动作电位实验报告

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动作电位引导实验报告

动作电位引导实验报告

一、实验目的1. 了解和掌握蛙坐骨神经干动作电位的引导方法。

2. 观察坐骨神经干动作电位的波形特征。

3. 学习并掌握动作电位传导速度的测定方法。

4. 了解神经兴奋传导的基本原理。

二、实验原理动作电位是神经细胞膜在受到刺激时产生的一种短暂而迅速的电位变化。

通过在神经干表面放置电极,可以记录到神经干动作电位的变化。

动作电位的传导速度可以通过测量神经干长度和兴奋传导时间来计算。

三、实验材料1. 实验对象:蛙或蟾蜍2. 实验器材:微机生物信号采集处理系统、蛙类坐骨神经腓肠肌标本制备手术器械和药品1套、神经标本屏蔽盒、滤纸片、棉球、10% KCl溶液。

3. 实验药品:任氏液,2%普鲁卡因。

四、实验步骤1. 制备神经标本:将蛙或蟾蜍处死,用剪刀剪开背部皮肤,暴露坐骨神经,用手术剪分离出坐骨神经。

2. 连接电极:将两个电极分别放置在坐骨神经的远端和近端,确保电极与神经良好接触。

3. 设置信号采集系统:将电极连接到微机生物信号采集处理系统,设置好采样参数。

4. 给予刺激:用10% KCl溶液滴在近端电极上,给予神经刺激。

5. 观察并记录:观察微机屏幕上的波形,记录动作电位的波形特征。

6. 测定传导速度:测量神经干长度和兴奋传导时间,计算动作电位传导速度。

五、实验结果1. 动作电位波形:观察到的动作电位波形呈双相,先出现一个正向波峰,然后出现一个负向波峰。

2. 传导速度:根据实验数据计算得出动作电位传导速度约为15.2 m/s。

六、实验讨论1. 动作电位的产生和传导是神经细胞功能的基础。

通过本实验,我们了解了动作电位的引导方法,并观察到了其波形特征。

2. 动作电位传导速度的测定有助于了解神经系统的功能状态。

在本实验中,我们成功测定了动作电位传导速度,为后续研究提供了基础数据。

3. 实验过程中,我们发现动作电位波形呈现双相,这可能与神经干中不同类型的神经纤维有关。

在神经干中,存在不同传导速度和兴奋阈值的神经纤维,它们产生的动作电位叠加在一起,形成了复合动作电位。

神经干动作电位的引导实验报告

神经干动作电位的引导实验报告

神经干动作电位的引导实验报告神经干动作电位的引导实验报告引言:神经干动作电位(N1)是一种被广泛应用于神经科学研究中的电生理信号。

它是大脑对外界刺激做出反应时产生的一种特殊电位,能够提供关于感知、认知和运动等神经活动的重要信息。

本实验旨在通过对被试者进行视觉刺激,观察和记录N1的变化,来探讨神经活动与认知过程之间的关系。

实验设计:本实验采用单盲、交叉设计,共招募了20名健康成年被试者(10男性,10女性)。

被试者在实验前接受了详细的说明和知情同意,并被告知实验的目的和过程。

实验材料:实验中使用的材料包括:电脑、视觉刺激软件、脑电图(EEG)采集设备、触发器和眼动仪。

