微生物设计性实验报告
微生物实验报告(微生物形态观察、分布、灭菌消毒)
微生物实验微生物实验细菌形态观察细菌分布消毒灭菌细菌形态观察一、实验目的1.掌握光学显微镜（油镜）的使用及日常维护2.掌握细菌的三种形态3.掌握临床常见细菌的形态及染色4.掌握细菌的特殊结构5.了解支原体、衣原体、立克次氏体、螺旋体及真菌的结构特点二、实验原理1. 普通光学显微镜（油镜）的使用1. 在标本欲检部位滴一滴香柏油，然后转换油镜头2. 从侧面观察并慢慢转动粗调节器，使油镜头浸没在油滴内，当油镜头几乎接触玻片时停止转动，以免碰撞玻片，用双眼观察目镜，同时调节细调节器，直至细菌清晰3. 根据需要调节显微镜亮度2. 普通光学显微镜的维护1.移动显微镜时，用右手持镜壁，左手托镜座，平端于胸前2.油镜用毕后，要立即用擦镜纸擦去香柏油；再用滴有二甲苯的擦镜纸擦油镜头；最后，用干净擦镜纸将镜头上的二甲苯擦去，以免损伤油镜头3.镜头擦净后，降低接物镜并将其转成八字形，罩好镜罩放入柜内4.做好使用记录3．微生物知识1．细菌按形态分类：球菌：球形（包括双球菌、四联球菌、八叠球菌、葡萄球菌、链球菌等）杆菌：杆状（包括单杆菌、双杆菌、链杆菌、分枝杆菌、双歧杆菌等）螺旋菌：螺旋状（包括螺旋菌、弧菌等）2．细菌的基本结构细胞壁、细胞膜、细胞质、核质、核蛋白体3．细菌的特殊结构荚膜：如肺炎双球菌鞭毛：又分单毛菌、双毛菌、丛毛菌、周毛菌。
如：变形杆菌为周毛菌菌毛芽胞：如破伤风梭菌、炭疽芽胞杆菌、肉毒梭菌4．微生物是一切肉眼看不见或看不清的微小生物的总称，包括原核类、真核类和非细胞类。
原核类：细菌、放线菌、蓝藻、衣原体、支原体、立克次氏体真核类：真菌、原生动物、显微藻类非细胞类：病毒、亚病毒5．真菌单细胞：圆形、芽生孢子。
如：酵母菌多细胞：菌丝及孢子、孢子出芽。
如：霉菌6．白假私酵母菌（白念）生物学性状：G+单细胞真菌、芽生孢子、类酵母型菌落厚膜孢子、假菌丝有助于鉴定致病性：皮肤粘膜——鹅口疮、内脏感染、CNS感染微生物学检查：直接涂片、染色后镜检——菌体、芽生孢子、假菌丝7．新型隐球菌生物学性状：圆形酵母型菌、外周有厚荚膜（比菌体大1-3倍）致病性：吸入后侵犯皮肤、粘膜等——慢性炎症和脓肿；侵袭CNS——亚急性或慢性脑膜炎微生物学检查：脑脊液离心后取沉淀、痰和脓标本直接检查；墨汁负染见出芽菌体外围有宽厚荚膜为阳性三、实验材料记号笔：1支；大镊子：1支；火柴：1盒；蜡笔：1支；试管架：1个；酒精灯：1个；接种环：1支；Olympus显微镜：1台；显微镜使用记录本：1个四、实验内容1. 观察细菌三种形态1）球菌链球菌、葡萄球菌、肺炎双球菌（子弹形）、脑膜炎双球菌（蚕豆形）、四联菌2）杆菌破伤风杆菌、白喉杆菌（异染颗粒）、绿脓杆菌、伤寒杆菌、变形杆菌3）螺形菌弧菌——霍乱弧菌；螺菌；螺杆菌——幽门螺杆菌；弯曲菌2. 观察细菌的特殊结构芽胞、鞭毛、荚膜、异染颗粒、钩端螺旋体、幽门螺杆菌3. 绘图葡萄球菌(staphyloccocus)；肺炎双球菌(pneumo coccus)；脑膜炎球菌(meningococcus)；破伤风杆菌（Clostridium Tantenus）；霍乱弧菌（vibrio cholera)；芽胞(spore)；鞭毛（flagellum)；荚膜(capsule)；钩端螺旋体(leptospira)五、实验结果绘8幅细菌镜下图，已交。
微生物实验报告寄生虫
微生物实验报告寄生虫实验目的：本实验旨在观察和研究寄生虫对微生物的寄生现象。
