菊花总黄酮_多酚及水浸出物含量分析
浅论药用菊花中黄酮类成分研究进展

浅论药用菊花中黄酮类成分研究进展浅论药用菊花中黄酮类成分研究进展【关键词】菊花;黄酮类;中草药菊花系菊科植物Chrysanthemum morifolium Ramat.的干燥头状花序。
作为一种传统中药,具有疏风、清热、明目、解毒功效[1]。
菊花中的有效成分包括黄酮类、挥发油、绿原酸等,近年来随着提取工艺及检测方法的提高,对菊花中黄酮类成分的研究越来越深入,本文就菊花中黄酮类成分提取工艺、含量测定、药理作用的研究作一综述。
1 化学成分从菊花中已分离得到的黄酮类成分有香叶木素、木犀草素、芹菜素、香叶木素7 O β D 葡萄糖苷、木犀草素7 O β D 葡萄糖苷、金合欢素7 O β D 葡萄糖苷、刺槐苷、金合欢素7 O (6″ O 乙酰) β D 葡萄糖苷、金合欢素、山奈酚和异泽兰黄素。
2 提取工艺菊花中黄酮类成分的提取多采用超声法和微波法提取。
相比传统的回流提取具有省时、高效、节能等优点。
闫克玉等在建立了怀菊花中总黄酮含量测定方法的基础上,采用正交设计优选菊花中总黄酮的超声提取条件,用芦丁作对照,硝酸铝作显色剂,测定波长510nm,优选提取条件是用30mL70%的乙醇浸泡1g左右的菊花粉末h,在超声波功率为150W的条件下,超声提取30min。
吴桂霞等探讨了影响超声波法提取菊花中黄酮类化合物提取率的主要因素,通过正交试验法确定了最佳提取工艺:溶剂为60%的乙醇,在温度50℃,料液比1∶20的条件下提取10min,黄酮提取率为96%。
付为琳等在微波单因素提取的基础上,采取正交优化试验,确定了在微波功率300W 的条件下,最佳提取条件为加20倍60%的乙醇,提取0秒,此时总黄酮提取率为4.83%。
林敏等以万寿菊花为原料,以水为溶剂,通过正交试验,得出了微波技术提取黄酮类化合物最优化的提取条件:微波份额为P3,时间为50s,料液比为1g∶15mL,pH值为10,提取二次,提取率达9.37%。
丁利君比较了水提法、醇提法、超声波法对菊花中黄酮类化合物的提取效果的影响,并使用正交实验确定了最佳提取条件。
菊花叶黄酮类化合物的实验分析-

药科技出版社 ,1994 :374
(收稿 :2001 - 04 - 12)
止 痛 奇 效 汤 治 疗 肝 癌 疼 痛 20 例
席玉才 李 竞 (黑龙江省黑河市中医院·黑河 164300)
1 一般资料 本组 20 例均为住院病人 ,其中男 16 例 、女 4 例 ;年龄 最小 45 岁 ,最大 72 岁 ,平均 5815 岁 ;治疗前本组病例 14 例有止痛剂 用药史 ;疼痛时间最长 1 年 ,最短 1w。
夏散结祛痰 、化瘀止痛 ; 肝癌晚期 ,其正气虚损 ,加用一味黄芪以补
充 ,并有预防行气散结而伤正之功效 ,诸药合用共奏疏肝理气 、活血
化瘀 、祛痰散结而使气血流通 ,通则不痛 ,故临床用于治疗肝癌疼痛
取得较好疗效 。
(收稿 :2001 - 10 - 12)
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中国中医药科技
2002 年第 9 卷第 Fra bibliotek 期菊花叶黄酮类化合物的实验分析
刘金旗 王 兰 刘劲松 吴德林 王举涛
(安徽中医学院药学系·合肥 230038)
摘 要 目的 :比较菊花叶和菊花的黄酮类化学成分 ,测定菊花叶中总黄酮的含量 。方法 :采用薄层层析和比 色法 。结果 :菊花叶和花的黄酮类化合物基本相似 ,总黄酮含量为 : 亳菊叶 5150 % ,滁菊叶 6143 % ,贡菊叶 3126 % ,杭白菊叶 9148 % ,结论 :菊花叶与花具有相似成分 ,可开发利用 。 主题词 菊花叶/ 化学 菊花/ 化学 总黄酮/ 分析
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菊花中总黄酮的含量测定

菊花中总黄酮的含量测定
菊花是一种常见的草本植物,被广泛用于中药和食品加工中。