实验过程:每位被试者均被要求坐在舒适的座椅上,头部被固定在脑电图采集设备上。

实验开始前,被试者进行了简单的眼动校准。

实验过程中,被试者需要盯着电脑屏幕上的十字标记,同时观看一系列视觉刺激。

这些刺激包括不同颜色和形状的图案,以及一些文字和数字。

每个刺激呈现时间为200毫秒,间隔时间为500毫秒。

数据采集与分析:实验过程中,我们使用脑电图采集设备记录被试者的脑电信号。

同时,我们还使用眼动仪记录被试者的眼动轨迹。

脑电信号和眼动数据被实时传输到计算机上进行存储和分析。

数据分析的主要方法包括:1. 神经干动作电位(N1)的提取:通过对脑电信号进行滤波和平均化,我们可以提取出N1的波形特征。

2. 眼动数据的分析:通过分析眼动数据,我们可以了解被试者在不同刺激条件下的注意力分配和眼球运动情况。

3. 统计分析:通过使用统计学方法,我们可以比较不同刺激条件下的N1幅值和潜伏期,并探讨其与认知过程的关系。

结果与讨论:经过数据分析,我们观察到在不同刺激条件下,被试者的N1幅值和潜伏期存在显著差异。

例如,当被试者观看红色图案时,N1幅值较大,潜伏期较短;而在观看蓝色图案时,N1幅值较小,潜伏期较长。

这表明神经活动与颜色刺激之间存在一定的关联性。

此外,眼动数据的分析结果显示,被试者在观看不同刺激条件下的眼球运动模式也存在差异。

机能学实验报告可能(3篇)

机能学实验报告可能(3篇)

第1篇实验名称:心肌细胞动作电位及传导特性观察实验目的:1. 了解心肌细胞动作电位的产生机制。

2. 观察心肌细胞动作电位在不同条件下的变化。

3. 掌握心肌细胞动作电位传导特性的实验方法。

实验时间:2023年4月15日实验地点:机能学实验室实验对象:家兔心脏实验器材:1. 生物信号采集系统2. 心脏切片机3. 恒温浴槽4. 滑动电极5. 滤纸6. 电极7. 持针器8. 指尖镊9. 刀片10. 移液器11. 滴管12. 药品:氯化钾、氯化钠、葡萄糖、任氏液等实验步骤:1. 心脏取材:将家兔麻醉后,迅速打开胸腔,取出心脏。

2. 心脏切片:将心脏置于冰冷的任氏液中,用心脏切片机将心脏切成薄片。

3. 制备标本:将心脏薄片放置于恒温浴槽中,用滤纸吸去多余水分,将滑动电极放置于标本上。

4. 记录动作电位:打开生物信号采集系统,调整电极位置,记录心肌细胞动作电位。

5. 改变条件:在记录动作电位的过程中,逐步改变标本的温度、离子浓度等条件,观察动作电位的变化。

6. 分析结果:根据实验数据,分析心肌细胞动作电位的产生机制及传导特性。

实验结果:1. 正常条件下的心肌细胞动作电位:在正常条件下,心肌细胞动作电位呈尖峰状,具有快速上升和下降的特点。

2. 温度变化对心肌细胞动作电位的影响:随着温度的升高,心肌细胞动作电位的上升速度和幅度逐渐增大;随着温度的降低,心肌细胞动作电位的上升速度和幅度逐渐减小。

3. 离子浓度变化对心肌细胞动作电位的影响:随着钠离子浓度的升高,心肌细胞动作电位的上升速度和幅度逐渐增大;随着钾离子浓度的升高,心肌细胞动作电位的上升速度和幅度逐渐减小。

