动物体内转染答疑
sirna转染常见问题解答
siRNA转染常见问题解答SiRNA导入细胞有以下几种方法：化学转染技术、电穿孔法、磷酸钙共沉淀技术、显微注射和载体导入技术。
选择时应该依据实验条件考虑以下因素：细胞对转入方式的承受能力、细胞对病毒侵染的易感性、细胞的生长特性等。
其中，化学转染技术是目前最为常用的方法，由于电转的方法对细胞损伤比较大，一般不建议选择电转。
针对最常见的化学转染技术，有几种常见的问题以及解决方法。
一、哪种转染试剂效果好？在选择转染试剂时，一般要考虑的是结合特定的细胞株，而不是被导入细胞中的物质。
选择细胞毒性小，转染效率高的转染试剂。
脂质体试剂的毒性较大，建议选择非脂质体的转染试剂，如BIODAI的RFect系列纳米材料转染试剂。
二、转染后出现细胞死亡是什么原因？如何优化转染条件？转染后细胞死亡，原因也是多样的，如脂质体毒性，转染浓度过高，转染前的细胞状态不佳等都可能导致转染后细胞死亡的情况发生，这种情况下就需要适当优化转染条件；在优化转染条件时需要考虑以下因素：转染试剂和细胞特有的自身条件。
例如：siRNA 与转染试剂的比例、转染时间、细胞传代数和细胞密度等。
一般说，转染试剂毒性小，转染时所需的细胞密度就小，如RFect系列siRNA转染试剂一般要求30-50%细胞密度，而lipo2000转染时所需的细胞密度一般在70%左右。
如果经优化后细胞死亡仍很多，应及时考虑更换转染试剂。
三、如何优化siRNA与转染试剂的比例？SiRNA的量与转染试剂的比例需要进行优化，一般选择24孔板进行优化，比较节省各种试剂。
可以在10-100nM之间设定几个siRNA的浓度水平，如30nM，50nM，80nM，100nM。
转染试剂根据说明书推荐的剂量上下浮动各3个浓度。
之后siRNA的量与转染试剂的量进行两两组合，从中选择转染效率最高的组合用于接下来的实验。
如果通过荧光显微镜观察荧光判断转染效率的话，siRNA的最低终浓度不要低于10nM，一般推荐的siRNA终浓度多在50-100nM。
动物体内转染(Entranster)答疑
动物体内转染答疑----用RNA或DNA直接注射动物完成干扰和表达动物体内转染，简单地说，就是用RNA和DNA直接打动物完成干扰和表达。
再通俗地说，用合成的(RNA)或者提取的核酸(DNA)，就可以完成以前的动物转基因或者基因敲除的实验，无需再用病毒或者基因敲除动物。
实验周期可以缩短为几天，花费几千元即可进行实验。
动物体内转染技术的出现，让广大生物医学研究者，轻松进行动物的基因干扰、导入等操作。
尤其是临床医学工作者，可以在很少工作量较少经费的情况下，直接针对研究的疾病进行动物实验，发表高水平文章。
比如在英格恩客户已发表的文章中，有尾静脉注射DNA研究治疗病毒性心肌炎，有皮下肿瘤注射miRNA 研究治疗结肠癌，有脑室注射siRNA研究脑缺血机理，有皮肤涂抹siRNA治疗皮肤瘢痕等。
这些研究都非常有临床和现实意义。
由于动物体内转染技术应用的时间不长，对这种崭新的技术人们还不太了解。
此次受丁香园邀请，特开此动物体内转染相关实验技术答疑专帖。
对站友们提出的问题给予解答，希望能够和大家相互学习，共同进步。
任何与动物体内转染有关的问题（包括实验设计、产品、实验过程、结果分析、文献等问题），大家尽管提出，我们会尽力解答，也欢迎站友们参加讨论。
技术资料目录：1.体内转染试剂的原理和方法1).动物体内转染技术可以做什么？2).体内转染的原理3).体内转染的过程4).体内转染需要的实验条件5).体内转染适合进行怎样的实验6).体内转染可以在哪些组织器官进行7).应用体内转染试剂发表的部分文献8).动物体内转染和病毒感染的比较9).动物体内转染和基因敲除的比较2.体内转染实验的设计1).需要的材料2).需要的时间3).需要的费用4).常见的结果检测方法3.体内转染过程相关问题及解答1).体内转染试剂对动物有什么影响？2).注射后，试剂是如何在体内分布的，有靶向性吗？3).转染试剂和核酸需要使用多少？提问与解答：1、如何技术上解决（排除）RNAi的非特异性？是否需要复原实验（Rescue Experiment）。