菊花具有多种药用价值,其中菊花中总黄酮的含量是其重要的营养指标之一。
本文将从菊花的营养成分、总黄酮的定义和作用、测定总黄酮含量的方法以及菊花中总黄酮含量的研究进展等方面进行探讨。
一、菊花的营养成分
菊花富含多种营养成分,包括蛋白质、脂肪、碳水化合物、维生素和矿物质等。
其中,总黄酮是菊花中的重要成分之一,具有很高的生物活性。
二、总黄酮的定义和作用
总黄酮是一类具有黄酮骨架的化合物的总称,包括黄酮类、异黄酮类和花色苷类等。
总黄酮具有抗氧化、抗炎、抗菌、抗肿瘤等多种生物活性,对人体健康具有重要的保护作用。
三、测定总黄酮含量的方法
测定总黄酮含量的方法主要有比色法、高效液相色谱法和质谱法等。
其中,比色法是最常用的方法之一,通过与标准品的比色反应来确定总黄酮的含量。
四、菊花中总黄酮含量的研究进展
近年来,越来越多的研究关注菊花中总黄酮的含量及其健康功效。
研究表明,菊花中总黄酮的含量受多种因素的影响,如品种、生长环境、采摘时间等。
此外,研究还发现不同品种的菊花中总黄酮含量存在差异,有些品种的菊花中总黄酮含量较高,具有更好的保健效果。
五、总结
菊花中总黄酮的含量是其重要的营养指标之一。
测定菊花中总黄酮含量的方法多种多样,比色法是最常用的方法之一。
菊花中总黄酮的含量受多种因素影响,研究表明不同品种的菊花中总黄酮含量存在差异。
进一步的研究可以探索菊花中总黄酮的生物活性及其与其他成分的相互作用,为菊花的开发利用提供科学依据。
菊花中总黄酮的含量测定

菊花中总黄酮的含量测定
菊花中总黄酮的含量可以通过以下步骤进行测定:
1. 菊花样品的制备:将干燥的菊花样品磨成粉末,并通过筛网得到均匀的颗粒状样品。
2. 提取黄酮化合物:将菊花样品加入适量的溶剂(如乙醇、乙酸乙酯等),在适当条件下进行浸提,如使用超声波浸提或加热浸提。
3. 滤液处理:将浸提得到的溶液通过滤纸过滤,去除固体颗粒。
4. 冷却与浓缩:将滤液置于冷环境中,待其冷却,然后使用旋转蒸发器将溶液浓缩。
5. 与试剂反应:将浓缩后的溶液与适当的试剂反应,如添加醋酸铝试剂(亚铁试剂)、硼酸试剂等,进行反应产生颜色。
6. 测定吸光度:使用紫外可见光谱仪测定反应产生的颜色的吸光度。
7. 与标准曲线对比:使用已知浓度的黄酮标准溶液制作标准曲线,通过吸光度值与标准曲线的对比,确定菊花样品中黄酮的含量。
需要注意的是,在测定过程中应注意控制条件,如浸提时间、浓缩程度、反应时间等,以保证测定结果的准确性和可靠性。
同时,为了获得更精确的测定结果,可以重复进行多次测定,并取平均值。
总黄酮总酚含量测定方法

太行菊的抗氧化活性试验计划1. 实验内容对太行菊的甲醇提取物的乙醇、正己烷、二氯甲烷、乙酸乙酯、正丁醇、水共六种萃取物进行总酚、总黄酮含量的测定,分析实验结果,选择总分和总黄酮含量比较高的两个层分进行抗氧化能力测定,分析其抗氧化能力强弱,判断其有无研究价值。
用Folin-Denis法测定太行菊甲醇提取物各萃取层组分的总酚含量,以没食子酸作为标准品进行对照。
用三氯化铝法测定太行菊各萃取层组分的总黄酮含量,以槲皮素作为标准品进行对照。
根据实验结果,选择总酚和总黄酮含量较高的萃取层组分进行抗氧化能力测定,包括DPPH自由基清除能力测定,羟基自由基清除能力测定,还原能力测定。
2.实验步骤将太行菊用甲醇溶液回流提取其有效成分,旋转浓缩后用水溶解,然后分别用正己烷、二氯甲烷、乙酸乙酯、正丁醇萃取、水层,得相应层的馏分。
2.1总酚含量测定:在试管中分别加入不同层样品(1mg/ml)0,25ml +Folin-Denis 试剂0.5ml ,5min后,再加入Na2CO3饱和溶液0.5ml,并做三组重复。
对照组中样品和Folin-Denis试剂用DW代替,其他不变。
空白组中Folin-Denis试剂用DW代替,其他不变。
在760nm紫外光下测定吸光度。
对实验结果处理后做标准曲线,以没食子酸为标准品。
以没食子酸的微克数表示总酚含量:吸光度=0.0069 μg没食子酸-0.042。