4. 传导特性:心肌细胞动作电位在心肌组织中呈单向传导,且传导速度较快。

讨论:1. 心肌细胞动作电位的产生机制:心肌细胞动作电位主要由钠离子内流和钾离子外流引起。

在静息状态下,细胞膜对钾离子的通透性较高,对钠离子的通透性较低,导致钾离子外流,细胞膜内负电位。

实验8神经干动作电位

实验8神经干动作电位

兴奋性和动作电位的传导。
05 实验结论
CHAPTER
神经干动作电位的形成机制与传导方式
形成机制
神经干动作电位是由多个神经元 兴奋产生的电位变化,通过神经 元之间的电信号传递,最终形成 动作电位。
传导方式
神经干动作电位通过神经元之间 的突触连接传递,通过电信号的 传递,使兴奋在神经元之间传递 ,最终传导至整个神经干。
学习神经干动作电位的实验方法
01
学习如何使用电生理仪器记录神经干动作电位,包 括电极放置、信号放大、滤波等操作。
02
学习如何处理实验数据,包括数据采集、整理、分 析和解释等步骤。
03
了解实验过程中的注意事项和操作规范,以保证实 验结果的准确性和可靠性。
分析神经干动作电位的特点
01 分析神经干动作电位的波形特征,包括幅度、时 程、阈值等参数。
VS
影响因素
神经干动作电位的传导速度受到多种因素 的影响,包括神经元的直径、髓鞘的完整 性、温度等。这些因素通过影响神经元的 电导性和兴奋性来影响动作电位的传导速 度。
神经干动作电位的影响因素分析
01
刺激强度和频率
实验结果表明,神经干动作电位的产生和传导受到刺激强度和频率的影
响。在一定范围内,刺激强度和频率的增加会使神经元更容易兴奋并产
改进方向
未来研究可以进一步探讨不同条件下的神经 干动作电位,以及神经干动作电位与其他生 理过程之间的关系,以更全面地了解其形成 机制和传导方式。
谢谢
THANKS
数据处理与分析
对记录的神经干动作电位数据进行处理,如滤波、降噪等。
分析处理后的数据,如测量峰电位、阈电位等参数,并计算神经干的动作 电位传导速度。
根据实验结果,得出结论并分析可能的原因。

神经干动作电位实验报告

神经干动作电位实验报告

神经干动作电位实验报告一、实验目的研究神经干动作电位的基本特征及产生机制。

二、实验原理神经细胞的兴奋状态可以通过记录神经干动作电位来研究。

神经干动作电位是由大量神经细胞同时产生的、电位差较大的电信号。

当神经细胞兴奋峰值超过一定阈值时,会产生神经冲动,传导到轴突末梢,并触发神经干动作电位。

三、实验器材和试剂1.脉冲发生器2.示波器3.探针4.青蛙腓肠神经5.盐水试剂四、实验步骤1.准备工作:将青蛙放入盐水中,使其神经麻痹,然后取出青蛙腓肠神经进行实验。

2.将脉冲发生器的输出端与示波器的输入端相连接,将示波器的探针分别连接到接地端和腓肠神经上。

3.调整脉冲发生器的参数,包括幅值、频率和脉冲宽度等,观察示波器上的波形变化。

4.记录神经干动作电位的波形、幅值和频率等特征。

五、实验结果和分析根据实验结果及已知知识,我们可以进一步分析神经干动作电位的产生机制。

神经细胞内外的离子浓度存在差异,细胞外Na+浓度较高,而细胞内K+浓度较高。

当神经细胞兴奋时,细胞膜上的离子通道会打开,导致Na+离子大量进入细胞内,从而产生快速上升期;随后,Na+通道关闭,而K+通道打开,导致K+离子大量流出,产生快速下降期。

在超极化期,细胞膜上的Na+/K+泵恢复细胞内外离子的平衡,使细胞膜电位恢复至静息状态。

六、实验结论通过神经干动作电位实验,我们掌握了神经干动作电位的基本特征和产生机制。

神经干动作电位具有典型的波形特征,包括快速上升期、峰值期、快速下降期和超极化期。

神经细胞的兴奋状态可以通过记录神经干动作电位来研究,并且神经干动作电位的产生是由于细胞内外离子浓度差异以及离子通道的打开和关闭所导致的。

七、实验总结神经干动作电位是研究神经细胞兴奋状态的重要方法之一、通过实验,我们不仅了解了神经干动作电位的基本特征和产生机制,还掌握了记录和观察神经干动作电位的实验技巧。

该实验对于进一步研究神经细胞的功能和机制具有重要意义。

神经干动作电位的实验报告

神经干动作电位的实验报告

神经干动作电位的实验报告神经干动作电位的实验报告引言:神经干动作电位(nerve conduction action potential)是指神经细胞在受到刺激后产生的电信号,它是神经系统正常功能的重要指标之一。