实验材料：1. 寄生虫样本2. 微生物培养基3. 显微镜4. 温箱5. 培养皿和培养瓶等实验室用具实验步骤：1. 准备寄生虫样本：根据实验要求选择合适的寄生虫样本，例如蚴虫、蠕虫等，并进行必要的处理和筛选。
2. 培养微生物：准备适当的微生物培养基，并根据具体的实验设计接种相应的微生物菌株。
3. 寄生虫接种：将寄生虫样本接种到含有微生物的培养基中，然后放置在恰当的环境下（如温箱中），使寄生虫开始寄生并生长。
4. 寄生观察：使用显微镜观察寄生虫在微生物上的寄生情况，并记录寄生虫的数量、分布、生长状态等关键信息。
5. 寄生现象研究：通过对寄生虫与微生物的相互作用进行观察和分析，研究寄生现象对微生物生长、数量、代谢等方面的影响。
6. 数据分析与结果讨论：根据观察和记录的数据，结合相关背景知识进行数据分析，进一步讨论寄生现象对微生物的影响，并推断可能的机制和原因。
7. 结论：总结实验结果和研究发现，阐述寄生虫对微生物的寄生现象对于生态系统和细菌学研究的意义和价值。
实验注意事项：1. 实验过程中应注意个人卫生和实验室安全，遵守相关实验操作规范。
2. 实验材料和设备的选择要与具体的研究目的和方法相符合。
3. 在实验过程中应注意记录和整理实验数据，保证数据的准确性和可重复性。
4. 实验后要及时清洗和消毒使用过的实验器材，以免交叉感染和污染。
实验结果和讨论：【在这里填写实验结果和数据分析的内容，具体根据实际情况进行描述，突出寄生虫对微生物的寄生现象和影响。
】结论：【在这里总结实验结果和研究发现，说明寄生虫对微生物的寄生现象对生态系统和细菌学研究的意义和价值。
】。
菌种筛选设计实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的本实验旨在通过设计合理的实验方案，从自然界中筛选出具有特定生理生化特性的菌种，为后续的发酵生产、生物转化等研究提供基础菌株。
二、实验原理菌种筛选是微生物学研究的重要环节，通过选择具有特定生理生化特性的菌种，可以优化发酵条件，提高发酵产物的产量和质量。
本实验采用稀释涂布平板法、平板划线法和选择性培养基等方法，对土壤样品中的微生物进行筛选。
三、实验材料1. 土壤样品：采集自某农田，样品重量约50g。
2. LB培养基：牛肉膏10g、蛋白胨5g、NaCl5g、蒸馏水1000mL，pH7.0。
3. 选择性培养基：根据待筛选菌种的特点，设计合适的培养基，如淀粉培养基、糖发酵培养基等。
4. 实验仪器：无菌操作台、高压蒸汽灭菌器、恒温培养箱、显微镜、移液器、无菌吸管、涂布器、玻璃棒等。
四、实验方法1. 土壤样品处理：将采集的土壤样品置于无菌容器中，加入适量的无菌生理盐水，搅拌均匀后，进行10倍梯度稀释。
2. 稀释涂布平板法：取适量稀释后的土壤样品，涂布于LB培养基平板上，倒置培养箱中，37℃培养24小时。
3. 平板划线法：取适量稀释后的土壤样品，用无菌玻璃棒在LB培养基平板上划线，37℃培养24小时。
4. 选择性培养基筛选：将筛选出的疑似菌株，接种于选择性培养基平板上，37℃培养24小时。
5. 鉴定：观察菌落特征，如菌落大小、颜色、形状等，并结合显微镜观察菌体形态，对筛选出的菌株进行初步鉴定。
五、实验结果与分析1. 稀释涂布平板法：在LB培养基平板上，观察到不同大小的菌落，说明土壤样品中存在多种微生物。
2. 平板划线法：在LB培养基平板上，观察到划线区域的菌落逐渐变稀，说明存在抑制菌。
3. 选择性培养基筛选：在选择性培养基平板上，观察到特定菌落，说明筛选出具有特定生理生化特性的菌株。
4. 鉴定：通过观察菌落特征和显微镜观察菌体形态，对筛选出的菌株进行初步鉴定，如淀粉酶产生菌、糖发酵菌等。