Folin-Denis试剂的配制:在2L烧瓶中加入750ml蒸馏水,再加入100g钨酸钠和20g磷钼酸,再加入50ml正磷酸回流2h, 冷却后装入1L容器内置于暗处实验组*3:体积Folin-Denis的体积Na2CO3MEOH层0.25ml 0.5ml 0.5mlH层0.25ml 0.5ml 0.5mlCH层0.25ml 0.5ml 0.5mlEA层0.25ml 0.5ml 0.5mlBUOH层0.25ml 0.5ml 0.5mlW层 1 2 2对照组*3:DW DW Na2CO3体积0.25ml 0.5ml 0.5ml空白组*3:体积DW的体积Na2CO3MEOH层0.25ml 0.5ml 0.5 mlH层0.25ml 0.5ml 0.5 mlCH层0.25ml 0.5ml 0.5mlEA层0.25ml 0.5ml 0.5mlBUOH层0.25ml 0.5ml 0.5 mlW层0.25ml 0.5ml 0.5ml2.2总黄酮含量测定:在试管中分别加入不同层样品(1mg/ml) 0.5ml + 1M CH3COOK溶液0.1ml + DW 2.8ml + 95%乙醇 1.5ml + 10% AlCl3·6H2O溶液0.1ml,并做三组重复。
野菊花提取液中总黄酮含量测定分析

野菊花提取液中总黄酮含量测定分析宋德海;徐倩倩;孙迎东;李保院;郭时金;张金杰【摘要】目的测定野菊花提取液经聚酰胺色谱柱分离后不同洗脱层总黄酮含量.方法采用60%浓度乙醇水加热回流提取野菊花供试品,经聚酰胺色谱柱分离纯化得到不同浓度乙醇洗脱层.采用紫外可见分光光度法对不同洗脱层总黄酮含量进行测定.结果野菊花提取液50%乙醇洗脱液干膏得率为0. 975 3% ,干膏得率最高. 70%乙醇洗脱层黄酮类化合物含量为46. 51% ,含量最高.结论聚酰胺色谱柱分离纯化法准确、灵敏、简便、重复性好,为野菊花黄酮类化合物富集纯化提供了科学基础.【期刊名称】《滨州医学院学报》【年(卷),期】2019(042)001【总页数】3页(P27-29)【关键词】野菊花;色谱柱;总黄酮;紫外可见分光光度法【作者】宋德海;徐倩倩;孙迎东;李保院;郭时金;张金杰【作者单位】滨州医学院附属医院药学部滨州 256603;滨州市畜牧兽医研究院;绿都安特动物药业有限公司;滨州医学院附属医院药学部滨州 256603;滨州医学院附属医院药学部滨州 256603;滨州市畜牧兽医研究院;绿都安特动物药业有限公司;滨州医学院附属医院药学部滨州 256603【正文语种】中文【中图分类】R917野菊花为菊科植物野菊(Chrysanthemi Indicum L)干燥头状花序。
其味苦、辛,性微寒,归肝心经,具有疏风清热,消肿解毒之功效。
野菊花主要产于江苏、四川、广西、山东、安徽等地,主要含有挥发油、萜类、黄酮类等成分[1]。
黄酮类成分主要包括蒙花苷、木犀草素-7-O-β-D-葡萄糖苷等黄酮苷类,木犀草素、槲皮素等黄酮苷元。
黄酮类化合物的抗炎、镇痛、抗氧化活性作用明显,多种黄酮协同作为野菊花药效组分,并且对免疫肝脏损伤具有一定保护作用[2-5]。
前期研究通过聚酰胺色谱柱对野菊花蒙花苷进行了初步富集纯化研究[6]。
本研究用60%乙醇水对野菊花药材进行加热回流提取[5],并用聚酰胺树脂对提取液进行富集纯化,采用紫外可见分光光度法[7]对野菊花提取液的聚酰胺不同富集部位的总黄酮含量进行测定,以确定聚酰胺色谱法对总黄酮富集效果及不同部位总黄酮含量,为下一步野菊花黄酮类化合物研究奠定基础。
野菊花不同炮制品中总黄酮含量的分析

野菊花不同炮制品中总黄酮含量的分析
彭小冰;胡皓东
【期刊名称】《贵阳中医学院学报》
【年(卷),期】2005(027)002
【摘要】目的:研究不同炮制方法对黔产野菊花中总黄酮含量的影响.方法:紫外分光光度法测定总黄酮含量.结果:结果表明野菊花炒炭后其总黄酮含量最高,其蒸制品中总黄酮含量最低.结论:炮制方法与野菊花中总黄酮含量有一定的关系.