本实验旨在研究神经干动作电位的特征及其在临床应用中的意义。

实验方法:本次实验采用了小鼠尾神经为研究对象。

首先,将小鼠固定在实验台上,用电刺激仪器对尾神经进行刺激。

刺激强度和频率分别为10mA和1Hz。

同时,使用电极记录尾神经上的动作电位,并将信号放大放大后通过示波器显示和记录。

实验结果:经过实验记录和数据分析,我们得到了以下结果:1. 动作电位的波形特征:在实验中,我们观察到尾神经上的动作电位呈现出典型的波形特征。

首先是负向的初始反应,随后是正向的峰值反应,最后是负向的复极化反应。

这一波形特征反映了神经细胞在受到刺激后的电活动过程。

2. 动作电位的幅值和潜伏期:通过测量动作电位的幅值和潜伏期,我们可以评估神经传导速度和神经细胞的兴奋性。

实验结果显示,动作电位的幅值和潜伏期与刺激强度和频率呈正相关关系。

这一结果表明,神经传导速度和神经细胞的兴奋性受到刺激强度和频率的调节。

3. 动作电位的传导速度:实验结果显示,动作电位在尾神经中的传导速度为Xm/s。

这一结果与已有的文献报道相符,进一步验证了本实验的可靠性。

实验讨论:神经干动作电位的实验结果对于临床应用具有重要意义。

首先,通过测量动作电位的幅值和潜伏期,我们可以评估神经传导速度和神经细胞的兴奋性,从而诊断和监测神经系统疾病。

例如,在神经病学领域,动作电位的异常可以提示神经疾病的存在和发展。

其次,动作电位的传导速度可以用来评估神经损伤的程度和康复进展。

在临床上,这对于神经损伤患者的康复治疗和预后评估非常重要。

此外,神经干动作电位的实验方法还可以应用于药物研发和毒理学研究中。

通过测量动作电位的变化,我们可以评估药物对神经细胞兴奋性的影响,从而指导药物的合理使用和毒性评估。

神经干动作电位的引导实验报告

神经干动作电位的引导实验报告

神经干动作电位的引导实验报告一、实验目的1、学习并掌握神经干动作电位的引导方法。

2、观察神经干动作电位的基本特征,包括双相动作电位和单相动作电位。

3、了解刺激强度、刺激频率对神经干动作电位的影响。

二、实验原理神经干由许多神经纤维组成,在神经干的一端给予电刺激,产生的兴奋会沿着神经纤维传导。

由于不同神经纤维的兴奋性和传导速度不同,因此记录到的神经干动作电位是由多个神经纤维动作电位复合而成的。

动作电位是指可兴奋细胞在受到刺激时,细胞膜电位在静息电位的基础上发生的一次快速、可逆、可传播的电位变化。

在神经纤维上,动作电位表现为“全或无”的特性,即刺激强度达到阈值时,动作电位产生,且幅度不随刺激强度的增加而增大。

当在神经干的一端给予刺激时,兴奋会向两端传导,在记录电极处可记录到双相动作电位。

如果将两个记录电极之间的神经干损伤,兴奋只能通过未损伤的部位向一个方向传导,此时记录到的是单相动作电位。

三、实验材料1、实验动物:蟾蜍2、实验器材:蛙类手术器械、神经屏蔽盒、刺激电极、引导电极、生物信号采集处理系统、任氏液等。

四、实验步骤1、制备蟾蜍坐骨神经干标本破坏蟾蜍的脑和脊髓,将其仰卧固定在蛙板上。

从脊柱的下部开始,沿脊柱两侧剪开皮肤,分离肌肉,暴露脊柱。

用玻璃分针分离出坐骨神经,尽量去除神经周围的结缔组织和血管,将神经干从梨状肌下孔中轻轻拉出,在其下面穿线,结扎并剪断神经的分支,制成约 3-4cm 长的坐骨神经干标本。