六、实验讨论1. 实验过程中，应注意无菌操作，避免污染。
微生物学实验报告
微生物学实验报告（格式标准）(生命科学专业)*****目录索引实验一油镜的使用和细菌的简单染色法 3实验二细菌的革氏染色与芽孢染色 5实验三常用培养基的配制7实验四酵母菌霉菌的形态结构观察及酵母死活细胞的鉴别8实验五、微生物大小的测定与显微计数10实验六环境中微生物的检测和分离纯化11实验七细菌鉴定中常用的生理生化反应12实验八（综合实验）化能异养微生物的分离与纯化13课程名称：微生物学实验班级：化生系生命科学本科实验日期：指导教师：黎勇实验一油镜的使用和细菌的简单染色法〔目的要求〕学习并熟练掌握油镜的使用技术；观察细菌的基本形态；学习观察细菌的运动性的基本方法。
〔基本原理〕1. N·A=n·sinα2. D=λ/2N.A3. 目镜可提高放大倍数，但有效放大率取决于镜口率。
已经分辨的物体不放大看不清，未分辨物放得再大也看不清。
4. 用悬滴法或凹玻片法观察细菌的运动性时，可以通过真运动能定向地由一处快速运动来区别于颗粒的布朗运动。
〔器材用具〕显微镜、载玻片、凹玻片、盖玻片、接种环、香柏油、二甲苯、凡士林、吸水纸、擦镜纸；细菌、放线菌等固定装片；培养18小时左右的B.subtilis. S.arueus 菌斜面培养物；无菌水、生理盐水。
〔方法步骤〕：（一）油镜的使用镜检装片在中倍（或高倍镜）下找到目的物，并使位于视野正中聚光镜上升到最高位置，虹彩光圈开到最大，镜头转开成八字形在玻片的镜检部位（光斑处）滴一滴香柏油油镜转入正下方侧视小心上升载物台（缩短镜头与装片距离，镜头浸入油中，至油圈不扩大为止镜头几与装片接触）粗调器徐徐下降载物台（密切注视视野，当捕捉到物像时，立即用细调器校正）仔细观察并绘图取出装片，清洗油镜：擦镜纸拭去镜头上的香柏油擦镜纸沾少许二甲苯擦去残留（用手指辅助，迅速拭擦一、二次）用清洁擦镜纸仔细擦干二甲苯（2-3次）。
（二）细菌的简单染色法：涂片干燥火焰固定染色水洗干燥油镜观察（三）细菌运动性的观察取洁净盖玻片，四周涂上凡士林滴加一小滴菌悬液凹玻片的凹窝向下盖于盖玻片上翻转观察〔结果分析〕1、画一圆圈表示视野，选取所观察的微生物绘图，注意特殊结构、形状和排列。
微生物实验报告
微生物实验报告答案【篇一：微生物的革兰氏染色实验报告】=txt> 二、实验目的：1、学习并初步掌握革兰氏染色法；2、认识革兰氏染色的原理；3、稳固显微镜的使用。
三、实验原理：革兰氏染色是 1884 年丹麦病理学家 christain gram 氏创办的，是细菌学中最重要的鉴识染色法。
染色步骤分为四个部分：1、初染：加入碱性染料结晶紫固定细菌图片；2、媒染：加入碘液，碘与结晶紫形成一种不溶于水的复合物；3、脱色：利用有机溶剂乙醇或丙酮进行脱色；g- 和 g+ 细胞壁的比较：1、阳性（ g+ ）菌细胞壁特色：细胞壁厚，只有一层，主要由肽聚糖组成，肽聚糖含量高，构造密切，脂类含量低。
当乙醇脱色时，细胞壁肽聚糖层孔径变小，通透性降低，结晶紫和碘的复合物被保存在细胞壁内，复染后仍显紫色（如芽孢杆菌）。
2、阴性（ g- ）菌细胞壁特色：细胞壁薄，由两层组成，内壁层和外壁层，细胞壁中脂类中脂类物质含量较高，肽聚糖含量较低，网状构造交联程度低，乙醇脱色时溶解了脂类物质，通透性加强，结晶紫与碘的复合物易被乙醇抽提出来，所以，革兰氏阴性菌细胞被脱色，当复染时，脱掉紫色的细胞的细胞壁又着上红色（比如大肠杆菌）。
四、实验器械：1、菌种：大肠杆菌、枯草芽孢杆菌、金黄色葡萄球菌。
2、溶液和试剂：革兰氏染液、草酸铵结晶紫染液、碘液、 95% 乙醇、番红复染液、水。