【总页数】3页(P61-63)
【作者】彭小冰;胡皓东
【作者单位】贵阳中医学院,贵州,贵阳,550002;贵阳中医学院,贵州,贵阳,550002【正文语种】中文
【中图分类】R284
【相关文献】
1.不同产地野菊花药材中蒙花苷及总黄酮含量测定 [J], 宋宏刚;裴彩云;赵韶华;宋剑;许红辉
2.野菊花不同部位总黄酮含量的比较 [J], 白少岩;蓝静
3.野菊花提取液中总黄酮含量测定分析 [J], 宋德海;徐倩倩;孙迎东;李保院;郭时金;张金杰
4.蒲黄及不同炮制品中总黄酮和多糖含量分析 [J], 席先蓉;李寿星
5.异株荨麻不同炮制品中总黄酮和多糖的含量分析 [J], 谢秀丽;何斌;于海群;王兰珍
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药用菊花中总黄酮的提取、分离、检识与鉴定

五、总黄酮类成分定量分析
510nm
1.样品溶液制备
样品干浸膏加50ml乙醇 全部溶解得样品母液
精密移取Iml +
{
5%亚硝酸溶液1ml,放置6min 甲醇定容 10%硝酸铝1ml, 放置6min 摇匀, 放置15 min 10%氢氧化钠试液10ml
2.对照品的制备
精密称取干燥至恒重的无水芦丁10mg 于50mL容量瓶内
总黄酮提取率%
6.15 4.98 6.45 7.34
浸膏得率%
26.96 25.63 24.78 28.96
拟提取方法-------乙醇回流法
• 乙醇回流法是经典的提取方法,查阅文献得到此法的总黄酮的提取率较高,
且操作简单,对仪器要求不高,综合提取率及实验室条件等因素,我组决 定采用70%乙醇回流法提取菊花中的总黄酮。
拟提取方法-------乙醇回流法
菊花 粉末50g 减压回收乙醇, 浓缩至50ml,得 浸膏。 浸膏中加入适量水使混悬 ,依次用适量 石油醚、氯仿萃取 ,
加8 倍量70%乙醇400ml,浸泡 1 h,回流提取2 次, 每次1 h (加适量硼酸)合并滤液
石油醚层
脂溶性成分 如叶绿素、 胡萝卜素
氯仿层
1-2min后,观察现象
3.三氯化铝反应
样品的乙醇溶液 + 1%AlCl3乙醇溶液反应 络合物(黄色)
•凡具3-OH、4-C=O;5-OH、 4-C=O;或邻二酚羟基结构的黄酮类均可显色
4.碱性试剂反应(NaOH)
•黄酮类显红色
检识与鉴定
• 取4支试管,编号1、2、3、4分别加入样品试剂
1%三氧化铝1mL
二、主要化学成分
(一)挥发油成分 (二)黄酮类化合物 (三)绿原酸 (四)其他:如氨基酸、微量元素等。
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线计算出总黄酮含量。 1.2.3 菊花多酚含量检测方法
(1)供试液制备:精确称取菊花样品 2.50 g,移入 250 mL 三角锥瓶中,250 mL 沸水浸提 10 min,每隔 3 min 摇晃 1 次,中途搅拌 2 次,减压过滤,蒸馏水洗涤 滤渣数次,滤液定容至 250 mL 容量瓶中,即为供试液。
酮含量和怀菊总黄酮含量的 RSD 值都小于 5%,且前 者 比 后 者 高 ;二 者 占 水 浸 出 物 的 含 量 ,分 别 是 10.21% 、13.74% 。 段 崇 霞 报 道 的 杭 菊 总 黄 酮 含 量 为 30.17 mg/g,而笔者测得的杭菊含量为 51.76 mg/g,可 能由分析检测的原料不同所致。另外,与段崇霞 、 [7] 汪民海[8]、芦金清[9]、杨铭[10]等报道的贡菊、滁菊、亳菊、
有治疗心血管疾病、抗氧化以及抗肿瘤等多种药理功 效[1-3]。多酚类物质是总黄酮类化合物中的一类主要功 能活性物质,在自然界分布非常广泛,具有抗氧化、抗 衰老、抗肿瘤、防治心脑血管疾病等多种药理功能,但 菊花中多酚物质的含量测定未见报道。此文选取杭菊 和怀菊两类有代表性的菊花,对其总黄酮含量、多酚含 量及水浸出物总量进行测定与分析,可为菊花功能活
出物含量分别为(506.90±2.56) mg/g、(493.80±2.63) mg/g,RSD 分别为 0.51%、0.53%,该研究结论可为菊
花功能活性成分的提取及综合利用提供理论依据。
关键词:菊花;总黄酮;多酚;水浸出物;含量
中图分类号:S3
文献标志码:A
论文编号:2009-2483