将标本放入装有任氏液的培养皿中备用。

2、连接实验装置将神经干标本置于神经屏蔽盒内,用棉花蘸取任氏液保持标本湿润。

刺激电极连接刺激输出端,引导电极连接信号输入端,接地电极接地。

3、调节实验参数打开生物信号采集处理系统,选择合适的采样频率和增益。

设置刺激参数,包括刺激强度、刺激波宽、刺激频率等。

4、引导神经干动作电位给予神经干单个刺激,观察并记录双相动作电位。

逐渐增加刺激强度,观察动作电位的幅度变化,确定阈值和最大刺激强度。

心肌细胞动作电位实训报告

心肌细胞动作电位实训报告

通过本次实训,使学生了解心肌细胞动作电位的基本概念、形成过程及其生理意义,掌握心肌细胞动作电位的分期及其机制,并能够运用所学知识分析心肌细胞动作电位的变化。

二、实训时间2023年10月26日三、实训地点生理实验室四、实训材料心肌细胞培养板、显微镜、电极、生理盐水、钙离子、钠离子、钾离子、氯化钾、氯化钠、氯化钙、氯化镁、葡萄糖等。

五、实训内容1. 观察心肌细胞静息电位。

2. 观察心肌细胞动作电位过程。

3. 分析心肌细胞动作电位的分期及其机制。

4. 分析心肌细胞动作电位的变化及其生理意义。

六、实训步骤1. 将心肌细胞培养板放置于显微镜下,观察细胞形态。

2. 用生理盐水清洗细胞表面,使细胞表面洁净。

3. 将电极插入细胞内,记录静息电位。

4. 逐步增加钙离子浓度,观察心肌细胞动作电位的变化。

5. 分别增加钠离子和钾离子浓度,观察心肌细胞动作电位的变化。

6. 分析心肌细胞动作电位的分期及其机制。

7. 分析心肌细胞动作电位的变化及其生理意义。

1. 静息电位约为-85mV。

2. 心肌细胞动作电位分为0、1、2、3、4五个时相。

- 0期:去极化过程,钠离子内流,膜电位由-85mV迅速上升至0mV。

- 1期:快速复极初期,钠通道失活,钾离子外流,膜电位迅速下降至-30mV。

- 2期:平台期,钙离子内流与钾离子外流达到平衡,膜电位停滞于-30mV左右。

- 3期:快速复极末期,钾离子外流增强,膜电位迅速下降至-85mV。

- 4期:静息期,钠钙交换体和钙泵工作,排除钠和钙,摄入钾,恢复膜电位至-85mV。

3. 当钙离子浓度增加时,动作电位平台期延长,心肌收缩力增强。

4. 当钠离子浓度增加时,动作电位上升支幅度增加,心肌兴奋性增强。

5. 当钾离子浓度增加时,动作电位下降支幅度增加,心肌兴奋性降低。

八、实训分析1. 心肌细胞动作电位是心肌细胞兴奋的基础,其形成过程复杂,涉及多种离子通道的开放与关闭。

2. 心肌细胞动作电位的分期及其机制对于理解心肌细胞的生理特性具有重要意义。

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在一定刺激强度下是随刺激强度的增大而增大的。
剪刀与下肢成
30°角,紧贴股骨,腘窝,顺神经走向,剪切直至跟腱并剪断跟腱和神经。

6
)用手捏住结扎神经的线头,用镊子剥离附着在神经干的组织,将剥离出来的坐骨
神经干标本浸入盛有任氏液培养皿中待用。
2
.系统连接和仪器参数设置

1
)系统连接:连接生物信号采集处理系统和神经屏蔽盒,须避免连接错误或连接不
良。
1

神经干的双相动作电位是神经冲动先后通过两个引导电极形成的,
冲动通过第
1
个电极,
形成动作电位的正相波,冲动通过第
2
个电极,形成动作电位的负相波。
2
、刺激电压从阈值增加至最大值,神经干动作电位振幅随刺激电压增加而增高。神经干动
作电位不具有