动物体内转染(Entranster)答疑
动物体转染答疑----用RNA或DNA直接注射动物完成干扰和表达动物体转染，简单地说，就是用RNA和DNA直接打动物完成干扰和表达。
再通俗地说，用合成的(RNA)或者提取的核酸(DNA)，就可以完成以前的动物转基因或者基因敲除的实验，无需再用病毒或者基因敲除动物。
实验周期可以缩短为几天，花费几千元即可进行实验。
动物体转染技术的出现，让广大生物医学研究者，轻松进行动物的基因干扰、导入等操作。
尤其是临床医学工作者，可以在很少工作量较少经费的情况下，直接针对研究的疾病进行动物实验，发表高水平文章。
比如在英格恩客户已发表的文章中，有尾静脉注射DNA研究治疗病毒性心肌炎，有皮下肿瘤注射miRNA研究治疗结肠癌，有脑室注射siRNA研究脑缺血机理，有皮肤涂抹siRNA治疗皮肤瘢痕等。
这些研究都非常有临床和现实意义。
由于动物体转染技术应用的时间不长，对这种崭新的技术人们还不太了解。
此次受丁香园邀请，特开此动物体转染相关实验技术答疑专帖。
对站友们提出的问题给予解答，希望能够和大家相互学习，共同进步。
任何与动物体转染有关的问题（包括实验设计、产品、实验过程、结果分析、文献等问题），大家尽管提出，我们会尽力解答，也欢迎站友们参加讨论。
技术资料目录：1.体转染试剂的原理和方法1).动物体转染技术可以做什么？2).体转染的原理3).体转染的过程4).体转染需要的实验条件5).体转染适合进行怎样的实验6).体转染可以在哪些组织器官进行7).应用体转染试剂发表的部分文献8).动物体转染和病毒感染的比较9).动物体转染和基因敲除的比较2.体转染实验的设计1).需要的材料2).需要的时间3).需要的费用4).常见的结果检测方法3.体转染过程相关问题及解答1).体转染试剂对动物有什么影响？2).注射后，试剂是如何在体分布的，有靶向性吗？3).转染试剂和核酸需要使用多少？提问与解答：1、如何技术上解决（排除）RNAi的非特异性？是否需要复原实验（Rescue Experiment）。
动物体内转染(Entranster)后,不同组织分布情况
使用Entranster体内试剂时，如果通过尾静脉注射，确实不同组织的分布有差异。
一般来说，肝、肺、肾的分布最高。
一般分布高的地方转染效率也相对较高。
但不是其他的组织器官效果就不好，相反，对绝大多数的器官组织来说，采用体内转染技术，效果也很好。
比如一般认为神经细胞难以转染，而且尾静脉动物给药，通过血脑屏障到达大脑也不容易。
但实验表明，用体内转染技术进行尾静脉转染，能明显转染大脑神经细胞。
还有通常认为难以转染的心肌细胞、血管内皮细胞和原代细胞，用体内转染技术也有这样的效果。
所以，采用体内转染技术后，很多难以想象的组织器官等都可以应用，比如，甚至可以皮肤涂抹siRNA 转染到瘢痕组织，影响毛发生长。
体内转染(Entranster),不同的组织和注射方法,如何评估干扰效率？
不同的组织和注射方法，如何评估干扰效率？
运用体内试剂Entranster进行体内转染实验后，针对具体的组织器官，不同的注射方法会明显影响效果。
比如，大脑神经细胞的体内转染，可以采用尾静脉注射和侧脑室注射，用侧脑室的方法就好得多。
再比如，肺部的体内转染，用气管灌注就比用尾静脉注射的方法好得多。
体内转染试剂和核酸的混合物与靶器官的接触越直接越充分，效果越好。
干扰效率可以理解为干扰的细胞数量和全部细胞的数量的比例。
在体外细胞实验中，这2个数字可以精确计算。
但在动物体内无法精确统计。
一般评估效果，我们建议在分子水平，用RT-PCR，在细胞水平，用Western-Blot，在组织水平，用病理生理等方法。
体内实验研究 的常见问题及解答
体内实验研究的常见问题及解答问：进行体内研究前需要注意什么？答：为体内研究设计的实验需要考虑：动物模型的选择、给药途径、剂量以及重复给药的频率。
选择siRNA 的用量和浓度时应该考虑以下因素：靶器官的特性和研究物的大小。