3、仪器及其余用品：酒精灯、载玻片、显微镜、接种环、试管架、滤纸、滴管。
五、实验步骤：1、取一个载玻片，将其洗净并沿一个方向擦抹洁净，直至液体不再其上缩短为止；将接种环整平，用灼烧过的接种环在混匀的菌种中取菌，按惯例方法图片，应涂大，不宜过厚。
2、翻开酒精灯，用火焰固定，不宜烤得太狠，不然菌种呈假阳性。
3 、轻旋结晶紫染液滴管，将其旋出，滴加 1 滴草酸铵结晶紫染液覆盖涂菌部位（轻晃使其完整覆盖），染色40s 。
4 、染色达成后倾去染液，水洗至流出水为无色。
5 、将玻片上残留水用滤纸吸去，待其干燥。
第四组微生物大实验实验报告
微生物大实验——土壤中芽孢杆菌的分离及鉴定实验报告学院：生命科学学院专业：生物技术班级：组数:学号:姓名:前言芽孢杆菌是能形成芽孢(内生孢子)的杆菌。
芽孢是休眠体，不是繁殖体。
绝大多数是一个菌体仅形成一个芽孢芽孢位于菌体内,由核心、皮层、芽孢壳和外壁组成。
核心是芽孢的原生质体，内含DNA、RNA、可能与DNA相联系的特异芽孢蛋白质以及合成蛋白质和产生能量的系统。
芽孢杆菌属是大的(4–10um), 革兰氏阳性，严格需氧或兼性厌氧的有荚膜的杆菌。
该属细菌的重要特性是能够产生对不利条件具有特殊抵抗力的芽孢。
芽孢杆菌属可分为以下亚群：多粘芽孢杆菌、枯草杆菌（包括蜡样杆菌和地衣芽孢杆菌）、短芽孢杆菌和炭疽芽孢杆菌。
芽孢杆菌是一种耐高温、高压及低PH值的有益微生物，本实验从土壤中分离出15株芽孢杆菌，从中挑选出一株芽孢杆菌进行生理生化鉴定，以及分子鉴定。
通过进一步的实验，了解到其生理生化特点。
一、实验目的：掌握芽孢杆菌属常见种的分离、鉴定方法和技术。
将土壤样品中分离的芽孢杆菌属未知种鉴定到属。
二、实验原理：芽孢杆菌能产生芽孢，在沸水中加热不会失去生理活性，但是不能产生芽孢的细菌会失去活性。
，因而得到芽孢菌属，经过进一步分离及生理生化鉴定得到枯草芽孢杆菌。
三、实验仪器材料：1、仪器：显微镜、培养皿、试管、三角瓶、烧杯、移液管、涂布棒、载玻片、接种环、接种针、试管架、灭菌锅、培养箱、电泳仪、PCR仪、提取DNA 试剂盒2、材料：培养基：LB培养基、淀粉培养基、孔雀绿溶液、番红复染液、NaOH 溶液、草酸铵溶液、碘液、乙醇、硝酸盐、葡萄糖、甘露醇、阿拉伯糖、木糖四、实验步骤：（一）、菌种的分离和纯化1、取样2、LB培养基的配制：1L水、10g蛋白胨、5g牛肉膏、10g Nacl、15g琼脂、120℃灭菌30分钟待用3、平板及斜面的制备4、制备土壤菌悬液：称取土样约1g土壤放入盛有9ml无菌水并带有玻璃珠的三角瓶中，置于摇床上150r/min,振荡10min。
微生物实验报告
微生物实验报告标题：微生物实验报告摘要：本实验旨在研究不同条件下微生物的生长情况。
通过观察培养皿中微生物的数量和形态，总结出微生物在不同温度和营养条件下的生长规律。
引言：微生物是一类可以肉眼看不见的生物体，包括细菌、真菌和病毒等。
它们广泛存在于自然界中的各个环境中，对生态系统的稳定以及人类和其他生物的生存都起到了重要的作用。
本实验将探究微生物在不同条件下的生长情况，为后续相关研究提供参考。
方法：首先，我们收集了不同种类的微生物样本，并将其分别接种在多种培养基（如营养琼脂、麦康凯琼脂等）中。
然后，将不同的培养皿分到不同的温度下（如25℃、37℃等）进行培养。
每隔一段时间，观察培养皿中微生物的数量和形态，并进行记录。
结果：在实验过程中，我们观察到微生物在不同条件下的生长情况呈现出明显的差异。
在接种营养琼脂培养基下，细菌的生长速度较快，而真菌的生长速度较慢。