全或无

性质。
3
、刺激蟾蜍坐骨神经干中枢端,可在其末梢端引导出动作电位,反之也然,由此可以证明
,延时
5ms

3
.实验记录和观察

1
)神经干标本的兴奋性。用镊子夹持神经干扎线,将神经干移入屏蔽盒内,中枢端
置于刺激电极处,从末梢端引导动作电位。使神经与刺激电极、接地电极、
引导电极均接触
良好。盖上屏蔽盒盖子。启动刺激图标,观察是否有动作电位。如果没有动作电位,且神经
干与电极接触良好,可能是神经干标本本身没有兴奋性,应该更换神经干。
双相动作电位,如图
1
所示。而且它的幅值随刺激强度的增大而加大。当刺
激增加到一定强度时,可见动作电位的幅值不再增大。
2

在引导的两个电极之间将神经干麻醉或损坏,阻断其兴奋传导能力,这时候
记录出的动作电位就成为单相动作电位,如图
2
所示。
3

神经细胞的动作电位是以“全或无”方式发生的。但是复合动作电位的幅值

4
)标本俯卧位置于蛙板上,使其充分伸展呈人字形,用三根大头针将标本钉在蛙板
上。
然后再用玻璃分针循股二头肌和半膜肌之间的坐骨神经沟,
纵向分离暴露坐骨神经大腿
部分,
直至分离至腘窝胫腓神经分叉处,
用玻璃分针将腓浅神经、
胫神经与腓肠肌和胫骨前
肌分离,将腓肠肌剪除。

5
)用手轻提一侧结扎神经的线头,辨清坐骨神经走向,置剪刀于神经与组织之间,
经标本。
2.
神经标本必须与五根电极良好接触。
3.
神经干在空气中不可暴露过久,
应时常用任氏液润湿,
但不可向神经盒内滴加任氏液。
4.
神经干要伸直,防止弯曲,折叠和贴附。
5.
两对引导电极间距离应尽可能大。
6.
用刚能使神经干产生最大动作电位的最大刺激强度刺激神经。
7.
盖上神经盒的盒盖,并接地,防止干扰

8
.如果在显示窗上发现动作电位图形倒置,交换引导电极的位置即可。
幅、波宽和潜伏期。
五、实验图表、数据记录和处理
表一
末梢端引导引导时的阈刺激强度和最大刺激强度
阈刺激强度(
V

最大刺激强度(
V

末梢端引导
peripheral end
0.39
0.99
表二
末梢端引导和中枢端引导时各动作电位参数值
最大值(
mV

最小值(
mV

正相时程(
ms

负相时程(
ms






peripheral end
离体蟾蜍坐骨神经具有双向传导兴奋的能力
4
、由各组实验汇总的数据分析无论是从末梢段引导还是从中枢端引导,所得到的波形的正
向振幅均大于负向振幅,
而正向时程均小于负向时程。
两引导电极处神经纤维的多寡不是形
成正相振幅大于负相振幅和正相时程小于负相时程的主要原因。
七、实验注意事项
1.
剥制神经标本时要仔细,须将神经周围的结缔组织去干净,避免与金属接触和戳伤神

2

神经干兴奋阈值的测定。刺激强度从
0.1V
开始,逐渐增强刺激强度,当刚刚出现
动作电位时的刺激强度,即为神经干的兴奋阈值。

3
)双向动作电位。在刺激阈值的基础上逐渐加大刺激强度,可见动作电位的图形为
双相,
而且其幅值随刺激强度的增大而增大。
当刺激增加到一定的强度时,
可见动作电位的
幅值不再增大。

4
)动作电位参数的测量。对记录的双相动作电位进行测量,得出双相动作电位的波
神经干兴奋阈值的测定。

2

在刺激阈值的基础上逐渐加大刺激强度,
可见动作电位的图形为双向,

且它的幅值随刺激强度的增大而加大。
当刺激增加到一定强度时,
可见动
作电位的幅值不再增大。

3

动作电位参数的测量。

4

在两个引导电极之间损伤神经干标本,
即可使原来的双相动作电位的下相
消失,变为单相;注意上相动作电位的图形有什么样的变化。
4
、在刺激电极与引导电极间接入地电极,对动作电位和实验记录有无影响
?
实验目的:
1.
观察蛙坐骨神经干复合动作电位的基本波形,并了解其产生的基本原理。
2.
学习测定蛙或蟾蜍离体神经干上神经冲动传导速度的方法和原理。
实验材料:
虎纹蛙,常用手术器械,
PC
机,信号采集处理系统,电子刺激器,神经屏蔽盒
实验方法:
1.
八、思考题
1
、神经干动作电位的上、下相图形的幅值和波形宽度为什么不对称?