问：进行小鼠的体内研究需要多少量的siRNA？答：siRNA体内研究领域相对较新，很少有已经确定的实验程序，因而很难确切地说实验需要多少量的siRNA。
我们推荐您通过文献检索参考其他类似的体内研究需要的siRNA的量。
小鼠全身给药需要100uL 浓度为10－500uM的siRNA。
有研究表明在大剂量给药时，一些毒性在20 mg/kg/day (416 mM)以上才能观测到。
问：锐博合成的siRNA能用于体内研究吗？答：我们已经对合成的siRNA进行处理，使其能应用于动物研究。
问：在体内研究中，最好的给药途径是什么？答：寡核苷酸可以通过大剂量给药或使用ALZET微小泵持续给药。
大剂量给药时要慎重，因为已有研究表明：一些毒性与寡核苷酸反义链的浓度有关，快速给药时可能会导致动物下肢瘫痪或致死，所以给药时要注意观察。
很多已发表的论文实验是通过尾静脉给药的。
任何给药方式都需要优化，以确保最佳的导入方式和动物的健康。
剂量/浓度计算的常见问题及解答问：定量RNA的公式是什么？答：研究者可以用Beer法则定量RNA：吸光度（260nm）=(摩尔消光系数)*(浓度)*(路径长度,cm)。
为了便于理解，等式变为：浓度＝（吸光度,260nm）/[(摩尔消光系数)*(路径长度,cm)]。
当使用一个标准的10mm 比色皿时，在公式中路径长度这个变量等于1。
问：我需要浓度为20uM的样品，如何计算重悬siRNA缓冲液的量？答：锐博为您提供的siRNA是nmol数量级的冻干粉。
样品浓度的计算如下：（siRNA的量，nmol）/（重悬体积，uL）＝样品浓度，umol/L。
在解答前应先统一单位，确保单位可以抵消。
哺乳动物细胞转染方法总结
转染原理
特点
阳离子脂质体转染法
带正电荷的脂质体靠静电作用和DNA结合形成脂质体-DNA复合物然后通过细胞的内吞作用进入细胞
操作简便
瞬时转染稳定转染各种细胞
适用于各种裸露DNA，RNA片段
适用于各种细胞
对DNA浓度有一定要求
对细胞有一定毒性
阳离子聚合物（PEI）
带正电的阳离子聚合物和核酸的磷酸基团结合形成带正点复合物与带负电的细胞膜接触，内吞进入细胞
适用性广，适于质粒和几十kb的基因组片段
瞬时转染稳定转染各种细胞
针对不同的细胞要优化实验条件
细胞致死率高
显微注射法
利用显微操作系统和显微注射技术将DNA注射进入细胞
整合率高，适用于工程改造转基因动物
瞬时转染稳定转染各种细胞
设备昂贵外源基因的整合位点和拷贝数无法控制
会导致片段突变缺失
逆转录病毒转染
利用病毒的膜蛋白可以和细胞表面受体结合而进入细胞，利用宿主细胞酶自行转录复制合成DNA并随机整合到细胞基因组中
与阳离子脂质体类似，但是具有很低的毒性，操作简单实用性广，为新一代转染试剂
瞬时转染稳定转染各种细胞
磷酸钙法
磷酸钙-DNA沉淀附着在细胞膜，促进细胞的内吞作用
操作简单
瞬时转染稳定转染大部分细胞
磷酸钙-DNA沉淀附着在细胞膜
不适用于原代细胞
电穿孔法
高脉冲的电压破坏细胞膜，在细胞膜表面形成孔道，DNA由孔道进入细胞
转染效率高适合难转染细胞转染
瞬时转染稳定转染特定细胞
利用病毒介导转染，外源基因整合较为稳定
动物体内转染(Entranster)技术用来干什么？
简单地说，如果你希望影响动物某部位基因的功能，增强、减弱，以及引入外源基因。
就可以用动物体内转染技术。
主要特点优点：比较以前的病毒感染、基因敲除、转基因动物等方法，要简单得多，用合成的小RNA与体内转染试剂Entranster-in vivo混合注射动物，就可以进行类似基因敲除的实验。
同样，用质粒DNA与体内转染试剂混合注射动物就可以进行类似转基因动物的实验。
非常方便，注射几天后就可以观察结果，而且可以随时更换核酸，完成更多基因，更深入的实验。
而且，省时间和经费。
病毒感染需要动辄上万的经费和数月包装病毒的时间。
基因敲除老鼠和转基因动物也很麻烦。
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动物体内转染，简单地说，就是用RNA和DNA直接打动物完成干扰和表达。
