲烷 -甲醇(25∶75)作为提取溶剂对虾青素酯提取效率的影响。
3次平行实验的结果表明,采用不同提取溶剂时,皂化后的虾青素含量分别为:丙酮 1.20%,二氯甲烷为 1.25%,二氯甲烷 -甲醇为1.58%,因此选择二氯甲烷 -甲醇(25∶75)作为提取溶剂。
2.2.3 碱浓度的影响不同浓度的NaOH甲醇溶液影响虾青素的皂化效率,当浓度低时皂化不完全,浓度过高又会导致虾青素容易被氧化成虾红素,并破坏虾青素而使得皂化效率降低。
本文考察了添加0.3~5 mL的0.1 mol·L-1NaOH甲醇溶液的皂化效率。
结果表明,NaOH甲醇溶液添加体积在 0.5~2 mL时皂化后的虾青素含量均大于 1.5%,实验发现,随着 NaOH甲醇溶液添加体积的增加,transastaxanthin会转化为 9-cis-astaxanthin,添加体积增加 1倍转化的量约增加 50%,当添加体积超过 2 mL后虾青素容易被氧化。
综合考虑,本文取 0.5 mL作为NaOH甲醇溶液添加量。
2.2.4 皂化时间的影响在上述最优实验条件下对不同的皂化时间进行考察,结果表明,皂化 12 h后虾青素已皂化完全。
因此,本文取 12 h作为皂化时间。
2.3 色谱分离及定性由于雨生红球藻中色素较多,且含有多种虾青素的同分异构体和虾青素酯,因此在短时间内将各组分分离具有较大困难。
本文采用相对温和的皂化方法,即保证了虾青素不被破坏,又能使虾青素酯全部转化为游离的虾青素,对经质谱定性的游离虾青素的 3种同分异构体进行分离测定。
图1为皂化后虾青素标样、虾青素实际样品和未皂化的虾青素实际样品的色谱图。
从图 1A虾青素标准品(1.5 mg·L-1)色谱图可以看到,在优化实验条件下,虾青素反式、顺式异构体 13-cis-astaxanthin,trans-astaxanthin,9-cis-astaxanthin的保留时间分别为 10.12、11.41、12.36 min,因此在定量时反式体、顺式体合并计算[11,14-15]。
从图 1B中可以看到实际样品雨生红球藻提取液的虾青素酯的出峰时间为 21.5~25.1 min,当虾青素酯皂化不完全时,实际样品的色谱图在 21.5~25.1 min会出现虾青素酯的色谱峰,反之,不出峰(如图 1C),由此可以判断雨生红球藻的提取液中虾青素酯是否皂化完全。
2.4 提取方法的考察雨生红球藻中虾青素的提取方法包括微波法[16]、低温研磨萃取法、有机溶剂萃取法和低温研磨法[17]等,其中低温研磨法是比较常用的破壁方法。
但操作中发现,研钵在低温研磨时可能会破裂,且用溶剂转移时易造成损失。
对低温研磨法和有机溶剂研磨提取法的结果进行比较,结果表明,两方法的提取率接近,但有机溶剂研磨法的结果更稳定。
2.5 线性关系及检出限对不同浓度的虾青素标准样品在“1.3.2”皂化条件下进行了方法的线性范围考察,以虾青素反式体、顺式体合并峰面积 (y)为纵坐标,质量浓度(x,mg·L-1)为横坐标,得到虾青素在质量浓度为 0.1~5 mg·L-1时与响应值良好呈线性,其线性方程为 y=218.3x-0.320 0,r=0.999 7。
雨生红球藻中虾青素的含量约 1 mg/g,属于常规含量分析,实验以0.5 mg·L-1的游离虾青素皂化后进样分析,得到雨生红球藻中虾青素的定量下限 (S/N=10)为 2 mg/kg。