在接种麦康凯琼脂培养基下，真菌的生长速度较快，而细菌的生长速度较慢。
在接种含糖和无糖培养基下，微生物均能正常生长，但含糖培养基中微生物的生长速度更快。
此外，在不同温度下的培养条件中，微生物的生长情况也有所不同。
在25℃和37℃下，细菌和真菌均能正常生长，但在4℃和60℃下，微生物的生长速度明显减慢。
其中，真菌在相对较高的温度下的生长速度更快，而细菌对温度不敏感。
讨论：微生物在不同条件下的生长情况受到多种因素的影响，包括培养基成分、温度等。
实验结果表明，不同的微生物对培养基类型的适应性不同，有些微生物对含糖培养基更具生长优势，而有些微生物则对含糖培养基无明显偏好。
此外，微生物对温度也有一定的适应性，视具体微生物而定。
结论：微生物在不同条件下的生长情况呈现出差异性。
通过本实验的观察和总结，我们可以了解微生物的生长规律，并为后续的相关研究提供参考。
微生物学实验报告
微生物学实验报告微生物学实验报告引言微生物学是一门研究微小生物的科学，它涉及到微生物的分类、结构、生理、生态以及与人类和环境的相互作用等方面。
本实验旨在通过观察和分析微生物的生长特性，了解微生物的繁殖规律和影响因素。
实验方法1. 实验材料准备我们选择了常见的细菌和酵母菌作为实验材料。
实验中使用的培养基包括富含营养的琼脂培养基和含有特定营养物质的选择性培养基。
实验器材包括培养皿、试管、移液管等。
2. 实验步骤首先，我们将培养皿分成不同的区域，分别涂抹不同的微生物样本。
然后，将培养皿放入恒温培养箱中，控制温度和湿度，观察微生物在不同条件下的生长情况。
接下来，我们将微生物样本接种到含有特定营养物质的选择性培养基上，观察其生长情况，以了解微生物对不同营养物质的需求。
实验结果在琼脂培养基上，我们观察到细菌和酵母菌在适宜的温度和湿度条件下迅速生长。
细菌呈现出白色或黄色的菌落，而酵母菌则呈现出乳白色的菌落。
在选择性培养基上，我们发现不同微生物对营养物质的需求有所不同。
例如，某些细菌只能在含有特定氨基酸的培养基上生长，而在其他培养基上则无法繁殖。
讨论与分析微生物的生长受到多种因素的影响，包括温度、湿度、营养物质等。
在实验中，我们控制了温度和湿度，使其处于适宜的范围，从而促进微生物的生长。
此外，我们还观察到微生物对不同营养物质的需求不同，这与微生物的代谢特性有关。
不同微生物的代谢途径和需求差异导致它们对不同营养物质的利用能力不同。
微生物的快速繁殖和适应性使其在自然界中起到重要的作用。
它们参与了有机物质的分解和循环，维持了生态系统的平衡。
此外，微生物还可以用于生物工程和医学领域。
例如，利用细菌进行基因工程，可以生产出许多重要的药物和化学物质。
然而，微生物也可能对人类和环境造成危害。
某些微生物会引起传染病，给人类的健康带来威胁。
此外，微生物还可能对环境产生负面影响，例如导致水体富营养化和生态系统的破坏。
结论通过本次实验，我们深入了解了微生物的生长特性和影响因素。
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淀粉酶（α-淀粉酶）菌株的分离纯化
生技（2）班 2 / 6
微生物设计性实验报告
项目组长——————
成员
实验项目名称——《淀粉酶（α-淀粉酶）菌株
的分离纯化》
指导老师——杨书香
系别班级——生技（2）班
实验时间——
淀粉酶（α-淀粉酶）菌株的分离纯化
1.
实验目的：
1.1掌握从环境中采集样品并从中分离纯化某种微生物的完
整操作步骤。
1.2巩固以前所学的微生物学实验技术。
淀粉酶（α-淀粉酶）菌株的分离纯化
生技（2）班 3 / 6
2.