再通俗地说，用合成的(RNA)或者提取的核酸(DNA)，就可以完成以前的动物转基因或者基因敲除的实验，无需再用病毒或者基因敲除动物。
实验周期可以缩短为几天，花费几千元即可进行实验。
动物体内转染技术的出现，让广大生物医学研究者，轻松进行动物的基因干扰、导入等操作。
尤其是临床医学工作者，可以在很少工作量较少经费的情况下，直接针对研究的疾病进行动物实验，发表高水平文章。
比如在英格恩客户已发表的文章中，有尾静脉注射DNA研究治疗病毒性心肌炎，有皮下肿瘤注射miRNA 研究治疗结肠癌，有脑室注射siRNA研究脑缺血机理，有皮肤涂抹siRNA治疗皮肤瘢痕等。
这些研究都非常有临床和现实意义。
由于动物体内转染技术应用的时间不长，对这种崭新的技术人们还不太了解。
此次受丁香园邀请，特开此动物体内转染相关实验技术答疑专帖。
对站友们提出的问题给予解答，希望能够和大家相互学习，共同进步。
任何与动物体内转染有关的问题（包括实验设计、产品、实验过程、结果分析、文献等问题），大家尽管提出，我们会尽力解答，也欢迎站友们参加讨论。
技术资料目录：1.体内转染试剂的原理和方法1).动物体内转染技术可以做什么2).体内转染的原理3).体内转染的过程4).体内转染需要的实验条件5).体内转染适合进行怎样的实验6).体内转染可以在哪些组织器官进行7).应用体内转染试剂发表的部分文献8).动物体内转染和病毒感染的比较9).动物体内转染和基因敲除的比较2.体内转染实验的设计1).需要的材料2).需要的时间3).需要的费用4).常见的结果检测方法3.体内转染过程相关问题及解答1).体内转染试剂对动物有什么影响2).注射后，试剂是如何在体内分布的，有靶向性吗3).转染试剂和核酸需要使用多少提问与解答：1、如何技术上解决（排除）RNAi的非特异性是否需要复原实验（Rescue Experiment）。
2、实验的重复性/可靠性如何需要使用多少只动物，才能实现90-95%可信度3、遗传性状改变后能维持多久如果性状的改变是暂时的，那么经过一段时间后，动物能否恢复到原有的生理状态（没有后遗症）4、这种siRNA的体内注射，在不同的组织中可能转染效率差别很大，楼主能否告知哪些组织的转染效率高，哪些低5、不同的组织和注射方法，如何评估干扰效率6、目前有没有携带荧光的siRNA可以用于相关实验7、我目前正在用病毒感染的方法，效果不是太好，病毒感染和体内转染有什么不一样病毒感染做不好，体内转染能做好吗8、不是太懂，动物体内转染技术用来干什么，主要的特点和优点是什么9、很感兴趣，你们的动物体内转染试剂有文献支持吗10、再问一下，你们试剂的原理是什么，使用方法麻烦吗11、请问体内转染可以转染肺组织么12、是直接通过气管内注射13、转染的基因过表达能够维持多长时间14、可以直接用于关节内软骨相关基因转染么，如何转染直接关节腔注射还是尾静脉注射15、我想请问一下你们这个转染试剂多少钱我想直接瘤内注射是否可以16、太好了，找到专家了！请教几个问题，体内转染用慢病毒效果好吗目的组织是心肌，是尾静脉注射好呢还是心肌局部注射好17、可以腹膜腔注射么18、每个目的器官用量怎么安排每次还用同位素检测转染效率，那也不便宜啊。
19、如果我做大鼠睾丸的RNA干扰，您能否建议是尾静脉注射，还是涂抹还是其他方法呢20、这个实验技术很新呢，眼前一亮，我的实验是移植一种细胞到视网膜下腔，想要干扰这种细胞中的某个基因的表达，如果通过常规的体外RNAi技术比较麻烦，想直接在移植细胞的时候同时用你们的这个进行局部体内注射，这样是否可以实现呢21、第二个问题是，我的实验中是要干扰移植细胞中的神经营养因子的表达，但是神经营养因子种类很多，包括bFGF、BDNF、NT-3、NT-4/5等，如果想抑制多种神经营养因子的表达有可能吗谢谢！22、你好，请问想要消除小鼠脑内海马神经元细胞中某种microRNA的表达，可以用你们的转染试剂么怎么注射，侧脑室注射还是尾静脉注射比较好另外，你们试剂的价格是多少问与答：1、如何技术上解决（排除）RNAi的非特异性是否需要复原实验（Rescue Experiment）。