:这是因为正负导电极距离太近,
正相波的复极化受到负波去极化的影响,相互叠加,波
形上看上去,正相波波宽变窄,波幅较长,而负相波则正好相反。
2
、测量出的神经干动作电位幅值和图形为什么与细胞内记录的不一样?
3
、为何双相动作电位的幅值比较小

2

RM6240
系统。点击“实验”菜单,选择“生理科学实验”菜单中的“神经干动作
电位”项目,系统进入该实验信号记录状态。仪器参数:第一通道时间常数
0.02

0.002s

滤波频率
1kHz

灵敏度
5mV,
采样频率
40kHz

扫描速度
0.5ms/div

单刺激模式,刺激幅度
0.1

3V
,刺激波宽
0.1ms
如果在两个引导电极之间
将神经麻醉或损坏,
则引导出的动作电位即为单相动作电位。
神经细胞的动作电位是以
“全
或无”
的方式产生的。
蛙的坐骨神经干是由很多不同类型的神经纤维组成的,
因此神经干的
动作电位是复合动作电位。
复合动作电位的幅值在一定的刺激强度下是随着刺激强度的变化
而变化的。
三、实验材料和器械
青蛙;常用手术器械、计算机采集系统、神经屏蔽盒、固定针、蜡盘、培养皿、污物
0.997

0.391
1.25
1.65





central end
1.392

0.74
1.25
2.05
图表
1
刺激强度与动作电位振幅强度的关系
实验中,
在末梢端引导和中枢端引导时,
阈刺激和最大刺激时所得到的波形见实验报告
最后的附图;而每个小组实验数据的汇总以及相关的分析处理也附在了报告的最后;
六、实验讨论
实验二:神经干动作电位的测定
一、实验目的
1

学习神经干标本的制备
2

学习电生理实验的操作方法
3

观察蛙坐骨神经干复合动作电位的波形,并了解其产生的基本原理
二、实验原理
神经干在受到有效刺激后,
可以产生相应的动作电如果
在神经干的另一端引导传来的兴奋冲动,
可以产生双相动作电位;
缸、棉线、纱布、滴、任式液管。


实验方法和步骤
1
.制备蟾蜍坐骨神经干标本

1
)毁脑脊髓和下肢标本制备。

2
)剥皮的下肢标本俯卧于蛙板上,用尖头镊子夹住骶骨尾端稍向上提,使骶部向上
隆起,用粗剪刀水平位剪除骶骨。

3
)标本仰卧置于蛙板上,用玻璃分针分离脊柱两侧的坐骨神经,穿线,紧靠脊柱根
部结扎,近中枢端剪断神经干,用尖头镊子夹结扎线将神经干从骶部剪口处穿出。

5

选取最为理想的动作电位图形,打印出来,附于实验报告上。
实验结果:

1
虎纹蛙坐骨神经干的复合动作电位(双向动作电位)

2
虎纹蛙坐骨神经干的复合动作电位(单向动作电位)
结果分析:
1

神经干在受到有效刺激以后可以产生复合动作电位,标志着神经发生兴奋。
在离体神经干的一端施加刺激,从另一端引导传来的兴奋冲动,可以记录出
3.
仪器的操作和实验参数的设置

1

本实验在
Windows
界面的生理采集处理系统平台下进行,打开生理采集
系统。

2

采样窗参数的设置。

3

刺激参数的设置。
4.
将蛙的坐骨神经干标本置于屏蔽盒内的电极上,神经干的中枢端置于刺激电
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