实验原理：
2.1α-淀粉酶是一种液化型淀粉酶，它的产生菌芽孢杆菌，广
泛分布于自然界，尤其是在含有淀粉类物质的土壤等样品
中。
2.2从自然界筛选菌种的具体做法，大致可以分成以下四个
步骤：采样、富集培养、初步筛选、分离纯化。
2.2.1采样
在土壤中几乎各种微生物都可以找到，土壤可说是微生
物的大本营。食堂旁边土壤、厨房土壤、面粉加工厂和菜园
土壤中淀粉的分解菌较多。因此选择从食堂旁边菜地采集土
壤样品。
2.2.2富集培养及初步筛选
在淀粉作为唯一碳源的选择培养基中，只有能产生胞外
淀粉酶利用淀粉的菌体才能成为优势菌种。在淀粉选择培养
基中，产胞外淀粉酶的菌种可以得到富集及分离。
2.2.3分离纯化
通过平板划线分离法可以将上述初筛出来的菌种得以
分离纯化。
3.实验材料
3.1土壤样品
从食堂旁边菜地采集的土壤样品。
淀粉酶（α-淀粉酶）菌株的分离纯化
生技（2）班 4 / 6
3.2培养基
淀粉琼脂培养基
3.3溶液和试剂
牛肉膏，蛋白胨，NaCl，可溶性淀粉，1mol/L NaoH，
1mol/L HCl，碘液
3.4仪器和设备
培养皿35套，试管6支，移液管6支，三角瓶4个（其
中一个装有玻璃珠），烧杯，玻璃棒，天平，牛角匙，高压
蒸汽锅，报纸，接种环，酒精灯等。
4实验步骤
4.1培养基的制备
称量1.0 g可溶性淀粉，5.0 g蛋白胨，2.5 g牛肉膏，2.5
g NaCl至烧杯中，加少量蒸馏水加热溶解，然后称量8 g琼
脂加入烧杯中熔化，补蒸馏水至500 ml，再用1mol/L NaOH，
1mol/L HCl调节PH在7.2-7.4只间。将上述培养基分装到
三个250 ml的三角瓶中。待灭菌。
4.2无菌水制备
分别取9 ml蒸馏水加入6支试管中，并将试管编号1，2，
3，4，5，6用报纸包扎捆绑。取90 ml蒸馏水加入装有玻璃
珠的250 ml三角瓶中，包扎捆绑。试管与三角瓶均待灭菌。
4.3器皿准备
淀粉酶（α-淀粉酶）菌株的分离纯化
生技（2）班 5 / 6
取6支吸管，35个培养皿分别用报纸包扎，待灭菌。
4.4灭菌
将上述带灭菌的物品置于高压蒸汽灭菌锅中，
0.1Mpa121℃条件下灭菌20min。
4.5采集土样
在食堂旁边菜园采集土样，用无菌报纸包好。
4.6菌悬液的制备
称取10 g土壤样品加入装有90 ml无菌水的三角瓶中震
荡，然后静置2min。
4.7梯度稀释
在酒精灯旁用无菌吸管从菌悬液中取1 ml上清液加入1
号试管中，震荡摇匀。再另取一支无菌吸管从1号试管中吸
取1 ml菌悬液加入到2号试管中，震荡摇匀。再另取一支无
菌吸管按上述操作依次操作剩下的4管，得到10-1-10-6六个
稀释度的菌悬液。
4.8稀释混合倒平板法分离产淀粉酶细菌
在酒精灯旁用移液枪取1 ml稀释度为10-4菌悬液滴入无
菌平皿，然后加入适量的经过融化的培养基，摇匀冷却，标
记后倒置于37℃恒温培养箱中培养24h。依次对10-5,，10
-6
两稀释度的菌悬液进行上述操作。此三个平板记为第一组平
板。
淀粉酶（α-淀粉酶）菌株的分离纯化
生技（2）班 6 / 6
再将10-4，10-5，10-6三个稀释度的试管放入沸水浴3min。
分别用移液枪从三支试管取沸水浴过的菌悬液1 ml注入无
菌培养皿，然后加入适量的经过融化的培养基，摇匀冷却标
记后，倒置于37℃恒温培养箱中培养24h。此三个平板记为
第二组平板。
4.9平板划线法分离纯化产淀粉酶菌株
4.9.1碘液检测产淀粉酶菌苔
4.9.1.1取第一组平板，分别一次性滴入适量的碘液，置于桌
面摇匀。观察水解圈的大小。
4.9.1.2取第二组平板，找到与第一组平板水解圈最大的菌苔
相似的菌苔，用接种环在酒精灯旁平板划线于无菌培养基平
皿中。倒置于37℃恒温培养箱中培养24h。
5实验结果（待测）