RNAi的非特异性是每个RNAi实验所必须考虑的，一般通过设计多条针对同一个基因的siRNA等，如果都能得到同样的结果，一般认为是特异性的。
如果您不能确定是否有非特异性，理论上是需要Rescue Experiment的。
但这些实验一般都在细胞实验阶段。
在动物实验阶段，可通过合适的对照来排除非特异性。
2、实验的重复性/可靠性如何需要使用多少只动物，才能实现90-95%可信度实验的重复性或可靠性和整体的实验分不开，如果基础实验（比如细胞实验）充分，而且又有其他的方法进行印证，那么实验的可靠性就很高，这时动物体内转染就不需要太多动物，几十只动物，能说明问题就可以。
但如果其他的实验较少，单纯用一种方法进行实验，就需要排除实验过程的客观因素的影响，比如动物本身的差异，比如实验过程的差异，比如检测方法的误差等。
这时就需要动物数量足够，以达到统计学上的误差要求。
3、遗传性状改变后能维持多久如果性状的改变是暂时的，那么经过一段时间后，动物能否恢复到原有的生理状态（没有后遗症）属于瞬时的转染，对目标基因的改变，一般注射1次，可以维持7-14天左右。
随后，随着转入的核酸的代谢，效应减弱消失。
动物是否回复到原有的生理状态，这与目标基因有关系。
如果希望长期维持动物的转染状态，可以多次注射。
4、这种siRNA的体内注射，在不同的组织中可能转染效率差别很大，楼主能否告知哪些组织的转染效率高，哪些低如果通过尾静脉注射，确实不同组织的分布有差异。
一般来说，肝、肺、肾的分布最高。
一般分布高的地方转染效率也相对较高。
但不是其他的组织器官效果就不好，相反，对绝大多数的器官组织来说，采用体内转染技术，效果也很好。
比如一般认为神经细胞难以转染，而且尾静脉动物给药，通过血脑屏障到达大脑也不容易。
但实验表明，用体内转染技术进行尾静脉转染，能明显转染大脑神经细胞。
还有通常认为难以转染的心肌细胞、血管内皮细胞和原代细胞，用体内转染技术也有这样的效果。
所以，采用体内转染技术后，很多难以想象的组织器官等都可以应用，比如，甚至可以皮肤涂抹siRNA转染到瘢痕组织，影响毛发生长。
5、不同的组织和注射方法，如何评估干扰效率针对具体的组织器官，不同的注射方法会明显影响效果。
比如，大脑神经细胞的体内转染，可以采用尾静脉注射和侧脑室注射，用侧脑室的方法就好得多。
再比如，肺部的体内转染，用气管灌注就比用尾静脉注射的方法好得多。
体内转染试剂和核酸的混合物与靶器官的接触越直接越充分，效果越好。
干扰效率可以理解为干扰的细胞数量和全部细胞的数量的比例。
在体外细胞实验中，这2个数字可以精确计算。
但在动物体内无法精确统计。
一般评估效果，我们建议在分子水平，用RT-PCR，在细胞水平，用Western-Blot，在组织水平，用病理生理等方法。
6、目前有没有携带荧光的siRNA可以用于相关实验目前携带荧光的siRNA，如FAM荧光基团标记的，荧光比GFP等弱很多，而且光点很小，穿透性很差。
如果需要评估siRNA在动物体内的分布，我们建议还是用灵敏度和穿透性更好的同位素标记。
7、我目前正在用病毒感染的方法，效果不是太好，病毒感染和体内转染有什么不一样病毒感染做不好，体内转染能做好吗1）关于病毒感染和体内转染的区别:动物转染试剂病毒感染实验周期最快3天就可以出结果需要进行克隆、病毒包装等一系列实验，周期短则1个月，长则达数月。
灵活性更换核酸简单，利于筛选。
更换核酸序列，需要重新构建和包装病毒，复杂而且费工费时。
效果方法简单，实验环节少，尤其在转染小片断RNA方面，如：siRNA, miRNA, mimic,inhibitor等，有非常明确的效果，而且普通的用于细胞实验的RNA就可以，效果非常肯定。
理论上效果不错，但由于病毒实验环节较多，任何一个环节出问题都容易导致实验失败，而且失败后，不易查找原因。
实际上很多实验室失败后，往往暂停或终止了动物实验，导致课题研究质量的降低。