Content Analysis of the Flavonoids, Polyphenols and Water-extracts in Chrysanthemum Zhang Jianyong1, Jiang Heyuan1, Yuan Xinyue2, Yao Yu2, Liu Hongyun1, Cui Hongchun2
(2)多 酚 含 量 测 定 :准 确 吸 取 试 液 1 mL,注 入 25 mL 的 容 量 瓶 中 ,加 水 4 mL 和 酒 石 酸 亚 铁 溶 液 5 mL,充分混合,再加 pH7.5 磷酸盐缓冲液至刻度,采 用 10 mm 比色皿,在波长 540 nm 处,以试剂空白溶液 作参比,测其吸光值(A)。 2 结果与讨论 2.1 菊花含水率及水浸出物分析
料存放条件不当,吸收空气中的水分,从而导致其含水 率偏高。另外,由表 2 的菊花水浸出物含量测定结果 可知,杭菊和怀菊的含水率相差不大,前者的含水率仅 比后者高 13.10 mg/g。
表 1 菊花含水率
杭菊 怀菊
含水率/% 15.90 13.28
STD/% 0.09 0.02
RSD/% 0.58 0.12
(1)标准曲线的绘制:用 60%乙醇配制 0.1 mg/mL 的芦丁对照液。然后分别精确吸取芦丁对照液 0.00, 0.50、1.00、2.00、3.00、4.00、5.00 mL 于试管中,分别加 入 5%亚硝酸钠溶液 0.30 mL,摇匀,静置 6 min,之后再 加 10%硝酸铝溶液 0.30 mL,摇匀,静置 6 min,之后再 加 入 4% 氢 氧 化 钠 溶 液 4.00 mL,再 依 次 分 别 加 入 5.40、4.90、4.40、3.40、2.40、1.40、0.40 mL 60%乙醇使反 应液体积达到 10 mL,摇匀,静置 12 min,于 510 nm 处 测定吸光值。
摘 要:研究了杭菊和怀菊两类菊花中总黄酮及水浸出物的含量,并首次检测了菊花中多酚物质的含
量。结果表明:杭菊和怀菊中总黄酮含量分别为(51.76±1.06) mg/g、(67.83±2.11) mg/g,RSD 分别为
2.06%、3.11%;多酚含量分别为(102.25±2.64) mg/g、(159.73±3.84) mg/g,RSD 分别为 2.59%、2.40%;水浸
中国农学通报 2010,26(9):102-105 Chinese Agricultural Science Bulletin
菊花总黄酮、多酚及水浸出物含量分析
张建勇 1,江和源 1,袁新跃 2,尧 渝 2,刘洪云 1,崔宏春 2
(1中国农业科学院茶叶研究所 农业部茶及饮料植物产品加工与质控制重点开放实验室,杭州 310008; 2中国农业科学院研究生院,北京 100081)
0 引言 菊花是菊科植物菊的干燥头状花序,又名甘菊花、
白菊花、茶菊等,主产于浙江、河南、安徽和四川等省 份,栽培菊花有杭菊、怀菊、亳菊、贡菊、滁菊、祁菊、济 菊、黄菊八大种类。黄酮类物质是菊花的主要成分之 一 ,其 中 包 括 木 犀 草 素(Luteohn)、刺 槐 甙(Acacia glucoside)、矢车薄甙(Chrysan themin glucoside)等,具
Abstract: The contents of flavonoids and water extracts in Zhejiang chrysanthemum and Henan chrysanthemum were researched. In addition, the content of chrysanthemum polyphenols in two chrysanthemums was determinated for the first time. The contents of total Flavonoids in two chrysanthemums were (51.76±1.06) mg/g and (67.83±2.11) mg/g, and their RSD values were 2.06% and 3.11%. The contents of Polyphenols in two chrysanthemums were (102.25 ± 2.64) mg/g and (159.73 ± 3.84) mg/g, and their RSD value were 2.59% and 2.40%. The contents of water extracts in two chrysanthemums were (506.90±2.56) mg/g and (493.80±2.63) mg/g, and their RSD value were 0.51% and 0.53%. We hope to provide scientific basis for the extraction and synthesis utilization of chrysanthemum functional components. Key words: Chrysanthemum; flavonoid; polyphenol; water extracts; content
张建勇等:菊花总黄酮、多酚及水浸出物含量分析
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性成分的提取及综合利用提供理论依据。 1 材料与方法 1.1 材料与仪器
杭菊,怀菊。乙醇、亚硝酸钠、氢氧化钠、硝酸铝、 酒石酸钾钠、硫酸亚铁、磷酸氢二钠、磷酸二氢钾均为 国产分析纯,芦丁对照品(sigma 公司)。
UV-2401PC 型 紫 外 可 见 分 光 光 度 计 ( 日 本 Shimadzu 公司),KQ-100E 超声波脱气机(江苏昆山市 超声仪器有限公司),DK-S62 电热恒温水浴锅(上海精 宏实验设备有限公司),818 型 pH 计(美国奥立龙公 司),漩涡混合器(Vortex-Genie2 型)、DFT-50 型 50g 手 提 式 高 速 中 药 粉 碎 机 ( 温 岭 市 林 大 机 械 有 限 公 司)、 5810R 型离心机(德国 eppendorf 公司)。 1.2 实验方法 1.2.1 菊花水浸出物检测方法 准确称取 2.000 g 磨碎 菊花试样(M),加入热蒸馏水 300 mL,沸水浴中恒温 浸提 45 min(每隔 10 min 摇动 1 次),浸提完毕后,立即 减压过滤,蒸馏水洗涤滤渣数次,将菊花渣放入已知质 量的烘皿中,置 120℃的恒温干燥箱内(皿盖斜置皿 上),待温度回升至 120℃,加热 1 h,加盖取出,于干燥 器内冷却至室温,称量(m0,精确至 0.001 g),重复加热 1 h 的操作,直至连续两次称量差不超过 0.005g,即为 恒重,以最小称量为准。采用 GB T 8304―2002 烘箱 105℃恒重法测定磨碎菊花试样含水率,计算出试样干 物质含量(m)。 1.2.2 菊花总黄酮含量检测方法
10.89A + 0.005,R2=0.996(图 1),结果表明,在 0.005~ 0.500 mg/mL 浓度范围内总黄酮的含量与 510 nm 下 的吸光值呈良好的线性关系。杭菊和怀菊总黄酮含 量的测定结果见表 3。从测定结果可知,杭菊的总黄
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中国农学通报
(2)供试品溶液制备:准确称取磨碎后的菊花粉末 6.000g(过 80 目网筛),加入 80 mL 95%乙醇液,40℃超 声提取 2.5 h,抽滤,取滤渣,继续加入 80 mL 95%乙醇 液,于 40℃重复超声提取 2.5 h,抽滤,合并两次滤液, 60%乙醇定容至 250 mL,得供试品溶液。
注:STD 代指标准偏差,RSD 代指相对标准偏差。
表 2 菊花水浸出物含量(占干重)
杭菊 怀菊
水浸出物(/ mg/g) 506.90 493.80
STD(/ mg/g) 2.56 2.63
注:STD 代指标准偏差,RSD 代指相对标准偏差。
RSD 0.51% 0.53%
2.2 菊花总黄酮分析 比 色 法 测 得 芦 丁 标 准 曲 线 方 程 为 C(mg/mL)=
(1Tea Research Institute of CAAS, Key Laboratory of Tea and Beverage Plant Products Processing and Quality Control of Agriculture Ministry, Hangzhou 310008; 2Chinese Academy of Agriculture Sciences, Beijing 100081)