持续时间属于瞬时转染，单次转染效果持续7-14天，但可以通过多次注射维持转染效果可以通过整合到基因组内长期发挥作用费用只花费几千元即可立即进行小规模预实验来确定动物实验效果。
进行预实验也需要花费数万元和数月包装病毒，环节多，易出错，不易成功。
2）关于病毒感染如果效果不好，体内转染是否可以病毒感染和体内转染属2种实验手段，单从方法看，病毒感染和体内转染不相关，所以病毒感染如果不好，体内转染并不受影响，反之，也一样。
当然如果实验本质上就不会有效果，比如错误的干扰序列，那么采用任何方法都不会成功。
一般来说，如果细胞实验是成功的，基本可以排除实验的不可行性，那么就主要是方法有问题，这时，如果病毒感染不好，可以采用体内转染。
另外，现在英格恩有病毒感染体内增强试剂，可以大大提高病毒的感染效果。
您也可以试一下这个。
8、不是太懂，动物体内转染技术用来干什么，主要的特点和优点是什么1）简单地说，如果你希望影响动物某部位基因的功能，增强、减弱，以及引入外源基因。
就可以用动物体内转染技术。
2）主要特点优点：比较以前的病毒感染、基因敲除、转基因动物等方法，要简单得多，用合成的小RNA与体内转染试剂混合注射动物，就可以进行类似基因敲除的实验。
同样，用质粒DNA与体内转染试剂混合注射动物就可以进行类似转基因动物的实验。
非常方便，注射几天后就可以观察结果，而且可以随时更换核酸，完成更多基因，更深入的实验。
而且，省时间和经费。
病毒感染需要动辄上万的经费和数月包装病毒的时间。
基因敲除老鼠和转基因动物也很麻烦。
9、很感兴趣，你们的动物体内转染试剂有文献支持吗这是部分的文献，附件有部分全文。
Neurosci Ther. 2013 May Involvement of Programmed Cell Death 5 (PDCD5) in the Regulation of Apoptosis in Cerebral Ischemia/Reperfusion Injury.(脑室注射siRNA 研究脑缺血的凋亡机理)Biol. 2013 Mar siRNA-TGFβ1-337 patch for hypertrophic scar treatment.(皮肤涂抹siRNA研究治疗皮肤瘢痕)Cereb Blood Flow Metab. 2013 Jan mediates hyperbaric oxygen preconditioning-induced ischemic tolerance in rat brain.脑室注射siRNA研究脑缺血机理)Lett. 2012 Jan 28;314(2):223-31. Epub 2011 Oct is frequently upregulated in colorectal cancer and its oncogenicity can be suppressed by let-7a microRNA.(皮下肿瘤注射miRNA研究治疗结肠癌),.Infect Dis. 2012 Aug 6;12(1): hairpin RNA targeting 2B gene of coxsackievirus B3 exhibits potential antiviral effects both in vitro and in vivo.(尾静脉注射DNA 研究治疗病毒性心肌炎)Pharm Des. 2012 Sep (miRNAs) in colorectal cancer: From aberrant expression towards therapy.in Modern Biomedicine 2010 Research on Short Double-Stranded RNA in Mouse Models with Viral Myocarditis.10、再问一下，你们试剂的原理是什么，使用方法麻烦吗1）体内转染试剂Entranster-in vivo是采用纳米技术合成的高分子化合物，通过物理作用与核酸结合，浓缩包裹核酸，从而保护核酸免受免疫系统破坏，同时将核酸富集在细胞表面，保护促进核酸进入细胞组织发挥作用。